Summary
Ce film montre comment acquérir hémodynamique systémique et hépatiques chez les souris. Le tout suivi comprend l'acquisition des paramètres vitaux, la pression artérielle systémique, la pression veineuse centrale, débit de l'artère hépatique commune, et la pression de la veine porte ainsi que le débit de portail chez la souris.
Abstract
L'utilisation de modèles de souris dans la recherche expérimentale est d'une énorme importance pour l'étude de la physiologie hépatique et perturbations physiopathologiques. Toutefois, en raison de la petite taille de la souris, les détails techniques de la procédure de surveillance peropératoire adapté à la souris ont été rarement décrits. Auparavant, nous avons rapporté une procédure de suivi pour obtenir des paramètres hémodynamiques chez le rat. Maintenant, nous avons adapté la procédure pour acquérir des paramètres hémodynamiques systémiques et hépatiques chez la souris, une espèce dix fois plus petit que les rats. Ce film démontre l'instrumentation des animaux ainsi que le processus d'acquisition de données nécessaires à l'évaluation hémodynamique systémique et hépatiques chez les souris. Paramètres vitaux, y compris la température du corps, la fréquence respiratoire et la fréquence cardiaque ont été enregistrées tout au long de la procédure. Paramètres hémodynamiques systémiques sont constitués de la pression de l'artère carotide (PAC) et de la pression veineuse centrale (PVC). Paramètres de perfusion hépatiques comprennent portail vpression ein (PVP), le débit portail ainsi que le taux de l'artère hépatique commune (tableau 1) de flux. Instrumentation et acquisition de données pour enregistrer les valeurs normales ont été accomplies dans 1,5 h. Paramètres hémodynamiques systémiques et hépatiques sont restés dans les limites normales au cours de cette procédure.
Cette procédure est difficile mais faisable. Nous avons appliqué cette procédure pour évaluer l'hémodynamique hépatique chez des souris normales et de 70% pendant une hépatectomie partielle et en lobe de foie de serrage expériences. PVP moyenne après résection (n = 20), était 11,41 ± 2,94 cm H 2 O qui était significativement plus élevée (P <0,05) que avant la résection (6,87 ± 2,39 cm H 2 O). Les résultats de lobe de foie de serrage expérience indiquent que cette procédure de contrôle est sensible et adapté pour détecter de petits changements dans la pression portale et débit portail. En conclusion, cette procédure est fiable dans les mains d'un micro-chirurgien expérimenté, mais devrait être limité à experiments où les souris sont absolument nécessaires.
Introduction
L'objectif global de cette vidéo était de démontrer une procédure de suivi en temps réel pour l'acquisition de paramètres hémodynamiques systémiques et hépatiques. La justification de l'élaboration de cette procédure est sa grande valeur pour les interventions expérimentales chez la souris qui nécessitent l'obtention des paramètres hémodynamiques systémiques et hépatiques. Le procédé peut être appliqué à des animaux naïfs et pendant ou après une intervention chirurgicale expérimentale hépato-biliaire donné, comme une hépatectomie partielle, portail ligature de la veine et de la transplantation du foie.
Acquisition de données hémodynamiques hépatiques chez les rongeurs nécessite une procédure invasive proposé. Perfusion hépatique ne peut pas être obtenu de manière non invasive. Cependant, il existe des alternatives pour l'acquisition de la pression sanguine systémique. Les techniques de surveillance telles que la technique du manchon caudal 8 ont été utilisés pour l'acquisition de la pression artérielle chez le rat et la souris. La technique du manchon caudal peut être appliquée en souci du travail bienanimaux UO. Lors de la mesure de la pression sanguine, l'animal doit être placé et fixé dans une position inconfortable spécifique. Dans le manuel de l'appareil queue-manchette, le fabricant déclare que les souris peuvent devenir nerveux et stressé qui peut diminuer la circulation dans la queue. Sous ces circonstances, la pression artérielle périphérique acquise dans la queue peut être beaucoup plus faible que la pression sanguine centrale.
La procédure de contrôle complet a été effectué avec un moniteur intégré à canaux multiples en utilisant une série de capteurs pour l'acquisition de données. La pression artérielle a été obtenue par insertion d'un cathéter dans le vaisseau respectif après dissection minutieuse microchirurgical et exposition au microscope. La vitesse d'écoulement a été mesurée en plaçant une sonde d'écoulement transsonique autour de chaque récipient.
Nous avons déjà signalé une procédure similaire de surveillance peropératoire pour les rats résultant d'une série complète de données hémodynamiques physiologiques comparables à SINGLe Les données rapportées par les autres groupes 7. Par conséquent nous avons considéré cette procédure pour représenter une bonne base pour l'adapter à la souris, une espèce 10 fois plus petit que le rat. La principale différence de la procédure de rat est l'utilisation de cathéters Millar pour acquérir des données de pression artérielle au lieu d'un système à base de cathéter de fluide. Les données de flux ont été acquis avec des sondes d'écoulement transsonique, seulement beaucoup plus petits que pour les navires de rat correspondant.
En raison de la petite taille de l'animal, de l'instrumentation de la souris est techniquement difficile, mais réalisable. Une fois que l'instrumentation est terminée, l'acquisition de données et l'analyse de données de survie de base est simple, depuis un fichier d'un paramètre prédéfini peut être utilisé. Le fichier de configuration doit être définie une fois au début d'une série d'expériences et peut être stocké et utilisé pour toutes les expériences ultérieures.
Jusqu'à présent, nous avons appliqué cette procédure pour évaluer les effets hémodynamiques hépatiques dans des expériences aiguës. Nous avons mesuré CAP et PVP avant et immédiatement après une hépatectomie partielle de 70% (PH) et dans des expériences de serrage / de-serrage. Nous serré le ligament hépato-duodénal du lobe droit représentant 20% de la masse du foie suivie par une brève (5min) serrage de la médiane et le lobe latéral gauche représente tout à fait 90% de la masse du foie. De-serrage a commencé avec la libération de la pince du lobe droit puis en libérant la médiane et le lobe latéral gauche. Temps de serrage maximale était inférieure à 10 min.
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Protocol
Logement et toutes les procédures ont été réalisées en conformité avec la législation allemande bien-être animal.
1 Capteurs d'étalonnage (Suivre les instructions du fabricant pour les capteurs d'étalonnage)
1.1) calibrage Millar de cathéter. Faites tremper la pointe du cathéter dans l'eau stérile ou une solution saline pendant 30 minutes avant et d'étalonnage de l'équilibre (zéro).
- Connectez le capteur millar au canal de millar1 de l'amplificateur de pont et insérer l'extrémité du capteur millar dans la colonne d'eau.
- Réglez la valeur de la colonne d'eau à 0 cmH 2 O. Dans la fenêtre du logiciel d'analyse de données, choisissez pont amplifier et zéro il. La valeur de référence 0 cmH 2 O peut être réglé.
- Réglez la valeur de la colonne d'eau à 20 cmH 2 O. Exécutez l'analyse des données fenêtre du logiciel progrès, et de s'arrêter. Choisissez «unités» dans la fenêtre de pont amplifier, mettre la base de 0 et 20 cmH 2 O en conséquence. Réglez le "unité" à cmH <sub> 2 O.
- Calibrer le millar2 pour mesurer la PAC de la même manière (mettre deux lignes de base 90 et 110 cmH 2 O).
1.2) l'étalonnage de la sonde de débit sanguin
- Placez la sonde dans l'eau déminéralisée. Connectez la sonde avec transsonique système de sonde de débit.
- Dans la fenêtre du logiciel d'analyse de données, choisissez Entrée amplifier à zéro de la sonde de débit. Réglez les unités.
- Appuyez sur le bouton de «canal de test" pour recueillir le signal: si le signal a 3-4 barres, cela signifie que le signal est bon. Dans le cas où un bon signal est acquis, la procédure peut être poursuivie.
- Appuyez sur le bouton de "zéro canal" et le canal de l'échelle pour voir si la valeur a été calibré ou non.
- Appuyez sur le bouton de «mesurer canal" pour mesurer plus tard.
2 Préparer la souris pour la procédure chirurgicale
- Passer la souris dans une chambre d'induction et anesthésier la souris avec 2% d'isoflurane et0,3 ml / min d'oxygène. L'opération peut être effectuée si le pincement pincée réflexe de retrait de la souris est absent.
- Raser la fourrure des régions chirurgicales, qui comprennent le cou et l'abdomen gauche.
- Placez la souris sur la table d'opération et fixer à l'aide de bandes. Utilisez vétérinaire pommade sur les yeux pour prévenir la sécheresse au cours de la période d'exploitation.
- Placer un coussin de gaze sous le cou pour une exposition optimale de la zone de cou de fonctionnement.
- Désinfecter le domaine de l'exploitation et placer gazes stériles pour couvrir la souris ne laissant le champ opératoire ouvert.
3. paramètres vitaux mesure
- Insérer les aiguilles de l'ECG sous-cutanée dans les pattes de souris.
- Placer le capteur respiratoire sous le dos de la souris.
- Placer la sonde de température dans le rectum de la souris.
- température de l'enregistrement, l'ECG et la fréquence respiratoire de la souris dans le logiciel d'analyse de données.
4. cou Opération SSurveillance cardiovasculaire ystemic
4.1) dissection de navire
- Identifier la ligne médiane du cou, le point milieu de la clavicule, l'angle de la mandibule.
- Faire une incision longitudinale de 2 cm de l'angle de la mandibule au point milieu de la clavicule qui est de 0,5 cm sur le côté gauche de la ligne médiane.
- Disséquer la glande sous-maxillaire, retournez-le et couvrez-le avec une solution saline gaze imbibée.
- Identifier la veine jugulaire, disséquer et placer trois 6-0 sutures de soie sous la veine pour la ligature et la fixation ultérieure.
- Identifier le muscle sterno, le séparer du ventre supérieur de ventre omo-hyoïdien et postérieur du muscle digastrique, et tirez-le avec un enrouleur pour l'exposition facile de l'artère carotide.
- On dissèque l'artère carotide et placer trois sutures en soie 6-0 sous la ligature de l'artère et la fixation ultérieure.
4.2) Mesure de débit sanguin de l'artère carotide
- Placer le transsoniquesonder autour de l'artère carotide, le garder stable, et d'optimiser le contact en utilisant un gel ou une solution saline ultrasons.
- la vitesse d'écoulement du sang d'enregistrement de l'artère carotide, comme indiqué sur le petit écran du dispositif transsonique en utilisant un logiciel d'analyse de données
- Retirer la sonde après avoir terminé la mesure
4.3) mesure de la pression de l'artère carotide (PAC)
- Ligaturer l'extrémité distale de l'artère carotide et serrer son extrémité proximale.
- Placer deux sutures de fixation autour de l'artère carotide. Utilisez 10-0 prolène pour le séjour suture.
- Faire une petite incision sur la paroi antérieure de la cuve.
- Insérer le cathéter Millar et le fixer avec des sutures pré-placées.
- Enregistrer la PAC dans le logiciel d'analyse de données.
4.4) Mesure de débit sanguin dans la veine jugulaire
- Soulevez la veine jugulaire et placer la sonde d'écoulement transsonique pour mesurer le débit.
- Enregistrer la vitesse d'écoulement dans le logiciel d'analyse de données.
4.5) mesure de la pression veineuse centrale (CVP)
- Fixer l'extrémité proximale de la veine jugulaire et la ligature de l'extrémité distale.
- Couper une petite incision à l'aide microciseaux sur la paroi antérieure de la cuve.
- Insérer le cathéter rempli de liquide et le fixer avec les lignes de suture pré-placée.
- Notez le CVP dans les logiciels d'analyse de données.
5. opération abdominale pour l'acquisition de l'hémodynamique hépatique
5.1) Identification du navire
- Faire une incision transversale sur l'abdomen.
- Eventerate les intestins sur le côté gauche et couvrir avec de la gaze humide.
- Identifier la veine cave inférieure, la veine porte, l'artère hépatique commune et l'artère hépatique propre.
- Déposer une certaine saline chaude dans l'abdomen et à la surface de l'intestin toutes les 5 min pendant la procédure de suivi ensemble.
5.2) Mesure de débit sanguin portal
- Disséquer la veine porte.
- Passer soie 6-0 sous la veine porte afin de faciliter le levage de la cuve en plaçant la sonde d'écoulement.
- Placez la sonde d'écoulement transsonique autour de la veine porte et de mesurer son débit de sang.
- Enregistrer la vitesse d'écoulement du sang de la veine porte.
5.3) Mesure de débit commun de l'artère hépatique
- Disséquer l'artère hépatique commune avec prudence.
- Placer une suture en soie 6-0 dans le récipient pour faciliter le levage de la cuve.
- Placez la sonde d'écoulement autour de l'artère.
- Mesurer son flux de sang et d'acquérir les données.
5.4) Mesure de la pression de la veine porte (PVP)
- Choisissez une branche de la veine mésentérique avec peu de branches latérales, qui draine directement dans la veine porte.
- Ligaturer l'extrémité distale de la veine mésentérique sélectionné. Assurez-vous que la ligature est à proximité du tube intestinal. Ligaturer ses petites branches
- Placez 2 fixing sutures utilisant 6-0 prolène autour de la veine. Le point clé de cette procédure est d'éviter de toucher l'artère mésentérique quand ligature de la veine.
- Fixer l'extrémité proximale de la veine porte.
- Placez 2 sutures utilisant 10-0 prolène. Certains saignements se fera depuis le séjour suture doit pénétrer dans la paroi vasculaire de la veine mésentérique bien.
- Faire une petite incision sur la veine à l'aide d'un microscissor obliquement à un angle de 45 degrés.
- Insérer le cathéter Millar à travers la veine mésentérique dans la veine porte et le fixer
- Enregistrer la pression de la veine porte. A la fin de la procédure, de sacrifier les souris par exsanguination sous anesthésie.
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Representative Results
Paramètres vitaux de la souris, tels que la fréquence respiratoire et la fréquence cardiaque sont évidemment beaucoup plus élevé que chez le rat. Moyenne pression sanguine systémique et de la pression de la veine jugulaire sont similaires aux valeurs de rat et même proche de données humaines.
Données hémodynamiques hépatiques sont évidemment différentes. Nous avons obtenu les valeurs normales de 8 souris. Débit sanguin portal chez des souris normales variait de 1,6 à 2,3 ml / min. Circuler dans l'artère hépatique commune variait 0,10 au 0,35 ml / min. La pression de la veine porte chez des animaux normaux était dans la vaste gamme de 4,4 à 11,2 cm H 2 O à une valeur moyenne de 8,09 ± 2,47 cm H 2 O (tableau 1). Cette large gamme peut conduire à des petits mais pas de différences significatives lorsque l'on compare la valeur moyenne de petits groupes d'animaux normaux.
Depuis que nous avons observé des différences inter-individuelles considérables surtout dans la pression portail, nous avons testé si petites différences intra-individuelles peuvent être détectés avec cette technologienique. Nous avons évalué cette procédure dans deux contextes expérimentaux différents: hépatectomie partielle et le foie lobe de serrage / de-serrage. La pression portale avant et immédiatement après hépatectomie partielle 70% (n = 20) chez le même animal (Figure 1) a augmenté de 2 fois à partir de 6,87 ± 2,39 et 11,41 ± 2,94 cm H 2 O (P <0.001). Ces résultats sont du même ordre comme observé dans d'autres espèces 5,12 et également chez l'homme 7.
Pression de la veine normale et la pression portale avant résection ont été acquis auprès de deux groupes différents (l'un de la normale groupe de paramètres de contrôle, l'autre dans le groupe de PH de 70%). En raison de la large gamme de la pression portale chez des souris normales (4 à 11 cmH 2 O), les valeurs moyennes de petits groupes d'animaux peuvent être légèrement différentes, comme observé dans notre expérience (8,09 ± 2,47 cm H 2 O par rapport à 6,87 ± 2,39 cm H 2 O). Cependant, en analysant les données, nous avons constaté qu'il n'y avait pas statisdifférence tiquement significative entre ces deux groupes (p = 0,237).
Le serrage / expérience de serrage a été conçu pour démontrer que la procédure est assez sensible pour détecter même de faibles changements de la pression portale. Serrage du lobe droit représentant 20% de la masse du foie a entraîné une augmentation d'environ 17%. En outre le serrage de la médiane et le lobe latéral gauche a provoqué une augmentation d'au moins deux à trois plis par rapport à la pression portail départ. La pression portale est revenue progressivement à la pression de départ, lors de la libération de la pince du lobe droit résultant de serrage de 70% du foie. La pression revient à la valeur de départ lors du retrait de la pince de la veine porte gauche alimentant le lobe médian et latéral gauche (figure 2 et tableau 2). Le MAP du groupe opération fictive est resté stable dans 1h après l'ouverture de l'abdomen. Carte de souris dans le groupe témoin, obtenue au point de temps comparablecomme dans l'expérience de serrage, avait pas de différence significative par rapport à la MAP du groupe expérimental. Les résultats des deux expériences ont montré que même de petites variations intra-individuelle de moins de 20% ont pu être détectées avec cette procédure.
Complications typiques comme des saignements sévères et la congestion peuvent se produire au cours de la procédure. Depuis une perte de sang causerait diminution significative du PAM ainsi que PVP, les résultats des souris avec cette complication devraient être éliminées. Pour éviter la congestion veineuse et thrombose lors de l'exécution foie expérience lobe de serrage, nous vous conseillons de l'injection d'une petite dose d'héparine (500 U / kg) per-opératoire avant serrage. Artère hépatique commune peut subir un spasme des vaisseaux transitoire sur la manipulation comme la levée de la cuve et placer la sonde. Cela pourrait provoquer une brève ischémie transitoire du foie. En général, le spasme peut disparaître spontanément en quelques minutes. Un spasme vasculaire court dans la LCS ne pose pas un problème graveà la vie de l'animal, mais pourrait interférer avec les résultats expérimentaux, lors de la focalisation sur une lésion d'ischémie hépatique de reperfusion.
En conclusion, cette procédure est difficile mais faisable. Il exige une certaine formation, même pour les micro-chirurgiens expérimentés. En raison de la comparaison de la variabilité inter-individuelle élevée des données de pression obtenues dans différents animaux avant et après une intervention ne peut conduire à des résultats concluants. C'est pourquoi nous recommandons cette procédure pour étudier la régulation à court terme de l'hémodynamique hépatique dans des expériences aiguës par l'acquisition des données avant et après l'intervention dans le même animal.
| Paramètres | Données propres obtenus | Paramètres déclarés | |
| Paramètres vitaux | La fréquence cardiaque (n = 8) | 418 ± 55 BPM | 389 (353-566) BPM 1 |
| 162 ± 11 BPM | 254 ± 28 BPM 2 | ||
| Température (n = 8) | 33,56 ± 0,54 ° C | De 36,1 à 36,6 ° C 11 | |
| La pression artérielle systémique (CAP) (n = 8) | 130,54 ± 20,47 cmH 2 O (= 96,02 ± 15,06 mmHg) | 94 ± 15 mmHg 9 | |
| La pression veineuse centrale (CVP) (n = 2) | 8,90 ± 3,25 cm H 2 O | 5,9 ± 2,0 cm H 2 O 11 | |
| Hémodynamique hépatique | Flux de la veine porte (n = 6) | 2,03 ± 0,24 ml / min | 3.0 (2.5 à 3.1) ml / min 1 |
| 3,3 ml / min 1 | |||
| Flux commun de l'artère hépatique (n = 6) | 0,20 ± 0,09 ml / min | Pas fou e | |
| PVP (n = 8) | 8,09 ± 2,47 cm H 2 O (= 5,95 ± 1.82mmHg) | 5,3 ± 1,4 cm saline 3 | |
| 8,7 ± 2,1 mmHg 4 | |||
| 4mmHg 6 | |||
Tableau 1: paramètres hémodynamiques systémiques normaux et hépatiques de souris acquis à l'aide de cette procédure de suivi de la PAC:. Pression de l'artère carotide; MAP: pression artérielle moyenne; CVP: la pression veineuse centrale; PVP: pression de la veine porte.
Figure 1. PVP avant et après 70% PH. Pression de la veine porte avant et après 70% hépatectomie partielle (n = 20) étaient de 6,87 ± 2,39 et 11,41 ± 2,94 cm H 2 O.www.jove.com/files/ftp_upload/51955/51955fig1highres.jpg "target =" _blank "> S'il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.
| Paramètres (cm H2O) | Après laparotomie | Après serrage 20% de foie (RL) | Après avoir fixé à 90% de foie (RL + ML + LLL) | Après avoir fixé à 70% de foie (ML + LLL) | A la fin (libérer tous les colliers) |
| PVP - serrage groupe exp (n = 10) | 9,59 ± 4,00 | 10,45 ± 3,89 | 25,78 ± 8,99 | 16,91 ± 9,86 | 11.14 ± 4.48 |
| Moyenne PAC - groupe de serrage de exp (n = 10) | 121,50 ± 18,67 | 95,89 ± 32,76 | 74,41 ± 35,35 | 93,88 ± 42,96 | 89,44 ± 44,20 |
| Moyenne PAC - Sham groupe (n = 3) | 123,33 ± 12,42 | 121,0 ± 5,57 | 124,00 ± 8.66 | 127.33 ± 7.23 | 123,00 ± 8,89 |
. Tableau 2 réponse hémodynamique après le serrage et desserrage des différents lobes du foie (n = 10) RL: lobe droit, ML: lobe médian (y compris lobe médian droit et le lobe médian gauche), LLL: lobe latéral gauche.
Figure 2: réponse hémodynamique après le serrage et desserrage des différents lobes du foie (identification des animaux: CHI-108) A.. PVP juste après l'insertion du cathéter Millar était de 8,8 cmH 2 O. PVP après serrage 20% lobe du foie était de 10,8 cmH 2 OBPVP a augmenté à 17,5 cmH 2 O après serrage 90% lobe du foie. C. PVP a diminué à 10,3 cmH 2 O lors de la libération de la pince du lobe droit. D.PVP retourna à 8,7 cmH 2 S'il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.
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Discussion
Surveillance de l'hémodynamique hépatique est un important outil de recherche en hépatologie et chirurgie hépatobiliaire. Acquisition de données hémodynamiques hépatiques contribue à caractériser l'effet des procédures hépatobiliaires sur le système circulatoire. Acquisition de données hémodynamiques hépatiques est également nécessaire d'étudier l'effet de médicaments agissant sur la pression portale et flux portail, par exemple, au besoin dans les études d'évaluation des médicaments vaso-actifs.
Malgré la petite taille, les paramètres vitaux, systémiques et hémodynamique hépatiques peuvent être surveillés chez les souris. Les étapes critiques dans le protocole sont les suivants: Tout d'abord, il est important de placer l'animal sur un coussin chauffant pendant toute la procédure pour éviter l'hypothermie qui peut conduire à un dysfonctionnement circulatoire. Deuxièmement, il est important d'être très prudent lors de la dissection des vaisseaux d'une souris, car la paroi de la cuve de la souris est très mince et fragile. Il semble préférable de fixer la paroi de la cuve en saisissant une partie du tissu de graisse sur ee de surface au lieu de saisir la paroi de la cuve elle-même. Troisièmement, il est essentiel d'éviter la ligature accidentelle de l'artère mésentérique pour ne pas compromettre la vascularisation artérielle lors du placement des sutures de fixation autour de la veine mésentérique.
Cependant, la technique de mentorat invasive a quelques limitations. Le premier est son caractère invasif par lui-même. Cette technique de surveillance est un procédé invasif, ce qui nécessite une intervention chirurgicale. Par conséquent, la procédure de surveillance lui-même peut provoquer des effets indésirables pour les animaux. Par conséquent, nous n'avons utilisé cette procédure pour acquérir les paramètres hémodynamiques chez les animaux normaux et dans des expériences aiguës, mais pas dans les expériences de survie. Dans une étape suivante, on veut évaluer cette technique dans les expériences de survie. La seconde limitation de cette procédure est qu'elle nécessite de l'expérience de microchirurgie importante. Surveillance hémodynamique chez la souris doit être effectué uniquement par microchirurgiens spécialement formés. Le plus difficile part de cette procédure de surveillance est l'insertion du cathéter Millar dans la petite veine mésentérique, puisque cette veine est extrêmement fragile. Dans nos mains, à environ 10 opérations de formation ont été nécessaires pour un microsurgeon expérimenté avant la maîtrise technique de cette procédure. L'expérience a été définie d'avoir réalisé avec succès plus de 50 anastomose vasculaire (carotide, veine jugulaire) chez des rats ou des souris. La troisième limitation est que la pression de portail obtenu avec ce procédé peut être inférieure à la plage physiologique pour un animal normal. Ligature de la veine mésentérique et l'insertion du cathéter peut réduire le volume total de sang se déverse dans la veine porte pour un montant estimé à 10%. Cependant, cette gamme physiologique ne peut être acquise en utilisant les dispositifs actuellement disponibles. De même, l'effet de l'anesthésie se le PVP ne peut être exclue 13. Cependant, étant donné que tous les animaux sont soumis à la même intervention, l'erreur potentielle serait une erreur systématique. Par conséquent, data interprétation doit être faite avec prudence en se concentrant sur les changements relatifs dans un animal et pas nécessairement sur les différences absolues entre animaux.
Cependant, il ya peu de solutions de rechange à la surveillance hémodynamique invasive chez les rongeurs. La surveillance non invasive est limitée à l'acquisition de la pression sanguine systémique. La pression portale ou de flux de portail ne peuvent être déterminés de manière non invasive chez la souris. Suivi télémétrique est également limitée à l'acquisition de la pression artérielle systémique. Aucun rapport n'a été trouvé en ce qui concerne l'acquisition télémétrique d'autres paramètres hémodynamiques.
Cette procédure complète de surveillance peropératoire est nécessaire pour comprendre les processus physiologiques hépatiques tels que la régulation de la perfusion du foie, la régénération du foie et de la chirurgie hépatobiliaire exhaustive. La capacité de surveiller et de collecter des données d'animaux de laboratoire en peropératoire en temps réel représente donc une avancée significative dans l'étude de foie diSease et l'hypertension portale.
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Disclosures
Les auteurs déclarent qu'ils n'ont aucun intérêt financier concurrents.
Acknowledgments
Cette recherche a été financée par le Ministère fédéral allemand de l'Éducation et de la Recherche (BMBF) financé "Foie Virtual Network". Je tiens à remercier Frank Schubert et René Gumpert du centre des médias de l'Hôpital de l'Université d'Iéna pour leur aide dans la production de la vidéo et la création de l'animation et Isabel Jank pour l'enregistrement audio.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| PowerLab 16/30 | ADInstruments | PL3516 | |
| Quad Bridge Amp | ADInstruments | FE224 | Bridge amplifier |
| Animal Bio Amp | ADInstruments | FE136 | |
| Needle Electrodes for FE136 (3 pk) | ADInstruments | MLA1213 | |
| Perivascular Flowmeter Module | Transonic | TS420 | |
| Flowprobe MA0.5PSB/MA1PSB | Transonic | MA0.5PSB/MA1PSB | |
| SPR-1000 Mouse Pressure Catheter | Millar instruments | 841-0001 | |
| fluid filled catheter | Terumo | SR+DU2619PX | 26G, 0.64×19mm |
| micro scissors | F·S·L | No. 14058-09 | |
| micro serrefine | F·S·L | No.18055-05 | |
| Micro clamps applicator | F·S·L | No. 18057-14 | |
| Straight micro forceps | F·S·L | No. 00632-11 | |
| Curved micro forceps | F·S·L | No. 00649-11 | |
| needle-holder | F·S·L | No. 12061-01 | |
| 6-0 silk | ethicon | ||
| 6-0 prolene | ethicon | ||
| 7-0 prolene | ethicon | ||
| 10-0 prolene | ethicon | ||
| Tail cut-off device | Kent Scientific | www.kentscientific.com | |
| LabChart7 | ADInstruments | data analysis software |
References
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