Summary
产生morphant胚胎的方法是必不可少的学习发展机制和基因调控网络。海星Patiria君子兰是这些研究的一个新兴的模型系统。在这里，我们提出了一个协议获得配子，胚胎生产的文化，并从该植物受精卵显微注射迅速。
Abstract
棘皮动物，长期以来就是繁殖和发展研究的最喜爱的模型系统，以及最近的基因调控和发育过程的演化的研究。海星，Patiria君子兰 ，是获得流行为这些类型的研究而以前进行几乎完全的海胆， 海胆紫石和Lytechinus斑的模型系统。这些模型系统的优点是易于制备改性胚胎中的特定基因或下调，标记细胞的一个群体，或引入报告基因。单一显微注射方法能够创建各种这样的修改胚胎的。在这里，我们提出了一个方法，从体育取得配子君子兰 ，产生受精卵，并经由显微注射引入扰动的试剂。健康morphant胚随后隔离GE的定量和定性研究NE功能。基因组和转录组数据，这个有机体的可用性增加了执行和便于执行它们的研究类型。
Introduction
海星，Patiria君子兰 ，（俗称蝙蝠星）正在成为一个有趣的和通用的模型系统，适用于各种细胞1-3，4,5发育，进化6-8和生态研究9-11。成人体育君子兰分布以及从锡特卡，阿拉斯加到巴哈加利福尼亚州12太平洋沿岸和海洋水族馆很容易维护。卵母细胞获得全年每一位女性能够摆脱鸡蛋数以万计。卵母细胞容易成熟，受精外部13。由此产生的胚胎是透明的，允许，便于观察;他们同步发展，并且只需要海水的发展。全基因组组装和多个转录，也可用于P。君子兰 （ Echinobase.org ）。这些优点使其非常适合各种研究与教学之用。
近年来，P.君子兰已成为发育的基因调控网络模型系统分析14-16。这些研究的目的是确定调节基因的整个称赞，并确定它们之间的相互作用的网络。这项工作的，需要通过引入反义寡核苷酸或体外合成的mRNA扰动的基因表达。此外， 顺式调控分析用于表征调节DNA 15的功能。这些分析需要引入扰动试剂和/或DNA报道构建成胚胎。此外，以表征这些扰动的下游作用，必须测定许多胚胎的变化的潜在靶基因的表达。对于数百受精卵的显微注射技术是核心对这项工作。
棘皮类动物，其中包括体育君子兰 从头通过显微注射。注射提供了一个机会来修改胚胎试剂不属于细胞渗透性。以下协议描述的方法引入DNA，基因，细胞示踪和吗啉反义寡核苷酸为数百个受精卵在一个2-3小时坐通过显微注射。这将产生足够的材料，适用于各种下游实验包括，但不限于，定量PCR， 原位杂交，RNA测序和Western印迹。
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Protocol
保留所有海水或人工海水（SW），成年动物，并且培养在15℃之多是实用的。确保鸡蛋和受精卵被浸在西南。
商业准备海盐再造用蒸馏水或反渗透水供应以及西南的来源。检查盐度用比重计，调整盐或水，以达到最佳的水平。保持1.020之间比重水平1.025。保留所有玻璃器皿和其他塑料制品实验室器皿分开，以避免化学物质的污染。清洁胚胎级实验室器具通过使用去离子水或稀次氯酸钠随后在水漂洗几次偶尔浸泡漂洗。
从Patiria君子兰成人1获取和成熟配子
- 选择一种动物来切除性腺。通过寻找卵巢或睾丸的存在决定切除术后性生活，因为体育君子兰是不是本身xually二形。
- 切一个小口，不超过1厘米时，沿海星手臂一边用手术刀片（ 图1A）。使用小钝端钳子拉回切口的边缘以访问性腺组织和拉性腺组织通过所述切口。
注意：避免拉出内脏组织，这是一个松散的灰色或褐色组织（ 图1B）。卵巢通常是橙色，黄色或浅棕色的（ 图1C），同时睾丸是白色或米色和当中断将导致海水成为在外观上（ 图1D）乳状或浑浊。 - 回到女性的水族馆。隔离男性的一两个小时在西南的容器，因为从处理压力可能诱发产卵。动物愈合沿切口部位，并继续提供配子几个月。
- 收集的睾丸到1.5ml的Eppendorf管中以尽可能少的SW尽可能并在冰上储存直至使用。存储任何睾丸不是我们版上收集的当天，在4℃下长达一个星期。
- 收集在一个小的玻璃培养皿卵巢在西南的几毫升。从卵巢组织释放卵母细胞，不是分裂组织有两对钳，直到没有大块依然存在。
注：最佳地，大部分的卵母细胞被充分开发。这样的卵母细胞是大的，圆的，并且澄清的黄色或浅棕色，在卵母细胞（ 图2A），一个独特的胚泡，相比于未开发的卵母细胞的体积更小，褐色，呈粒状，且不透明的（ 图2B）的子集。如果高于25％左右的卵母细胞是未开发的品种，选择不同的女性获得的卵母细胞。 - 倒入通过网状过滤杯的卵母细胞和组织剩余使用200微米的孔径，收集流过。这将包括卵母细胞的所有品种，但去除卵巢组织。从捕获过滤器通过喷射瓦特组织打跑剩下的卵母细胞从喷瓶第i西南。滤杯使用的是50ml锥形管（ 图3A-A“）进行。
- 通过倒入步骤1.6流通过100微米筛网过滤杯。舍弃小的卵母细胞在流过。大充分发展的卵母细胞是准备成熟会留在过滤器上。冲洗的卵母细胞到一个干净的200毫升烧杯中。
- 添加95毫升SW向卵母细胞中的200毫升玻璃烧杯中。加入5 ml的200μM1 - 甲基腺嘌呤为10μM的终浓度。
- 转移的卵母细胞中，以大量浅培养皿中并置于在15℃。高的表面积与体积培养皿允许氧气交换。卵母细胞并不成熟，也可以不发展好，如果他们过于拥挤在这个成熟的阶段。分成西南几盘加10 M 1-methlyadenine，直到文化是小于200的卵母细胞/毫升。
- 允许的卵母细胞成熟为45-90分钟，但不再因为这将使得无法成为卵母细胞˚Fertilized。要确定是否成熟是完整的，看的卵母细胞在解剖范围。对胚泡移动和熔断器与细胞膜成熟过程。然后将其分解，因此不再在成熟的卵母细胞（ 图2C）中可见。
2，施肥成熟的卵母细胞
- 在一个小的玻璃培养皿约1毫升的SW选择了一小簇睾丸组织中，大约豌豆大小，与剁碎的。
- 用巴斯德吸管2-3滴生成的乳白色海水转移到大约100毫升的成熟卵母细胞和晃动培养皿混匀。避免传输睾丸组织碎片。避免增加更大量的精子，因为这可能会导致多精受精和随后的扶贫开发。
- 几分钟后观察下解剖范围的卵母细胞。受精卵，或合子，有施肥的信封，这是一个明显的泡沫升起关闭CEL升膜（ 图2D）。
注意：不要进行培养，如果低于90％左右的卵子受精，因为可怜的受精率是一种不健康的文化，可能还没有发展很好的指示。 - 受精完成后，通过100μm的筛网过滤器浇注和漂洗入培养皿以新鲜SW改变对受精卵西南。它除去过量的精子，以防止氧饥饿是很重要的。将培养皿在15℃下15-30分钟。
3，德jellying和划船受精卵
- 通过从60×15毫米聚苯乙烯培养皿取盖准备注入的菜肴。
- 画上的菜的后面，周围的显微注射显微镜相匹配的视野面积永久性记号笔线。这确保了所有棱胚胎视显微镜视野内。
- 使用玻璃巴斯德吸管穿过圆P的得分线referably关闭的圆（ 图3B）的一侧上。使用此线后，打破注射针头（步骤4.5）。
注：试剂通常用于粘附海胆胚胎， 如硫酸鱼精蛋白或聚-L赖氨酸，是不必要的。德胶状体育君子兰受精卵坚持得非常好无涂层塑料。需要注意的是，他们不坚持好玻璃餐具。
- 添加周围10毫升SW每个培养皿，使得表面被覆盖，但水不会过于飞溅的菜，因为这可能会扰乱棱胚胎。
- 除去体育君子兰受精卵果冻大衣搭配酸申银万国之前，赛艇。这果冻大衣比观察模型海胆种类更加广泛。
- 制备酸SW在pH值4.0-4.2的范围内。 pH值是重要的，以允许有效地除去透明带的同时允许正常发育。
- 在西南添加单滴1 N（1米），盐酸申银万国的1升的股票。让每一滴完全混合和加入更多的HCl之前监测pH值。
注意：一至几毫升的盐酸结果在适当的pH值，但不一次性添加的整个体积。
注：准备1N的HCl的通风柜与SW和12 N（12米）的HCl。 - 通过浇注他们到100微米的网眼过滤器上的受精卵中取出西南。冲洗至200ml烧杯中，在西南可能的（约10毫升）的最小量。填充该烧杯高达150毫升酸SW（pH为4.0）和允许的受精卵坐在酸SW 3分钟。
- 也就是把它们来回两个200毫升的烧杯中的果冻剥去外衣从受精卵，经过200微米的筛网过滤过的受精卵各一次。通过5到10倍左右的过滤器在大约2分钟的时间窗口倒受精卵。
- 浇受精卵到100微米的网眼过滤器除去酸西南。冲洗受精卵到一个小的玻璃培养皿西南。德果冻受精卵可能会粘到塑料餐具。立即排胚胎;他们开始产生更多Ĵ伊丽大衣从而导致粘合性差的塑料餐具随着时间的推移。
- 用移液管嘴（ 图3C-C'）接受精卵从玻璃培养皿中，并将它们插入注射菜肴直线。熔融巴斯德吸管的薄侧的中心在火焰直到玻璃是软的。快速拉玻璃板的端部开以产生非常薄的拉伸玻璃。一旦玻璃很酷，撅着巴斯德吸管的小端（如需有关准备口吸管看到Wessel 等人 ，2004年17或甜等人 ，2004年18）。
- 做一个划船吸管使得直径只比胚胎的直径大，这样只有一个受精卵会进入和退出吸管的时间。这将允许单排形成。较小直径的吸管可以剥离包膜肥料，破坏受精卵为P.君子兰受精卵没有一个透明膜上第二是比较软。
- 如果受精卵没有坚持到塑料盘，让他们有更多的时间在酸性申银万国（可达数多钟）。另外一个更小直径的吸管可以帮助去除透明带，使受精卵能够更有效地坚持下去。
- 受精卵略有正浮力，而且往往浮动或只是悬停在培养皿底部上方。在这种情况下，使受精卵被轻轻地压在它们离开吸管（ 图3D）的培养皿的表面定位划船吸管。
注：这是允许的，以适应这些菜多P.行君子兰胚胎膜不会变得更难以穿透时间的推移，因此可以注入数百受精卵在单个盘。
4，注射受精卵
- 在终浓度准备注射液适当浓度的吗啉反义寡核苷酸（MASO），基因或DNA的entration 200毫米氯化钾。 400-800微米MASO和DNA的2.5纳克/微升往往会产生morphant表型，同时最大限度地减少毒性。在蛋中的最终浓度将是125,1 个起始浓度14。对于含有MASOs，热至65℃5分钟，注射溶液来使用，然后储存在室温下立即之前。
- 为了便于排序注射的胚胎中，添加罗丹明葡聚糖示踪剂的注射溶液，以获得0.1％的浓度。
- 通过在针拉仪器依照制造商的指示拉玻璃毛细管（1.0 mm外径×0.75毫米内径，100mm长）制备注射针头。适用于注射针头的海胆同样适用于海星，所以用类似的参数19。
- 装入约2微升注射液为使用microloader枪头注射针。
- 插入针的钝端插入米anipulator。设置picospritzer到100毫秒的脉冲，并在40 PSI的空气压力。
- 将划胚胎的菜到显微镜载物台，并拥有所有胚胎的视野。定向的盘，使得刻痕是在最靠近针头的侧面。定位针，在一个大约60°角，以便尖端附近的线的中间，并且只在水表面上方。
- 着眼于刻划线和降低针，直到针尖进入焦点。降低尖一点，打破它轻轻跑入得分线的脊开放。提高尖断菜的表面，并在受精卵的第一行的顶部位置，并专注于受精卵。
- 降低尖，这样它会刺穿合子的中心周围60度角进入。针很容易穿透体育君子兰受精卵。踩脚踏板（或者迫使材料从注射针的其它装置）上引入仁济的大丸剂ction溶液进胚胎。
- 瞄准丸剂是20-30％的胚胎的直径，或80之间25和PL。如果推注比这个更大或更小，调整注射的picospritzer的持续时间和注入下一个胚胎。继续调整的持续时间，以获得所需丸剂的大小。开始在100毫秒时间。如果大于大约200毫秒，需要引入相应的弹丸重断针。丢弃的针，如果小于15-20毫秒，才能获得这个弹丸大小的针头大小过大，可能打乱正常的发展作好准备一个新的。
- 继续注入剩余的受精卵在注射菜。胚胎可以容易地注入到切割开始和到第一切割后单卵裂球。定期提起水的表面上方的针以除去粘附在其针合子。如果有必要重新打破针的前端，或如果发生堵塞时加载新的针。
- 让胚胎在15℃培养在西南。保持高的表面积与体积的培养物，以允许氧气交换。确保胚胎不拥挤;保持培养物在等于或低于200个胚/毫升。根据胚胎的期望阶段，计划收集注射的胚胎在约20-24小时后受精。
注：这通常是一个理想的时间整理和收集，因为发育正常的胚胎很容易区分形态，但尚未游泳。 - 如果胚胎孵化，轻轻盐冲击，防止游泳。加入200μl5 M氯化钠10毫升的SW在注射盘中并轻轻摇动使西南。几分钟后，将胚胎将下降到培养皿的底部。收集这些，并将其移动到正常盐度西南。
- 收集在一个合适的荧光光源在injecti使用的示踪剂兼容注射的胚胎在解决方案。如果未使用的示踪剂，排序的胚胎以选择正常的形态。
- 用口吸管，吸取荧光的胚胎与西南的少量吹出来到一个小培养皿中充满了西南。理想口移液管具有足够大的开口，用于胚胎进出被拉而不损坏它们，但没有大到不希望的胚和外来SW也拉升。
- 一旦所有的所需胚胎已收集到新的培养皿，观察在荧光下的胚胎和除去任何未注射的胚胎或发育不良的胚胎。
- 文化分拣胚胎所需的阶段，孵化器，并进行影像或其他所需的协议。
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Representative Results
该协议的目标是引进试剂成胚胎。我们证明了通过注射的DNA报告构建，推动绿色荧光蛋白（GFP）表达的协议的有效性。注射的胚胎表达GFP的克隆斑块（ 图4A-B），是将DNA中的早期卵裂结合。许多试剂是希望引进胚胎在高数量和胚胎的次优批次有毒。毒性舱单，延迟发展，阻止发展中的早期卵裂或在受精卵阶段，或通过施加异常发展（ 图5A-C）。
从P.图1获得配子君子兰的成年人。 A）切除性腺做一个切口在手臂近端的边给动物。 乙从这个切口拉深褐色物质），中间是肠组织。避免拉肠组织，因为它会损害动物。℃）子房组织一般是橙色，如下所示，但也可以是黄色或浅棕色。D）的睾丸是白色或米色的颜色，如图所示。所有比例尺表示1厘米。
图2和成熟的卵母细胞受精。一）健康的卵母细胞是准备成熟的大而清晰的一个可见的胚泡。 二）卵母细胞是没有准备好成熟更小，棕色，木纹和外观。 三）已经成熟了1-甲基腺嘌呤卵母细胞。生发泡坏了。 四）由叔包围的受精卵ilization信封。E）避免培养物具有大的卵母细胞不能成熟，因为这些卵母细胞不会通过过滤除去。这样的卵母细胞是比在A.略小且暗棕色和木纹质感。 A中的比例尺是指50微米，代表规模为影像曝光。
图3的设备进行组装。 AA'）固定在50 mL锥形管网状过滤器。所述管和所述盖子的中间的锥形端被切掉以使培养物通过管和过滤器。B）由60×15毫米的聚苯乙烯培养皿的盖子构成的注射盘倒出。围绕中心画出的圆轮廓的视图的注射显微镜的字段，并作为划船胚胎的指南。 A线得分INT澳盘是打破注射针头非常有用。 消委会“）口吸管设置。适合喉舌成数英尺长的橡胶管的一端。适合的另一端，以巴斯德移液管，其中已形成了简要熔化并拉动玻璃。D的窄端）示意图展示了一个理想的划船巴斯德吸管的形状和宽度，以促进粘附而不破坏胚胎。当分断结束掉拉移液管的，它是有益的，如果端是锥形的，以防止出现受精卵从浮离盘。所有比例尺表示3厘米。
图4试剂成功通过显微注射引入。 A）和囊胚期胚胎注射了绿色荧光蛋白报告基因的DIC。胚胎具有正常形态。 二）绿色荧光蛋白expre裂变中答C中所示的胚胎）两种形态正常的囊胚期的胚胎。 四）在C一个胚胎的DIC图像发出从引进德州红葡聚糖红色荧光。另胚胎未注入具有无荧光。比例尺表示50μm左右。在比例尺代表的规模在C A和B的比例尺代表的规模为C和D。
图5 Overinjection和试剂毒性导致逮捕或异常发展。所有图片都是胚胎24小时注射后从同一注射批次。 机管局“）的overinjected受精卵的单细胞阶段被逮捕。BB'）胚胎被捕在早期卵裂。一个健康的胚胎将被分为对称，而这种胚胎被捕由于异常的细胞分裂。 消委会“）与疯狂异常的发展，由于毒性的胚胎。虽然这个胚胎的形状大致像一个囊胚的胚胎（D），它是不对称的异常增厚，DD'）一个合理开发注入囊胚期的胚胎。在比例尺是指50微米，代表规模为所有面板。
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Discussion
但是也有一些困难，这种技术的初学者，但对于成功创建morphant胚胎必不可少的两个关键步骤。首先是选择健康的卵母细胞，将成熟和受精正常。正常发展的一种文化的百分比取决于季节，动物的健康，以及卵母细胞已收获从单一个体的次数。卵母细胞往往是从四月到十月质量更好。仔细看看卵母细胞着手确保广大看起来像图2A，而不是图2B以前是很重要的。但也允许有少量的卵母细胞中，将没有成熟的，特别是如果它们足够小，以筛选出的卵母细胞中被处理的。偶尔，卵母细胞是未开发的几乎一样大，充分发展的卵母细胞是准备成熟。他们是区分他们的颗粒感，棕色涂色G（ 图2E）。不使用这种类型的卵母细胞中的批次，因为过滤不会从不发达的卵母细胞中分离出完全发育的卵母细胞，它们常常导致不正常的胚胎培养物更有可能表现出如图5所示的缺陷。
另一关键步骤是注射小丸的大小。引入扰动的试剂，其足够大，以发挥效果，但不能大到引起非特异性作用的量。第一次扰动试剂的使用，是有帮助的执行，其中若干浓度试剂被尝试了滴定。执行后续的显微注射用不引起那些无关的期望的表型，或延迟发展（ 图5A）的发育异常的最高浓度。避免注射大剂量大于30％的胚胎的直径，因为这可能会破坏正常的发展。过于小弹丸大小，通过共ntrast，难以目视检查是否有可能导致过大的范围横跨重复扰动的表型相一致的大小。
扰动的试剂可能导致在有效浓度范围内发育迟缓或不特定的表型。这是非常重要的，因此，要与良性试剂注入同级的控制，如一个标准的控制MASO，标准的DNA构建体，或若丹明示踪剂。分析morphant胚胎只有在这些控件显示正常发展。注射胚胎，包括控制，有时会表现出皱囊胚的表型，但他们将通过发展其他地区频繁的正常进行。此外，如果一个特定的试剂一贯导致发育迟缓在所得morphant胚胎，比较这些胚胎来控制胚胎，以确定它们是多少延迟的时间经历。
有此方法的一些属性，这些属性可能会限制以s为它的用处pecific实验方案。其中一个问题是，人们只能引入试剂的受精卵或早期卵裂阶段。这是特别成问题的，如果感兴趣的基因或通路是在早期的发展和所得morphant胚胎尤其关键是inviable或太发育异常的有意义的研究。有时候，这个问题是由注射剂扰动较少的拷贝，导致温和的，不完整的击倒解决。如果一个合适的细胞渗透性药物对靶基因或通路的存在，它是有帮助的，比较胚胎注射试剂在受精卵阶段与该药物在稍后的，更合适的阶段处理的胚胎的表型。由于注射MASOs或mRNA的提供了更大的特殊性，它更强大，结合使用此方法有药物治疗研究，而不是有利于药物治疗的放弃注射。
最后，虽然这种微注射法将产生的胚胎的足够量的用于各种下游应用，它会在最好产生几百至千健康，成功注入胚。一些所需的实验可能需要比这相当多的材料。在海胆系统成功地使用其他的方法可以被修改以创建更大的morphant海星胚胎，如泛嗜性逆转录病毒20的号码，虽然此方法是新的，还没有得到广泛使用。
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Disclosures
没有利益冲突的作者声明。
Acknowledgments
这项工作是由美国国家科学基金会的IOS 0844948和1024811的IOS支持
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1-Methyladenine | Acros Organics (Fisher Scientific) | AC20131-1000 | |
| 190 micron nitex nylon filter | Small Parts (originally Sefar) | CMN-0185-C/5PK-05 | |
| 100 micron nitex nylon filter | Small Parts (originally Sefar) | CMN-0105-C/5PK-05 | |
| Polystyrene Petri dishes, 60 mm x 15 mm | Fisher Scientific | FB0875713A | |
| Capillary tubing | FHC, Inc | 30-30-0 | For pulling microinjection needles |
| Model P-97 Needle Puller | Sutter Instruments | P-97 | |
| Dextran, Rhodamine Green | Life Technologies | D7163 | If injecting a GFP expression reporter, it is helpful to substitute Texas Red dextran as an injection tracer |
| Instant Ocean Sea Salt | Doctors Foster and Smith | CD-116528 | Also available in many pet stores |
| Microloader tips | Eppendorf | 5242 956.003 |
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