Abstract
怀孕的特点是在生殖组织,并在母胎界面白细胞(底蜕膜及蜕膜顶叶)的渗透。此接口是母体和胎儿组织之间的接触解剖位置;因此,它是作用在怀孕期间免疫位点。白细胞浸润在母胎界面起到交付的植入了核心作用,维护妊娠和时序。因此,这些白细胞的表型和功能性的刻画将提供洞察导致怀孕紊乱的机制。有几个协议,以隔离从蜕膜和蜕膜顶叶白细胞浸润了说明;然而,由于缺乏在试剂,酶和孵化的时间一致性使得难以比较这些结果。本文描述的是一种新的方法,结合使用温和的机械和酶迪斯引产技术,以保护细胞外和细胞内标志物的可行性和完整性白细胞从在母胎界面的人体组织中分离。除了免疫,细胞培养和细胞分选,这个协议的未来的应用是多种多样的。按照此协议,分离的白细胞可用于确定DNA甲基化,靶基因的表达, 在体外白细胞功能( 即 ,吞噬作用,细胞毒性,T细胞增殖,和可塑性, 等 ),以及生产的活性氧在母胎界面。此外,使用所描述的协议,该实验室已经能够描述新和罕见的白细胞在母胎界面。
Introduction
怀孕的特征在于三种不同的免疫学阶段:1)植入并用促炎症反应相关的早期胎盘( 即 ,植入类似于一个“开放性伤口”); 2)孕中期和孕大部分的孕晚期时免疫稳态通过主要是消炎的状态在母胎界面实现; 3)分娩,促炎症状态1-7。免疫细胞在母胎界面发挥在炎症反应的调节中起重要作用,他们的丰度和在整个孕期6-9本土化的改变。
在人类中,母胎界面代表了母性(蜕膜)和胎儿(绒毛膜滋养层或)组织之间的直接接触面积。该接口包括:1)蜕膜顶叶的行宫腔未包括的胎盘和是并列以绒毛膜绒毛的;和2)的底蜕膜,位于它是由间质滋养层10( 图1)侵入胎盘的基板。接触的这些区域的亲密创建胎儿抗原暴露于母体免疫系统11-13的条件。不足为奇的是,白细胞包括多达蜕膜细胞8,9,14,15 30-40%除了典型的基质型细胞和腺细胞8,14,16。白细胞在母胎界面的作用涵盖了包括滋养细胞浸润17的限制,螺旋动脉18,19的重塑,维护产妇宽容12,20和劳动力21-26启动多个进程。两者的适应性和免疫系统, 即 ,T细胞,巨噬细胞,中性粒细胞,B细胞,树突细胞,和NK细胞,已在蜕膜组织确定了先天四肢,以及它们的白细胞比例和激活状态已示出,以改变空间和时间整个妊娠期6-10,12,14,24,27-30。在白细胞种群和/或功能的扰动与自然流产31,先兆子痫32,宫内生长受限32,33,和早产7,24相关联。因此,在人类母胎界面的表型特征和白细胞功能的研究将有助于失调在怀孕紊乱的免疫途径的阐明。
一种用于确定表型和白细胞的功能特性被流式细胞术的最有力的工具,技术,允许多个参数同时34-36的定量分析。分析白细胞通过流式细胞术,在单细胞悬浮液中的白细胞的隔离是必需的。因此,一个方法来分离浸润亮氨酸从母胎界面kocytes是需要研究其表型和功能特性。
几种方法已经被描述,从人类母胎界面10,14,25,27,37-39隔离白细胞。虽然一些应用机械分解10,25,27,38,别人用酶消化37,40进行组织分离。因为机械解聚产生较低产量和降低的生存力41,和酶解可影响生存力和细胞表面标记物保留42,本文所描述的方法结合温和机械解离与酶预处理,以增加分离的白细胞的产量而不影响细胞生存力。方法类似的组合已经被证明是有效的,从在母胎界面39蜕膜组织白细胞的隔离。因此,本文描述的协议涉及机甲nical分解与自动组织离解,增加一致性,同时节省时间和劳动时与反对手术刀,刀片,或手术剪10,28比传统的切碎。选择用于组织解离酶是的Accutase。不同于常用的胶原酶43,分散酶44,和胰蛋白酶45的Accutase(细胞分离液)结合了一般的蛋白和有助于高效而温和的解离46,47胶原溶解活动。解离后,将白细胞从蜕膜细胞通过密度梯度离心的总人口富集。各种密度梯度介质先前已经利用,其中最常见的是珀(胶体二氧化硅粒子的悬浮液)48和聚蔗糖(蔗糖的具有高合成分子量的聚合物)49。隔离的蔗糖聚合物的卓越效率一直previously所示50,和本文中进一步描述的方案证明该密度梯度介质能产生单核白细胞的足够高的纯度。
因此,本文描述的协议相结合的机械组织分解用自动组织离解,酶消化用细胞分离溶液,并用密度梯度介质(1.077 + 0.001g /每毫升)以分离从人蜕膜白细胞白细胞的分离。该协议已经被证明维持细胞表面抗原连同细胞活力。分离的白细胞可用于多种应用,包括免疫流式细胞仪和体外功能研究。
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Protocol
该协议适用于由底蜕膜及蜕膜在顶叶准备免疫流式细胞仪检测白细胞隔离。此外,可用于细胞分选,细胞培养,RNA分离和细胞学分离的细胞。与之前在此协议中提到的样品的工作,人类伦理委员会批准,必须从本地研究伦理委员会和伦理审查委员会获得的。收集和利用人力样本用于研究目的的批准了儿童健康和人类发展(NICHD)的尤尼斯·肯尼迪·施莱佛国立研究所的机构审查委员会,健康(NIH)全国学院,健康与人类服务部(DHHS ,贝塞斯达,MD,USA)和韦恩州立大学(底特律,MI,USA)。书面知情同意从所有孕妇之前组织样本的采集获得。
注意:当有动物血,细胞,或危险工作代理的OU中提到这个协议中,很重要的是正确的生物安全和实验室安全行动应遵循。
1.解剖人类蜕膜的
注:基板是下方并附着到胎盘底座和表示母体的表面。该chorioamniotic膜包括羊膜和绒毛膜。基底板包括蜕膜和绒毛膜包括蜕膜顶叶( 图1)。
- 底蜕膜
- 从胎盘( 图1A和1B)中的一个子叶解剖一块基底板。
- 将其放在无菌砧板与朝上胎盘绒毛。侧面显示了胎盘绒毛通常是血淋淋的红色外观毛茸茸的组织。基底板是平滑和颜色淡红色。
- 用锋利,细点的剪刀和镊子除去VILLOU中组织和血管。保持浸泡在1×PBS中的组织的过程中( 图1C)中( 钙 -自由-和Mg 2+)。收集2-3这些片和用1×PBS彻底冲洗以除去血液( 图1D)。
- 蜕膜顶叶
- 解剖一块chorioamniotic膜(约10厘米×10厘米, 图1E)。将它放置在黑板上用绒毛膜朝上。绒毛膜侧包含血腥和血块通常是淡黄色的颜色。
- 用细点钳去除尽可能多的血块为可能的( 图1E)。冲洗该膜在无菌的1×PBS清洗过量的血液从该膜,直至1×PBS中运行清楚。
- 使用一次性无菌细胞刮至轻轻刮去从膜的蜕膜层。应用无菌1X PBS的纪念品brane而完成这个过程( 图1F)。收集蜕膜组织,并放置在50毫升的塑料管,用无菌1X PBS( 图1G)。
2.机械解聚和酶消化
- 在50ml塑料管中洗,用无菌的1×PBS从蜕膜(来自步骤1.1.3)解剖组织或蜕膜顶叶(来自步骤1.2.3)。通过离心收集组织粒料在300×g离心5分钟,在RT。
- 吸位于高于组织沉淀上清小心而不会干扰沉淀。
注意:在这一点上,该颗粒是非常宽松,因为它们包含红血球。如果粒料的体积为约或低于3毫升,再悬浮在6ml的细胞脱附溶液预加热至37℃沉淀。如果粒料比3毫升体积较大,增加更多的细胞脱离溶液(日增加约2倍Ë体积组织样本)。 - 转移组织匀浆(底蜕膜+细胞分离液,或蜕膜+顶叶细胞分离液)为C管。
- 代替C-管在自动离解器并运行相应的程序。
注:该程序为底蜕膜运行17秒,共668发每运行。该程序为蜕膜运行顶叶为37秒,共235发每运行。这些方案已自定义为从底蜕膜或蜕膜与顶叶良好的收益率和细胞活力隔离白细胞。 - 以下的组织的机械解聚,消化组织中的市售的细胞分离溶液如的Accutase;为45分钟,在37℃,轻轻摇动(包含蛋白水解和胶原溶解酶鸡尾酒)。
3.隔离白细胞
- 孵育后,加入10 mL的1×PBS中的DIGEStion的混合物中,并通过100微米的细胞过滤将它传递到50ml塑料管中。取决于消化混合物的粘性,人们可能需要用几个细胞滤器一混合物。
- 填充管用1×PBS和离心机在300×g离心5分钟,在RT。取出的1×PBS上述细胞沉淀小心和重新悬浮用5ml冰冷却的FACS缓冲液中的颗粒。
注:要研究多形和单核白细胞在一起,则转到步骤6.1;研究单核白细胞,继续执行步骤3.3。 - 加入5毫升20%的密度梯度介质(1.077 + 0.001g /每毫升),以15毫升的塑料管中并慢慢叠加在密度梯度介质的顶部的细胞悬浮液。而层叠的样品,它不与细胞悬浮液混合的密度梯度介质是重要的。
- 离心用水平转子在500×g离心30分钟,在4℃不制动。关闭制动器,以避免混合细胞和L这是非常重要的osing梯度。白细胞将在密度梯度介质和FACS缓冲液之间的界面上找到。
- 删除包含FACS缓冲液和细胞碎片非常仔细地用移液管上层。界面处的频带包含蜕膜单核细胞和多形核白细胞的一部分。
- 完全转移的细胞在界面到一个新的15毫升塑料管。加的FACS缓冲液的至少3倍以上的体积。
- 离心在300×g离心5分钟以造粒细胞。吸出上清液,并用FACS缓冲液洗细胞。造粒的细胞再次离心分离,在300×g离心5分钟,在RT。
注:要执行的细胞培养,见第4步:为了进行细胞分选,见第5步:为了进行免疫,见第6步。
4.应用 - 细胞培养
- 重悬在1ml的RPMI培养基1640的来自步骤3.7的细胞计数的存活细胞USI纳克自动细胞计数或血球和台盼蓝溶液0.4%。
- 加起来的RPMI培养基的量,使1×10 6个细胞/ ml的细胞浓度。细胞现在已经准备好了的文化。
5.应用程序 - 巨噬细胞分离的原代细胞培养
- 以分离的CD14 +细胞,磁来自步骤3.7与CD14微珠(每10 7个细胞20微升磁珠)标记细胞,孵育15分钟,在4℃,通过施加磁场单独的CD14 +细胞从其它类型的细胞。洗涤2次后用MACS缓冲液和除去磁场,洗脱磁力保留CD14 +细胞用MACS缓冲液。
- 离心后,重新悬浮细胞沉淀在RPMI培养基1640中细胞准备用于电镀( 图2)。
6.应用 - 免疫分型
- 以使用该单元为immunophenotyping,在1ml的1×PBS再中止来自步骤3.7的细胞。计数使用自动细胞计数器或血球和台盼蓝溶液0.4%的活细胞。
- 标记的细胞与可固定活力染料( 图3)。用FACS缓冲液清洗细胞两次,并重新悬浮细胞在染色缓冲液中。孵育一个的FcR阻断剂为15分钟,在4℃。
- 添加共轭荧光抗体外。例如,在这个协议中,使用抗CD3,抗CD19,抗CD14,抗CD15和抗CD56抗体( 表1)。温育30分钟,在黑暗中4℃。
- 洗涤2次后用1×PBS,细胞在500μl的染色缓冲液使用流式细胞仪进行分析。用于分析在蜕膜组织中发现的白细胞亚种群的门控策略的表示示于图4。
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Representative Results
。在母胎界面人类组织(底蜕膜及蜕膜顶叶)的解剖见图1此过程包括基板,其中包括底蜕膜( 图1A - D)的清扫。通过除去从基板(图1C)的胎盘绒毛(胎侧)得到的蜕膜。蜕膜是顶叶轻轻刮绒毛膜( 图1E - F)收集。 图2显示了孤立的巨噬细胞(CD14 +),从使用磁性细胞分选在足月妊娠蜕膜收集顶叶的形态。孤立的巨噬细胞保持在培养3天以释放细胞因子的能力(数据未示出)。活细胞从蜕膜和蜕膜顶叶分离的产率示于图3,它是大于90%,在这两个。
图1.人类母胎界面:胎盘和chorioamniotic膜(A)基板是由胎盘解剖; (B)的基础板从胎盘绒毛分开; (C)胎盘绒毛从基板包括底蜕膜修剪; (D)蜕膜巴萨利斯漂洗中的1×PBS; (E) -绒毛膜膜的片段获得与血液凝块被轻轻除去; (F)蜕膜是顶叶轻轻刮掉;和(G)蜕膜顶叶(虚线)从绒毛膜分离。 请点击此处查看该图的放大版本。
在图2的文化巨噬细胞蜕膜。巨噬细胞(CD14 +细胞)的蜕膜在顶叶足月妊娠隔离。巨噬细胞铺板到塑料室载玻片用RPMI1640 + 10%FBS + 1%青霉素 - 链霉素+ 50毫微克/毫升MCSF。照片拍摄于电镀(A)的时间,经过3天的文化(C)。3 / 52863fig3large.jpg“目标=”_空白“>点击此处查看该图的放大版本。
总细胞从底蜕膜分离出的图3总细胞活力,活力及蜕膜顶叶使用一个可以解决的可行性染料(步骤6.2)以下确定密度梯度。根据活/死细胞活力染色分离细胞的存活率为> 95%。 请点击此处查看该图的放大版本。
图4.浇注战略蜕膜白细胞亚群。白细胞门与FSC和SSC。活细胞然后根据生存能力栅极(在线)门控。活细胞分离成n体中性(CD15 +)和巨噬细胞(CD14 +)。该CD14-CD15-人口然后再分成NK细胞(CD3-CD56 +),NKT细胞(CD3 + CD56 +),T细胞(CD3 +)和B细胞(CD19 +)。 请点击此处查看本一个更大的版本图。
图5.白细胞亚种群在蜕膜组织嗜中性粒细胞(CD15 +)和巨噬细胞(CD14 +)的存活栅内门控; T细胞(CD3 +)和B细胞(CD19 +)CD14的,CD15-门中门控。 请点击此处查看该图的放大版本。
图6.稀土白细胞亚种群在decidUAL组织。NK细胞(CD56 +)和NKT细胞(CD56 + CD3 +)CD14的,CD15-门中门控。 请点击此处查看该图的放大版本。
抗体名单 | 公司 | 产品编号 |
BD Pharmingen公司的抗人CD56-PE-Cy7的 | BD Biosciences公司 | 557747 |
BD地平线抗CD15人-BV605 | BD Biosciences公司 | 562980 |
BD地平线抗人CD14-BUV395 | BD Biosciences公司 | 563561 |
BD地平线抗人CD19-BUV737 | BD Biosciences公司 | 564303 |
辉煌紫650抗人CD3抗体 | Biolegend公司 | 317323 |
表1.抗体的名单用于白细胞免疫的子集
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Discussion
在人类母胎界面白细胞浸润的功能和表型特征的表征是必不可少的,导致妊娠疾病的免疫机制的理解。若干技术以分离从人母胎界面白细胞整个怀孕10,14,25,28,37,42,43了描述。然而,每一个这些技术是截然不同的,使用不同的酶或酶组合,需要不同的解离时间,不指定组织的数量时,以及最重要的是,并不总是指定分离的细胞的生存力。本文所描述的协议允许浸润在人类母胎界面白细胞(蜕膜和蜕膜顶叶),得到高收率生存能力的分离和提供有关商用试剂的详细信息,缓冲制剂,组织量,并孵育时间valida特德在我们的实验室。
白细胞分离过程的第一个关键步骤是组织离解;这个步骤涉及机械取消隔离和/或酶分解。机械取消隔离由隔离蜕膜顶叶( 图1F)时刮绒毛膜和通过从基板分离的蜕膜( 图1C)10,28时修整胎盘绒毛成功执行。因此,本文描述的协议包括两个过程作为初步步骤。然而,考虑到基底板(母体组织)和胎盘绒毛(胎儿组织)的紧密附着,隔离从蜕膜白细胞时可能会造成胎儿白细胞的污染是重要的。为了避免胎儿污染,该协议在此建议洗涤该修整基板两次或三次( 图1D)。继细胞刮或修剪从底蜕膜或蜕膜顶叶,机械组织分解一个额外的步骤已被推荐39。这一步是推荐的,因为白细胞浸润在母胎界面表达细胞粘附分子,他们牢牢地附着于细胞外基质6,7。因此,本文描述的协议涉及机械解聚用自动组织离解,增加稠度,同时节省时间和劳力相比,传统的切碎解剖刀,刀片,或手术剪10,28。
在组织分解过程中的第二个关键步骤是酶解。单一酶和不同酶的组合已被用于从蜕膜隔离白细胞浸润和蜕膜顶叶10,14,25,28,37,42,43。在许多情况下,这些酶在labora准备一定浓度的手保守党可能受到人为错误。在这里,而是一个随时可以使用的纯化胶原酶/中性蛋白酶鸡尾酒的Accutase,已经在实验室中实现;作为商业酶,它已被证明是提供在细胞培养物51可靠的结果。的Accutase(小区脱离溶液)是已知的,有效地分离从培养板上的巨噬细胞不刮,而最重要的是,不失去表面抗原51。此制备的酶也已用于处理人类和动物的神经系统的组织的消化,导致有活力的分离的细胞仍可持续很长一段时间了,随着时间的推移,可以让他们的细胞培养物52。此外,该解决方案还保留在细胞中枢神经系统组织中分离出52抗原CD24。时相比,LIBERASE-1,胶原酶和中性蛋白酶的另一种鸡尾酒,既不的Accutase也不LIBERASE-1生成游离DNA粒料;然而,的Accutase为g组织分离52比在LIBERASE-1 entler。正因为如此,的Accutase不会消化52后解离细胞团。为了克服此限制,本文描述的协议包括蜕膜和蜕膜顶叶之前所述组织解离溶液的自动组织分解。的Accutase还展示了其优势,胰蛋白酶CD44,癌症干细胞表面标志物53的保存。我们实验室的研究一致指出,解决支队保留了表面抗原。事实上,妊娠病症和正常妊娠之间的差异已经发现在几个细胞外和细胞内标记物的表达的巨噬细胞(CD14 +细胞),嗜中性粒细胞(CD15 +细胞),T细胞(CD3 +细胞)和B细胞(CD19 +细胞),包括CD80,CD86,CD163,CD209,ICAM-3,CD45RO,CD45RA,CXCR3,CCR7,CCR6,CD4,CD8,CD25,FOXP3,CD24,CD38,CD27,CD38,CD43,CD23,IgM抗体,IgD的,CD5,T下注,GATA-3,和RORγt,并在细胞因子的释放。因此,本文描述的协议是最优的浸润白细胞在人类母胎界面免疫所示的代表性结果。
本文所描述的协议的一个重要优点是,它允许对白细胞具有很高的产率的活细胞的分离。该代表性数据表明> 90%的分离的细胞是存活。这是非常重要的,因为这协议允许分离的细胞从人体组织在母胎界面的功能特性的研究。例如,蜕膜巨噬细胞和细胞因子释放的刺激下研究的培养物已被使用此协议执行的。
1)组织collecti:实现使用所描述的协议成功的结果,要考虑以下几个因素是非常重要的上必须在1-2小时交货之后进行,并且这些组织必须放置在用1×PBS的容器在4℃下保存的分离的细胞的生存力; 2)机械组织分解,必须使用自动均化器以验证的时间执行,如在该协议描述3)培养与细胞分离溶液的持续时间必须小于由于其活性在此时间后减少1小时; 4)必须保持温育与细胞分离溶液的温度在37℃,得到这种酶的最佳活性; 5)细胞沉淀操作必须以微量轻轻做是因为使用涡流的可破坏细胞的完整性(记住,分离的细胞是分化的和突然的操纵可以很容易地减少其生存力); 6)缓冲液和离心机的温度必须保持在相同的温度下将细胞悬浮液; 7)分离的细胞必须被处理用于免疫或immedi使用ately作为其可行性迅速降低; 8)进行免疫时,样品必须立即流式细胞仪为了获得最佳效果使用流动收购。
一个这种协议的一个限制是的Accutase的成本,这是比其他的酶具有相似的功能, 例如 ,胰蛋白酶,分散酶II和胶原酶更昂贵。然而,过去,这些酶上面的Accutase显示器的优点是优异的。该协议的第二个限制是一个自动组织离解,这不是一种常见的实验室仪器,因此,可能是昂贵的要求。为了克服此限制,组织取消隔离,也可以用小的手术剪进行;然而,该步骤不能超过3-5分钟,因为长时间已经证明减少活细胞的产率。所有解离必须由同一研究者进行,以最小化可变性。
总之,亲本文母育提供了一个新的方法,结合使用温和的化学和酶组织分离技术,在保留从白细胞在母胎界面人类组织中分离出的细胞外和细胞内标志的完整性。除了免疫,细胞培养和细胞分选,这个协议的未来的应用是多种多样的。我们已成功地使用该协议来隔离蜕膜白细胞在体外研究的白细胞的功能( 即,细胞毒性,T细胞增殖和可塑性,等),以及生产的活性氧在蜕膜组织中分离的白细胞(数据未示出)。事实上,使用所描述的协议,我们的实验室已能形容新的和罕见的白细胞在母胎界面。
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Acknowledgments
这项工作是由儿童健康和人类发展的尤尼斯·肯尼迪·施莱佛国立研究所,美国国立卫生研究院/ DHHS支持。这项工作也得到了支持,在某种程度上,在孕产妇,围产期和儿童健康的韦恩州立大学围产期倡议。 我们非常感谢莫林McGerty(韦恩州立大学)为她的手稿的读数。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Dissection | |||
Sterile dissection tools: surgical scissors, forceps, and fine-tip tweezers | Any vendor | 20012-027 | |
1X phosphate buffered saline (PBS) | Life Technologies | (1X PBS) | |
Large and small Petri dishes | Any vendor | ||
Dissociation | |||
Accutase | Life Technologies | A11105-01 | (cell detachment solution) |
Sterile 2 ml safe-lock conical tubes | Any vendor | ||
50 ml conical centrifuge tubes | Any vendor | ||
100 µm cell strainers | FALCON/Corning | 352360 | |
5 ml round bottom polystyrene test tubes | Any vendor | ||
Transfer pipettes | Any vendor | ||
C tubes | Miltenyi Biotec | 130-093-237 | |
Cell Culture | |||
RPMI culture medium 1640 | Life Technologies | 22400-089 | (1X) (10% FBS and 1% P/S) |
Plastic chamber slides | Thermo Scientific | 177437 | |
Incubator | Thermo Scientific Corporation | HEPA Class 100 | |
Water bath | Fisher Scientific | ISOTEMP 110 | |
Cell counter | Nexelcom | Cellometer Auto2000 | |
Microscope | Olympus | Olympus CKX41 | |
Cell Separation | |||
MS columns | Miltenyi Biotec | 130-042-201 | |
Cell separator | Miltenyi Biotec | 130-042-109 | |
30 μm pre-separation filters | Miltenyi Biotec | 130-041-40 | |
Multistand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | |
15 ml safe-lock conical tubes | Any Vendor | ||
MACS buffer | (0.5% bovine serum albumin, 2 mM EDTA and 1X PBS) | ||
Reagents | |||
FcR Blocking | Miltenyi Biotec | 130-059-901 | (Fc Block) |
Anti-human cell surface antigen antibodies | BD Biosciences | (Table 1) | |
Bovine serum albumin | Sigma | A7906 | |
LIVE/DEAD viability dye | BD Biosciences | 564406 | |
Lyse/Fix buffer | BD Biosciences | 346202 | |
FACS buffer | (0.1% BSA, 0.05% Sodium Azide, and 1X PBS, pH=7.4) | ||
Staining buffer | BD Biosciences | 554656 | |
Trypan Blue solution 0.4% | Life Technologies | 15250-011 | |
Ficoll | GE Healthcare | 17-1440-02 | 20% density gradient media (1.077 + 0.001 g/ml) |
Additional Instruments | |||
Incubator with shaker | Thermo Scientific | MAXQ 4450 | |
Flow cytometer | BD Biosciences | LSR-Fortessa | |
Centrifuge | Beckman Coulter | SpinChron DLX | |
Vacuum system | Any vendor | ||
Automatic tissue dissociator | Miltenyi Biotec | gentleMACS Dissociator |
References
- Kelly, R. W. Inflammatory mediators and parturition. Rev Reprod. 1 (2), 89-96 (1996).
- Keelan, J. A., et al. Cytokines, prostaglandins and parturition--a review. Placenta. 24, Suppl A. S33-S46 (2003).
- Romero, R., et al. Inflammation in preterm and term labour and delivery. Semin Fetal Neonatal Med. 11 (5), 317-326 (2006).
- Norman, J. E., Bollapragada, S., Yuan, M., Nelson, S. M. Inflammatory pathways in the mechanism of parturition. BMC Pregnancy Childbirth. 7, Suppl 1. S7 (2007).
- Mor, G., Cardenas, I. The immune system in pregnancy: a unique complexity. Am J Reprod Immunol. 63 (6), 425-433 (2010).
- Gomez-Lopez, N., Guilbert, L. J., Olson, D. M. Invasion of the leukocytes into the fetal-maternal interface during pregnancy. J Leukoc Biol. 88 (4), 625-633 (2010).
- Gomez-Lopez, N., StLouis, D., Lehr, M. A., Sanchez-Rodriguez, E. N., Arenas-Hernandez, M. Immune cells in term and preterm labor. Cell Mol Immunol. , (2014).
- Bulmer, J. N., Morrison, L., Longfellow, M., Ritson, A., Pace, D. Granulated lymphocytes in human endometrium: histochemical and immunohistochemical studies. Hum Reprod. 6 (6), 791-798 (1991).
- Bulmer, J. N., Williams, P. J., Lash, G. E. Immune cells in the placental bed. Int J Dev Biol. 54 (2-3), 281-294 (2010).
- Sindram-Trujillo, A., Scherjon, S., Kanhai, H., Roelen, D., Claas, F. Increased T-cell activation in decidua parietalis compared to decidua basalis in uncomplicated human term pregnancy. Am J Reprod Immunol. 49 (5), 261-268 (2003).
- Red-Horse, K., et al. Trophoblast differentiation during embryo implantation and formation of the maternal-fetal interface. J Clin Invest. 114 (6), 744-754 (2004).
- Erlebacher, A. Immunology of the maternal-fetal interface. Annu Rev Immunol. 31, 387-411 (2013).
- Christiansen, O. B. Reproductive immunology. Mol Immunol. 55 (1), 8-15 (2013).
- Vince, G. S., Starkey, P. M., Jackson, M. C., Sargent, I. L., Redman, C. W. Flow cytometric characterisation of cell populations in human pregnancy decidua and isolation of decidual macrophages. J Immunol Methods. 132 (2), 181-189 (1990).
- Trundley, A., Moffett, A. Human uterine leukocytes and pregnancy. Tissue Antigens. 63 (1), 1-12 (2004).
- Richards, R. G., Brar, A. K., Frank, G. R., Hartman, S. M., Jikihara, H. Fibroblast cells from term human decidua closely resemble endometrial stromal cells: induction of prolactin and insulin-like growth factor binding protein-1 expression. Biol Reprod. 52 (3), 609-615 (1995).
- Rango, U. Fetal tolerance in human pregnancy--a crucial balance between acceptance and limitation of trophoblast invasion. Immunol Lett. 115 (1), 21-32 (2008).
- Robson, A., et al. Uterine natural killer cells initiate spiral artery remodeling in human pregnancy. FASEB J. 26 (12), 4876-4885 (2012).
- Lima, P. D., Zhang, J., Dunk, C., Lye, S. J., Anne Croy,, B, Leukocyte driven-decidual angiogenesis in early pregnancy. Cell Mol Immunol. , (2014).
- Aluvihare, V. R., Kallikourdis, M., Betz, A. G. Regulatory T cells mediate maternal tolerance to the fetus. Nat Immunol. 5 (3), 266-271 (2004).
- Thomson, A. J., et al. Leukocytes infiltrate the myometrium during human parturition: further evidence that labour is an inflammatory process. Hum Reprod. 14 (1), 229-236 (1999).
- Young, A., et al. Immunolocalization of proinflammatory cytokines in myometrium, cervix, and fetal membranes during human parturition at term. Biol Reprod. 66 (2), 445-449 (2002).
- Osman, I., et al. Leukocyte density and pro-inflammatory cytokine expression in human fetal membranes, decidua, cervix and myometrium before and during labour at term. Mol Hum Reprod. 9 (1), 41-45 (2003).
- Hamilton, S., et al. Macrophages infiltrate the human and rat decidua during term and preterm labor: evidence that decidual inflammation precedes labor. Biol Reprod. 86 (2), 39 (2012).
- Gomez-Lopez, N., et al. Evidence for a role for the adaptive immune response in human term parturition. Am J Reprod Immunol. 69 (3), 212-230 (2013).
- Hamilton, S. A., Tower, C. L., Jones, R. L. Identification of chemokines associated with the recruitment of decidual leukocytes in human labour: potential novel targets for preterm labour. PLoS One. 8 (2), e56946 (2013).
- Sindram-Trujillo, A. P., et al. Differential distribution of NK cells in decidua basalis compared with decidua parietalis after uncomplicated human term pregnancy. Hum Immunol. 64 (10), 921-929 (2003).
- Repnik, U., et al. Comparison of macrophage phenotype between decidua basalis and decidua parietalis by flow cytometry. Placenta. 29 (5), 405-412 (2008).
- Sanguansermsri, D., Pongcharoen, S. Pregnancy immunology: decidual immune cells. Asian Pac J Allergy Immunol. 26 (2-3), 171-181 (2008).
- Houser, B. L. Decidual macrophages and their roles at the maternal-fetal interface. Yale J Biol Med. 85 (1), 105-118 (2012).
- Tamiolakis, D., et al. Human decidual cells activity in women with spontaneous abortions of probable CMV aetiology during the first trimester of gestation. An immunohistochemical study with CMV-associated antigen. Acta Medica (Hradec Kralove). 47 (3), 195-199 (2004).
- Williams, P. J., Bulmer, J. N., Searle, R. F., Innes, B. A., Robson, S. C. Altered decidual leucocyte populations in the placental bed in pre-eclampsia and foetal growth restriction: a comparison with late normal pregnancy. Reproduction. 138 (1), 177-184 (2009).
- Eide, I. P., et al. Serious foetal growth restriction is associated with reduced proportions of natural killer cells in decidua basalis. Virchows Arch. 448 (3), 269-276 (2006).
- Brown, M., Wittwer, C. Flow cytometry: principles and clinical applications in hematology. Clin Chem. 46 (8 Pt 2), 1221-1229 (2000).
- He, H., Courtney, A. N., Wieder, E., Sastry, K. J. Multicolor flow cytometry analyses of cellular immune response in rhesus macaques. J Vis Exp. (38), (2010).
- Jaso, J. M., Wang, S. A., Jorgensen, J. L., Lin, P. Multi-color flow cytometric immunophenotyping for detection of minimal residual disease in AML: past, present and future. Bone Marrow Transplant. 49 (9), 1129-1138 (2014).
- Ritson, A., Bulmer, J. N. Isolation and functional studies of granulated lymphocytes in first trimester human decidua. Clin Exp Immunol. 77 (2), 263-268 (1989).
- Nagaeva, O., Bondestam, K., Olofsson, J., Damber, M. G., Mincheva-Nilsson, L. An optimized technique for separation of human decidual leukocytes for cellular and molecular analyses. Am J Reprod Immunol. 47 (4), 203-212 (2002).
- Male, V., Gardner, L., Moffett, A. Chapter 7. Isolation of cells from the feto-maternal interface. Curr Protoc Immunol. (UNIT 7.40), Wiley Online Library. 41-11 (2012).
- Soares, M. J., Hunt, J. S. Placenta and trophoblast: methods and protocols overview II. Methods Mol Med. 122, 3-7 (2006).
- Ritson, A., Bulmer, J. N. Extraction of leucocytes from human decidua. A comparison of dispersal techniques. J Immunol Methods. 104 (1-2), 231-236 (1987).
- White, H. D., et al. A method for the dispersal and characterization of leukocytes from the human female reproductive tract. Am J Reprod Immunol. 44 (2), 96-103 (2000).
- Maruyama, T., et al. Flow-cytometric analysis of immune cell populations in human decidua from various types of first-trimester pregnancy. Hum Immunol. 34 (3), 212-218 (1992).
- Zhang, J., et al. Isolation of lymphocytes and their innate immune characterizations from liver, intestine, lung and uterus. Cell Mol Immunol. 2 (4), 271-280 (2005).
- Carlino, C., et al. Recruitment of circulating NK cells through decidual tissues: a possible mechanism controlling NK cell accumulation in the uterus during early pregnancy. Blood. 111 (6), 3108-3115 (2008).
- Bajpai, R., Lesperance, J., Kim, M., Terskikh, A. V. Efficient propagation of single cells Accutase-dissociated human embryonic stem cells. Mol Reprod Dev. 75 (5), 818-827 (2008).
- Zhang, P., Wu, X., Hu, C., Wang, P., Li, X. Rho kinase inhibitor Y-27632 and Accutase dramatically increase mouse embryonic stem cell derivation. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 48 (1), 30-36 (2012).
- Snegovskikh, V. V., et al. Intra-amniotic infection upregulates decidual cell vascular endothelial growth factor (VEGF) and neuropilin-1 and -2 expression: implications for infection-related preterm birth. Reprod Sci. 16 (8), 767-780 (2009).
- Oliver, C., Cowdrey, N., Abadia-Molina, A. C., Olivares, E. G. Antigen phenotype of cultured decidual stromal cells of human term decidua. J Reprod Immunol. 45 (1), 19-30 (1999).
- Chang, Y., Hsieh, P. H., Chao, C. C. The efficiency of Percoll and Ficoll density gradient media in the isolation of marrow derived human mesenchymal stem cells with osteogenic potential. Chang Gung Med J. 32 (3), 264-275 (2009).
- Gartner, S. The macrophage and HIV: basic concepts and methodologies. Methods Mol Biol. , 670-672 (2014).
- Panchision, D. M., et al. Optimized flow cytometric analysis of central nervous system tissue reveals novel functional relationships among cells expressing CD133, CD15, and CD24. Stem Cells. 25 (6), 1560-1570 (2007).
- Quan, Y., et al. Impact of cell dissociation on identification of breast cancer stem cells. Cancer Biomark. 12 (3), 125-133 (2012).