Summary
活细胞成像的alphaherpes病毒感染使动态的定向运输和细胞间传播的事件分析。在这里，我们提出的方法，利用重组病毒株表达荧光融合蛋白，以方便在感染病毒组件可视化的初级神经元。
Abstract
活细胞荧光显微技术，以及建设反映荧光融合蛋白的重组病毒株的进展已使能运输和扩散的alphaherpes病毒感染的神经元的实时可视化。本实用新型荧光融合蛋白病毒膜，皮层和衣壳，结合活细胞成像，确定病毒颗粒组件轴突内进行运输。类似的工具已经成功地采用了细胞 - 细胞间传播的病毒颗粒定量细胞间传送的病毒粒子的数量和多样性分析。更重要的是，顺行运输和传播的活细胞成像技术产生财富包括粒子输运速度，颗粒的分布，时间和分析蛋白质的本地化的信息。除了经典的病毒的基因技术，这些方法提供了重要的见解进入重要的机械问题。在这篇文章中，我们详细描述的成像方法，回答基本问题的alphaherpes病毒运输和蔓延。
Introduction
外周神经系统（PNS）alphaherpes病毒如单纯疱疹病毒（HSV）-1，-2，伪狂犬病病毒（PRV）感染涉及到一些复杂和高度调节的步骤，整个病毒的生命周期。 PNS的神经元内的交通运输是至关重要的两个主要病毒感染和后续主机间传播的事件期间。调节的分子机制，病毒的生命周期的两个组成部分;定向运输的轴突（顺运输）和后续传输的病毒粒子易感细胞（顺价差）从细胞组织内的病毒组件是重要的是要了解疱疹的发病机制。
病毒颗粒神经元的运输和出口的依赖于一个成熟的传染性病毒粒子1,2组装。此前固定的检测，包括免疫荧光（IF）和电子显微镜（EM），分别用于研究粒子组装状态和PROT运输和传播的病毒粒子3-6艾因相互作用。然而，运送病毒颗粒和实验文物化学固定推出的动态性质混淆固定图像7,8的解释。最近，已经描述了一些病毒荧光融合蛋白，单纯疱疹病毒，伪狂犬病毒，可以忽略不计的蛋白质的功能上的影响。绿色荧光蛋白（GFP）和红色荧光蛋白（mCherry或MRFP）的荧光基团往往是成对两个成熟的病毒粒子的衣壳，表膜，和糖蛋白9-11的三个结构部件，以允许成像。活细胞成像的顺交通使用双标记病毒的病毒颗粒的装配状态可视化，在运输过程中。类似的荧光基团，表示病毒株用于可视化传播12,13后的病毒基因组的数目和多样性。荧光蛋白的属性，（评论于14,15）极大地影响病毒或细胞的组件可视化的能力。时，应考虑的内在特性，荧光蛋白，包括自我相互作用和稳定性，设计和测试新的蛋白质融合的野生型功能的保存。
结合荧光蛋白融合，两个特征在体外细胞培养系统的就业和条块分割疱疹病毒感染活细胞成像：游离16 17（ 图1A）大鼠颈上神经节（SCG）神经元。在这两种系统中，胚胎SCG的解剖，解离为单细胞体，并在体外培养18镀。 SCG神经是植物神经系统的一部分，并可以很容易地通过神经生长因子（NGF）成为一个成熟的偏振态体外培养及诱导分化。游离SCG神经元的轴突形成扩展网络，使f或可视化的病毒颗粒，因为它们经过顺行运输6。条块分割的的SCG文化提供流体隔离神经细胞体（S舱）和远端轴突末端（N舱）19。先前已经公布的一些条块分割的神经元，使用原来的20改性Campenot室17的建设和使用的详细协议。允许选择性地感染神经元细胞体和子代病毒检测后交通隔离轴突末端流体隔离。电镀上皮细胞感染前末端提供了受体细胞病毒感染的传播。
有多种人体必需的元素，重要的是所有活细胞成像实验，但最相关的我们的协议是：自动化图像采集，荧光灯照明系统，成像速度和环境控制。对于所有成像实验中，我们使用一个倒置的，自动化的，落射荧光照明显微镜（ 图1B）。该显微镜是围绕尼康Eclipse钛基地迅速重新配置在自动显微镜图像采集，并采用了微机控制的电动系统。对于荧光照明，我们使用一种广谱汞弧灯，可以中性密度滤光片照明路径衰减。激发滤光片荧光灯照明系统的频谱限制，并搭配多通可视化特异性荧光化合物的分色镜和荧光发射滤波器。被安装在独立的，快速的切换滤光器轮的激发和发射滤波器，使不同的荧光通道的快速顺序采集。的图像采集速度得到进一步增强，有灵敏和快速的EM-CCD摄像头，用于检测低强度的信号和短的图像读取时间。环境控制上力显微镜OPE是实现与一个阶段顶部加热孵化器和物镜加热器，以保持饱和湿度和CO 2富集的气氛是通过在升高的温度下，同时放入培养箱样品。显微镜是保持在一个黑暗的房间里，环境温度保持接近25°C和外界光线，遮光窗帘上的所有窗口最小化。以下协议描述了使用该系统的顺运输和蔓延检测。
存在一些替代品来控制活细胞成像的变量。显微镜设置的控制可以通过手动进行，或者依赖于专有软件的自动化系统。荧光照明，可以实现用卤素，LED或激光源。修改成像的速度由速度的滤波器切换可视化成对的检测系统中的信号的时间。环境控制，可以实现与专用硬件英里croscope阶段，外壳加热和加湿的框中，然后在显微镜的全部或部分，或通过将执行显微镜的房间的升温。这些替代品中的每一个都涉及到成本和性能都有优点和缺点。
在随后的协议，我们详细使用活细胞成像研究通过使用重组病毒株的快速顺运输顺alphaherpes病毒蔓延。活细胞成像实时可视化衣壳，皮层和/或糖蛋白共定位11轴突内进行运输的动态结构。条块分割的神经文化隔夜慢速成像可视化轴突病毒粒子出口和感染易感细胞12。这里介绍的协议已经使用我们独特的成像系统进行了优化，但在广义上讲，相对于活细胞成像的四大要素。在我们的讨论将进一步详细一些优化成功的实验是必要的。
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Protocol
第1节 - 环境控制条件为活细胞荧光显微镜
- 任何成像实验前30分钟连接，并开始升温，在显微镜阶段顶部孵化。
- 打开显微镜，透射和落射荧光光源，和自动化的硬件控制。打开显微镜控制软件，NIS元素，连接到显微镜，并开始冷却EM-CCD相机。
- 附加镜头温暖适当的目标（60X或100X油浸） 注：根据实验类型选择物镜。 100X微分干涉对比（DIC）是最好的60X阶段目标跟踪顺运送病毒颗粒的装配，同时适用于可视化顺传播。较低的放大倍率，非油浸目标不需要镜头回暖的，因为他们不直接与样品接触。
- 附加阶段顶部孵化到机动阶段英里 croscope。确保样品在适当的插入，将举行。将加湿后的空气从孵化器控制线的阶段顶部孵化器的输入端口。
- 打开孵化器和镜头温暖的控制和调整温度设定具体的目标和成像样品（见讨论）先前验证条件。
- 打开控制阀上的5％CO 2/95％的大气中的CO 2补充空气罐提供至台顶部的培养箱。为流动相，流速应为每分钟在60〜80毫升的气体。更快的速度，将导致大量的样品脱水尽管加湿室。
- 添加油物镜镜头，并立即放置到舞台顶部孵化器的文化，将映像。
- 允许在培养的温度达到平衡至少10分钟。一小时是优选的，特别是对于第3节中所描述的成像过夜。
- 成像前六至八个小时，感染了35毫米盖玻片底菜成熟，游离SCG神经元与1×10 6病毒兴趣斑块形成单位（例如病毒，请参阅表1）使用Taylor 等描述的方法2012a的人 11。如果测试一个以上的病毒，关闭设定的接种由30-60分钟，以允许在相似时间顺序样本成像感染后。
- 将菜进入阶段顶部孵化器运行任何实验前10分钟最低。同时将温度达到平衡，焦平面转移和将产生负面影响的任何成像实验。
- 使用透射光显微镜目镜，找到一个神经元的细胞体，具有明确孤立的轴突延长。另外，使用适当的荧光照明找到一个表达探测器荧光蛋白的表达。重要的是限制暴露的样品荧光灯照明系统，在该步骤和后续步骤中，由于光诱导的细胞损伤和漂白的荧光蛋白。
- 衰减荧光照明，以减少激励光的强度的细胞暴露。从事光衰减荧光照明光路中的中性密度（ND）滤镜。对于持续时间超过1分钟，ND4最少的电影必须使用，以防止光漂白的荧光蛋白和广泛的光损伤的神经轴突。高荧光的结构与ND8过滤器后，通常可以被可视化。
- 使用显微镜的软件（ 图2和图补充电影1A），EM-CCD相机的光路切换。
- 确定最佳成像时间和条件，每个荧光通道。
- 启动实时图像窗口中使用“播放”按钮。</ LI>
- 确定每个荧光蛋白的最佳相机的曝光设置。不要超过300毫秒，每通道的运动像差的快速移动的病毒粒子结构会发生。利用EM增益的摄像头设置300（制造商建议的最大增益），以尽量减少暴露时间，提高检测昏暗的信号。正确的曝光时间应该产生的图像，背景低强度和高比信号。
- 设置后的风险，并找到一个明确的区域轴突，该软件必须被配置为执行自动图像采集。停止实时成像窗口，防止样品漂白。
- NIS Elements软件，选择6D -定义从“应用程序”下拉菜单/运行实验应用。
- 在ND收购“窗口中，单击时间选项卡，这将决定频率的图像采集。设置“无延迟”，持续时间为5分钟的时间间隔。钍E软件将获取图像帧尽可能在最高频率，持续时间为5分钟。
- 选择“拉姆达”选项卡，可以选择预先设定的用于多个荧光图像采集的硬件配置。点击第一个方块，并在其后的下拉菜单中选择一个合适的硬件配置。重复所有的荧光蛋白进行成像。
- 确保“XY位置”，“Z系列”和“大图片”的选项卡选择。
- 以上选项卡，选择“栏内填上”保存到文件“在收购过程中自动将图像保存到硬盘。配置实验输出文件的位置和文件名。正如顺序进行实验分析，该软件将在所指定的文件名的末尾添加一个序列号。
- 一旦所有的标签都被选中。点击“运行”按钮，开始实验。
- 通过曝光设置优化的图像采集率和IMAGE尺寸。使用一个小区域的成像区域，往往会加快帧采集速率。使用ROI工具在NIS-元素，选择图像总面积的25％和50％之间的区域定义区域的利息。或者，更短的曝光时间将增加帧采集速率，但会降低信号的质量，（见讨论）。
第3节 - 隔夜时间推移成像顺行传播活动
- 四小时前成像，感染在35毫米μ-菜文化构建一个条块分割的神经。的神经元细胞体，接种1×10 6噬斑形成单位的病毒还使用Taylor 等人所描述的方法（例如病毒，请参阅表1）。2012B 12。
- 轻轻放在培养皿中到舞台顶部培养箱。确定的目标的位置被设置为侧烹调。慢慢地使目标成为关注的焦点，确保ing的目标不推到样品中。一旦已确定的重点领域，慢慢移动目标进入中心的菜，附近的轴突车厢内部侧内部屏障demarking。在运动过程中，确保维持聚焦深度，避免推高到样品。客观的塑料表面的偏转将损坏的轴突和塑料。
- 添加约2毫升的温水（〜37°C）磷酸盐缓冲盐水的培养皿以外的特氟隆环。这周围的神经元文化与环PBS，减少样品脱水，并提供保温。
- 允许至少1小时的温度达到平衡之前，启动自动图像采集（3.8）。在这段时间内，可以配置步骤3.5至3.7。
- 光照强度限制到可能的最低水平，让所有中性密度滤光片。这将允许频繁图像采集的爱ŗ长的时间周期，没有过多的光损伤。减少照明将导致低信号，需要更长时间的曝光（见讨论）。
- 使用年前的曝光设置或之前的实验设置生成目标荧光蛋白的表达，以建立的曝光设置，第2.5节中所描述的一个平行的盘感染的上皮细胞。
- 设置曝光后，进行必要的渠道，它是时间配置自动图像采集软件。停止实时成像窗口，以减少样本的漂白。
- 在Elements软件（ 图2和补充电影2），选择6D - “应用程序”下拉菜单，弹出ND采集窗口定义“/”运行试验申请。
- ND采集窗口，单击“时间”选项卡。设置Interval“5分”。设置持续时间为20小时。循环字段的数目重复的程序，自动计算m将执行。
- 选择“拉姆达”的标签。点击第一个方块，并在其后的下拉菜单中选择适当的lambda配置相衬。重复后续位置，选择合适的配置，每个荧光蛋白成像。
- 选择“大图象”选项卡，它决定了参数的多个图像被组合成一个单一的大视场。一个很好的大小的区域由5×2使用7％的拼接重叠的图像。这将允许每个位置的单元格的最大数量的图像采集的频率，而不会影响成像。此外，取消选择“关闭主动式快门在第一阶段的运动”的复选框。此选项提高采集速度，不关闭图像之间的百叶窗。
- 选择“XY位置”选项卡，通宵电影的过程中，将依次并行成像识别多个职位。选择定义宝中心的位置int对于每一个大的图像区域。选择6-8个样品中的图像位置。一个良好的形象区将有小簇细胞紧密并列明确界定的神经轴突。细胞不应该被彼此和轴突的同装堆的顶部，应尽量减少。对焦点的细胞的细胞核。的目标定位，使得一个明确定义的核膜被看见的大部分细胞。
- 确保“Z系列”选项卡，取消选择。
- 配置如上所述2.6.5节中的自动保存功能。
- 测试曝光和点击“1时间循环”位置设置。评估图像透射光照明，重点和框架。如果焦点已经转移，焦点重置为每个位置的XY选项卡下。等待10分钟，然后重复此步骤，直到重点是稳定的。
- 已验证和测试的所有设置后，单击“立即运行”按钮，启动自动实验。
第4节 - 图像处理与出口
数据导出
- 运输或传播事件在活细胞成像获得的数据集应该从NIS Elements软件出口到常用的文件类型，在演讲和出版物（补充电影3）供以后使用。要导出电影打开相应的原料。ND2文件NIS元素，并选择“拆分组件”可视化所需的荧光通道。播放的文件在一个合适的速度，每秒5张的可视化快速交通是一个很好的起点。
- 包括一个时间戳代表在电影播放过程中的实时时钟。右键单击图像并选择添加ND信息。数字计数器将出现在左上角。
- 编辑时间标记来显示信息。在柜台上按一下滑鼠右键，选择“编辑”ND信息。在随后弹出的窗口中，编辑文本，反映了想象力ng的参数是重要的。编辑字体，颜色和大小的清晰度。
- 进入“编辑”菜单，找到“创建视图快照”，或按“X”键。这个命令打开“视图快照”窗口。选择“适用于所有的帧，以产生一个8位的RGB，出口准备的文件中含有的荧光从整个电影的频道。
- 除作为跨平台兼容性。avi文件。设置在200毫秒每帧的播放速率。与其他转换软件。由NIS元素生成的AVI文件可以被进一步压缩成所需的文件类型。
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Representative Results
顺行交通
此协议的应用与PRV 348游离SCG文化的感染，表达GFP-US9和GM-的mCherry膜融合蛋白的重组伪狂犬病毒株，促进病毒颗粒（ 图3和图4）补充电影顺行运输的可视化。这些融合蛋白掺入到病毒颗粒输送泪点检测结果，上述的成像条件尽量减少每个滤波器切换过程中在一个移动的粒子的荧光基团的偏移量。在一个三分钟的成像窗口，众多运输泪点通常观察和共存分析大样本正在迅速生成。我们以前量化的GFP-US9共存，的alphaherpes病毒轴突靶向蛋白，与其他结构性蛋白，使用这种方法11。的其他双recombinan的类似的分析吨伪狂犬病毒株也被描述11，最近的工作记录协同运输伪狂犬病毒蛋白与荧光标记的主机马达蛋白在此协议进一步延长21。利用快速开关滤光轮和配对的多通分色镜中的两个或更多个荧光通道允许快速的顺序采集。目前，我们可以实现双通道连续采集速度高达每秒0.8帧。对于单信道视频显微镜，只限于由荧光相机的曝光时间和读出时间，我们可以实现采集速率大于每秒6帧。
顺弘
为了可视化顺行的事件传播，感兴趣的区域的可视化，每5至10分钟，20小时内，在此期间，病毒粒子将向下运输和外出轴突，感染邻近的上皮细胞。一位代表从大的图像帧一个是在图4A和补充电影5。注意在空间上分离的性质，荧光蛋白表达细胞，轴突的原发感染的指标。受感染的细胞可以被跟踪向后在电影期间，以可视化的荧光衣壳启动的病毒感染。这些单个细胞可以分离从大的框架，并没有明显的细节损失跟踪。的代表帧（ 图4B）从补充影碟6示出了时间后的病毒颗粒所沉积的荧光衣壳进入细胞质。
数据分析
一系列不同的分析，可以进行活细胞成像的数据集，包括粒子跟踪，共存研究和定量的病毒粒子传播事件。我们经常直接执行我们的分析在NIS Elements软件或利用插件扩展可用的IMAGEJ软件包，使ND2文件类型支持。不同的假设和实验设置必要独特的分析方法。我们组的方法评估共存的荧光蛋白质动态结构11,21和时间推移量化单个粒子的扩散事件10,12,22。的方法描述在这个手稿，我们以前的研究中是灵活的，可以适用于不同的病毒感染，以及与传输的蜂窝结构， 如线粒体23。
图1。活细胞成像显微镜示意图成立。 A）文化类型研究顺行交通（游离），顺传播（腔）。面板1是一个成熟的，游离的颈上神经节（SCG相衬图像）。面板2是示意性的条块的培养体系中，描绘在面板3，SCG神经元镀在左隔室与轴突突起延伸到最右边的车厢B）的倒落射荧光显微镜和阶段的顶端用孵化器配置下的内部障碍视频显微镜实验。 点击这里查看大图 。
图2。 NIS-Elements软件接口。NIS元素标准的用户界面的截图显示。播放和停止按钮控制的实时图像窗口描绘成像当前的硬件配置，以及目前正在拍摄。在顶部面板有一系列的光学配置，实现预设的硬件本身设置配置反式照明系统，供在显微镜或荧光检测。摄像机控制和曝光设置允许摄像头检测的配置，以优化图像质量和速度。所有的实验都协调使用ND收购控制。 点击这里查看大图 。
图3。活细胞成像的SCG轴突在8小时后感染PRV 348 348伪狂犬病毒感染的神经元表达GFP-US9和GM-mCherry膜融合蛋白。远端轴突内顺行运输结构可视化两个荧光通道，GFP和mCherry。轴突内从补充影碟4的顺序拍摄的图像中所描绘的一个顺行传输结构（白色箭头）的进展。两个荧光蛋白spati结盟设置由于连续收购荧光通道和快速运动的病毒结构。 点击这里查看大图 。
图4。慢速成像隔夜顺传播事件从感染轴突在多色感染上皮细胞簇。从一个位置，大图像瓷砖427伪狂犬病毒感染的轴突到受体上皮细胞的病毒粒子传输时间推移电影的代表图像。）合并后的图像发送，YFP和RFP一次感染后，受体细胞开始表达YFP的的CAAX和VP26-MRFP融合蛋白的荧光图像。第二个面板中，YFP和RFP频道一起示出。注意MRFP大量的泪点阿索ciated与轴突束。这些轴突内接受长途运输（ 补充电影2）组装的病毒颗粒。白色方块代表该地区的利益强调部分B。）收件人含有上皮细胞感染病毒衣壳装配的形象代表（另见补充电影3）。面板1所发送的和RFP频道的一个合并。面板2是单独的RFP通道。面板3 RFP通道细胞核的细胞轮廓（白色实线）的示意图，（散列白线）和轴突（蓝线）。 点击这里查看大图 。
补充电影1。软件设置快速，连续的收购轴突的病毒颗粒。相关的步骤确定曝光设置，配置ND收购控制，并取得了快速帧收购莫荧光的病毒粒子进行轴突运输的争夺。 SCG神经元的文化感染了PRV 427 8小时前成像。 点击这里观看电影 。
补充电影2。隔夜成像细胞轴突传播的软件设置相关的配置ND收购的轴突细胞扩散事件过夜成像控制的步骤。 点击这里观看电影 。
补充电影3。转换，ND2像样的电影格式的文件转换成原始数据转换相关的步骤。ND2演示使用常见的视频播放器，无论是avi或mov格式的文件转换成。 点击她E观看电影。
补充电影4。 SCG轴突在8小时后感染PRV 348活细胞成像。 点击这里观看电影 。
补充电影5。轴突细胞扩散。过夜成像大图像区域 点击这里观看电影 。
补充电影6。隔夜慢速扩大面积成像轴突细胞扩散。 点击这里观看电影 。
| 应变 | 基因型 | 效用 |
| PRV 341 | GFP-US9（膜）/ MRFP VP26（衣壳） 病毒粒子运输实验11 | |
| PRV 348 | GFP-US9（膜）/ GM-mCherry（膜） | 病毒粒子运输实验11 |
| PRV 427 | MRFP VP26（衣壳）/ YFP CAAX（蜂窝质膜） | 顺传播实验10 |
表1中。有用的重组伪狂犬病毒株荧光融合蛋白表达。
| 名 | 公司 | 目录编号 |
| 35毫米的玻璃底培养皿 | MatTek公司;阿什兰，MA | P35G-1.5-20-C |
| 35毫米μ-菜 | 维罗纳，WI USA LLC，Ibidi | 81156 |
| 显微镜体 | 尼康仪器公司 | 镍Eclipse的钛康 |
| 电动显微镜XY阶段 | 此前科学;罗克兰，MA | H117 PROSCAN平顶 |
| 电动滤光轮 | 此前科学 | HF110 10位滤光轮 |
| 荧光照明光源 | 流明动力学，加拿大安大略省密西沙加 | 的X-Cite 120Q |
| 多波段荧光滤光片组 | 色度科技股份有限公司;波纹管瀑布，VT | 89000塞达特四 - ET 89006 ECFP / EYFP / mCherry - ET的的 |
| EM-CCD相机 | 安道尔技术美国南温莎，CT | iXon3 897 |
| Chamlide阶段顶部环境的孵化器 | 活细胞仪器;韩国首尔 | TC-L-10 |
| 物镜加热器 | 宾夕法尼亚州Butler Bioptecs; | 150803控制器150819-12-08加热器 |
| 分析软件 | 尼康仪器公司;纽约梅尔维尔， | NIS元素 |
表2中。特定的试剂和设备。
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Discussion
活细胞成像的目的是观察生物过程，因为他们没有发生显着改变的行为观察。实现此目标，通过优化三个变量：环境控制，成像速度和荧光照明。必须平衡这些相互依存的变量，以实现可行的成像条件。协议利用特定的条件下产生的有代表性的结果。我们将简要讨论环境控制和观测损坏，然后详细介绍了具体的方法。
在显微镜上建立和维护相关的生物条件下的细胞事件监测成功的关键。实现目标的条件是依赖于一些特定的显微镜和孵化器配置的变量。所有的孵化器的设置应使用独立温度测量的模拟样本进行验证，采取在孵化器的多个位置，包括目标接触点，中间的培养皿，培养皿的边缘。应优化设置，以尽量减少超过1°C温度超过37°C，以及保持温度接近37℃，目标接触点。每个培养皿和客观配置用于成像实验前必须进行测试和验证。理想的情况是，所有的样品中，在成像过程中的温度进行监测，但是这被证明是不切实际的许多系统是复杂的生物有害因素。孵化条件的验证是非常重要的，过低或过高的温度会导致人造的结果或细胞快速退化孵化样本。
识别和最小化观测损坏而产生的结果是非常重要的协议的发展。频繁的照明可以改变的生物过程，IRReversibly灭活荧光分子，或诱发一些细胞死亡途径。验证温度是很重要的，重现生物相似的条件下，在舞台上的类似顶部与一个标准的组织培养孵化。控制为频繁照明的影响是比较困难的，往往需要反复的试验和错误的做法。平行样本保存在组织培养孵化器的形态差异或生物有关改动的比较，可以确定如果活细胞成像条件的结果显着的细胞毒性。在这里描述的实验中，我们已经通过病毒滴度细胞之间的病毒传播程度以及监测病毒感染的生产力。
轴突内实现实时成像，快捷的运输，需要优化的图像采集速度旁边的荧光照明强度。的图像采集速度由CAMER决定设置和显微镜的硬件，尤其是当多个荧光通道顺序收集。光照强度影响荧光信号的质量和收购的速度。照度大于允许更容易的可视化的荧光蛋白，特别是对于那些包含少量成颗粒。然而，样本将漂白更快遭受增强光毒性损害。通过降低照明中性密度滤光片需要更长的曝光时间，图像采集的频率降低，有可能导致在检测过程中，由于他们的运动荧光结构空间变形。查找图像采集频率与光照强度之间的正确平衡在很大程度上取决于荧光蛋白信号和汇率正在研究的结构的蠕动。它仅需要获得足够的信号来区分上述背景荧光的结构，而不是高对比度的图像，需要更长的曝光时间。
隔夜慢速成像实时活细胞成像采用了类似的硬件配置，但显着影响积累的光损伤伴有长期，频繁的荧光照明。实时成像不同，需要限制荧光照明强度是至关重要的，而所有其他变量被修改，以考虑此限制。限制暴露的强度不显着损坏的成像单元的情况下允许更频繁的多个荧光通道照明。顺行轴突的细胞传播的事件是在时间上和空间上完全不同的，所以捕捉到尽可能多的这些偶发事件尽可能的大面积成像是至关重要的。
一些出版物活细胞成像24-26做法已经提供了全面的概述和建议。这里详细的协议repres耳鼻喉科最好的尝试，同时保留了基本的功能，病毒感染，病毒复制，运输和传播的荧光成像的影响降到最低。结合荧光融合蛋白的精心开发和强大的神经元培养这些协议已经回答了我的疱疹病毒感染和发病的根本问题。
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Disclosures
我们什么都没有透露。
Acknowledgments
LWE和RK支持由美国国立卫生赠款R37 NS033506-16和R01 NS060699-03。 MPT支持美国癌症协会的博士后研究奖学金（PF-10-057-01-MPC）。马修·莱曼博士和奥伦Kobiler博士的咨询和知识的的显微镜配置和活细胞成像方法设计。我们也感谢尼尔·巴洛和Brian T.凯因尼康仪器的购置，安装和性能的显微镜技术援助。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 35 mm glass bottom culture dish | MatTek Corporation; Ashland, MA | P35G-1.5-20-C | |
| 35 mm μ-Dish | Ibidi USA LLC, Verona, WI | 81156 | |
| Microscope body | Nikon Instruments Inc. | Nikon Eclipse Ti | |
| Motorized microscope X-Y stage | Prior Scientific; Rockland, MA | H117 ProScan Flat Top | |
| Motorized filter wheels | Prior Scientific | HF110 10 position filter wheel | |
| Fluorescent illumination source | Lumen Dynamics; Mississauga, Ontario Canada | X-Cite 120Q | |
| Multi-band Fluorescence filter sets | Chroma Technology Corp.; Bellows Falls, VT | 89000 Sedat Quad - ET 89006 ECFP/EYFP/mCherry - ET | |
| EM-CCD camera | Andor Technology USA; South Windsor, CT | iXon3 897 | |
| Chamlide stage top environmental incubator | Live Cell Instruments; Seoul, South Korea | TC-L-10 | |
| Objective lens heater | Bioptecs; Butler, PA | 150803 Controller 150819-12-08 Heater | |
| Analysis software | Nikon Instruments Inc.; Melville, NY | NIS Elements |
References
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