Summary
その場代謝プロファイリングで用フェルスター共鳴エネルギー移動統合生物学的センサー（FIBS）を校正する方法の説明が提示されている。 FIBSは、非侵襲的に代謝モデルおよびバイオプロセス条件のハイスループットスクリーニングの開発を補助する代謝物の細胞内レベルを測定するために使用することができる。
Abstract
計算生物学の時代に、新しい高スループット実験系では、彼らは、予測の目的のために検証できるようにしたモデルを投入し、改良するために必要である。経時データを取得する場合に、理想的にはそのようなシステムは、破壊的サンプリングおよび分析を妨げる低容積、であろう。必要とされるのは、リアルタイムでかつ非侵襲的に必要な情報を報告することができ、その場で監視ツールである。興味深いオプションは、タンパク質ベースの細胞内濃度のレポーターとして、生体内の生物学的センサーでは 、蛍光の使用である。代謝産物の定量化における用途を発見したin vivoでのバイオセンサーの一つの特定のクラスは、リガンド結合ドメインによって接続された2つの蛍光タンパク質間のフェルスター共鳴エネルギー移動（FRET）に基づくものである。統合された生物学的センサー（FIBS）をFRETが構成的に細胞株内で生成され、それらは、速い応答時間およびそのスペクトルを有する茶細胞内の代謝物質の濃度に基づいて変更racteristics。本論文では、細胞内の代謝産物濃度の将来の定量化を可能にするために、構成的にグルコースおよびグルタミンFIBSを発現（CHO）細胞株、チャイニーズハムスター卵巣を構築し、バッチ細胞培養におけるin vivoでの FIBSを較正するための方法が記載されている。フェドバッチCHO細胞培養からのデータはFIBSは細胞内濃度の結果として生じる変化を検出する各々の場合にできたことを示している。独立した酵素アッセイによって確認されるようにFIBS、予め作成した検量線からの蛍光シグナルを用いて、細胞内の濃度を正確に決定した。
Introduction
代謝産物監視は、プロセス開発、メディアおよび飼料設計、および代謝工学などのバイオプロセスにおける様々な用途を有する。種々の方法は、酵素1、化学2、又は3結合アッセイの使用を介して濃度測定に利用可能である。興味深いオプションは、タンパク質ベースのキー代謝物の細胞内濃度のレポーターとして、生体内の生物学的センサーでは 、蛍光の使用である。小型化は、実際に信号対雑音比の4,5を改善し、タンパク質ベースのセンサは、遺伝的に外因性試薬は代謝産物分析のために必要ではないという意味を符号化することができるように、超低容量アッセイにおいて、蛍光は便利なツールである。フェルスター共鳴エネルギー移動（FRET）バイオセンサーは、リガンド結合ドメインによって接続された2つの蛍光タンパク質からなる。 FRETは、アクセプター蛍光分子LOCATへの光励起ドナーからのエネルギーの非放射伝達ですぐ近く（<100）で編。リガンドまたは結合開裂は、順番に、発光スペクトルの変化によって測定されたFRET効率の変化をもたらす、フルオロフォアの近接性の変化を誘導し、センサのコンフォメーション変化を引き起こす。 FRET統合生物学的センサー（FIBSは）構成的に細胞株内で生産され、それらのスペクトル特性は、細胞内の代謝物質の濃度に基づいて変化する。 FIBSは動的モデル6用の測定を行うために最適です迅速な応答時間を有する。以前のアプリケーションでは、7月9日 、単一および複数の10代謝物をモニターし、時空間分布11上のデータを提供することを含む。リガンド結合は、エネルギー移動およびリガンド結合がより密着します（ 図1）に2発蛍光をもたらしたApo-ミンを下げるフルオロフォアの近接性を崩壊させるのApo-マックス、：FIBSは2つの構成で作成することができます。
本研究では_contentは">、プロトコルはチャイニーズハムスター卵巣構成的代謝産物、グルコースまたはグルタミンFIBSを発現（CHO）細胞株を構築するために提示されている。方法論は、将来の定量を可能にするために、インビボでセンサの較正のために確立されている図2に示すように、細胞内代謝物濃度の測定を、これに基づいて、グルコースまたはグルタミンの細胞内濃度二つの栄養素をインプロセスで高濃度で添加したものに、流加培養CHO細胞培養物で決定することができる。結果それは非侵襲的で低コストであるため、独立した酵素アッセイによって確認されるようにFIBS、予め作成した検量線からの蛍光信号を用いて、細胞内濃度を正確に予測が可能であることを実証している。このメソッドは、現在の分析技術に対する実質的な利点を提供する共通とすることができるFIBSのリアルタイム信号を与えて、高速文化を通じてitored。Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1。細胞株リバイバルとメンテナンス
- 8mMのL-グルタミンおよび10ml / L 100×ヒポキサンチン/チミジンサプリメント（完全増殖培地）を補充9ミリリットルCD-CHO培地中でCHO細胞を復活させる。
- 5分間100×gで遠心分離する。
- 新鮮な完全増殖培地10mlに細胞を再懸濁。
- 1ミリリットルのサンプルを取り出して、血球計数器でパンブルー色素排除法を用いて光学顕微鏡により生細胞濃度を決定する。
- 125ミリリットル中に3×10 5細胞/ mlの播種密度で培養を開始するには、振盪フラスコ。
- 120 rpmで回転する軌道揺れプラットフォーム上で、37℃、5％CO 2の加湿雰囲気のインキュベーター内の文化を維持している。
- 2×10 5細胞/ mlの播種密度で完全増殖培地中で3〜4日ごとに継代培養する。
2。プラスミドとC細胞株のトランスフェクションバイオセンサー遺伝子をontaining
- 大規模プラスミド精製キットを用いてプラスミドDNAを調製する。
- 細胞が活発にトランスフェクションの際に分裂していることを確認するために、適切な条件（37℃、5％CO 2）トランスフェクション前に12から24時間で細胞を維持する。
- トリパンブルー色素排除法を用いて細胞をカウントし、次いで、1×10 6細胞/ mlの濃度で振盪フラスコ中で125ミリリットルの細胞培養物を20mlの作業容量を準備する。
- 使用中の細胞株について適切なトランスフェクションキットを使用してください。トランスフェクション試薬の比のプラスミドDNAは、細胞株およびベクターに依存するであろう。これは、この前の最終のトランスフェクションを実施し、製造業者によって指定された範囲内の比率の範囲をテストすることによって最適化されていることをお勧めします。また、少なくとも1つの負の対照細胞を含有する培養限定なしDNAを維持する。
- 静的モードで4日間インキュベートした後、シャキに転送NGプラットフォームは、125 rpmで回転する。
- キル曲線によって決定された適当な濃度にプラスミド選択のための適切な抗生物質を追加します。本研究では、ゼオシンをトランスフェクトされた細胞の選択のための400μg/ mlの終濃度に添加した。
- 対照ウェル中の細胞が死ぬまでは、抗生物質のたびに追加し、細胞株のための適切な時間間隔でメディアを変更。
- 文化を振っに進行することが最もコンフルエント井戸を使用してください。
- 凍結混合物1ml中10 7生存細胞を含有するクライオバイアル中に細胞を凍結することにより細胞バンクを確立する。この研究では、これは92.5％の増殖培地および7.5％ジメチルスルホキシドからなる。
3。バッチおよび流加細胞の成長曲線
- 50ミリリットルの作業容量で振盪フラスコ250ミリリットル中のトランスフェクトされたCHO細胞の三連細胞培養を確立するために、上記の細胞の維持のための指示に従ってください。
- cultuを維持125 rpmで回転する軌道揺れプラットフォーム上でのCO 2 5％で37℃、の加湿細胞インキュベーターでRES、および24時間の間隔で、各成長培養物から4.1ミリリットルのサンプルを削除します。
- トリパンブルー色素排除法で生細胞濃度と細胞生存率を測定するために試料100μlを使用してください。
- 生細胞濃度がゼロになるまで繰り返します。
- 流加細胞培養は、それぞれ、36及び4mmの初期値にそれらの濃度を回復するために、6日目にグルコースまたはグルタミンの適切な量の補給のために繰り返します。なお、純水の同じ体積（ここでは12ml）で供給されるべき、追加の対照培養もまた維持されることが推奨される。
4。比測定をFRET
- 4℃で5分間100×gで、上記のステップ3.2および遠心機で取り除か毎日サンプルの2ミリリットルを取る
- Resusp氷冷リン酸緩衝生理食塩水（PBS）2ml中の細胞ペレットを終えた。 6穴プレートにこれを転送し、1ウェルに細胞を含まないブランクサンプルを追加します。
- すぐに435分の465ナノメートル（青）と510分の520ナノメートル（黄色）の435分の430 nmの波長と発光波長の励起波長で、青と黄色の蛍光のレベルを測定する。
- FRET比（検出された青色蛍光にわたって検出黄色の蛍光の比率）を計算します。
5。代謝物アッセイ
- 4℃で5分間100×gで、上記のステップ3.2および遠心機で取り除か毎日サンプルの2ミリリットルを取る上清を取り除きます。
- 5分間100×gで再び3ミリリットルの氷冷PBSと遠心機で細胞ペレットを再懸濁します。
- 上清を除去し、上記のように3ミリリットルの氷冷PBSで細胞ペレットを再懸濁します。 15秒、15秒オフのパルスで3分間ずつのサンプル5Xを超音波処理。この時点で、余分な細胞必要に応じて、CTSは凍結することができる。
- （材料の表を参照）、細胞内のグルコース濃度を決定するために、細胞抽出物試料について、製造業者の指示に従って、適切なグルコースアッセイキットを使用する。
注：標準曲線を構築するために適切な基準を使用してください。本研究では、基準の濃度は0〜100 mMの範囲であった。 - 規格の測定値を使用して、標準曲線を構築し（この場合：yは1310.51x - yは吸光度の読み取りであり、xはグルコース濃度であり723.43）最良適合の直線式を見つける。
- 標準曲線を使用して、アカウントへの希釈を取ってグルコース濃度を計算します。細胞内のグルコース濃度は、この式を用いて計算することができる。
CHO細胞については、単一細胞体積は、12μM12の気泡径を算出した - （材料の表を参照）、細胞内グルタミン濃度を決定するために、細胞抽出物試料について、製造業者の指示に従って適切なグルタミンアッセイキットを使用する。
注：標準曲線を構築するために適切な基準を使用してください。本研究では、基準の濃度は0〜2 mMの範囲であった。 - 上記5.5のように、検量線（この場合はy = 203.1x + yは吸光度の読み取りであり、xはグルコース濃度である17.1）を構築
- 標準曲線を用いて、希釈を考慮に入れて、サンプルのグルタミン濃度を算出する。細胞内グルタミン濃度は、上記の式1を用いて計算することができる。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
方法論の概要を図2に示す。本明細書に提示される研究では、CHO細胞をFIBSベクターおよび安定な細胞株にトランスフェクトした400μg/ mlのゼオシン抗生物質の圧力で選択した。構成的にグルコースおよびグルタミンのセンサーを発現する二つの別々の安定な細胞株は、従って作成された。 図1は、本研究で使用される2つのバイオセンサーの構成を示す図である。グルコースセンサは、アポ - 最大原理に基づいており、対応するプラスミドをpRSET-FLIPglu600μΔ11Aphroditeである。これは、E.のF16A変異体に対する増強 シアン蛍光タンパク質（ECFP）、強化黄色蛍光タンパク質（EYFP）のアフロディテ変異体の融合である大腸菌グルコース/ガラクトース結合タンパク質をペリプラズム。 11個のアミノ酸残基は、FRET効率を向上させるために13リンカー領域から除去した。このベクターを用いてpCDNA4/TO uniqのベクターにクローニングしたサイトメガロウイルスプロモーターおよびSV40エンハンサーを使用してUE をEcoRIおよびPstI制限部位、。
グルタミンセンサは、アポミン原理（ 図1）および対応するプラスミドをE.に黄色蛍光タンパク質シトリンの挿入から誘導されたに基づいているC末端に結合ECFPとアミノ酸と98と99の間に結合タンパク質大腸菌グルタミンペリプラズム。アミノ酸置換D157Nは、FRET効率8を最適化するためにいくつかの変異が続くグルタミンに対する親和性を増加させるためにQBPになされたものであり、一方の構造は、結合領域における残基の欠失によって剛性化されている。グルタミンは、構築物がpUTKan植物発現ベクターに供給し、挿入物を放出するためにBamHIおよびSalIで消化し たFRET。後者は、N-末端精製さtのフレーム内のベクターpET41a中の対応する制限部位にクローニングしたAGS。それは、哺乳動物発現ベクターを生成するために、 サル IおよびXho Iにより製造適合性の粘着末端を用いてのBam HIおよびXho Iで消化し た後に同じインサートは、pCDNA4/TOベクターに連結した。
プラスミド発現は、定量RT-PCRを用いたバイオセンサーのmRNAレベルを定量することによって確認した。両方FIBSを積極半ばの指数レベル14で、セル当たり3000転写産物のβ-アクチンを想定し、細胞当たり25-44 mRNAコピーで転写されることが判明した。
バッチを各細胞株の培養物は、各FIBS のインビボ較正を毎日試料を採取維持された過剰増殖。 2つの細胞株の生存可能な細胞増殖プロフィールは、図3に示され、対応するFRET測定および酵素アッセイによって測定細胞内代謝物の濃度を表1に示す。蛍光プレートリーダーで測定したシアンとイエローの510分の520 nmのための435分の465 nmで35分の430 nmの波長と発光波長の励起波長でのサンプルの蛍光。これは、培養の最初の4日間に存在する細胞数が少ない信頼性が低いFRETシグナルをもたらすことが見出された。同様に、セルの高レベルは、文化の日の8の光散乱を大量に生産した後に存在リーシス。 4-8日間のデータのみが、したがって、グルコースおよびグルタミンFIBSための較正曲線を構築するために使用される、の式を表1に示す。結果はFIBS信号はグルコースとグルタミン0.3-2 mMの1-5 mMの間の細胞内濃度の信頼性の高い相関関係を生成することを示している。
これに従い、上記の知見を検証するために、流加2つの細胞株の培養を行った過剰増殖。高基質濃度（グルタミンFIBS例におけるグルコースFIBSおよびグルタミンの場合はグルコース）を含む飼料を補充した細胞培養の6日目の基板の細胞外濃度を上昇させる。グルタミン葉培養のために、グルタミン濃度は4 mMまで増加したグルコース葉培養の場合には細胞外グルコース濃度は、裏面36ミリモルまで増加させた。 図4は、この研究からの代表的な結果を示す。 図4Aおよび4Cは明らかに、彼らは一日6まで続く傾向を逆転させることによって、給電に対応各日のFRET比を、示している。グルコースFIBS APOがオン構成に従うため、具体的には、 図4Aに、グルコースFIBS CHO細胞株のためのFRET比は、加算をグルコースに応答して7日目に低下する。同様に、 図4Cに、グルタミンFRET比は、アポオフセンサの原理に沿って、グルタミンの添加に応答して、CHO細胞株が増加するのFIB。
これらのFRET測定は、最終的にカルクするために使用されたキュレートは、前記検量線に基づいて、細胞内グルコースおよびグルタミン濃度の対応する検索結果のグルタミン、グルコースおよび図4Dは、図4Bに示されている。グルコースおよびグルタミンの酵素アッセイおよびショー適切な契約を決定したそれらは、これらの基板の実際の細胞内濃度と比較される。
。。、yのグルコース=-1.232x + 8.034（R 2 = 0.961） 表1のグルコースおよびグルタミンFIBSためのFRET比のインビボでのキャリブレーション結果のための較正曲線は、予測を行うために使用することができ、以下の式で記述されているおよびグルタミン（R 2 = 0.87のためのY = 1.892x + 0.3329）ここで、yはFRET比であり、xはmMの濃度である。
図1：本研究で使用FIBSの原理。グルタミンFIBS（左）グルタミン感知ドメインに結合し、したがってFRETを増大互いに接近両方の蛍光タンパク質をもたらすコンフォメーションシフトを生成することによりアポミン原理に従う。グルコースFIBS（右）グルコース感知ドメインに結合し、したがってFRETを低下させる、蛍光タンパク質を分離する構造変化を生成することにより、アポ - 最大原理に従う。
図2。FIBS較正および細胞内のグルコースとグルタミン濃度のその後の非侵襲的定量化のための方法論の概要。
バッチについては、図3。生細胞濃度プロファイルは、CHO細胞株（N =細胞株ごとに3つの測定値と2の生物学的繰り返し）を発現FIBS-グルコースFIBS-グルタミンの文化を過成長。
図4。 FIBS産生CHO細胞及びFRET測定値を対応する流加培養は、（a）毎日私グルコースFIBSを発現する流加CHO細胞培養物のFRET比のasurements。矢印は、細胞培養物へのグルコースの付加を示す。 （b）の値に対するグルコースアッセイキットを用いて測定し、実際の細胞内グルコース濃度プロフィールは、in vivoのグルコース検量線（ 表1）に基づいて予測した。 （c）はグルタミンFIBSを発現する流加CHO細胞培養物のFRET比の測定を毎日。矢印は、細胞培養物へのグルタミンの付加を示す。値に対するグルタミンアッセイキットを用いて測定し（d）は実際の細胞内グルタミン濃度プロファイルは、in vivoでグルタミン検量線（ 表1）に基づいて予測した。すべてのケースでは、n =細胞株につき3測定と2の生物学的繰り返し。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
FIBS焼入れおよび抽出方法に起因する不確実性を取り除く、この場合、増殖制限栄養素で、 生体内で 、キー分子のその場での定量に有効。知見はFIBS信号及びグルタミングルコースおよび0.3-2 mMの1-5 100mMの範囲で細胞内濃度との間に良好な相関関係があることを示唆している。バッチCHO細胞培養において、これらの濃度は、指数関数、固定、および早期衰退段階で遭遇する。指数関数と固定相は、適切な給餌戦略の設計の点で最も重要である。細胞の代謝要求を推定するため、これらのバイオセンサーの使用は、工業的に適切である。流加実験の結果は、細胞内のグルコースおよびグルタミン濃度の推定値を提供することFIBS '適合性を確認する。早い時点で展示偏差が低いため、生細胞のNumの生じている可能性グルコースFIBSの場合、およびグルタミンFIBSの場合は他のアミノ酸によってガラクトースなどにより 、および/ またはあるため他の代謝物による干渉のBERは、。具体的には、FRET比で20％までの減少がアスパラギン酸、グルタミン酸、グリシン、スレオニン、バリン、チロシン15の存在下で起こり得ることが示されている。全体的に、これらの結果はFIBS信号でその誤差はかなり低いが示唆された。
この方法は、一度に、分子の限定された数を監視することができるが、それは数学的モデルの検証のために有用な細胞株およびプロセス開発のための情報、あるいはデータ収集を提供することができる。ペリプラズム結合タンパク質の多様性を考えると、同様のバイオセンサーは、この生細胞におけるリアルタイム代謝産物の定量化のための多様な方法作り、他のアミノ酸、糖、及び硫酸塩およびリン酸イオンを含む16のような小分子の配列のために開発することができる。
FIBSの使用の主な利点は、連続的に、潜在的に、オンライン測定値を得ることができることである。したがって、この方法は、手作業を削減し、開発努力を促進することができるハイスループット用途のために適している。蛍光検出のための組み込み機能を有するマイクロリアクターティング環境の可用性の向上と、それは、プラットフォームプロファイリングFIBS有効な代謝産物は、細胞スクリーニング、メディア、プロセス最適化、およびプロセスのスケールアップのために使用することができることが想定される。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
著者らは、開示することは何もありません。
Acknowledgments
私たちは親切親切にグルタミンを供給するためのグルコースのFRETプラスミド博士ウーヴェLudewig（ホーエンハイム大学）をご提供するために教授ウルフフロン（科学カーネギー研究所、スタンフォード大学）に感謝pUTKan植物発現ベクターに構築FRET。 ABはBBSRC目標と重点Studentshipsプログラムによって資金を供給される。 CKとKPの両方がバイオ医薬品の処理にRCUKフェローシップでサポートされています。 CKはまた彼らの財政支援のためにロンザ生物製剤に感謝したい。合成生物学とイノベーションのためのセンターは、寛大にEPSRCによってサポートされています。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| CHO-S Cells | Life Tecnologies | 11619-012 | Cell line will vary depending on the goals of the study |
| pCDNA4/TO vector | Life Tecnologies | ||
| TransIT-PRO Transfection Reagent | Mirus Bio | MIR 5700 | Transfections can be accomplished using any method suitable for the cell line under study |
| Zeocin | Invivogen | ||
| CD-CHO medium | Life Technologies | 10743-011 | Cell growth medium is dependent upon the cells under study |
| 100x HT Supplement | Life Technologies | 11067-030 | |
| L-Glutamine 200 mM (100x), Liquid | Life Technologies | 25030032 | |
| InfinitePRO 200 plate reader | Tecan | FLx800TBI | Any 96-well fluorescence plate reader that can access the required wavelengths can be substituted |
| Filters for plate reader | Tecan | 30000463 | |
| Maxiprep Plasmid Purification Kit | Qiagen | 12163 | Any suitable kit can be substituted |
| Amplex Red glucose/glucose oxidase assay kit | Invitrogen | A22189 | Any suitable kit can be substituted |
| EnzyChrom Glutamine Assay Kit | BioAssay Systems | EOAC-100 | Any suitable kit can be substituted |
| Improved Neubauer hemocytometer | Fisher Scientific | MNK-420-010N | |
| Incubator | Nuaire | NU-5510E |
References
- Moser, I., Jobst, G., Urban, G. A. Biosensor arrays for simultaneous measurement of glucose, lactate, glutamate, and glutamine. Biosens. Bioelectron. 17 (4), 297-302 (2002).
- Billingsley, K., et al. Fluorescent nano-optodes for glucose detection. Anal. Chem. 82 (9), 3707-3713 (2010).
- Dattelbaum, J. D., Lakowicz, J. R. Optical Determination of Glutamine Using a Genetically Engineered Protein. Anal. Biochem. 291 (1), 88-95 (2001).
- Kfouri, M., et al. Toward a miniaturized wireless fluorescence-based diagnostic imaging system. IEEE J. Sel. Top. Quantum Electron. 14 (1), 226-234 (2008).
- Dittrich, P. S., Manz, A. Single-molecule fluorescence detection in microfluidic channels—the Holy Grail in muTAS. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 382 (8), 1771-1782 (2005).
- Hou, B. H., Codamo, J., Pilbrough, W., Hughes, B., Gray, P. P., Munro, T. P. Optical sensors for monitoring dynamic changes of intracellular metabolite levels in mammalian cells. Nat. Protoc. 6 (7), 1818-1833 (2011).
- Bermejo, C., Haerizadeh, F., Takanaga, H., Chermak, D., Frommer, W. B. Dynamic analysis of cytosolic glucose and ATP levels in yeast using optical sensors. Biochem. J. 432, 399-406 (2010).
- Yang, H. Y., Bogner, M., Stierhof, Y. D., Ludewig, U. H(+)-independent glutamine transport in plant root tips. Plos One. 5, (2010).
- Fehr, M., Takanaga, H., Ehrhardt, D. W., Frommer, W. B. Evidence for high-cavacity bidirectional glucose transport across the endoplasmic reticulum membrane by genetically encoded fluorescence resonance energy transfer nanosensors. Mol. Cell. Biol. 25 (24), 11102-11112 (2005).
- Ai, H. W., Hazelwood, K. L., Davidson, M. W., Campbell, R. E. Fluorescent protein FRET pairs for ratiometric imaging of dual biosensors. Nat. Methods. 5 (5), 401-403 (2008).
- Ouyang, M. X., Sun, J., Chien, S., Wang, Y. X. Determination of hierarchical relationship of Src and Rac at subcellular locations with FRET biosensors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105 (38), 14353-14358 (2008).
- Han, Y., et al. Cultivation of recombinant Chinese hamster ovary cells grown as suspended aggregates in stirred vessels. J. Biosci. Bioeng. 102 (5), 430-435 (2006).
- Deuschle, K., Okumoto, S., Fehr, M., Looger, L. L., Kozhukh, L., Frommer, W. B. Construction and optimization of a family of genetically encoded metabolite sensors by semirational protein engineering. Protein Sci. 14 (9), 2304-2314 (2005).
- Wong, D. C. F., Wong, N. S. C., Goh, J. S. Y., May, L. M., Yap, M. G. S. Profiling of N-Glycosylation gene expression in CHO cell Fed-batch cultures. Biotechnol. Bioeng. 107 (2), 516-528 (2010).
- Behjousiar, A., Kontoravdi, C., Polizzi, K. M. In Situ Monitoring of Intracellular Glucose and Glutamine in CHO Cell Culture. PLoS One. 7, (2012).
- Dwyer, M. A., Hellinga, H. W. Periplasmic binding proteins: a versatile superfamily for protein engineering. Curr. Opin. Struct. Biol. 14 (4), 495-504 (2004).
