Abstract
Burada akut beyin dilimleri hazırlanması için bir protokol mevcut. Bu prosedür büyük ölçüde sonuçların kalitesini belirler elektrofizyolojik yama-kelepçe deneyler için kritik bir unsurdur. Bu prosedür kesme sırasında soğutma aşamasının atlanması yetişkin hayvanlarda yüksek ölçüde miyeline beyin yapıları ile ilgili, özellikle, sağlıklı dilimleri ve hücreler elde etmek yararlı olduğu gösterilmiştir. Yüksek sıcaklık sadece üzerine speküle edilebilir sinir sağlığını destekler bu sayede kesin mekanizması, bu nedenle duruyor olsa da, mümkün, dilimleme gerçekleştirildiği sıcaklık sıcaklık ilgili eserler önlemek için fizyolojik koşullara yakın olmalıdır. Bu yöntemin bir diğer önemli avantajı, işlemin basitlik ve dolayısıyla kısa hazırlık zamanı. Gösterilen yöntemde, yetişkin fareler kullanılmaktadır ancak aynı prosedür genç farelerde hem de sıçanlarda ile uygulanabilir. Ayrıca, aşağıdaki yama clCo. deney yatay serebellar dilimler üzerinde gerçekleştirilir, fakat aynı prosedür, aynı zamanda, başka düzlemlerde gibi beynin diğer arka alanlarda kullanılabilir.
Introduction
Yöntemin amacı, özellikle yetişkin hatta yaşlı hayvanları kullanarak, in vitro elektrofizyolojik deneyler için yüksek kaliteli akut beyin dilimleri elde etmektir.
İki şık cümle içinde Skrede ve Westgaard 1 ile anlatıldığı gibi akut beyin dilimleme yöntemi, modern sinirbilim araştırma temellerinden biri haline gelmiştir ve dünya çapında sayısız varyasyonları kullanılmaktadır. Dilimlerinin kalitesi dilim başına canlı nöronlar arasında sayısı tarafından yansıtılır, zaman süresi sırasında, hücreler dokularının bütünlüğünün yanı sıra bunların elektrofizyolojik ve morfolojik özelliklerini korurlar. Ayrıca, sabit bir kayıt için maksimum süresi dilimlerin kalitesine bağlıdır. Bu nedenle, on boyunca, orijinal dilimleme yöntem ayrıca kesme bileşimin kompleksi modifikasyonları ile, genellikle 2-10, kesme sonrası bir dilim iyileşmeyi geliştirmek için tek tek grup tarafından geliştirilen O edilmiştirgibi soğutulmuş fizyolojik çözelti ile hayvanın kalp içi ön-perfüzyon (örneğin askorbat, thiourea ya da H2O 2 ekleme gibi) r-kurtarma çözümleri.
Son zamanlarda 11 Görüldüğü gibi, dilimleme sırasında fizyolojik sıcaklık nöronal sağlığı için soğutma daha yararlı gibi görünüyor; yetişkin (2-8 ay) kemirgenler ile çalışırken gelişme en çarpıcı. Büyük ısı değişiklikleri kaçınma nedeni, plastiklik 13 ve iyon kanalları kinetiği 13,14 gibi hücrelerde sıcaklığa bağlı süreçler, eserler önler. Bu tür değişiklikler membran voltaj ve hücre içi kalsiyum sinyalizasyon, başak eşiğini etkileyen ve şekil artabilir.
Burada sunulan "sıcak" akut dilim hazırlama yöntemi, herhangi bir beyin bölgesinden yüksek kaliteli akut beyin dilimleri elde beyincik, korteks ve hipokampus, beyin sapı 16 çekirdeklerin dahil olmak üzere genel bir prosedürdür </ Sup> yanı koku ampul gibi, hem sıçan ve farelerde.
Özellikle, fizyolojik sıcaklık dilimleme işlemi kesme bıçağı neredeyse mükemmel yatay titreşir ve herhangi bir yapısal kusurları olmaksızın olmasını gerektirir. Böyle hassas eski dilimleme makinesi modelleri ile ulaşılabilir olmayabilir; düşük sıcaklık metabolik sapmaları pahasına olsa bile, mekanik hasarlara karşı doku daha dirençli hale getirmek için görünüyor gibi durumlarda, biz Dondurucu soğuk koşullarda dilim hazırlık yapmak öneririz.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Bu protokol açıklanan tüm deneysel prosedürleri İbrani Üniversitesi Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından kabul edildi.
1. Dilimle için Çözümler ve Araçlar hazırlama
- Tablo 1 'de tarif edilen iyonu içeren standart bir fizyolojik çözelti (SPS) 1 L hazırlayın.
- Iyonu giderilmiş su (0.055 uS / cm'lik iletkenlik) 1000 ml ile dolu bir depolama cam şişe içinde önceden 10 kat nihai konsantrasyonda tuzlarını ihtiva eden bir stok çözelti hazırlayın. Tuzlar (NaCI, KCI, KH 2 PO 4 ve MgSO 4) ekleyin ve tümüyle çözülene kadar karıştırın. 4 ° C 'de stok solüsyonu saklayın.
- Deney gününde, nihai SPS çözeltisi olun. Manyetik bir karıştırma çubuğu kullanılarak glikoz (3.6 g) ve NaHCO3 (2.18 g) çözülür, saflaştınlmış su, 700 ml stok çözeltisi, 100 ml ilave edilir ve daha sonra 1 L üzere saflaştırılmış kadar su ekle
- Soluti dengeleyin~ üzerinde 20 dakika süreyle% 95 O 2 /% 5 CO 2 ile bunu soluyarak. Bundan sonra, 1 M CaCI2 çözeltisi 2 ml ilave ediniz.
- Aşağıdaki araçları (Şekil 1) birleştirin.
- Kafatasını açmak için büyük makas veya başları kesilerek başka bir araç, küçük cerrahi makas hazırlayın, beyin maruz beynin istenilen bölümünü diseksiyon için bıçak ile neşter kafatası kaldırılması için ince uçlu forseps dilimlenmiş ve işlenmesi için küçük bir spatula edilecek disseke beyin parçaları.
- Buna ek olarak, beyin fazla sıvıyı çıkarmak için filtre kağıdı küçük parçalar halinde hazırlanması, beyin için iki küçük Petri kapları için beyne yapıştırma ihtiva eden ısıtılmış saf su ve SPS ve siyanoakrilat yapıştırıcı için iki cam, 500 ml'lik çanaklar içinde disseke dilimleme sahne.
- Dilimleme ve kurtarma cha için dilimleme banyodan dilimleri hareket için geniş ağızlı cam Pasteur pipet sırasında dilimleri işlemek için küçük bir fırça hazırlayınmber. Sıcak dilim banyolarında bakteri üremesini engellemek için araçlarını dezenfekte edin. Ayrıca, temiz laboratuvar eldiven kullanın.
- Gibbs ve Edwards 15 tarafından tarif edildiği gibi bir yarı-kesit geri bölmesini hazırlayın. Sürekli% 95 O 2 /% 5 CO 2 ile o SPS gaz ve 36 ° C'de tutmak. Gazlaştırma dilimleri zarar verebilir banyosu içinde sıkışıp küçük kabarcıklar ile sonuçlanmaz emin olun.
- Sıcak ~ Manyetik karıştırıcı ile ya da bir su banyosu içinde bir ısıtıcı plaka üzerinde 36 ° C'ye kadar, SPS ve 300 mi. Bir ısıtıcı plaka kullanılırsa, iyon tortulaşması neden olabilir aşırı ısınmaya karşı çözüm önlemek için dikkat edin. Durumda, yerine eski bir soğutma sıcak taze SPS olur.
- Bir elektrikli su ısıtıcısı ile kaynatmak için saflaştırılmış su yaklaşık 500 ml getirmek ve bir beher içinde, dilimleme sıcaklığından biraz daha sıcak su elde etmek için soğuk suyla, 300 ml birleştirir. Bu, başı kesilerek sırasında saf su ısıtıldı kullanın remai kullanımıDaha sonra dilimleme banyonun fizyolojik sıcaklığı korumak için kaynamış su vaziyette.
- Intraperitoneal pentobarbital 0.1 ml (60 mg / ml) enjekte edilerek fare anestezi uygulayın. Birkaç dakika sonra hayvan duyu eksikliği tespit etmek için güçlü parmak veya kuyruk tutam yanıt vermez emin olun.
2. Beyin Diseksiyon
- Kafatasının arka yanında büyük makas ile boyun kesme hızlı bir şekilde fare başını kesmek ve kafa aşırı kan durulayın ısıtıldı saflaştırılmış su ile beher içine akmasına izin verdi.
- Belki küçük bir makas ile boyun daha kaldırarak, boyun kasları ve cilt altında kafatasında foramen magnum Açığa.
- Açıkça kafatasının açılmasına rehberlik etmek amacıyla kafatası sütür görmek mümkün kafatasının üstündeki deriyi çekin.
- Foramen magnum içerisinden küçük makas alt ucu takarak ve hemen yönünde çevirerek açık kafatası kestilateral yan. Yavaşça gözleri ve frontoparyetal sütür arkasında bir yere parietal kemik yukarı lateral kenarı boyunca kesilir; Daha sonra, (Şekil 2A yeşil kesikli çizgi bakınız) kafatasının merkezine doğru çevirin ve kafatasının diğer tarafına orta hat boyunca kesilir.
- Ince uçlu forseps kullanarak, (Şekil 2A sarı kesikli oka bakınız) beyin maruz yana frontoparie- köşesinden kafatasını kaldırın ve çapraz yukarı çekin ve. Kafatası kaldırıldığında beyin yerinde kalacak şekilde kafatası baş herhangi bir kemik veya deriye bağlı olmadığından emin olun. Beyin kafatası ile hareket halinde, kafatası ve beyin arasında herhangi bir bağ dokusunu kaldırmak için küçük bir makas kullanın.
- Beyin maruz kaldığı zaman, beyin kuru olması için izin yoktur. Kafatası ve ısındı ile dolu bir Petri kabındaki beyin tutarken Böylece, bir sonraki adımları uygulayın, SPS gazlandı.
- E için kullanılan beyin parçası ayırınbir neşter ve bir ıspatula kullanılarak beynin geri kalanından Xperiment. Beyincik kullanılması durumunda, (Şekil 2B-D kırmızı çizgilerde) midbrain ve pons aracılığıyla tek bir kesim tarafından ön beyin ayırmak ve taze içeren küçük bir petri taşımak, SPS gazlandı.
- Yatay düzlemde beyincik dilimleme sahne kesme beyin yapıştırma için geniş ve düz bir taban oluşturmak için beyin sapı çıkarın. Önbeyinden kesildi tarafı aşağıya bakacak şekilde kısaca filtre kağıdı ıslak parçasının üzerine beyincik yerleştirin.
- (Şekil 2B mavi çizgi ile belirtildiği gibi) bazı oluşturmak için bir neşter ile beyin sapı kesilmiş ve SPS beyincik dönün. Kesme diğer uçaklar gerektiğinde, buna göre beyincik bloğu (Şekil 2C-D mavi çizgiler) kırpın.
3. Beyin dilimleme
- O gün olduğu araştırarak kesme aşamasında hazırlayınry, sahnenin ortasında superglue küçük bir damla uygulamadan önce.
- Doğru tarafı yukarıya gelecek şekilde bir spatula ile SPS'den beyin blok kaldırın ve filtre küçük kâğıt parçaları kullanarak beynin herhangi bir aşırı sıvı kaldırmak. Sonra, tek bir hareketle, sahnede tutkal damla üzerine spatula beyni kaydırın.
- Kurutmadan beyin ve doku yüzüne kadar çalışan tutkal önlemek için, bir Pasteur pipeti ile SPS birkaç damla uygulamak ve dilimleme odası içindeki kesme aşamasını yerleştirin. Çevrede bulunan bölgeler (örneğin, serebral korteks) bıçak bakacak şekilde beyin blok hizalama ve böylece dilimlenmeden önce, mekanik basınç, en az miktarda maruz kalacaktır.
- Sürekli kesme odası içindeki SPS gazlanması olarak 34-37 ° C sıcaklık muhafaza edilirken, üreticinin talimatlarına göre her dilim. Extern doldurarak bu mesafeden kesme bölmenin sıcaklığını tutmakısındı saf su ve sıcaklığı çok düşük düştüğünde su değiştirme ile dilicisinin al odası.
NOT: dilimleme parametreleri deneysel olarak incelenmiştir ediliyor doku ve nöronların her türü için bulunması gerekir. Seramik bıçaklar ve serebellar Golgi hücreleri ile Campden SMZ 700 dilicisinin durumunda, 0.75 mm titreşim genliği 65 Hz ve 0,05 mm / sn hıza ilerleyen kullanın; serebellar çekirdek nöronlar daha yüksek genlik ve frekans (1 mm ile 90 Hz, sırasıyla), ve daha yavaş ilerleme hızı (0,01-0,02 mm / sn) için tavsiye edilir. Golgi ve serebellar nükleer nöronlar hem de, dilim kalınlığı 300 mikron olmalıdır. - Dilimleme sırasında dilimler kendi üzerine katlanmasına izin vermez. Yavaşça tercihen sadece deney için ilgi bölgelerinde dilim dokunmadan, yumuşak bir fırça ile destekleyerek bu önleyin. Vibratome bıçak dokunmadan gelen fırça önlemek için özen; Özellikle seramik bıçakları durumunda, hatta hafif bir temasbıçak zarar verebilir.
- Geniş ağızlı, yangın parlatılmış cam Pasteur pipeti kullanarak bölmeyi tutan / bir toparlanma dilimleme odasından her dilim taşıyın.
- Dilimler, deney başlamadan önce en az 1 saat boyunca oda içinde bekletin. Bu, hasar görmüş veya ölmekte doku ve hücrelerinin bozulması sağlar ve böylece temiz bir dilim yüzeyinin sonuçlanır. İlk saat boyunca, 34-36 ° C aralığı içinde oda içindeki SPS sıcaklığını tutmak; dilimleri dilimleri zarar ya da onları yüzer yapabilirsiniz hava kabarcıkları tarafından dokunulmaz değildir emin olun.
4. Deney
- 1 saat sonra, kurtarma bölmesi sıcaklığı RT (17-25 ° C) kadar soğumasını bekleyin.
Not: Bu dilimler bakteri büyümesini hem de hücresel metabolizmayı yavaşlatarak kullanılabilecek sırasında süreyi uzatabilir. Bu süre, beyin bölgesi ve hücre tipine bağlıdır. Örneğin, golgi yer alan bazı hücre türleri dilimleri sağlıklı olduğu bulunabilir8 saat diğer türleri ise kesim sonrası sadece 6 saat sürer. - 1 saat dilimleme geçtikten sonra çeşitli elektrofizyolojik deneyler için dilimleri kullanarak.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Tarif edilen şekilde hazırlandı dilimleri çeşitli elektrofizyolojik ve Optogenetic deneyleri için de kullanılabilir. Şekil 3A ve 3C olarak, sırası ile, diferansiyel girişim (DIC), optik altında kullanıldığında, yatay serebellar dilimi ve koronal beyin korteks dilim, temsili bir örneğini gösterir. Serebellar dilim, serebellar nöronların çeşitli türleri kolayca, kendi konum ve hücre vücut şekli kabul edilebilir elektrofizyolojik kayıtları hedefe yönelik. Şekil 3B ve 3D, örnek gösterilen kendiliğinden aktif serebellar Golgi hücresi ve kortikal piramidal hücreden akım kelepçe modunda tüm hücre yama-kelepçe kayıtları izleri. Sıcak-dilimli beyinlerinden elde edilen elektrofizyolojik ve Optogenetic kayıtlar kalitesinin başka örnekleri Huang ve Uusisaari 11 ve Lefler ve ark. 16 bulunabilir.
| konsantrasyonu [mM] | Ağırlık (g / l) | |
| NaCl | 124 | 72.5 |
| KCI | 3 | 2.23 |
| KH 2 PO 4 | 1.2 | 1.63 |
| MgSO 4 * 6H H2O | 1.9 | 4.3 |
| Glikoz | 20 | 3.6 |
| NaHCO3 | 26 | 2.18 |
| CaCl2 | 2 | 1,109 |
Standart fizyolojik çözelti Tablo 1. kompozisyon.
Araçları 1. Düzenleme Şekil. 1. Büyük makas, 2. Küçük cerrahi makas, bıçak # 11 3. Neşter, 4. Güzel ucu forseps, 5. Küçük spatula, 6. Küçük petri, deiyonize su için 7. Cam beher, ısıtılmış gasse 8. Cam beherd fizyolojik çözüm, 9. Süper yapıştırıcı, 10. İnce fırça, 11. Pasteur pipet 12. Küçük şırınga, 13. Pentobarbital, 14. Filtre kağıtları, 15. Kesme sahne.
. Beyni açığa kafatası açılmasını tasvir Şekil 2. kafatası ve beyin diseksiyon şematik gösterimi (A) Çizim (B - D). Üç büyük dilimleme uçaklar için beyin kesme düzlemleri açıklayan şematik çizimleri. Mavi çizgi beyin üzerine yapıştırılmış olacak, üzerine düzlemi temsil eder.
Şekil 3, yöntemin Örnek sonuçlanır. (A), yatay bir serebellar dilim Ogösterdi yöntemi ile btained. Üç serebellar korteks ana tabakaların (granül hücre tabakası, KR tabakası; Purkinje sinir tabaka PN tabakası, moleküler tabaka ML) ve beyaz bir madde (WM) gösterilir. Bir yama-kelepçe elektrot şematik bir Golgi hücresi (GOC) (Ölçek çubuğu: 40 mikron) üzerine çizilir. (B) örnek kayıt akım kelepçe bir yama-kelepçe elektrot ile elde edilir A'da gösterilen Golgi hücreden kayıt modu. (Siyah yılında altı gri izleri dışarı temsilcisi iz). (C) koronal serebral kortikal dilim gösterdi yöntemi ile elde edilmiştir. Kortikal piramidal hücreleri yama-kelepçe elektrot şematik bir çizim ile birlikte gösterilmiştir. (D) örnek yama kelepçe kayıt, cari kelepçe modunda, (C) 'de gösterilen piramidal hücreden. Dan tıklayınız bu daha büyük bir versiyonunu görmek için rakam.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Bu fizyolojik yerine buz soğukluğunda sıcaklık farelerden akut beyin dilimleri hazırlamak için bir yöntem göstermektedir.
Bu, soğuk koşullar ile hazırlananlar ile karşılaştırıldığında, sıcak koşullarda elde edilen dilimlerin kalitesi yüksek olduğu 11 gösterilen dilimleyici bıçak düşük dikey titreşimi sahip olması koşuluyla edilmiştir. Fizyolojik sıcaklık dilimleme gibi tek hücreli anormalliklerin yanı sıra ağ davranış tezahür edebilir metabolik süreçlerde 17-19 değişikliklerle ilgili olanlar gibi düşük sıcaklık nedeniyle fizyolojik eserler, önleyebilir. Ayrıca, dilimleme prosedür besbelli gereksiz gecikmeler olmaksızın tamamlanması gerektiğini bile, çözümler çok sıcak haline gelmeden kesim bitirmek için buz-soğuk koşullarda dilimleme zaman olduğu gibi (dilimleme ile acele, ve önlemek için gerek yoktur dokusunun uzun süreli donma hasarı). Böylece, yavaş kesme hızları bize olabilired. Bu çok hassas yapıların dilimleme durumunda yararlı olabilir. Son olarak, her iki çözeltilerin ve beynin soğutma aşamasının atlanması anlamlı prosedürüyle yanı sıra karmaşıklığı için gereken süreyi azaltır. Buzla soğutulmuş sıcaklık derecesinde solüsyonun soğutulması deney kendisi daha uzun süre bırakarak, fizyolojik sıcaklığa çözeltinin ısınma göre yaklaşık 40 dakika daha fazlasını gerektirir.
Bu 0 ° C olarak kesim ile karşılaştırıldığında 20 ° C olarak kesilmiş dilimlerin muayenesinde, GAD67 GFP farelerde kortikal nöronlarda floresan yoğunluğu daha güçlü olduğu 20 gösterilmiştir. Bu da buz gibi soğuk sıcaklık dilimleme nöronlarının canlılığı üzerindeki etkilemeli zararlı uyguladığı olduğu görüşünü desteklemektedir. Diğer taraftan, aynı makalede bu floresan nöronların yoğunluğu 20 ° C 'de kesme ile karşılaştırıldığında 37 ° C sıcaklıkta elde edilen dilimlenmiş indirgendi olduğu gösterilmiştir. Sonuçları ile tartışma ARI olabilirz-sapma düşünceler altında alınmış bir karar olmadığı gerçeğinden se. Yukarıda belirtildiği gibi, z-saptırma kanadın kalitesi ve hız ve dilimleyici diğer ayarların yanı sıra, fizyolojik sıcaklık dilimleme doku kalitesi üzerinde büyük bir etkiye sahiptir.
Işlemin en önemli yanlarından biri, dilimlenmeden önce dilimleyici bıçağın ince ayar içerir. Dilimleme olası katı lipid zarların "cracking" dikey hem de hem yatay kesim içeren buz soğukluğunda çözümler kullanıldığında farklı olarak, fizyolojik koşullar altında, z-doğrultusunda dilimleyici kanadın herhangi bir hareketi dokuda hasar görmesine neden olur. Bunu en aza indirmek için, bıçak gibi sert ve düz mümkün olmalıdır; Bizim deneyim, konvansiyonel tıraş bıçakları kullanılabilir olması için çok kusurları var. Özellikle Vibratome kullanım için tasarlanmış yüksek kaliteli paslanmaz çelik bıçaklar daha iyi, ama en iyi sonuçlar için biz tek eğimli Ceram önermekic bıçaklar. Ayrıca, şiddetle bu doğrudan dilim kalitesini etkileyen bıçakların mükemmel yatay hizalama için önemli zaman harcama öneririz. Biz z düzlemde titreşim az 0,5 mm olan ve böylece bıçak hizalama ayanna olanak tanır Campden 700SMZ dilimleyici kullanın. Nitekim, sıcak dilimleme yöntemi en önemli sınırlama dilimleme makinesi bıçak kalitesi ve istikrar üzerine bağımlılığıdır. Bu zorunluluklara uyulmadığı edilemiyorsa, bu tür kısmen dondurulmuş olmaktan osmolaritesini değişen gibi buz gibi soğuk çözeltisi içinde dilimleme dezavantajları rağmen, yerine geleneksel buz-soğuk kesme yöntemi kullanmanız önerilir.
Gösterilen bir yöntem olup, beyincik yatay dilimler elde etmek için kullanılır; veya orta beyindeki yanı sıra beyin - basit değişiklikler ile aynı yöntem birçok önü bölgelerinden, koronal ve sajital düzlem ya da dilimleri almak için de kullanılabilir. Ön beyin ve olfact en ön parça dilimORY sistemi, kafatası bu parçaların zarar görmemesi için daha fazla ön kesilmelidir. Biz kasıtlı olarak basit ve mümkün olduğunca kısa yöntemini tutmak ve hayvanın ön-perfüzyon istihdam yok, ne de biz kesim için fizyolojik çözelti herhangi bir bileşeni yerine yok. Bu yöntem, ilgilenilen spesifik sinir hücresi alt tipine göre değiştirilmesini mümkün kılar. Bu kesme çözeltiler (Giriş bölümünde referanslarda tarif edildiği gibi) ve modifikasyonlar, sonuçların dilimlerin yaşayabilirliği ve dayanıklılığını geliştirmek kolayca sağlanabilir. Genel olarak, bu yöntem genel olarak elektrofizyolojik kayıt için kullanılan diğer pek çok yaygın fizyolojik çözeltiler ile uyumlu olması gerekmektedir.
Burada gösterilen yöntemde, dilimler, 300 mikron kalınlığında kesilir. Optimal dilim kalınlığı dilimlenmiş beyin bölgesi ve ilgi hücreleri bağlıdır. Ağ bütünlüğü değerlendirmeler için, dilimleri daha ince, 250 mikron, çünkü difüzyon sınırlamaları kadar olmamalıdilim kalınlığı sınırı başına ~ 400-450 mikron.
Dokuda hatta küçük istikrarsızlık pürüzlü veya kullanılamaz dilimler neden olabilir bu yöntemde kritik bir adım, kesme aşamasına beyin yapıştırma görmektedir. Böylece, bakım o tutkal damla üzerine düştüğü zaman beyin yüzeyinin herhangi bir aşırı SPS olduğundan emin olmak için alınmalıdır; Ayrıca, çok fazla tutkal beyin sahnede dengesiz yatan ve muhtemelen dilimleme sırasında sahneden ayrılmakta neden olacaktır. Ayrıca, fazla tutkal bıçak zarar verebilir, dilimler halinde homojen olmayan dahil etmelerine ek olarak, doku tarafta sürünme ve olabilir.
Gösterdi sıcak yöntemine buz yöntemi dilimleme protokolü değiştirirken artabileceğini birkaç zorluklar vardır. Zorluklardan biri dilim bakterilerin ortaya çıkmasıdır. Bu nedenle, bu araçlar, bölme ve prosedürün önceki gibi etanol ile dilimleme banyo dezenfekte etmek önemlidir. Ayrıca, torna1 saat sonra geri kazanım banyosu içinde ısıtma sistemi dışı bakteri gelişimini yavaşlatır.
Son olarak, fizyolojik sıcaklık kesilmiş dilimler halinde nöronların gelişmiş sağlık da kendi içsel özelliklerinde değişikliklere neden olabilir vurgulanmalıdır. Bu nedenle, bu deney, soğuk yöntem kullanılarak yapılan daha önceki çalışmalar ile daha uzun bir projenin parçası, özellikle, soğuk ve sıcak bir metod ile dilimlerden elde edilen sonuçların bir ilk karşılaştırma yapmak için tavsiye edilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Pentobarbital | CTS | 170066 | Concentration: 60 mg/ml in physiological saline. |
| Big scissors | FST | 14001-16 | Any large scissors or a guillotine with sufficiently sharp edges can be used for decapitation |
| Iris scissors | Prestige medical | 48,148 | Any fine tip scissors can be used, provided the scissor blades are not longer than 1.5–2 cm |
| Fine tip forceps | FST | 11254-20 | |
| Scalpel | FST | 91003-12 | |
| Scalpel blade #11 | FST | 10011-00 | |
| Small spatula | Fisher | 2350 | |
| Filter paper | Any laboratory brand can be used. | ||
| Petri dishes | Duroplan | Z231509-1 | |
| Glass beakers | SCHOT | 10022846 | |
| Pasteur pipette | Maple Leaf Brand | 14672-029 | |
| Super glue | LOCTITE | 4091361/1 | |
| Slicer | Campden | 7000-smz | |
| Ceramic slicing blade | Campden | 7550-1-C | |
| Magnetic heater/stirrer | For heating up the SPS for the procedure | ||
| Electric kettle | For heating up water for temperature control | ||
| Slice recovery chamber + heating unit | Warner instruments | BSC-HT + BSC-BUW | Home-built models may also be used. |
| Thermometer | For monitoring SPS temperature during dissection and slicing |
References
- Skrede, K., Westgaard, R. The transverse hippocampal slice: a well-defined cortical structure maintained in vitro. Brain Research. 35, 589-593 (1971).
- Aghajanian, G., Rasmussen, K. Intracellular studies in the facial nucleus illustrating a simple new method for obtaining viable motoneurons in adult rat brain slices. Synapse. 3, 331-338 (1989).
- Gueritaud, J. Electrical activity of rat ocular motoneurons recorded in vitro. Neuroscience. 24, 837-852 (1988).
- Lipton, P., et al. Making the best of brain slices: comparing preparative methods. Journal of Neuroscience Methods. 59, 151-156 (1995).
- Richerson, G., Messer, C. Effect of composition of experimental solutions on neuronal survival during rat brain slicing. Experimental Neurology. 131, 133-143 (1995).
- Brahma, B., Forman, R., Stewart, E., Nicholson, C., Rice, M.
- Moyer, J. R., Brown, T. H. Patch-clamp techniques applied to brain slices. In: Patch-clamp analysis: advanced techniques. Springer. , 135-193 (2002).
- Ye, J. H., Zhang, J., Xiao, C., Kong, J. Q. Patch-clamp studies in the CNS illustrate a simple new method for obtaining viable neurons in rat brain slices: glycerol replacement of NaCl protects CNS neurons. J. Neuroscience Methods. 156, 251-259 (2006).
- Bischofberger, J., Engel, D., Li, L., Geiger, J., Jonas, P. Patch-clamp recording from mossy fiber terminals in hippocampal slices. Nature Protocols. 1, 2075-2081 (2006).
- Zhao, S., et al. Cell type–specific channelrhodopsin-2 transgenic mice for optogenetic dissection of neural circuitry function. Nature Methods. 8, 745-752 (2011).
- Huang, S., Uusisaari, M. Y. Physiological temperature during brain slicing enhances the quality of acute slice preparations. Front. Cell. Neurosci. 7, (2013).
- Ohe, G. C., Darian-Smith, C., Garner, C. C., Heller, H. C. The Journal of Neuroscience. 26 (41), 10590-10598 (2006).
- Voets, T., et al. The principle of temperature-dependent gating in cold- and heat-sensitive TRP channels. Nature. 430, 748-754 (2004).
- Coulter, D. A., Huguenard, J. R., Prince, D. A. Calcium currents in rat thalamocortical relay neurones: kinetic properties of the transient, low-threshold current. The Journal of Physiology. 414, 587-604 (1998).
- Gibb, A. J., Edward, F. A. Patch clamp recording from cells in slice tissues. Microelectrode Techniques: the Plymouth workshop handbook. , 2nd edition, Company of Biologists. Cambridge, UK. (1994).
- Lefler, Y., Yarom, Y., Uusisaari, M. Y. Cerebellar Inhibitory Input to the Inferior Olive Decreases Electrical Coupling and Blocks Subthreshold Oscillations. Neuron. 81 (6), 1389-1400 (2014).
- Bourne, J. N., Kirov, S. A., Sorra, K. E., Harris, K. M. Warmer preparation of hippocampal slices prevents synapse proliferation that might obscure LTP-related structural plasticity. Neuropharmacology. 52, 55-59 (2007).
- Kirov, S. A., Sorra, K. E., Harris, K. M. Slices have more synapses than perfusion-fixed hippocampus from both young and mature rats. J. Neurosci. 19, 2876-2886 (1999).
- Kirov, S. A., Petrak, L. J., Fiala, J. C., Harris, K. M. Dendritic spines disappear with chilling but proliferate excessively upon rewarming of mature hippocampus. Neuroscience. 127, 69-80 (2004).
- Tanaka, Y., Tanaka, Y., Furuta, T., Yanagawa, Y., Kaneko, T. The effects of cutting solutions on the viability of GABAergic interneurons in cerebral cortical slices of adult mice. J. Neurosci. Methods. 171, 181-125 (2008).
