Summary
일반적으로 사용되는 체외에서 세포의 이동 및 침윤을 조사하기위한 고도의 접근 방법이 설명되어 있습니다. 첫 번째 방법은 세포 운동성을 측정하는 세포 상처 폐쇄 분석이다. 두 번째 방법은 화성과 세포의 침략적인 능력을 평가하는 트랜스 웰 마이그레이션 및 침입 분석이다.
Introduction
운동성 생균의 필수적인 특징이다. 세포 이동은 생활, 배아 발달, 면역 반응 및 암의 전이와 염증 1-9 많은 병적 인 프로세스의 개념에 참여하고있다. 따라서, 세포 이동성 행동을 연구하는 방법은 생명 과학, 생물학, 생명 공학 및 관련 분야의 분야의 광범위한 매우 유용한 연구 도구입니다.
암 환자에서 사망의 주원인은 전이 진행과 관련 될 때 암 연구에서 세포 이동의 연구는 특히 중요하다. 몸 전체에 확산 보급하는 암에 대한 위해, 암 세포가 이주해야하고 intravasate 혈액 순환에, 세포 외 기질 (ECM)을 통해 침입, 먼 사이트에 연결하고, 마지막으로 먼 초점 1,10-12을 형성하는 extravasate. 각종 생물학적 방법에서는 이러한 이벤트를 연구하는데 이용 될 수있다. 세포 배양 상처 폐쇄D 트랜스 웰 마이그레이션 및 침입 분석 널리 과학계 1,10에 사용됩니다. 이 테스트는 특정 세포 유형이 자발적으로 마이그레이션 또는 화학 - 유인에 반응하고 방향성을 향해 마이그레이션 할 수 있습니다 얼마나 잘 이해를 허용 할 수 있습니다 필요한 데이터를 제공 할 수 있습니다. 여러 철새 표현형은 설명 하였다. 세포는 중간 엽 또는 아메바 같은 운동이나 13 스트리밍 집단 이주 또는 셀을 표시 다세포 움직임으로 볼과 같은 단일 셀 형태로 마이그레이션 할 수 있습니다. 운동성 전지에 사용 운동의 방법은 쉽게 세포 배양 상처 봉합 분석을 이용하여 관찰 될 수있다.
세포의 이동을 연구하는 여러 가지 방법 중, 세포 상처 봉합 분석은 간단한 중 하나입니다. 이 방법은 전체 세포 덩어리의 이동 능력을 결정하는 데 유용합니다. 한 단계 더 촬영하면 이주 14시 개별 세포의 형태 학적 특징을 관찰 할 수 있습니다. 상처 봉합의 분석을 다음과 같은 여러 표현형은 공개 할 수있다. 컨트롤에 비교할 때 시간이 지남에 따라 폐쇄 된 거리를 측정하는 것은 특정 마이그레이션 변경 또는 이전에 알려지지 않은 장애인 철새 표현형을 보여줄 수 있습니다. 또한, 단일 세포 lamellipodium 형성, 꼬리 후퇴 및 방향 움직임은 관심 (14)의 세포에 손상 또는 향상 될 수 있습니다 무엇에 대한 단서를 제공 할 수 있습니다.
트랜스 웰 이주 및 침윤 분석법은 방향성 그들이 케모카인, 성장 인자, 지질, 또는 뉴클레오티드 4,5,8,15,16 여부 여러가지 항암 화학 유인 제에 응답하는 단일 세포의 능력을 분석하기 위해 사용될 수있다. 또한 인해 1,14 수용체의 과발현으로 차동 이동성 능력을 평가할 수있다. 이러한 분석은 또한 작은 GTPases 2 RHO 가족 같은 세포 이동의 주요 레귤레이터를 식별하고 특성화하기 위해 사용될 수있다. 액세서 쉽게이 짧고 다음sible 검사, 세포 이동의 모드와 3-D 행렬로 침입하는 세포의 능력이 또한 결정될 수있다.
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Protocol
1. 세포 배양 상처 봉합 분석
- 트립신-EDTA 용액 0.25 %를 이용하여 조직 배양 플레이트로부터 세포를 분리. 원심 분리하여 15 ML 원뿔 관에서 펠렛 세포는, 뜨는을 대기음, 문화 매체에있는 세포를 다시 일시 중지합니다. 24 시간에 100 % 합류에 대한 6 - 웰 플레이트에 세포의 적절한 수의 접시.
주 : 시험 (예를 들어, 1 × 106 B16F10 흑색 종 세포의 우물에 시딩 의한 세포 분류와 잘 사용되는 크기로 100 % 합류점을 달성하기 위해 시간 및 셀의 개수를 결정하기 위해 필요할 수있다 6 잘 플레이트 전에 상처 발생 24 시간). 대안 적으로, 12 - 웰, 24 - 웰 플레이트가 사용될 수있다.
참고 : 가능한 경우, 세포는 상처 프리 캐스트를 만드는 처리 조직 배양 접시에 문화 삽입 (ibidi LLC부터)에 접종 할 수 있습니다. 문화 - 삽입 피펫 팁에 의해 손상으로부터 조직 배양 판의 표면을 보호 할 수 있습니다. 문화 삽입은 생략 단계를 사용하는 경우1.2. - 무균 환경에서 (일반적으로 바이오 안전성 후드) 조직 배양 플레이트의 상단에 단단히 눌러 200 μL 피펫 팁을 사용하여 신속하게 세포 단일 층을 통해 아래로 수직으로 상처를 확인합니다. 다른 크기의 피펫 팁이 요망되고 상처 크기를 만들기 위해 사용될 수있다. 그것은 표면에 손상을 줄 수 있으므로 피펫 팁으로 조직 배양 플레이트에 과도한 힘을 사용하지 마십시오. 상처 프리 캐스트의 경우,이 단계는 생략 될 수있다.
- 조심스럽게 미디어와 세포 파편을 대기음. 천천히 웰의 바닥을 커버하고 추가적인 세포를 분리 피하기 위하여 잘 벽에 대해 충분히 배양 배지를 추가한다. 상처의 생성 및 검사에 따라 초기 사진이 촬영해야합니다. 적절한 온도와 CO 2 농도 설정 인큐베이터에서 조직 배양 접시를 놓습니다 (일반적으로 37 ° C와 5 % CO 2).
- 여러 시점에서, 3 시간마다 예를 들면, incubat에서 플레이트를 분리또는 및 스냅 샷 사진을 촬영하고 상처 폐쇄를 확인하기 위해 거꾸로 현미경 아래에 배치합니다. 시간 경과 현미경을 사용할 수있는 경우 언제든지 온도 기간 및 CO 2 제어 챔버의 사진보기 (일반적으로 5 분마다 시작) 분마다 X 번호를 가지고. 세포의 종류에 따라, 상처 마감 시간이 다를 수 있습니다.
- 스냅 사진의 결과를 분석하기 위해 눈금 막대를 사용하여 다른 상처의 일측의 거리를 측정한다. 산점도 또는 막대 그래프, 예를 들어 그림 1을 사용하여 분석하고 시간이 지남에 분명히 존재하는 상처 폐쇄.
- 시간 경과 사진을 분석하기 위해 비디오를 만들기 위해 (http://rsb.info.nih.gov/ij/에서 자유롭게 사용 가능) ImageJ에 소프트웨어로 사진을 가져옵니다. 이 오픈 ImageJ에 작업을 수행하려면, 가져 오기를 클릭하고 이미지 시퀀스. 사진과 함께 파일을 찾기 파일의 첫 번째 사진을 클릭합니다. , 파일을 선택하여 동영상을 저장으로 저장되고, AVI. 단일 마이그레이션 세포 체인지에 관찰 할 수있다방향 움직임을 cterize. 또한, 이러한 lamellipodia는 형성과 후연 철회 등의 형태 학적 특성 (그림 2와 보조 비디오)뿐만 아니라 공부를 할 수있다.
2.없이 Transwell 세포의 이동과 침략 분석
- 무균 환경 (일반적으로 생물 안전성 후드)에서 비 - 효소 적 세포 탈퇴 버퍼 또는 0.25 % 트립신-EDTA 용액, 펠렛 세포를 원심 분리에 의해를 사용하여 조직 배양 접시에서 세포를 분리하고, 기존의 미디어 펠렛 세포를두기 대기음. 0.1 % BSA (소 혈청 알부민)을 함유하는 무 혈청 세포 배양 배지에서 세포를 다시하는 것은 일시 중지.
참고 : 트립신-EDTA 인해 세포 표면 (17)에 다양한 수용체의 분열로 세포 이동 및 침윤에 영향을 미칠 수 0.25 %를 조사중인 세포주에 따라.
참고 : ML 당 세포의 수는 세포의 크기에 달려있다. 또한 테스트는 프로 시드의 밀도를 찾기 위해 필요할 수있다최상의 결과를 Vides의. 24 잘 삽입 트랜스 웰을 사용하는 경우 일반적으로 1 X 10 6 세포 / ML은 대부분의 세포 유형을위한 좋은 출발점이 될 것입니다. 트랜스 웰 인서트 크기들의 범위 및 추가 셀의 개수는 적절하게 조정되어야있다. - 플레이트 (100) 트랜스 웰 인서트의 필터 멤브레인 위에 셀 솔루션의 μL와 37 ° C에서 10 분 동안 배양하고 5 % CO 2 세포가 정착 할 수 있도록.
주 : 사용 된 트랜스 웰 막의 특정 기공 크기는 샘플에서 세포의 개별 크기에 의존한다. 세포가 너무 작은 경우, 예를 들어, 그들은 이동을 용이하게 할 필요없이 구멍을 통과하거나이 너무 큰 경우 그들은 세공을 맞지 않을 수도있다. 여러 트랜스 웰의 3 μm의 범위 기공 크기와 삽입, 5 μm의 및 세포 이동의 분석 8 μm의가 있습니다. 트랜스 웰 인서트는 코닝 같은 회사에서 상업적으로 이용 가능하다.
참고 : 트랜스 웰의 M을igration 분석은 쉽게 세포 침입 분석을 수행하기 위해 수정 될 수 있습니다. 이렇게 트랜스 웰 막 위에 세포 외 기질 (ECM) 물질을 추가 한 다음 ECM의 상단에 셀을 추가합니다. 예를 들어, 매트 리겔은 해동하고 얼음에 액화 한 후 마트 리젤 30-50 μL가 삽입 트랜스 웰 24 웰에 첨가하고, 얇은 겔층을 형성하기 위하여 15-30 분 동안 37 ° C의 배양기에서 고화. 세포 용액을 세포 외 기질을 통해 침입을 시뮬레이션하는 마트 리겔 코팅의 상부에 첨가된다.
참고 : 트랜스 웰의 세포 이동 및 트랜스 웰의 세포 침입 분석 사이에 뚜렷한 차이가 있습니다. 트랜스 웰의 세포 이동 분석은 화학 - 유인을 향한 세포의 화학 주성 능력을 측정합니다. 트랜스 웰 세포 침윤 분석은, 그러나, 일반적으로 세포 외 매트릭스와 암전 또는 배아 발달에서 발견되는 프로세스를 세포 주 화성 세포의 침윤을 모두 측정한다. - 피펫을 사용하여, 매우 carefully 24 웰 플레이트의 하부 챔버의 바닥으로 원하는 화학 - 유인의 600 μl를 추가합니다. 트랜스 웰 인서트를 이동하지 않고 화학 - 유인을 추가하고 거품을 생성하지 마십시오. 바닥 잘 화학 - 유인 액 화성 그라데이션을 형성하는 상부 잘 막과 접촉하게 확인하십시오. 배양 시간은 세포의 종류와 사용되는 화학 - 유인에 따라 달라집니다.
참고 : 또한 테스트 잠복기를 결정하기 위하여 필요할 수있다.
참고 : 부착 세포를 들어, 이주 세포 멤브레인 1,8의 타측에 부착된다. 이주 된 세포의 정량화는 단계 2.4 (2.4-2.8가 무균 환경에서 수행 할 필요가없는 단계) 2.8 다음을 행할 수있다. 비 부착 세포의 경우, 이주 된 세포는 하부 챔버의 미디어에 떨어질 것이다. 이주 된 세포의 수는 혈구 계를 이용하여 계산 또는 5 흐름 cytometer 수있다. - 플레이트에서 트랜스 웰 삽입물을 분리. 필요에 따라 신중하게 손상시키지 않고 멤브레인의 상단에서 마이그레이션되지 않은 미디어와 남아있는 세포를 제거하기 위해 여러 번 면봉을 사용합니다.
- 24 웰 플레이트의 우물에 70 % 에탄올 600 ~ 1,000 μl를 추가합니다. 세포 고정을 할 수 있도록 10 분 동안 70 % 에탄올로 트랜스 웰 인서트를 놓습니다. 24 - 웰 플레이트에서 트랜스 웰 인서트를 제거하고 세포막의 상단에 남아있는 에탄올을 제거하기 위해 면봉을 사용합니다. 트랜스 웰의 막 (10-15 분) 건조하도록 허용합니다.
- 24 - 웰 플레이트의 우물에 0.2 % 크리스탈 바이올렛의 600 ~ 1,000 μl를 추가하고 염색을 위해 그것으로 막을 놓습니다. 5 ~ 10 분 실온에서 알을 품다.
- 부드럽게 피펫 팁이나 면봉으로 멤브레인의 상단에서 크리스탈 바이올렛을 제거합니다. 필요에 따라 매우 신중하게, 고정 된 세포를 세척 방지하기 위해 여분의 크리스탈 바이올을 제거하기 위해 여러 번 증류수로 막 찍어t. 트랜스 웰 막 건조 할 수 있습니다.
- 보기 거꾸로 현미경 아래 및 화학 - 유인 향해 막을 통해 이주 및 멤브레인의 밑면 (도 3)에 부착 한 세포의 평균 합계를 얻기 위해 뷰의 다른 분야에서 세포의 수를 센다.
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Representative Results
여기에 제시된 상처 봉합 분석 및 트랜스 웰의 세포 이동 분석법이 모델 시스템으로 마우스 B16F10 흑색 종 세포를 이용하여 수행 하였다. 상처 봉합 분석에서, B16F10 세포를 10 - 웰 조직 배양 접시에 접종하고, 24 시간에 100 % 합류로 성장시킨다. 약 700 μm의 폭의 상처는 시간 경과 현미경을 사용하여 촬영 한 피펫 팁과 상처 봉합 (세포의 이동)를 사용하여 생성되었습니다. 또한, 상처 폐쇄는 시간 경과 현미경 1을 사용할 수없는 경우 서로 다른 시간 지점에서 스냅 샷 사진을 촬영하여 공부하실 수 있습니다. 포 0에서 시간 경과 시리즈에서 사진, 4, 8 및 12 시간 지점은도 1에 나타낸다. 상처의 폭에 기초하여, 우리는 40.42 μM에서 세포 이동의 이동 거리와 속도를 계산 / 시간 (그림 1B). 시간 경과 사진은 ImageJ에 프로그램 (부가 영상을 참조)를 사용하여 비디오로 조립 하였다. 일전자 동적 세포 이동 과정을 연구 할 수있다. 도 2에 도시 된 바와 같이, lamellipodia는 (선단)와 꼬리 (후연)로 세포를 이주의 형태는 명확 관찰되었다.
트랜스 웰 세포 이동 분석에서, 코닝의 24 웰 인서트를 사용 하였다. B16F10 흑색 종 세포를 혈청이없는 DMEM 배지 및 0.1 % BSA로 구성된 이주 버퍼에 1 × 106 세포 / ml의 농도로 재현 탁 하였다. 10 % 소 태아 혈청을 함유하는 DMEM 배지에서 성장 NIH3T3 섬유 아세포에서 가동 매체는 항암 화학 유인 물질로서 사용 하였다. B16F10 세포를 100 μL가 하부 챔버 또는 마이그레이션 버퍼의 동일 부피로 첨가는 상부 챔버 및 화학 - 유인 600 μL의 트랜스 웰 막 위에 추가 대조군으로서 첨가 하였다. 절차에 따라 세포의 이동을 수행 하였다. 이주 된 세포의 수는 현미경 또는 아래에서 계수하여 정량화 될 수 있었다사진 (그림 3B)를 촬영. 도 3에 도시 된 바와 같이, 제어 이주 버퍼 (도 3c)에 비해 화학 - 유인 향해 이주 세포에서 15 배 증가 하였다. 트랜스 웰의 분석은 세포의 화학 주성, 화학 - 유인쪽으로 방향 세포의 이동을 검사합니다.
그림 1. B16F10 흑색 종 세포 상처 폐쇄 분석. (A) 16 시간 상처 폐쇄 분석 사진 중은 시간 경과 현미경을 사용하여 5 분마다 촬영했다. 주제 0에서 사진, 4, 8 및 12 시간이 도시되고 스케일 바 (400 μM)은 상처 폭 측정을 위해 추가된다. (B) 상처의 거리는 μM로 측정되었다. 산점도는 시간이 지남에 흠집의 폭과 상처 폐쇄 율을 계산 하였다를 표시하는 데 사용 하였다. 유전자R 2 값을 평가, 선형 회귀 그래프 패드 프리즘 소프트웨어 (버전 5.0, 그래프 패드 소프트웨어, 주식 회사)를 사용하여 상처 폭 데이터에 실행되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2. 16 시간 상처 폐쇄 분석 사진 중에 상처 봉합 분석의 시간 경과 현미경.에서 B16F10 세포를 마이그레이션의 형태학은 5 분마다 촬영했다. 모든 사진은 ImageJ에 프로그램 (5 프레임 / 초)를 사용하여 비디오로 조립 하였다. 세포 편광, lamellipodia는 확장 및 트레일 링 에지 후퇴를 포함한 세포의 이동이 관찰되었다. 비디오의 34.6, 36.6, 및 38.6 초 시점에서의 사진은 (영상 시간은 실제 시간 경과의 이동 시간에 대응 (제시했다시간 : 분 : 초) 34.6 초, 14시 20분 0초; 36.6 초, 15시 10분 0초; 각각 38.6 초, 16시 0분 0초). 스케일 바 50 μm의는. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
B16F10 흑색 종 세포의 그림 3.없이 Transwell 마이그레이션 분석. (A) 세포 이동 및 침윤을 측정하는 데 사용되는 트랜스 웰 삽입 장치의 다이어그램. (B) B16F10 세포 트랜스 웰 이주의 대표 사진. 세포 이동 완충액 및 NIH3T3 세포 조정 배지는 각각 음성 대조군과 항암 화학 유인 물질로서 하부 챔버에 첨가 하였다. 절차에 설명 된대로 크리스탈 바이올렛과 세포 이동 및 염색 한 후, 마이그레이션 세포 (보라색 스테인드)의 사진은 MICR를 사용하여 촬영 한10 배 목표 (총 배율 100 배)으로 oscope. 멤브레인의 기공은 또한 그림에서 다수의 작은 원형과 어두운 색의 점으로 관찰 할 수있다.. 마이그레이션 버퍼 또는 화학 - 유인 (100X 총 배율 5 사진 필드의 평균)으로 마이그레이션 세포 (C) 정량화 해주세요 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
B16F10 흑색 종 세포 상처 폐쇄 분석의 부가 영상. 시간 경과 비디오. 사진은 193 사진을 생성하기 위해 16 시간 동안 5 분마다 촬영했다. 모든 사진은 ImageJ에 프로그램 (5 프레임 / 초)를 사용하여 비디오로 조립 하였다. 다운로드에서 "Supplementary_Video_JOVE.avi"보조 파일을 참조하십시오.
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Discussion
세포 이동은 암 연구에 연구하는 중요한 측면이며, 또한, 면역 발달 및 상처 치유의 연구에 적용될 수있다. 세포 배양은 폐쇄 분석 상처와 트랜스 웰의 세포 이동 및 침윤 분석 세포 이동성 행동의 자세한 정보를 공개하고 세포 이동 1,2,10,14의 분자 메커니즘을 조사하는 데 사용할 수 있습니다. 우리의 연구는 B16F10 흑색 종 세포주의 이동 속도 및 침윤 능력을 결정하기 위하여 이러한 세포 운동성 분석법을 사용 하였다.
셀 상처 봉합 분석은 세포의 합류 접시 제 상처 마이그레이션이어서 닫을 특정 세포주의 능력을 검사한다. 이 분석은 기본 장비와 기존의 방법에 비해 그룹에 매우 접근은 세포 이동을 측정하는 간단한 방법입니다. 상처 봉합 분석에서 일부 편차가 개별 처리 군에서 발견 될 수 있지만, 여러 단계가 있다는 매사추세츠Y는 그것을 줄이는 데 도움 취할. 편차를 줄이기위한 하나의 잠재적 인 방법은 합류 동기를 달성하고, 각 실험의 시작에서 건강한 세포의 상태를 유지하기 위해 동일한 수의 셀과, 각 샘플을 플레이트이다. 세포 배양 실험의 여러 시험은 독립적 인 샘플간에 불변 합류하고 건강한 세포 상태를 달성하기 위해 필요한 정확한 도금 개수를 결정하기 위해 필요할 수있다. 또한, 샘플의 크기를 증가시키는 것은 또한 편차를 줄일 것이다. 상당한 이동을 관찰하는 24 이상의 시간의 배양 시간이 필요 느린 마이그레이션 세포주의 경우, 잠재적으로 상기 분석의 결과에 영향을 미칠 수있는 세포 수의 변화를 방지하기 위해 aphidicolin 또는 다른 증식 억제제를 사용하는 것이 편리하다.
셀 상처 봉합 분석, 단일 세포 이동성 동작의 상세한 평가를 사용하여 세포의 이동 속도를 연구 할 수있는 능력을 습득 한 후에도 14을 완료 할 수있다. 또한, 다음과 같은 드실ND 클로저 분석 세포는 고정 될 수 있으며, 세포 골격 구조 및 역학과 관련된 다양한 단백질이 참고 될 수 있으며,이 면역 세포 화학을 사용하여 평가 하였다. 이 분석은 이전에 알려지지 않은 더 자세한 생화학 적 변화로 이어질 수 있습니다. 셀 상처 봉합 분석은 시간 경과 형광 현미경을 사용하여 마이그레이션 역학을 연구하는 실시간 라이브 셀 이미징에 매우 의무가 있습니다. 예를 들어, 액틴-GFP, 튜 불린-GFP 및 paxillin-GFP 융합 단백질은 세포의 이동 또는 접착 (18, 19)의 서로 다른 시간 지점에서 단백질의 지방화를 볼 수 살아있는 세포에서 발현 될 수있다. 상처 봉합 분석의 몇 가지 제한은 예를 들면, 비 부착 세포에 적합하지 않은 세포 주 화성을 측정하지 않는 것을 포함한다. 또한, 일부 세포주는 상처 (예, HEK293T 세포) 제 직후 플레이트로부터 분리하는 경향이있다. 이들 세포주를 들어, 프리 캐스트 상처 플레이트 또는 transw을 사용하는 것이 좋다엘 마이그레이션 분석은 아래에서 설명.
트랜스 웰의 세포 이동 및 침윤 분석은 특정 화학 - 유인을 감지하고 그것을 향해 물리적 장벽을 마이그레이션하는 세포의 능력의 철저한 분석을 제공합니다. 이 테스트는 상기 ECM 침윤 및 혈관 외 유출 1,10의 프로세스를 모방하는 세포 외 기질의 층 또는 트랜스 웰 막 위에 혈관 내피 세포의 층을 추가함으로써 세포 침입을 조사하는데 사용될 수있다. 또한, 리겔을 통해 침공, 형광 현미경과 함께 세포 골격 단백질의 면역 염색은 3-D의 침공 기간 동안 형태 학적 연구에 도움이 될 수 있습니다. 트랜스 웰의 세포 침입 분석을 사용하여의 한계는 세포 침략의 시간 경과 데이터입니다 기존의 현미경 달성이 과정의 세포 이미징이 복잡 살기 어렵다.
정확한 결과를 얻으려면 몇 가지 중요한 단계는 육 차원 속의 중에있다중요하다 nswell 세포 이동 및 침윤 분석. 세포의 이동 속도는 광범위하게 변할 수 있기 때문에 먼저, 서로 다른 세포 유형 사이에 몇개의 예비 실험 절차에서 사용되는 특정 마이그레이션 시간 구조를 채용하기 위해 수행되어야한다. 둘째, 화학 - 유인 또한 관심의 세포 유형에 적용 할 수 있어야합니다. 항암 화학 유인 제의 광범위한 최종 마이그레이션 및 특정 세포 유형의 침윤 능력을 측정하기 전에 실험 직전에 조사되어야한다. 섬유 아세포 - 조정 배지는 일반적으로 세포 유형의 광범위한 강력한 항암 화학 유인 물질로서 사용된다. 단일 정제 화학 - 유인 제를 사용하는 경우 항암 화학 유인 물질의 수용체가 관심의 세포 유형으로 표현되어 있는지 확인합니다. 마지막으로, 세포 침입 분석을위한 리겔 또는 다른 세포 외 기질의 코팅이 실험적인 변화를 최소화하기 위해 균일 있는지 확인합니다. 결론적으로, 몇 가지 제한이 있지만, 매우여기에 설명 된 접근 세포 이동의 분석은 생물학 연구의 넓은 범위에 유용합니다.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Dulbecco’s modified Eagle medium (DMEM) | Gibco | 11995-073 | |
| Fetal bovine serum (FBS) | Gemini | 100106 | |
| Bovine serum albumin (BSA) | Sigma-Aldrich | A4503-50G | |
| Trypsin EDTA 0.25% | Gibco | 25200-056 | |
| Dulbecco’s phosphate buffered saline (DPBS) | Gibco | 14190-250 | |
| Crystal violet | Sigma | C0775-100G | Dissolved in water at 0.2% |
| Cell disassociation buffer | Gibco | 13151-014 | |
| Cell culture incubator | Thermo Fisher Scientific | Model # 3145 | |
| SterilGARD biosafety hood | The Baker Company, Inc. | Model # VBM-600 | |
| EVOS Fl inverted microscope | Thermo Fisher Scientific | Model # AMF-4302-US | |
| Tissue culture plate | Becton Dickinson | 353046 | Catalog number varies depending on the type of culture plate |
| Corning Transwell insert | Fisher | 07-200-150 | Catalog number varies depending on the pore size of the membrane |
References
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