Summary
这个协议描述了用于产生和纯化野生型和人INO80染色质重构复合物的突变版本中的一个过程。表位标记的INO80亚基的版本都稳定地表达在HEK293细胞中,并完全配合物和配合物缺乏亚基的特定集合是通过免疫亲和层析纯化。
Abstract
INO80染色质重塑复合物通过催化ATP依赖的核小体重塑核监管动态和DNA的可访问性。人类INO80物包括14蛋白亚基包括INO80一个SNF2般的ATP酶,它同时作为催化亚基和支架的复合物的组装。另一亚基的功能和由此来的INO80复合物的染色质重塑活性它们贡献的机制仍然知之甚少,部分原因是由于产生INO80组件在人细胞或异源表达系统的挑战。这JOVE协议描述的程序,可以让那些缺乏亚基或亚基的一个子集人类INO80染色质重塑subcomplexes的净化。 N末端FLAG表位标签的INO80基因被稳定地导入人胚胎肾(HEK)用FLP-介导的重组293细胞系。在该INO80复合物的亚基的一个子集是B中的事件ê删除,1表示是缺乏必要对这些亚基组装的平台,而不是突变INO80蛋白质。在该事件的个体亚基是被耗尽的,针对这一亚基成的HEK 293细胞系的稳定表达FLAG 1 transfects的siRNA标记INO80 ATP酶。核提取物的制备和免疫标志进行充实含INO80衍生蛋白组分。纯化INO80 subcomplexes的组合物然后可以使用的方法,例如免疫印迹,银染色法和质谱法进行分析。产生的INO80和INO80 subcomplexes根据该协议可以使用各种生化测定法,其中在附图JOVE协议描述来进一步分析。这里描述的方法可以适用于任何哺乳动物多亚基染色质重塑的结构和功能特性的研究和改进的配合物。
Introduction
进化上保守的SNF2家庭染色质重塑复合物染色质组织和DNA可达1的主要监管机构。这些重塑复合物总是包括中央SNF2状ATP酶亚基,其中,在某些情况下,装配有各种辅助蛋白,并形成多亚基大分子装配体。研究ATP依赖的染色质重塑过程的分子细节,以理解亚基和/或结构域的结构的特定子集的贡献,以复合物的活性是很重要的。这样的分析要求,以产生缺乏特定蛋白质亚基或结构域的结构高度纯化的突变体复合物的能力。
的依赖ATP的染色质重塑复合物之前的结构-功能研究已经广泛地聚焦在酵母模型系统上,由于酵母基因组的优异的可操作性(参见,例如,文献1-4)。由于养护其中同源重塑复合物亚基组成和功能,结构和酵母重塑复合物的功能研究高等真核生物提供了重要的见解的同行。然而,明显的种属特异性重塑复合物之间的差异确实存在,从增益或物种特异性的亚基,增益或保守的亚单位的种特异性结构域的损失,和序列变异性的保守亚基的保守结构域之内的损失所导致。这样的差异可以在原则上需要高等真核细胞,以适应新的分子和细胞的环境中进行驱动。因此,理解的高等真核质重塑复合物亚基如何向核小体重构过程是有价值的,因为它不仅揭示了ATP依赖的染色质重塑过程的基本机制的光,而且还可以提供有价值的洞察机制,其中的染色质结构在集锦和基因表达她真核生物规管。
到目前为止,已经出现了只有有限的多亚基哺乳动物染色质重塑复合物的结构和功能的研究,部分是由于难以获得生化定义染色质重塑复合物及其亚。我们已经部分地规避这些困难与下面描述的方法,其中免疫亲和纯化用于制备从人体细胞完好INO80或INO80 subcomplexes稳定表达N末端FLAG表位标记的野生型或INO80 5-7的突变版本( 图1) 。以获得从人体细胞完好INO80复合物,FLP介导的重组被用于产生转基因的HEK293细胞系中稳定表达FLAG表位标签的编码cDNA的INO80复合物8-10的亚单位组成。因为过度表达INO80亚基可以是有些有毒,有必要分离并保持下选择性共克隆细胞系条件,以确保在需要扩张大规模细胞培养物的多通道的稳定的转基因表达。要获得含有亚单位的一个子集较小INO80 subcomplexes,我们已经成功地使用两种方法( 图2A,B)。在所述第一,我们生成的HEK293 FLP-在细胞系中稳定表达INO80的突变版本,缺乏具体的亚基5所需的相互作用结构域。或者,siRNA的介导击倒用于消耗从细胞中表达适当的FLAG标记的INO80亚基(未发表的数据)所需的子单元。最后,为了净化人类INO80复合物,FLAG琼脂糖基于色谱11被用于从核提取物丰富的含INO80馏分,从而有效地减少了污染的胞质蛋白在含有纯化INO80或INO80 subcomplexes的最后部分的存在。
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Protocol
1代和HEK293稳定细胞系表达全长或者标记的突变版本文化抗原标记INO80或其他INO80复杂的亚基
- 克隆的cDNA编码全长或突变的人INO80 ATP酶或另一INO80亚基入哺乳动物表达载体pcDNA5 / FRT用在帧中,N末端FLAG表位标签。
- 出发前请确认所插入的cDNA通过DNA测序的序列。
- 执行转染,成长的Flp-在HEK293细胞中,10厘米的组织培养皿在含有DMEM(Dulbecco改良的Eagle培养基),5%的谷氨酰胺的培养基中,加入10%FBS(胎牛血清)。
- 当细胞达到〜70%汇合,添加到每个组织培养皿中的40微升FuGENE6转染试剂,0.5微克适当pcDNA5 / FRT表达质粒,和9.5微克pOG44,其编码的Flp重组酶的混合物中,在总体积为为800μl。
- 48小时后,trypsinize和sPLIT细胞按1:30成10 cm的培养皿的比例,并用5%谷氨酰胺,10%FBS的生长他们的DMEM中,并在3 100微克/毫升潮霉素B - 4周。改变时,它开始变黄的培养基(通常每3 - 5天)。
- 要识别表达FLAG标签蛋白的最高水平阳性克隆,选择单独的潮霉素B抗性菌落,并将它们转移到24孔板的单井。
- 一旦细胞达到80%汇合时,收获细胞,从每孔中〜1ml的PBS和沉淀,离心1,000 xg离心5分钟。
- 除去上清液后,重悬在60微升SDS-PAGE样品缓冲液将细胞沉淀。
- 重悬的细胞,以SDS-PAGE和Western印迹监测国旗表达主题一半标记诱饵蛋白;保存的另一半用于将来的分析。
- 如果没有FLAG标签的人INO80蛋白在细胞裂解物检测,扩大初始克隆细胞珀普通过电镀从单个孔24孔板中的细胞分成15厘米的组织培养皿中进一步分页。
- 到15 cm的培养皿,接近融合的细胞重悬在冰冷的PBS中,并转移到50ml锥形管中收获细胞。
- 通过添加额外的PBS带来的50 ml的终体积。
- 沉淀的细胞在1,000×g离心5分钟,并除去尽可能多的上清液。
- 重悬在1ml的Lys450缓冲细胞沉淀(20mM的HEPES-氢氧化钠pH值为7.9,450 mM氯化钠,0.5%的TritonX-100,10mM的氯化钾,4毫米MgCl 2,0.2毫摩尔EDTA,10%甘油,1mM DTT, 200μM的PMSF,和1:1,000蛋白酶抑制剂混合物)。
注:这里和其他地方,立即开始实验前,随时添加DTT,PMSF和蛋白酶抑制剂来缓冲。 - 使用20微升抗FLAG琼脂糖凝胶免疫沉淀FLAG标签从所得的全细胞裂解液的蛋白质,并分析FLAG洗脱物用免疫蛋白印迹。 [为了与免疫详情oprecipitation步骤,请参阅步骤5]
- 制备所需的克隆细胞系12的冷冻储存,并将它们存储在液氮中直至使用。
在滚瓶2。成长的HEK293细胞系
对于大规模制备INO80复合物,培养的细胞在10 - 20滚瓶;一个典型的产量从每滚瓶〜1毫升包装细胞。
- 到每个滚瓶中,加入200毫升的DMEM,5%的谷氨酸,和10%小牛血清,无潮霉素B.
- 从单个近汇合15cm培养皿转移所有的细胞到每个滚瓶
- 地方滚瓶到37℃,转瓶培养器和旋转0.2转。
- 一旦细胞达到〜70%汇合,倒出并丢弃的媒介。
- 加入约50毫升冰水中冷PBS至各瓶中。拿着瓶水平,轻轻地旋转松开细胞单层。
- 传输重悬细胞250ml的PLASTIC锥形瓶置于冰上。
- 冲洗滚瓶额外的PBS,依次传递从瓶到瓶。当冲洗液不再清晰(通常被用于漂洗约5瓶后),将其添加到细胞悬浮液。
- 离心沉淀细胞,在400×g离心10分钟。
- 轻轻悬浮细胞在PBS,将它们组合成一个单一的250毫升锥形瓶中,并保持在冰上,直到进一步的处理。
INO80亚基细胞表达的另一个FLAG标签INO80亚基3的siRNA介导的击倒
为了获得缺少一个亚基INO80 subcomplexes,使用标志,免疫纯化,净化的siRNA处理的细胞或细胞中稳定表达shRNA的INO80复合物。 “反向”的siRNA(小干扰RNA)转染这里描述的协议被优化为HEK293细胞15 cm的培养皿生长。该协议是在细胞和SHO的一个15cm培养皿ULD扩大规模相应地取决于所需的细胞数。要准备从siRNA治疗的细胞INO80复杂的生化有用的数额,应扩大到40 15 cm的培养皿生长的培养;这将产生约2 - 4毫升填充细胞沉淀。
- 生长的HEK293细胞稳定表达INO80复合物的所希望的亚基附近汇合15 cm的培养皿。
- 添加的siRNA的再悬浮缓冲液的量(20毫米氯化钾,6毫米肝素钠,pH值7.5,和0.2毫米氯化镁2)充分准备的siRNA的50微米原液含有冻干的siRNA管。吸取溶液,上下几次,并培育一个nutator 30分钟,在室温,确保siRNA的完全溶解。
- 制备含siRNA和转染试剂转染的鸡尾酒。混合10微升的50μM的siRNA的储备溶液与32微升的Lipofectamine RNAiMAX,并将其添加到4ml的Opti-MEM的低血清培养基用非常温和混合;人低所有试剂在使用前平衡至室温。
- 在室温下孵育该混合物30分钟。
- 制备的Flp-在HEK293细胞中稳定表达所需INO80亚基转染。
- 在步骤3.4的孵化,在15 cm的培养皿一次,用RT PBS洗涤细胞。
- 除去PBS后,把细胞用1ml胰蛋白酶只是直到他们开始抬离板。
- 立即加入10 ml完全培养基(DMEM + 5%谷氨酰胺+ 10%FBS)与胰酶消化细胞,轻轻混匀。通过离心收集的细胞在1,000×g离心5分钟,在室温。
- 重悬在〜4毫升完全培养基将细胞沉淀,并用血球计计数细胞再悬浮。
- 稀释细胞完全培养基中至〜5.4×10 6个/ ml的浓度。
- 向每个15cm培养皿,加入15 ml完全培养基然后加入4ml染鸡尾酒。轻轻摇动,以确保中期和转染鸡尾酒是thoroughly混合。最后,添加一个ml的细胞悬液,再轻轻摇晃均匀分散细胞。
- 在37℃,5%CO2 培养箱 60小时培养后,轻轻取出介质,悬浮细胞在冰冷的PBS,并立即着手准备核提取物。
4,制备核提取物的
这个过程已经被修改狄格南13的协议,并且可以放大或缩小根据起始细胞沉淀物的大小。典型地,将1ml填充细胞沉淀收率1最终核提取毫升。所有的缓冲区应该是冰冷的,而所有步骤应在冷室或冰面上进行,如果合适的冷室中不可用。
- 隔离核:
- 轻轻地在4℃下的细胞转移至合适大小的(15或50毫升)刻度锥形试管和自旋在1,000 xg离心10分钟。
- 除去上清液,并测量红细胞象素的体积让。 1毫升包装细胞对应于〜3×10 8个HEK293细胞。
- 添加5包装细胞的缓冲液A的体积(10mM的HEPES,pH值7.9,1.5毫米MgCl 2,10 mM的氯化钾和新加入1毫摩尔DTT,200μMPMSF,和1:1,000蛋白酶抑制剂混合物)。重悬细胞沉淀轻柔吹打。
- 在冰上孵育恰好10分钟。
- 沉淀细胞在1,000×g离心10分钟,在4℃下,并除去上清液。
- 将细胞沉淀物的大小应增加达2倍的孵育在缓冲液A中
- 将细胞重悬于缓冲液A中的两个压缩细胞体积,细胞悬浮液转移到一个适当大小的Dounce组织匀浆器。如果少于2毫升包装细胞开始,使用7毫升均质; 2 - 4毫升包装细胞,用15毫升均质;并为10个或更多毫升装电池,使用40毫升均质。
- 均质的细胞悬液用Dounce匀浆联合国松散玻璃杵直到90%的细胞用1%的台盼蓝染色为阳性。
- 的悬浮液转移到一个45毫升高速离心管中并旋转以25,000 xg离心20分钟,在4℃下,在JA-17或类似的转子( 见表的材料/设备 )。
- 从该核沉淀,除去上清液,其含有细胞质蛋白或分馏过程中泄漏出来的核蛋白质。
- 细胞核中提取盐:
- 加入缓冲液C(20mM的HEPES,pH值7.9,25%甘油,1.5mM的MgCl 2的,0.2mM的EDTA,和新加入1毫摩尔DTT,200μMPMSF,和1:1,000蛋白酶抑制剂混合物)的核沉淀;使用2.5毫升缓冲液C为每3毫升开始收集细胞体积(〜1×10 9个细胞)。
- 用玻璃棒或吸管,逐出该管的壁的核颗粒和整个混合物转移到一个适当大小的Dounce匀浆。
- 通过均质个悬浮核Ë混合搭配宽松杵两招。
- 转移悬浮细胞核部分进入冷藏烧杯中。选择的烧杯中,使得悬浮液将填充该烧杯,以至少0.5厘米深。
- 以提取从染色质或其他不溶性结构的核蛋白质,该悬浮液的盐浓度逐渐增加至0.42 M氯化钠,滴加5M的NaCl,同时轻轻地搅拌该悬浮液在冰上吸管或玻璃棒;一旦所有的5M的NaCl的已被添加,则溶液变得非常粘稠的或凝胶状。计算的5M NaCl的需要,根据下面的公式,使该溶液的0.42 M氯化钠的最终浓度的体积:
- 粘性悬浮小心转移到10ml聚碳酸酯管的类型70.1钛转子(或同等学历),或70毫升聚碳酸酯瓶的45型钛Øř类似的转子(见表材料/设备)。如果用10 ml离心管或盖组件,如果用70 ml瓶装封口膜密封严密。
- 慢慢地摇动密封管在4℃下用章动器30分钟。
- 旋样本中的45型Ti或70.1 Ti转头30分钟12万XG在4℃。
- 将上清转移到一个单一的塑料管或瓶。此上清液为核提取物,并将沉淀包含染色质和其他核碎片。
- 分裂的核提取物成方便的尺寸等分,冷冻它在液氮中,并储存在-80℃。
人类INO80或INO80 Subcomplexes 5。免疫亲和纯化
- 解冻冻结核提取物,含手部之间的台式或卷管提取物,直到冷冻材料管的地方就变成了泥浆。然后将试管置于冰上或在冷室中,直至提取物是完全吨hawed。
- 传送解冻核提取物至10ml聚碳酸酯超速离心管中,并旋以100,000 xg离心20分钟,在4℃下,在类型70.1 Ti转头或等效以去除可能在冻融循环已经形成的任何沉淀物。
- 将上清转移到一个15毫升的锥形管。加入新鲜的DTT,PMSF和蛋白酶抑制剂混合物至最终浓度为1mM DTT,200μMPMSF,和1:1,000蛋白酶抑制剂混合物。
- 要准备抗FLAG琼脂糖的免疫纯化,用P200或类似吸管尖端从中年底已被切断,用干净的手术刀转移200微升抗FLAG琼脂糖珠50%的淤浆到1.5 ml离心管或刀片。
- 沉淀珠离心的台式微型离心机在8000 XG,持续30秒。除去上清液,并通过再悬浮珠粒在1ml的Lys450缓冲洗珠,并沉淀小珠以8,000 xg离心30秒。洗的BEADS两次以上。
- 重悬在约100微升的核提取物使用的是P200或类似音量可调移液管与尖端从该端部已经被切断,用干净的手术刀或剃刀刀片,并且使用相同的尖,转印的洗涤的抗FLAG琼脂糖珠再悬浮的珠至15毫升锥形管中含有的提取物。重复几次,直到所有的球都被转移到15ml试管中。
- 孵育提取/珠混合物4小时,在4℃用在实验室旋转体缓慢转动。可选:包括BENZONASE在25单位/毫升的浓度去除污染的DNA。
- 收集标志琼脂糖离心1000×g离心5分钟,在4℃。
- 悬浮于10ml Lys450洗,孵化5分钟,在4℃下轻轻摇动一个nutator。沉淀小珠在1,000 xg离心5分钟,在4℃下。
- 悬浮在100 - 150微升Lys450和转运珠,以1.5 ml离心管中。合作ntinue冲洗的15毫升锥形管,100 - 150微升Lys450的,直到所有的珠粒已被转移到离心管中。
- 在微型降速珠在8000 XG为30秒,在4℃。用1ml EB100缓冲液(10mM HEPES pH为7.9,10%甘油,100mM的氯化钠,1.5mM的MgCl 2的,0.05%的TritonX-100,和新加入1毫摩尔DTT,200μMPMSF洗三次以上用1ml Lys450和一次,和1:1,000蛋白酶抑制剂混合物)。
- 为了洗脱结合的蛋白,加入含0.25毫克/毫升1X FLAG肽200微升EB100缓冲区。孵育一个nutator在4℃每次30分钟。
- 在微量离心沉淀珠粒在8000×g离心30秒,在4℃下。将上清液转移,它包含洗出INO80复合物,一种新的微量离心管中。
- 重复洗脱四次,并集中所有的上清液到一个单一的管。
- 从洗脱的蛋白级分除去任何残留的FLAG-琼脂糖珠,通过一个空的离心柱通过洗脱液。
- 浓缩洗脱的蛋白级分〜10倍使用超离心过滤装置(50,000分子量截留值)。
- 要删除FLAG肽,通过两个脱盐柱依次传递浓缩的蛋白质部分。
- 分纯化,脱盐的蛋白质级分入20微升的等分试样,在液氮中冷冻,并保存于-80℃。
- 银染胶或免疫印迹分析INO80或INO80 subcomplexes的亚基组成,并估计它们的浓度用已知浓度的标准INO80重组亚单位准备半定量免疫印迹。
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Representative Results
图1示出的流程图总结了用于产生,纯化和表征人类INO80 ATP依赖的染色质重塑复合物的过程。
如示于图2和3中 ,这些程序使缺乏各种亚基,从而使这些缺失亚基INO80的酶活性的贡献后续的生化分析野生型INO80和INO80 subcomplexes的产生, 图2描述了两种策略我们用于定义INO80复合物的结构和生成INO80 subcomplexes。在第一阶段, 如图2A中所示,完整的INO80复合物是通过对野生型亚基(IES2或INO80E)FLAG标签的版本进行纯化。 Subcomplexes可通过突变INO80蛋白表位标记的版本,缺乏对不同的组亚基ASSEM各个领域得到净化BLE。 如图3A所示 ,所得到的复合物的纯度通过银评估染色的SDS-聚丙烯酰胺凝胶中,而配合物的组合物中使用蛋白质印迹用抗体对各种INO80亚基( 图3B)或通过质谱法进行评估的(数据未示出)。使用这种方法,我们发现,在图2A中以红色显示的子单元在删除的INO80 NTD(N-端结构域)的丢失;以蓝色显示的亚基丢失后删除INO80的HSA(解旋酶SANT美联社)领域;并且SNF2 ATPase结构域,SNF2N和HelicC区域(紫红色)由一个长的插入区域(白色)分开的构成,是必要的和足够的约束力,以紫色所示的亚基。因此,INO80 subcomplexes(INO80ΔN.com或INO80ΔNΔHSA.com)缺乏无论是在红色或亚基所示的亚基红色和蓝色表示可通过FLAG-Ino80ΔN或FLAG-INO80ΔNΔHS被净化A,分别为5。
另外,也可以通过从细胞中表达适当的FLAG标记的INO80亚基(未发表的结果)消耗单个亚基生成subcomplexes。在图2B所示的第一个例子中,子单元的X的siRNA介导的敲低耗尽从INO80复合物只有X,暗示X不是必需的任何其他亚基成INO80组件。在第二和第三实施例中,siRNA敲除或者Y或Z的通向共同耗尽两个Y和Z亚基,提示Y和Z的组装成的INO80复合物以相互依赖性。
图1流程图描述的程序来产生,纯化和鉴定人INO80 ATP依赖的染色质重塑复合物女,N端的帧FLAG表位标签;印度政府,基因,在terest。 请点击这里查看该图的放大版本。
图2图显示用于生成包含亚基的一个子集INO80 subcomplexes两种策略。 (A)中的 INO80 ATP酶包含用作模块化支架在其上的其他INO80亚基组装区域(B)的siRNA介导的敲除可用于消耗从细胞中表达的适当FLAG-所需的子单元(X或Y或Z)标记INO80亚单位( 如 FLAG-Ino80ΔN)。 请点击这里查看该图的放大版本。
的免疫纯化INO80复合物及其亚组合物的图3的分析。 (A)INO80复合物或subcomplexes被从细胞中稳定表达所指示的FLAG标签的蛋白质,进行SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳纯化,并用银染色显示。在最右侧的车道将样品从亲代293细胞不表达FLAG标记的蛋白制备;显示在此控制通道蛋白结合非特异性标志琼脂糖污染物。在左侧的标签指示对应于几个INO80亚基频段,并且那些在右边的分子量标记的迁移率。野生型INO80的位置由黑色矩形表示,而INO80突变体的位置是由空心圆表示。由黑线分隔车道是从不同的凝胶(B)INO80复合物及其亚Western印迹法分析使用抗台币,HSA的代表亚基和SNF2模块。这项研究最初发表在生物化学杂志。陈等人 ,人力INO80染色质重塑复合物亚基组织。一个进化上保守的核心情结催化ATP依赖的核小体重塑。 。第11283-11289:生物化学卷286杂志。 ©2011年,由美国生物化学与分子生物学。 请点击这里查看该图的放大版本。
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Discussion
从高等真核生物多亚基哺乳类染色质重塑复合物的结构和功能的研究已经受到阻碍制备含有突变亚基或完全缺乏某些亚基这种配合物的生物化学有用量的难度。有许多技术障碍:第一,基因操作在哺乳动物细胞中已经在技术上具有挑战性的并且耗时的。不同于酵母细胞,其基因组可以容易地编辑和定向用重组工程技术,在哺乳动物基因组中是更复杂的结构和较少受重组工程干预。因此,缺失或哺乳动物基因的修饰在培养细胞或动物较为耗时,并且需要更多的专门知识。其结果是,突变的哺乳动物携带物的结构突变或缺失亚基(S)的子集的生成已经限速。二,生化重建方法,使用杂logous蛋白质表达系统通常用于生成定义的多蛋白装配。然而,这种方法变得非常大的复合物,其亚基,可能需要同时表达在适当的化学计量比和/或要被组装在一个特定的顺序,以从特定的伴侣分子或辅因子的帮助技术上具有挑战性。这些问题是在INO80复合物的情况下尤其严重,因为它的INO80 ATP酶亚基是特别困难的在昆虫或大肠杆菌表达大肠杆菌细胞在生化有用的金额。在INO80染色质重构复合物的研究中,已经有可能规避一些使用在此协议中描述的策略,这些挑战。
产生的人细胞系的稳定表达INO80复合物的表位标记的亚基是在此过程中的关键步骤,因为它可以使良好定义的染色质重塑复合物的纯化,可使用各种生化Â测试ssays。虽然它在原理上是更费时,以产生稳定的细胞系使用比瞬时转染来提供设计的cDNA导入哺乳动物细胞系用于生产重组蛋白质的,瞬时转染有几个缺点。首先,DNA-在瞬时转染的染色体外的载体形式,是短命的,并且通常在细胞周期中不能自我繁殖。二,转染效率差异很大,取决于细胞类型和生长条件。异构转染可引起赋予的细胞群中的选择性生长优势或劣势马赛克的表达模式。因此,瞬时引入转基因的趋向时,产生大量的所需的蛋白质的生化有用的量的纯化的细胞所需要的许多孔通道迷路。最常使用导致随机整合的cDNA编码的蛋白质的方法产生稳定的细胞系的兴趣。然而,随机整合的cDNA能够破坏内源基因的表达,并受基因沉默的具有多个孔通道。出于这些原因,我们通常会引入INO80 cDNA导入用FLP-介导的重组技术,在其中该cDNA稳定地并入通过Flp重组介导的插入特定的染色体位置成一个单一的FRT位点稳定整合到基因组中的细胞。
在选择过程中的稳定细胞株,它是能够检测外源表达,FLAG标记,野生型或突变INO80蛋白质是必不可少的。因为FLAG标签INO80蛋白通常表示在极低的水平,因此,很难或不可能通过在一个24孔板的单个孔中生长的细胞的粗裂解物中蛋白质印迹来检测,这往往是必要的,以扩大初始克隆细胞群体之前筛选INO80蛋白质的表达。 FLAG标记INO80蛋白质然后可以纯化和共由旗免疫纯化前免疫印迹分析ncentrated。
的siRNA介导的敲低的效率,是在转染时的细胞密度相当敏感;我们发现,当转染的密度比建议在协议等进行了细胞敲除效率下降。的时间用于siRNA转染的最佳长度是可变的,并且需要根据经验针对每个靶蛋白测定的,因为它依赖于目标蛋白质,在蛋白质复合物的靶蛋白的周转率的稳定性,以及到何种程度的蛋白对于细胞存活所必需。作为替代使用的siRNA以耗尽个别亚基的瞬时转染的,人们可能希望考虑产生的细胞系的稳定表达shRNA的选择性压力下,因为它可能会更容易和更经济有效的生长,例如细胞株的生化有用的量。但是,它可以证明是困难获得通过的shRNA介导的击倒在稳定细胞系足以击倒。
也关键所在过程的成功是利用核提取物作为INO80复合物的纯化的原料。我们已经发现,从全细胞提取物免疫纯化INO80复合物常常沾染ATP酶和/或核小体重构活动是独立于该INO80 ATP酶;这种污染在很大程度上避免了当复合物是由核提取物纯化。
核提取物和完整INO80配合隔离的制备取决于几个关键因素。首先,用于制备核提取物中的细胞应该是完整和健康。洗涤过的细胞沉淀,预计会膨胀到2倍以下的温育,在低渗缓冲液A如果细胞不溶胀和/或上清液在这个步骤变得混浊,细胞的起始群体可能已经不健康。另外中,细胞可能已在收获或悬浮的步骤处理过粗略,或者它们可以被培养太长在缓冲液A其次,不要过度均化细胞或细胞核沉淀,因为这将剪切的染色质,是重要的释放DNA插入可溶级分。中可溶部分的DNA可以与随后的纯化和INO80复合物的测定干扰。特别是,污染性DNA可导致沉淀物的形成增加与抗FLAG提取物的温育过程中的琼脂糖,从而减少了洗涤和洗脱步骤的效率和/或可能增加污染性DNA结合蛋白在最终纯化的级分的丰。此外,下游的生化分析测量活动依赖于DNA,从提取物中的DNA从而将潜在的结转可能复杂化这些测定法的解释。避免过度均化,在细胞裂解最好是检查台盼蓝阳性细胞的百分比均质机的行程之后S;在HEK293细胞,几乎完全细胞裂解通常需要4 - 6招同质化。它也是重要的是要避免引入气泡而均质化。从步骤4.2.8 120,000 XG旋上清应该是一个明确的,非粘性的解决方案,只有一个很小的附近染色质沉淀或浑浊粘稠物量或浮在上面。当收集上清液,应注意不要收集任何的阴天或粘性物质,因为它可能包括染色质和/或DNA。最后,这是更好的,以避免制备核提取物之前冷冻细胞中,由于从冷冻细胞中制备复合物倾向于显示出较低的比活性,并包含更多污染的DNA和蛋白质。
开始提取物和抗FLAG琼脂糖的量之间的最佳比例取决于FLAG诱饵蛋白中存在的提取物和accessibi浓度可以凭经验确定FLAG表位和需要lity。我们通常会首先与免疫纯化的抗FLAG琼脂糖珠100微升床体积和3 - 14毫升核提取物;使用的提取物的量依赖于实验和提取物的可用性的目标。使用抗FLAG琼脂糖单步免疫纯化通常足以净化INO80或INO80 subcomplexes在一定程度上足以满足他们的活动可靠的测定;然而,如凝胶过滤,密度梯度沉淀,或离子交换层析进一步纯化步骤(次),可能需要其它配合物的纯化或以除去污染的活动,可能复杂的生物化学测定法的解释。
此处所描述的战略应是更普遍有用的其他染色质重塑酶的研究,以及其它大的多蛋白复合物。成功应用这些策略对其他亩的分析ltiprotein复合取决于(一)识别个人亚基或亚基(s)表示,作为支架(S)上的其他亚基组装和特定领域或地区与亚基的特定子集汇编(二)定义的。这种结构域的定义可以通过分析核心支架亚基(次)为对应于已知的结构域在进化上保守的区域或区域的一级序列来促进。
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Disclosures
作者宣称,他们没有竞争的经济利益。
Acknowledgments
在作者的实验室工作是由普通医学科学研究所(GM41628)的赠款和赠款的斯托尔斯医学研究所的海伦·纳尔逊医学研究基金,在大堪萨斯城社区基金会的支持。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Dulbecco's Modified Eagle Medium | Cellgro | 10-013-CV | |
Glutamax-I (stablized glutamine) | Life Technologies | 35050-079 | |
Fetal Bovine Serum | SAFC | 12176C | |
FuGENE6 transfection reagent | Promega | E2312 | |
Hygromycin B, sterile in PBS | AG Scientific | H-1012-PBS | |
pcDNA5/FRT vector | Life Technologies | V6010-20 | |
Flp-In HEK293 cells | Life Technologies | R780-07 | |
pOG44 Flp-Recombinase Expression Vector | Life Technologies | V600520 | |
EZview Red ANTI-FLAG M2 Affinity Gel | Sigma | F2426 | |
calf serum | SAFC | 12138C | |
TARGETplus SMARTsiRNA pool | Dharmacon / Thermo Scientific | various | |
5x siRNA resuspension buffer | Dharmacon / Thermo Scientific | #B-002000-UB-100 | |
Lipofectamine RNAiMAX | Life Technologies | 13778 | |
Opti-MEM Reduced Serum Medium | Life Technologies | 51985-091 | |
PBS | Cellgro | 45000 | VWR |
TrypLE (trypsin) | Life Technologies | 12604 | |
1x FLAG Peptide | Sigma | F3290 | |
Micro Bio-Spin Chromatography Column | Bio-Rad | 737-5021 | |
Amicon Ultra Centrifugal Filter Device (50k MWCO) | Amicon | UFC805024 | Fisher Scientific |
Zeba Desalting Columns | Thermo Scientific | 89882 | |
Anti-FLAG M2 antibody, mouse | Sigma | F3165 | |
Anti-FLAG M2 antibody, rabbit | Sigma | F7425 | |
Protease Inhibitor Cocktail | Sigma | P8340 | |
benzonase | Novagen | 70664 | |
Equipment | |||
JS-4.2 rotor in a J6 centrifuge | Beckman-Coulter | 339080 | |
JA-17 rotor | Beckman-Coulter | 369691 | |
10 ml polycarbonate tubes | Beckman-Coulter | 355630 | |
70 ml polycarbonate bottles | Beckman-Coulter | 355655 | |
Type 45 Ti rotor | Beckman-Coulter | 339160 | |
Type 70.1 Ti rotor | Beckman-Coulter | 342184 | |
BD Clay Adams Nutator Mixer | BD Diagnostics | 15172-203 | VWR |
Glas-Col Tube/Vial Rotator | Glas-Col | 099A RD4512 | |
PCR thermal cycler PTC 200 | MJ Research | PTC 200 | |
roller bottle incubator | Bellco biotechnology | 353348 | |
Immobilon-FL Transfer Membrane 7 x 8.4 | Millipore | IPFL07810 | |
lubricated 1.5 ml microcentrifuge tubes | Costar | 3207 |
References
- Clapier, C. R., Cairns, B. R. The biology of chromatin remodeling complexes, Annual Review of Biochemistry. 78, 273-304 (2009).
- Szerlong, H., Hinada, K., Viswanathan, R., Erdjument-Bromage, H., Tempst, P., Cairns, B. R. The HSA domain binds nuclear actin-related proteins to regulate chromatin-remodeling ATPases. Nature Struct. Mol. Biol. 15 (5), 469-476 (2008).
- Shen, X., Mizuguchi, G., Hamiche, A., Wu, C. A chromatin remodelling complex involved in transcription and DNA processing. Nature. 406 (6795), 541-544 (2000).
- Shen, X., Ranallo, R., Choi, E., Wu, C. Involvement of actin-related proteins in ATP-dependent chromatin remodelling. Mol. Cell. 12, 147-155 (2003).
- Chen, L., et al. Subunit organization of the human INO80 chromatin remodeling complex: an evolutionarily conserved core complex catalyzes ATP-dependent nucleosome remodeling. Journal of Biological Chemistry. 286 (13), 11283-11289 (2011).
- Sauer, B. Site-specific recombination: developments and applications. 5 (5), 521-527 (1994).
- Gorman, S., Fox, D. T., Wahl, G. M. Recombinase-mediated gene activation and site-specific integration in mammalian cells. Science. 251 (4999), 1351-1355 (1991).
- Jin, J., et al. A mammalian chromatin remodeling complex with similarities to the yeast INO80 complex. Journal of Biological Chemistry. 280 (50), 41207-41212 (2005).
- Cai, Y., et al. YY1 functions with INO80 to activate transcription. Nature Structural and Molecular Biology. 14 (9), 872-874 (2007).
- Yao, T., et al. Distinct Modes of Regulation of the Uch37 Deubiquitinating Enzyme in the Proteasome and in the Ino80 Chromatin-Remodeling Complex. Mol.Cell. 31 (6), 909-917 (2008).
- Brizzard, B. L., Chubet, R. G., Vizard, D. L. Immunoaffinity purification of FLAG epitope-tagged bacterial alkaline phosphatase using a novel monoclonal antibody and peptide elution, Biotechniques. 16 (4), 730-735 (1994).
- Barker, K. At the Bench: A Laboratory Navigator. 10, Cold Spring Harbor Laboratory Press. 207-245 (2005).
- Dignam, J. D., Lebovitz, R. M., Roeder, R. G. Accurate transcription initiation by RNA polymerase II in a soluble extract from isolated mammalian cell nuclei. Nucleic. Acids. Res. 11 (5), 1475-1489 (1983).