Summary
在这篇文章中，我们提出了一个微流控芯片单细胞分析。它使细胞内的蛋白质，酶，辅因子，以及第二信使通过荧光测定法或免疫测定装置的量化。
Abstract
我们提出了一个微流体装置，使多个单体电池并联定量测定细胞内生物分子。为此目的，将细胞被动被困在一个微容器的中间。在激活时，控制层，所述细胞是从一个小的腔室周围的容积隔离。周围的体积然后可以在不影响分离的细胞进行交换。然而，在该腔室的短的开闭，在该腔室中的溶液可在几百毫秒取代。由于腔室的可逆性，可以将细胞暴露于不同溶液依次以高度可控的方式， 例如 ，用于温育，洗涤，最后，细胞裂解。该密封的微容器使裂解液的潴留，尽量减少和细胞裂解后，控制稀释。自体溶解和分析出现在同一位置，高灵敏度被保持，因为没有进一步ðilution分析物的损失或运输过程中发生。因此，微室的设计使之从单个细胞释放的细胞内分子（阿托摩尔，zeptomoles）非常小的拷贝数的可靠和可重复的分析。此外，许多微容器可以被布置成阵列格式，允许在一次许多细胞的分析，考虑到合适的光学仪器被用于监视。我们已经使用该平台的概念验证研究，分析细胞内蛋白质，酶，辅助因子和相对或绝对量化的方式第二信使。
Introduction
在过去的许多研究已经揭示了大量的细胞群1-3中的细胞-细胞间的差异，特别是信号处理4，或细胞内的生物分子如蛋白质5,6，代谢物，辅因子和7,8的量。这些非均匀性被认为是对细胞的适应和进化9极其重要，而且在癌症等疾病63-82的产生和治疗中发挥关键作用。因此，在单细胞水平的研究是在生物和药理研究兴趣高的，尤其是当这些研究揭示了不同的细胞反应与生物活性的化学物质，处理后。
近年来，许多分析平台已经开发了促进单个活细胞的分析或细胞含量的化学组成。而荧光激活细胞分选（FACS）是金圣andard对单个活细胞的非常高通量分析，该方法不能被用于细胞内或分泌化合物的定量。微流体平台的出现已经答应为定位，治疗和观察单个细胞的新的分析策略。微流控芯片中的一个里程碑达成与由地震和同事14,15实现灵活的PDMS阀门的整合。这些阀门是有用的，因为它们可以隔离区域上的芯片， 例如分开两种文化16。此外，它们特别适用于单细胞分析，因此有助于减少分析物的稀释问题。这种方法对单细胞分析的力量已经由汉森和他的同事，谁从几百单细胞在17平行分析的基因表达最近展示。
当靶向蛋白质和代谢物的分析是非常困难的，由于缺乏合适的一mplification方法中，大量不同的化合物存在，和它们的化学性质的变化。此外，大多数胞内生物分子预计将存在于几万种18的次序低的拷贝数，因此所用的分析方法必须具有高灵敏度。更强大的测定例如免疫测定和酶联免疫分析（ELISA）是很难集成到微流控装置，因为它们需要几个洗涤和温育步骤，以及表面固定。
由于这些挑战，这并不奇怪，只有几个例子被报道了，其中蛋白质或代谢物进行定量的单细胞水平。例如，关于荧光化合物的分泌的研究已有报道19,20。最近，用ELISA法的实施，提出了从细胞培养分泌（非荧光）蛋白（THP-1细胞）21和单（我的分析mmune）细胞10。靶向细胞内的蛋白质，Shi 等人开发了促进细胞内蛋白质的鉴定通过免疫测定11的装置的信令在肿瘤细胞途径的分析的微流体装置。然而，蛋白质的唯一的相对量进行了测定，并没有酶促扩增被用来增加对低丰度蛋白的信号。
最近，我们能够以单细胞俘获微型装置用荧光测定法8和免疫22（ 图1）相结合。细胞是被动被困在微米级关卡结构，它允许供应和（快速）交换媒介和其他化学试剂无细胞的任何运动。围绕每个陷阱的环形阀使细胞的分离在一个非常小的量（以下简称“微室”）。该阀引入细胞裂解（低渗）缓冲，他后立即启动NCE防止细胞内分子或分泌的分子扩散而去。最重要的是，由于量（625 PL）的小尺寸，避免大量稀释的分子。此外，由于溶解和分析都在芯片的同一位置进行的，不存在损失，由于运输分析物。这里所描述的芯片设计包括8交替的行，7或8微容器的，共计60微容器。腔被致动以行，从而使交叉污染沿一条线被排除。
该平台可以与荧光测定法，以及免疫学测定法（ 图1d）组合使用。对于后者，我们建立了协议的抗体，这是与芯片的生产和装配过程兼容的固定。因此，该平台开辟了道路敏感，可靠和可计量的测定在单细胞水平。到现在为止，我们已经使用该设备为i的分析ntracellular和分泌的酶（通过酶测定法相对定量），细胞内辅助因子，蛋白质和小分子（绝对定量通过终点测定法或ELISA）。在下文中，我们描述了由多层软光刻和抗体的形成图案的协议通过微接触印刷和表面化学的手段的手段芯片制造的过程。此外，芯片的使用和操作的一些例子给出。
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Protocol
1。 SU-8制作大师
准备两个主模具的通道（流体和控制，原理图及尺寸见图2）以下协议，但不同的掩模图案。该过程示于图3a。
- 开始通过10分钟在180℃下加热4英寸硅晶片装载于旋涂机脱水晶片，并使用下列协议旋涂SU-8 2015：
- 旋转晶片，在100 rpm离心20秒（开放旋涂机的盖子，分配后在该步骤中，盖上盖子分配的SU-8）。
- 旋转晶片，在500 rpm离心10秒（这会扩散抗蚀剂在整个晶片）。
- 旋转晶片在1750 rpm离心30秒（定义的抗蚀剂，以20微米的高度）。
- 除去从用丙酮（用棉签）在晶片的边缘抵抗，因为这将否则粘到加热板的下一个步骤。晶圆转移到啊otplate在95℃和热4分钟。的软烘烤之后，暴露在抗蚀剂通过光掩模贴在钠钙玻璃中的掩模对准器，用紫外灯（150毫焦耳/厘米2，在365nm处测量）。
- 在曝光后，再次加热晶片在95℃下进行5分钟的加热板上。冷却晶圆至室温，然后沉浸入SU-8开发者4分钟洗澡。轻轻摇动除去未曝光的SU-8。与洁净室等级异丙醇冲洗晶圆并用氮气吹干。检查在显微镜下，如果开发成功（尤其是电池的陷阱）。如果小区的陷阱被完全开发的，在硅晶片的反射应该是可见的。如果有必要，再开发晶片几分钟。
- 烤晶片在烘箱中2小时，在180℃以除去所有残余的溶剂。检查渠道，台阶仪的高度。如果高度不同于所希望的高度，重复此协议开始于步骤1.1与新的晶片和改变旋转速度（步骤1.1.3）。通过硅烷化的晶片与1H，1H，2H，2H-全氟癸基dimethylchloro硅烷在干燥器中过夜完成母模的制造。
2。主用于制作微接触印刷
- 为了制备主模具的微接触印刷，脱水的硅晶片10分钟，在180℃下旋涂1毫升HDMS到该晶片在7500 rpm离心30秒（抗蚀剂更好地粘合到硅烷化的表面）。旋涂2毫升AZ1518积极抵制这一协议：
- 静态分配的抗蚀剂上的晶片。
- 旋转晶片为5秒，在500转每分钟。
- 晶圆旋转60秒，4000转。
- 在100℃下50秒的软烘烤的加热板上后，暴露出通过光掩模和掩模对准抗蚀于UV光（21毫焦/厘米2在365nm处）。开发抗拒AZ 726的浴75秒。冲洗晶圆开发与去离子水和吹塑ðRy的氮气。通过加热所述晶片，在115℃下进行50秒的去除残留的溶剂。 Silanize晶圆在真空下过夜。
3。微流控芯片的制作
一个两层的设备设计用于这些实验。将两层分开制备和粘接在一起之前，在芯片最终结合到载玻片上（ 图3b）。此步骤描述了PDMS层的生产和微接触印刷的PDMS压模。
- 制备10:1混合物的PDMS和固化剂。总共制备约80g的PDMS（使用我们的设计中，这将导致在10个芯片）。混合两部分大力和脱气的PDMS，直到混合物是无气泡的（〜30分钟）。
- 放置晶片的培养皿，并用胶带内的控制层上的底部。接着，倒〜50克PDMS的顶部，并把该晶片为至少2小时的烘箱中，在80℃以确保完全固化的PDMS。重复同样的步骤对微接触印刷晶圆，这个加入约20 g的PDMS是必要的。
- 旋涂在晶片上的PDMS与流体层以2,000 rpm的旋转速度，以形成一个约40微米高的PDMS层。在80℃下固化的PDMS在烘箱中1小时以上
- 当这两个部分被固化，从晶圆去除控制层，切成用剃刀刀片件。通过使用1毫米活检冲床冲压力连接孔。对于存储，最好是把一块胶布在渠道。
- 粘合两层，取旋涂晶片和顶端部分，并将其放置在等离子体清洁器23。等离子体处理后，迅速配合大的工作距离显微镜下两个部分。添加围绕置于顶部的部分一些备用的PDMS。这个步骤不是必须的，但是它有利于从晶片除去的PDMS。将晶片在烘箱中在80℃下至少1小时。
- 用手术刀小心地从晶片剥离PDMS和削减芯片。冲头进入孔为用1.5毫米的活检穿孔机的流体连接。
- 将PDMS芯片现在已完成并且可以存储数月。可选的：如果芯片被用于一个水库，切200μl的移液管尖的上端部，并使用一些备用的，半固化的PDMS粘上它上面。把芯片在烘箱中再次在80℃下放置至少1小时。
4。粘接到玻璃幻灯片
使用该设备进行直接的酶测定法，贴合后所需的唯一步骤是表面的封闭。对于这个协议，进行A。但是，使用微流控芯片免疫分析或酶联免疫吸附，请参阅协议B，限制结合位点只在载玻片（ 即全内反射荧光显微镜或SPR）。如果这种限制并不重要，是指A，但用生物素标记的结合物在步骤4.3，并继续执行步骤4.8在协议B来创建一个功能齐全的表面。
在此之前进行协议A和B：这是明智的过滤所有用过的蛋白质溶液介绍他们到芯片之前的。碎片和蛋白聚集体可以以其他方式阻止细胞的陷阱，从而减少了室可用于分析的次数。为此目的，可使用非蛋白吸附过滤器单元把它们引入通道之前过滤所有的解决方案。
协议A（酶测定）
- 要完成微流体装置，粘接部位的PDMS到载玻片。要做到这一点，首先清洗用肥皂水，蒸馏水和乙醇的载玻片上。用氮气流干燥的幻灯片。用透明胶带清洁PDMS的一部分。
- 将PDMS部分和清洁载玻片到等离子体清洁器45秒在18 W·为了保证紧密粘接，把芯片的热板上（100℃）5分钟。
- 粘接后，填写与f芯片luids。一个简单的方法来实现这一目标是使用离心力。切为200μl移液管尖端的下部。用于流体通道，填充它们用封闭溶液（牛血清白蛋白（4％重量/体积）或聚-L-赖氨酸）接枝的聚乙二醇（0.05％重量/体积），并将提示进入入口。填充控制层入口用水或用等渗溶液， 例如 PBS中。将芯片放入离心机（800×g离心）5分钟。该频道现在应该充满液体完全。如果不是，请重复此步骤。
- 孵育至少30分钟，在室温下封闭溶液。以10微升/分钟使用注射泵的流速洗涤液从流体层的PBS。该设备已准备好进行细胞实验。
协议B（免疫）
对于从步骤4.7起表面改性的完整概述，请参考表1。
- 在cubate PDMS印章的微接触印刷与BBSA / BSA溶液（ 如 1-100）。 30分钟后，用蒸馏水彻底清洗邮票和干燥在氮气流中的时间戳。迅速将邮票上的清洁玻璃板滑动（ 图4）。
- 暴露与邮票载玻片用在等离子体清洁器的微流体芯片，以氧等离子体45秒在最大功率（18瓦）的顶端部分一起。等离子体处理之后，除去印模和对齐印刷表面的设备的微容器的下方。放置在芯片上的热板上30分钟，在50℃下
- 以封闭剩余的表面上，引入无菌过滤的牛血清白蛋白溶液（4％（重量/ PBS中V））与一个离心分离机芯片（参见步骤4.2）。孵育1小时，洗涤液从流体层，用PBS（参见步骤4.3）中。该芯片可以被直接使用或贮存长达2周，在4℃下在潮湿的箱。
- 对于一个功能齐全的结合表面活性E，采用抗生物素蛋白（0.025％（W /在PBS V））推入储。使用5微升/分钟的流速进行30分钟通过流体通道撤回该抗生物素蛋白溶液。随后，冲洗的PBS 10分钟。彻底清洗油箱。
- 随后，加入蛋白G（0.0025％（W /在PBS V））和另外30分钟平齐。用PBS再10分钟后洗净。接着，10分钟，添加目标抗体（0.0001％（重量/ PBS中五））。 10分钟后，停止流动15分钟，以允许绑定。接着，洗净，用PBS 10分钟。
5。细胞实验
该协议是由于各种可能的试验以通用的术语。作为一个例子所需要的G6PDH毒性测定用试剂中给出。该设备的初始细胞捕集效率是大约2.5％， 即 5超过200个细胞将被困住。细胞陷阱的最终占用强烈依赖于所使用的细胞系，该协议中止细胞系和时间将细胞通过信道进行冲洗。对于细胞自然生长于悬浮液（如U937），单细胞可以在大约75％的几分钟后腔室被发现。其它腔要么不填写，或者由两个或更多个细胞占据。在一般情况下，单个单元可容纳于贴壁的细胞系更小。当使用这里给出的，而温和的助悬协议的百分比降低至约30％（HEK，MLT细胞）。单细胞占用可以通过细胞的胰蛋白酶处理得到改善，但是，这也可能改变的实验的结果。
取决于目标分子，吸附或吸收到PDMS会影响结果。可吸附通过阻断与BSA或PLL-G-PEG表面减少。吸收是不可能的大部分亲水性的生物分子，但它应该检查（小）的亲脂性的细胞成分。
- 根据特定的协议准备的细胞（ 如
- 使用注射泵和前向气流加载单元上的芯片，而不是撤回细胞悬浮液。使用5微升/分钟的悬浮细胞系和10-20微升/分钟流速较高粘接细胞的流速，因为减少了细胞的非特异性附着到通道壁上。
- 当陷阱被填充后，关闭室。如果许多细胞非特异性粘附于表面，尽量在10-30微升/分钟的流量与细胞分离液清洗他们离开。
协议A（酶测定）
- 通过芯片撤回裂解液。在这个例子中，该缓冲液是添加吐温20（10 mM的Tris-盐酸，10低渗缓冲毫米氯化钾，1.5毫摩尔MgCl 2，1％（V / V）吐温20）。对于裂解，快速启闭室（ 即 500毫秒为10-50微升/分钟7,21流速）。为G6PDH测定中，加入2毫摩尔葡萄糖-6 - 磷酸，0.5mM的NADP，0.5 U / ml的心肌黄酶和0.3mM的刃天青的裂解缓冲液。开始监控溶解后，立即动力学反应。
注 ：选择，适用于测定任何缓冲，但是裸记住，强烈的清洁剂（如海卫，SDS）裂解细胞立即会导致分析物室开放期间的损失。
协议B（免疫）
对于ELISA细胞实验（流速，室状态等 ）的简短说明，请参考表1。
- 用于ELISA，所需的检测试剂（ 例如第二抗体，标记抗原）直接添加到裂解缓冲液中。此处添加矫饰N 20降低了非特异性吸附。根据步骤5.4裂解细胞。孵育混合物10-15分钟，以允许结合（培养时间取决于所使用的抗原和抗体）。
- 抗体酶结合物吸附到非特异性的通道壁可导致检测试剂贮存器和信道已经里面的一个转换。为减少这种吸附问题，通过芯片在孵化时间刷新用于检测酶的永久抑制剂（室封闭，加入检测试剂之前）。对HRP，用20mM的HCl的水以永久失活的非特异性吸附的酶。
- 后的培养时间，介绍的检测试剂（ 例如 Amplex Red试和过氧化氢 为HRP）的芯片。不久再次打开室洗未结合的第二抗体路程，添加检测试剂。立即开始监视动力学反应。
- 校准：固定该抗体对感兴趣的目标。关闭室。在缓冲液中或在细胞裂解物中的片制备不同浓度的分析物。适用浓度的芯片和快速交换内室（500毫秒开标时间）的音量。这个开口时间足够短，以确保没有额外累积发生从分析物冲洗，并检测分子从微室的体积只有一个特定的号码。从溶液内抗原的已知浓度和所述腔室的体积（625 PL），计算出室内的量。此后，继续执行步骤5.5并介绍了检测部分。
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Representative Results
我们的平台能够分析存在于或由单个细胞产生的多种细胞内的以及所分泌的分子。在这里，我们想呈现不同的实例研究强调了各种可能的分析。我们将举一个例子，对于分泌的酶（ 图5a），以及细胞内的酶（ 图5b）和蛋白质（ 图5c和d）所示 。更多的例子，如辅助因子或小分子，请参阅Eyer 等（2012）和Eyer 等人 （2013）。
首先，我们提出了一个用于检测分泌酶（ 图5a）。在活化后用佛波醇肉豆蔻酸乙酸酯（PMA），人单核细胞诱导分泌溶菌酶，诱导细菌细胞裂解的酶。对于该测定法，细胞缓冲液含有4 - 甲基伞形酮β-DN，N'-diacetylchitobioside，弱荧光底物lysozYME。后的糖残基的酶的裂解，所述荧光团被释放出来，并且可以在腔室内部进行检测。在此，微室的优点是最小化的稀释分泌的酶，允许一个短的时间周期内，检测低浓度的酶的。在图5a中 ，一些示例曲线示表示溶菌酶的酶周转从单一刺激的U937细胞中分泌。从与组织细胞性淋巴瘤的患者的U937细胞派生的，并且可以被诱导以终端单核细胞分化。该细胞系产生的肿瘤坏死因子α，溶菌酶和β2-微球蛋白的刺激用PMA后。没有成交检出开放室或无细胞室（虚线）。
图5b示出一种胞内酶，这里的葡萄糖-6 -磷酸脱氢酶（G6PDH）的相对定量。 G6PDH是来自同一组织来源看家蛋白和细胞不应该主要变化在他们的G6PDH浓度24。在这里，U937细胞被困在室内，而我们提供的G6PDH的检测荧光测定法连同裂解缓冲液。它由葡萄糖-6 - 磷酸，NADPH，酶心肌黄酶和底物刃天青，它被转换为荧光试卤灵时G6PDH是存在的。增加的荧光随时间的速率对应于G6PDH的量。该芯片进一步促进对有毒化合物， 如通过细胞培养与毒素（这里喜树碱）定义的时间（60分钟）的效果研究。这样处理后，被释放的酶冲走并裂解细胞，并测定G6PDH的水平。事实上，一个显著的损失胞内酶含量明显由于较慢的增加荧光（红色线和列在图5b）。这项研究的细节可以在Eyer 等人发现。8
e_content“>此外，我们表明从免疫测定的结果为细胞内的GFP量的分析，对于诱导表达，HEK293细胞，其中转染的T-REX表达系统，在这种系统中，GFP的表达，可以通过添加四环素诱导经过培养8小时后，将细胞悬浮，冲洗到芯片上，捕集，并随后裂解。捕获下列这里提出来绑定从细胞中释放的GFP协议抗GFP抗体固定在玻璃表面上， 如图5c中示出了绿色荧光蛋白与抗体的结合动力学。在本例中，GFP可直接通过全内荧光显微镜是由于该蛋白的荧光测定。我们想强调的是，非荧光性的蛋白还可以通过使用夹心ELISA或类似检测的格式。对于这一点，需要测定组分可经过洗涤步骤引入。ELISA法的优点是对信号进行放大因到酶，产生该累积的微容器内的荧光产物。最后，我们想提出一个单细胞夹心ELISA与GAPDH作为目标蛋白质。我们测定GAPDH在U937细胞悬浮液以及粘附的HEK293细胞（ 图5d）。对于这一点，我们固定化的抗-GAPDH抗体（捕获抗体）。细胞裂解后，第二种酶标记的抗体（检测抗体）进行了介绍。该室被打开，由于流，未结合的抗体检测被冲走Amplex Red和被引入到室内。 Amplex Red试的转化率通过HRP（检测抗体），荧光试卤灵是在所有60个微容器的同时随着时间的推移监测。从反应的线性部分的斜率被确定。此斜率是直接相关的酶的浓度，因此，对分析物的浓度。从单一的U937细胞，结果表明，平均GAPDH量的2.6渺摩尔，为2.0和3.2渺摩尔，分别最小值和最大值。 46 HEK细胞中的数据分析表明，包含在平均2.5渺摩尔GAPDH（最小0.9渺摩尔;最大4.1渺摩尔）的那些细胞。
图1。不同检测方法的微型设备和原理图呈现 。 一）组装的微型设备。这里，腔室填充有荧光可视化（绿色荧光）。也可见是水库，用于控制层的连接（压力，在后面的2x4连接器左，前右）和连接到注射器泵（前）。 二）放大在微室内区域。许多的这些室可以布置成阵列。对于可视化，橙色食用色素分离的内室，而绿色食用色素是通过渠道进行冲洗。压力控制层是装满了水。 三）放大单一微腔器件的工作。 四）示意图。内的微室（侧视图）中，单个细胞被捕获和隔离。该细胞可以被刺激，温育，洗涤，最后在芯片内裂解。蜂窝内容可以直接与测定为酶或其中在反应时（左）产生荧光部分辅酶进行分析。对于其他蛋白质，该表面可以与该特异性结合靶蛋白（右）的抗体进行修改。由于抗原结合到表面，裂解液可冲走，可以添加检测分子，如第二抗体定量目标蛋白。 点击这里查看大图 。
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图2。渠道系统和微室的尺寸示意图 。 一）面膜流体层的设计。流体层包括（从左至右）的插座，室内区域，一个过滤器，以保持颗粒和细胞团和一个入口。在晶圆A 4可以怀有结构，用于生产10个芯片。 二）面膜相应的控制层的设计。由于对路线所需要的空间，一个4晶圆包含结构，用于生产5片对齐图层。 三）电路图（左）和放大显示单元格的陷阱（右），都与尺度。 点击这里查看更大的图像 。
图3。 SU-8的处理和PDMS制作的示意图 。 一）示意图的SU-8处理协议。硅晶片是旋涂SU-8和软烘烤，在95℃持续4分钟。所需的微流体通道的设计是使用光掩模和紫外线光照射转印到SU-8。曝光后烘烤（95℃，5分钟）后，SU-8是2小时发达国家和硬烘焙在180℃。微流体芯片制造的B）示意图。 PDMS的低聚物和固化剂的混合物是旋涂到该流体通道的主窗体，并倾倒在主表格的控制层。该频道底片中描绘的粉红色。这两个层被固化在烘箱中。控制层芯片的一部分从晶片（控制信道在蓝色）拆卸和孔中的压力连接冲切（白色）。这两款器件控制和流体层被放置在氧等离子体中，事后，它们对准并接合。整个芯片，然后从流体主表格（流体通道为红色）拆卸和流体通道孔被冲压（白色）。最后，芯片和载玻片表面被活化的氧等离子体后粘合。 点击这里查看大图 。
图4。微接触印刷的原理图 。 一）主制造软光刻技术。 （1）PDMS印章物与蛋白质（BBSA）解决方案。 （2）将溶液除去，印模洗涤和蛋白质的单层残留在邮票。 （3）标记被放置在载玻片上，从而将蛋白质转移到玻璃表面脸上。在这段时间内，用玻璃上的邮票的微芯片一起暴露于氧等离子体。 （4）标记被移除，并在微芯片粘接到玻璃载片上。对于可视化，2例结构示，印刷有荧光BSA-荧光素偶联物。 二）每室微接触印刷的区域。由于印刷和室没有对齐，我们评估了结合点（打印区域）在三个不同的芯片（数字1-3）和所有60微容器的变化。其结果是，腔室到腔室的变异是相对小的（<2.5％）和芯片至芯片的变异是微不足道的（<1％），这表明确实存在无需对准印刷结构的腔室。 点击此处查看大图 。
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图5。结果从G6PDH，溶菌酶，GFP和GAPDH的检测 。代表性结果。 一）酶的分泌从单个细胞。左：示意性测定的分泌的酶，此处溶菌酶。溶菌酶是由单一的，PMA激活的U937细胞中分泌和积累的封闭微容器内，在那里它催化产生的荧光4 - 甲基伞形酮的。右：从分泌实验获得的数据。绿色曲线显示随着时间的推移由一种细胞占据腔室的荧光强度，还示出的是不含有细胞的腔室（黑色，虚线）进行比较。b）检测到单个细胞中的细胞内酶。左：原理测定的胞内酶G6PDH的。经细胞裂解，细胞内G6PDH被释放到腔室，其中所述其它成分为酶反应级联都存在。右：示例曲线和有代表性的数据。 U937单对于其酶含量（黑色）细胞进行了分析。时喜树碱，其中permeabilizes膜的毒性影响，三分之二的酶的丢失（橙色）。 三）免疫测定单个细胞的胞内蛋白。左：示意图免疫测定，这里的细胞内蛋白质的GFP。抗GFP抗体进行了固定化在本文中所述的表面，根据协议。然后将细胞裂解在芯片和结合点进行随时间使用全内反射荧光显微镜监测。右：从这样一个实验显示，以固定化绿色荧光蛋白的抗体的结合动力学图。时间点1的出台标志着裂解缓冲液。在时间点2，绿色荧光蛋白是开始堆积在表面上，这意味着已经发生细胞裂解。绿色荧光蛋白的抗体的结合是在时间点3，D）的单细胞的细胞内蛋白的夹心ELISA法完成。左：一个示意图夹心ELISA，这里的细胞内蛋白质GADPH的。反-GAPDH抗体固定于本文所描述的面按照协议。然后将细胞裂解在芯片上并温育。解放GPADH与抗体结合，所述腔室进行洗涤和检测抗体（HRP-偶联）进行了介绍。在最后的步骤中，未结合的检测抗体被冲走，检测试剂被引入，使反应物随时间监测。右：GAPDH U937和HEK293细胞内的定量点击这里查看大图 。
表面改性协议进行酶联免疫吸附
| 步 | 时间 | 浓度 | 流量 | 流动自由培养时间 | 室开/常闭 | ||
| [分钟] | （重量/体积）％ | [微升/分钟] | [分钟] | </ TD> | |||
| BSA | 30 | 4 | - | 开 | |||
| PBS | 10 | 5 | 开 | ||||
| 抗生物素蛋白 | 30 | 0.025 | 5 | 开 | |||
| PBS | 10 | 5 | 开 | ||||
| G蛋白，生物素 | 30 | 0.0025 | 5 | 开 | |||
| PBS | 10 | 5 | 开 | ||||
| 抗体 | 20 | 0.0001 | 5 | 15 | 开 | ||
| PBS | 10 | 5 | 开 | ||||
| 细胞 （300,000细胞/ ml） | 〜5 | 30 | 关闭时，陷阱被占用。 | ||||
| 裂解缓冲液 | 5 | 30 | 短期内通车 | ||||
| 抑制剂（ 如 20毫米的HCl） | 15 | 10 | 关闭 | ||||
| PBS | 2 | 30 | 关闭 | ||||
| 检测试剂 | 5 | 30 | 短期内通车 | ||||
| 开始监测反应 | |||||||
表1。表面改性中N协议用 于ELISA。如需说明，请参阅文本。
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Discussion
微流体技术开辟为单细胞分析的新的和引人入胜的可能性。特别是，可能性陷阱和微流控工具分别固定细胞已经允许在单细胞特性和响应系统的短期和长期的研究。此外，细胞在高频率的微滴，在微型芯片上所产生的封装性，使单个细胞分泌的研究，这不能用传统的流式细胞仪设备来执行。微滴的方法，但是，当有需要的分析协议孵化和洗涤步骤一定的局限性。本方法结合了细胞俘获和隔离的两个概念，因此，它有利于执行更复杂的分析，包括基于表面固定化的抗体的免疫测定。另外，该方法是非常灵活的相对于应用程序和目标分析物。
该芯片的设计使（I）的effi古细胞俘获，（ⅱ）供给各种缓冲液和试剂，以及（iii）在需要时在一个非常小的体积可靠的隔离。以这种方式避免了目标分子的稀释液。六十微容器（数百）定位在一个单一的设备，允许许多实验并行。的圆形阀截止微容器可以一起或单独被处理了的行或列，这是重要的，当交叉污染到相邻腔室应防止。与微容器关闭时，通道可以具有有害的解决方案，例如盐酸清洗的目的，而不影响细胞捕获处理。另一方面，在微容器内的体积的快速交换是可能的。目前的200毫秒的间隔时间很短，需要充分打开密室，并引入新的试剂（用于微室容积完全交换，流量，必须考虑）。
虽然我们的方法很RELiable，重现性好，人们应该记住，有在芯片制造和运营的协议的两个主要关键点。首先，将2片层的等离子体活化后的接合，必须迅速完成。该路线是至关重要的，否则有些商会甚至整个芯片是无法使用的，因为结合是不可逆的。这一步可能是困难的没有经验的使用者，然而，一些培训后，即使经验不足的实验室工作人员通常取得了良好的效果。第二个关键点是组装和使用的微芯片中的清洁。如果灰尘颗粒存在于芯片的表面上，它们可能会危及控制通道和阀或者甚至会导致PDMS-PDMS或PDMS-玻璃键的断裂。因此，我们花了很多关注的清洗程序。应当指出，除了（在一个干净的房间执行）的主形式制造，我们生产和使用的微芯片的正常实验室环境中，灰尘次粒子都存在。
尽管所有的关心，如果室没有正确关闭，这可能是因为无论是压力线被封锁或旋涂过程中没有提供合适的膜厚度。还有，不时我们观察到粘合不足，导致了两个PDMS层之间的粘结断裂。如果从相同批次的许多芯片示出这个问题，它可能是等离子体活化和取向之间的时间过长。有时，我们经历粘PDMS上不能被正确移除晶片，是在晶片的不足硅烷化的结果。
一旦生产方法被建立时，微流体平台，可用于在单细胞水平上的许多不同的研究。这里，我们发现细胞内和细胞分泌剂具有不同的测定法的检测，但许多其它测定法是可能在芯片上。大多数蛋白质都没有荧光和他们去通过免疫测定TECTION并不简单。实施ELISA检测到芯片会带来很多好处。首先，在测定可被设计非常专门为所需的蛋白质（当合适的抗体存在）。其次，从ELISA信息甚至可以在低浓度范围进行量化，得到的蛋白质或分子拷贝存在于细胞的数目。
我们当前的芯片设计用于单哺乳动物细胞的分析。然而，该芯片为其他细胞，如细菌，藻类和酵母的变形例中，是可能的。到现在为止，用于实验的唯一的限制是基于荧光的测定法的需要。然而，我们目前正在研究质谱法的实施作为一个检测技术。一旦这被建立，把可以与该平台进行调查分析问题的范围将更加广阔。此外，因为不是每个分析是可能的细胞裂解缓冲液的存在下，我们目前还在评估在该平台上其他各种裂解技术。我们相信，本文提出的多功能微流体平台提供了基础的蛋白质组，代谢和分泌组级新单细胞的研究。
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Disclosures
作者宣称，他们有没有竞争的财务权益。
Acknowledgments
作者非常感谢汤姆罗宾逊的手稿，C.Bärtschi和H.奔驰的定制压力控制系统建设的校对。我们还要承认使用洁净室设施第一和光学显微镜中心（LMC），无论是在ETH苏黎世。这项工作是在第七框架计划（ERC开始格兰特，项目编号203428，nμLIPIDs）资助下，由默克雪兰诺公司和欧洲研究委员会（ERC）。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| REAGENTS: | |||
| Name of the Reagent | Company | Catalogue Number | Comments (optional) |
| SU-8 2015 | MicroChem Corp. (Netwon, MA) | n.a. | |
| 1H,1H,2H,2H-Perfluorodecyl-dimethylchloro-silane | ABCR (Karlsruhe, Germany) | AB103608 | |
| 4-Methylumbelliferyl β-D-N,N′-diacetylchitobioside hydrate | Sigma Aldrich | M9763 | |
| Acetone | Merck VWR (Darmstadt, Germany) | 100014 | |
| Avidin | AppliChem (Axon Lab AG) | A-2568 | |
| AZ 1518 | AZ Electronic Materials (Wiesbaden, Germany) | n.a. | |
| AZ 726 developer | AZ Electronic Materials (Wiesbaden, Germany) | n.a. | |
| Bovine serum albumin | Sigma Aldrich | A-4503 | |
| Bovine serum albumin, biotin | Sigma Aldrich | A-8549 | |
| Cell dissociation buffer | Invitrogen | 13151-014 | |
| Hexamethyldisilazane (HDMS) | Sigma Aldrich | 40215 | |
| Hydrochloric acid | Fluka | 84422 | |
| Isopropanol | Merck VWR (Darmstadt, Germany) | 109634 | |
| Magnesium chloride hexahydrate | Fluka | 63068 | |
| MR developer 600 | Microresist technology GmbH (Berlin, Germany) | n.a. | |
| PBS | Invitrogen | 10010-031 | |
| PLL-g-PEG grafted | SuSoS, (Dübendorf, Switzerland) | n.a. | |
| PLL-g-PEG grafted biotin | SuSoS, (Dübendorf, Switzerland) | n.a. | |
| Potassium chloride | Fluka | 60132 | |
| Protein G, biotin | Sigma Fine Chemicals | 41624 | |
| Silicon wafer | Si-Mat (Kaufering, Germany) | n.a. | |
| Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit (PDMS) | Dow Corning | 39100000 | |
| Tris(hydroxymethyl)-aminomethan | Biorad | 1610716 | |
| Tween 20 | Biorad | 1706531 | |
| EQUIPMENT: | |||
| Material Name | Company | Catalogue Number | Comments (optional) |
| 0.22 µm PES syringe filter | TRP | 99722 | |
| 1/1.5 mm biopsy puncher | Miltex, York PA | 33-31AA/33-31A | |
| Cell Trics filter 20 µm | Partec | 04-004-2325 | |
| Centrifuge Sigma 3-18K | Kuehner | n.a. | |
| Hotplate HP 160 III BM | Sawatec, Sax, Switzerland | n.a. | |
| MA-6 mask aligner | Karl Suess | n.a. | |
| Multizoom AZ100M microscope | Nikon Corporation | n.a. | |
| Photomask | Microlitho, Essex, U.K. | n.a | |
| Plasma Cleaner PDC-32G | Harrick | n.a. | |
| Spin coater Modell WS-400 BZ-6NPP/LITE | Laurell | n.a. | |
| Spin Modules SM 180 BM | Sawatec, Sax, Switzerland | n.a. | |
| Step profiler Dektak XT Advanced | Bruker | n.a. | |
| Syringe pump neMESYS | Cetoni | n.a. |
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