Abstract
El embarazo se caracteriza por la infiltración de leucocitos en los tejidos reproductivos y en la interfase materno-fetal (decidua basal y decidua parietal). Esta interfaz es el lugar anatómico de contacto entre la madre y tejidos fetales; Por lo tanto, es un sitio de acción inmunológica durante el embarazo. Leucocitos infiltrantes en la interfase materno-fetal juegan un papel central en la implantación, el mantenimiento del embarazo, y el momento de la entrega. Por lo tanto, caracterizaciones fenotípicas y funcionales de estos leucocitos proporcionarán información sobre los mecanismos que conducen a trastornos del embarazo. Varios protocolos se han descrito con el fin de aislar la infiltración de leucocitos de la decidua basal y decidua parietal; sin embargo, la falta de coherencia en los reactivos, enzimas, y los tiempos de incubación hace que sea difícil comparar estos resultados. Se describe aquí un nuevo enfoque que combina el uso de diss mecánicos y enzimáticos suavesociation técnicas para preservar la viabilidad e integridad de los marcadores extracelulares e intracelulares en los leucocitos aislados de los tejidos humanos en la interfase materno-fetal. Aparte de inmunofenotipo, cultivo celular, y la clasificación de células, las aplicaciones futuras de este protocolo son numerosas y variadas. Siguiendo este protocolo, los leucocitos aislados se pueden utilizar para determinar la metilación del ADN, la expresión de genes diana, en funcionalidad vitro de leucocitos (es decir, la fagocitosis, citotoxicidad, la proliferación de células T, y la plasticidad, etc.), y la producción de especies reactivas de oxígeno en la interfase materno-fetal. Además, utilizando el protocolo descrito, este laboratorio ha sido capaz de describir nuevos y raros leucocitos en la interfase materno-fetal.
Introduction
El embarazo se caracteriza por tres fases distintas inmunológicos: 1) la implantación y placentación temprana asociada con una respuesta pro-inflamatoria (es decir, la implantación se asemeja a una "herida abierta"); 2) el segundo trimestre y la mayor parte del tercer trimestre del embarazo cuando se logra la homeostasis inmune a través de un estado predominantemente anti-inflamatoria en la interfase materno-fetal; y 3) el parto, un estado pro-inflamatorio 1-7. Las células inmunes juegan un papel importante en la regulación de la respuesta inflamatoria en la interfase materno-fetal, donde su abundancia y el cambio de localización durante todo el embarazo 6-9.
En los seres humanos, la interfaz materno-fetal representa un área de contacto directo entre los tejidos materna (decidua) y fetal (corion o trofoblasto). Esta interfaz incluye: 1) la decidua parietal que recubre la cavidad uterina no cubierto por la placenta y es en yuxtaposiciónpara el corion leve; y 2) la decidua basal, que se encuentra en la placa basal de la placenta donde es invadida por los trofoblastos intersticiales 10 (Figura 1). La intimidad de estas zonas de contacto crea condiciones para la exposición antigénica fetal al 11-13 materna sistema inmunológico. No es sorprendente, los leucocitos comprenden hasta el 30-40% de las células deciduales 8,9,14,15 además de las células de tipo estromal típicos y células glandulares 8,14,16. El papel de los leucocitos en la interfase materno-fetal abarca múltiples procesos que incluyen la limitación de la invasión trofoblástica 17, la remodelación de las arterias espirales 18,19, el mantenimiento de la tolerancia materna 12,20, y el inicio del trabajo 21-26. Los leucocitos tanto de la adaptación y las extremidades innata del sistema inmune, es decir, las células T, macrófagos, neutrófilos, células B, células dendríticas, y células NK, se han identificado en los tejidos deciduales, y suproporciones y estado de activación se ha demostrado que variar espacialmente y temporalmente durante toda la gestación 6-10,12,14,24,27-30. Las perturbaciones en la población y / o la función de leucocitos están asociados con el aborto espontáneo 31, 32 preeclampsia, restricción del crecimiento intrauterino 32,33, y trabajo de parto prematuro 7,24. Por lo tanto, el estudio de las características fenotípicas y la funcionalidad de los leucocitos en la interfase materno-fetal humano facilitará la elucidación de las vías inmunológicas dysregulated en los trastornos del embarazo.
Una de las herramientas más poderosas utilizadas para determinar el fenotipo y las propiedades funcionales de los leucocitos se citometría de flujo, la tecnología que permite el análisis cuantitativo de múltiples parámetros simultáneamente 34-36. Para analizar los leucocitos por citometría de flujo, se requiere aislamiento de los leucocitos en una suspensión de una sola célula. Por lo tanto, un método para separar la infiltración leuSe necesita kocytes desde la interfaz materno-fetal para estudiar su fenotípica y propiedades funcionales.
Varios métodos han sido descritos para aislar los leucocitos desde la interfaz materno-fetal humano 10,14,25,27,37-39. Mientras que algunos se aplican desagregación mecánica 10,25,27,38, otros utilizan digestión enzimática 37,40 para la disociación de tejido. Debido a la desagregación mecánica produce un menor rendimiento y reducción de la viabilidad 41, y la disociación enzimática puede afectar a la viabilidad y la retención de marcador de superficie celular 42, el método descrito en el presente documento combina la disociación mecánica suave con enzimático pre-tratamiento para aumentar el rendimiento de los leucocitos aislados sin comprometer la viabilidad celular. Una combinación similar de métodos ha demostrado ser eficaz en el aislamiento de leucocitos de los tejidos deciduales en la interfase materno-fetal 39. Por lo tanto, el protocolo descrito en este documento implica mechadesagregación nica con un disociador tejido automático que aumenta la consistencia, mientras que el ahorro de tiempo y mano de obra en comparación con picado tradicional con escalpelos opuestas, hojas de afeitar o tijeras quirúrgicas 10,28. La enzima seleccionada para la disociación del tejido era Accutase. A diferencia colagenasa utilizada 43, Dispasa 44, 45 y tripsina, Accutase (una solución desprendimiento celular) combina proteolítica general y actividades colagenolíticas que contribuyen a la disociación eficiente pero suave 46,47. Después de la disociación, los leucocitos se enriquecen a partir de la población total de las células deciduales por centrifugación en gradiente de densidad. Varios medios de gradiente de densidad se han utilizado previamente, el más común de los cuales son Percoll (una suspensión de partículas de sílice coloidal) y Ficoll 48 (un polímero de sacarosa con un alto peso molecular sintético) 49. La eficacia superior de aislamiento por el polímero sacarosa ha sido Previously muestra 50, y el protocolo descrito en el presente documento además demuestra que este medio de gradiente de densidad produce una pureza suficientemente alta de los leucocitos mononucleares.
Por lo tanto, el protocolo descrito en el presente documento combina la desagregación tisular mecánico con un disociador automática tejido, la digestión enzimática con una solución de desprendimiento celular, y la separación de leucocitos con un medio de gradiente de densidad (1,077 + 0,001 g / ml) para aislar los leucocitos de tejidos deciduales humanos. Este protocolo se ha demostrado para preservar los antígenos de superficie celular, junto con la viabilidad celular. Los leucocitos aislados se pueden utilizar para múltiples aplicaciones que incluyen inmunofenotipo con citometría de flujo y estudios funcionales in vitro.
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Protocol
Este protocolo es apropiado para el aislamiento de leucocitos de la decidua basal y decidua parietal en preparación para inmunofenotipo por citometría de flujo. Además, las células aisladas se pueden utilizar para la clasificación de células, cultivo celular, el aislamiento de ARN, y la citología. Antes de trabajar con las muestras mencionadas en este protocolo, la aprobación ética humana debe ser obtenido de la Comisión de Ética Local Investigación y Juntas de Revisión Institucional. La recolección y utilización de muestras humanas para fines de investigación fueron aprobados por las Juntas de Revisión Institucional del Instituto Nacional Eunice Kennedy Shriver de Salud Infantil y Desarrollo Humano (NICHD), los Institutos Nacionales de Salud (NIH), Departamento de Salud y Servicios Humanos (DHHS , Bethesda, MD, EE.UU.) y la Universidad Estatal de Wayne (Detroit, MI, EE.UU.). Escrito el consentimiento informado se obtuvo de todas las mujeres embarazadas antes de la recogida de muestras de tejido.
NOTA: Mientras trabajaba con la sangre de animales, células, o peligroagentes sas como se menciona en este protocolo, es esencial que la bioseguridad adecuada y medidas de seguridad de laboratorio seguir.
1. La disección de los tejidos deciduales Humanos
NOTA: La placa basal es la base debajo y unido a la placenta y representa la superficie materna. Las membranas corioamnióticas incluyen el amnios y el corion. La placa basal incluye la decidua basal y el corion incluye la decidua parietal (Figura 1).
- Decidua Basalis
- Diseccionar una pieza de la placa basal a partir de un cotiledón de la placenta (Figuras 1A y 1B).
- Colóquelo sobre una tabla de cortar estéril con las vellosidades placentarias hacia arriba. El lateral que muestra las vellosidades de la placenta es generalmente de color rojo sangriento con el tejido peluda en apariencia. La placa basal es suave y rojo pálido en color.
- Utilice afilados, tijeras de punta fina y unas pinzas para quitar la villtejidos y los vasos sanguíneos sas. Mantenga el tejido empapado en 1x PBS (Ca 2+ - y Mg 2 + - libre) durante el proceso (Figura 1C). Suma 2 a 3 de estas piezas y enjuague a fondo con 1x PBS para eliminar la sangre (Figura 1D).
- Decidua parietal
- Diseccionar un pedazo de las membranas corioamnióticas (aproximadamente 10 cm x 10 cm, Figura 1E). Colóquelo en el tablero con el corion hacia arriba. El lado coriónica contiene coágulos sangrientos y suele ser la luz de color amarillento.
- Utilice unas pinzas de punta fina para eliminar la mayor cantidad de los coágulos de sangre como sea posible (Figura 1E). Enjuague la membrana en 1x PBS estéril para limpiar el exceso de sangre de la membrana hasta que el PBS 1x salga clara.
- Use un raspador celular estéril desechable para raspar suavemente la capa decidual de la membrana. Aplicar 1x PBS estéril en la membrana al completar este proceso (Figura 1F). Recoge los tejidos deciduales y colocarlos en un tubo de plástico de 50 ml con PBS 1x estéril (Figura 1G).
2. La desagregación mecánica y digestión enzimática
- Lave el tejido diseccionado de la decidua basal (desde el paso 1.1.3) o la decidua parietal (del Paso 1.2.3) con 1x PBS estéril en un tubo de plástico de 50 ml. Recoger gránulos de tejidos por centrifugación a 300 xg durante 5 min a TA.
- Aspirar el sobrenadante situado por encima del sedimento de tejido cuidadosamente sin perturbar el sedimento.
NOTA: En este punto, los pellets son muy floja, ya que contienen las células rojas de la sangre. Si el volumen de la pastilla está relacionado o menos de 3 ml, vuelva a suspender el sedimento en 6 ml de solución de desprendimiento de células pre-calentado a 37 ° C. Si la pastilla es mayor que 3 ml de volumen, añadir más solución desprendimiento celular (añadir alrededor de 2 veces ªe volumen de las muestras de tejido). - Transferir los tejidos homogeneizados (decidua basal + desprendimiento de células de soluciones o decidua parietal + solución desprendimiento de células) a un tubo C.
- Coloque el tubo de C en el disociador automática y ejecutar el programa correspondiente.
NOTA: El programa de la decidua basal tiene una duración de 17 segundos con 668 rondas totales por corrida. El programa para la decidua parietal tiene una duración de 37 segundos con 235 rondas totales por corrida. Estos programas han sido diseñadas para aislar leucocitos de la decidua basal o la decidua parietal con buen rendimiento y la viabilidad celular. - Tras la desagregación mecánica de los tejidos, digerir los tejidos con una solución de desprendimiento celular comercialmente disponible tal como accutase; (Un cóctel que contiene enzimas proteolíticas y colagenolíticas) durante 45 min a 37 ° C con agitación suave.
3. Aislamiento de leucocitos
- Después de la incubación, añadir 10 ml de PBS 1x a la digemezcla stion y pasarlo por un colador celular 100 micras en un tubo de plástico de 50 ml. Dependiendo de la viscosidad de la mezcla de digestión, se puede necesitar utilizar varios filtros de células para una mezcla.
- Llenar el tubo con 1x PBS y centrifugar a 300 xg durante 5 min a TA. Retire el PBS 1x por encima de los sedimentos celulares con cuidado y volver a suspender los pelets con 5 ml de tampón de FACS enfriado con hielo.
NOTA: Para el estudio de los leucocitos polimorfonucleares y mononucleares juntos, ir al paso 6.1; para estudiar los leucocitos mononucleares, continúe con el Paso 3.3. - Añadir 5 ml de 20% de medios de gradiente de densidad (1,077 + 0,001 g / ml) a un tubo de plástico de 15 ml y superponer lentamente la suspensión celular en la parte superior de los medios de gradiente de densidad. Mientras capas de la muestra, es importante no mezclar los medios de gradiente de densidad con la suspensión de células.
- Centrifugar con un rotor basculante a 500 xg durante 30 min a 4 ° C sin el freno. Es muy importante para desactivar el freno para evitar la mezcla de las células y lOsing el gradiente. Los leucocitos se encuentran en la interfaz entre los medios de gradiente de densidad y el tampón FACS.
- Eliminar la capa superior que contiene el tampón y los desechos de células FACS muy cuidadosamente con una pipeta. La banda en la interfase contiene las células mononucleares de la decidua y una porción de los leucocitos polimorfonucleares.
- Transferencia de las células en la interfaz completamente a un nuevo tubo de plástico de 15 ml. Añadir al menos 3 veces más volumen de tampón FACS.
- Centrifugar a 300 xg durante 5 min a peletizar las células. Aspirar el sobrenadante y lavar las células con tampón FACS. Peletizar las células con otra centrifugación a 300 xg durante 5 min a TA.
NOTA: Para llevar a cabo el cultivo celular, consulte el Paso 4. Para llevar a cabo la clasificación de células, consulte el Paso 5. Para realizar inmunofenotipo, consulte el Paso 6.
4. Aplicaciones - Cultivo de células
- Vuelva a suspender las células del paso 3.7 en 1 ml de medio de cultivo RPMI 1640. Cuenta las células viables using de un contador de células automático o un hemocitómetro y una solución de azul de tripano al 0,4%.
- Añadir la cantidad de medio de cultivo RPMI para hacer una concentración celular de 1 x 10 6 células / ml. Las células están listas para la cultura.
5. Aplicaciones - Aislamiento de macrófagos para la Cultura de la célula primaria
- Para aislar las células CD14 +, magnéticamente marcar las células de la Etapa 3.7 con microperlas CD14 (20 l perlas por 10 7 células), se incuba durante 15 min a 4 ° C, y las células CD14 + separado de otros tipos de células mediante la aplicación de un campo magnético. Después de 2 lavados con tampón MACS y la eliminación del campo magnético, eluir las células CD14 + retenidas magnéticamente con tampón MACS.
- Después de la centrifugación, re-suspender los sedimentos celulares en medio de cultivo RPMI 1640. Las células están listos para el chapado (Figura 2).
6. Aplicaciones - inmunotipificación
- Para utilizar las células para immunophenotyping, volver a suspender las células del paso 3.7 en 1 ml de PBS 1x. Contar las células viables usando un contador de células automático o un hemocitómetro y una solución de azul de tripano al 0,4%.
- Etiqueta de las células con un colorante viabilidad corregible (Figura 3). Lavar las células dos veces con tampón FACS y volver a suspender las células en tampón de tinción. Incubar con un bloqueador FcR durante 15 min a 4 ° C.
- Añadir anticuerpos conjugados con fluorocromos extracelulares. Por ejemplo, en este protocolo, utilizar anti-CD3, anti-CD19, anti-CD14, anti-CD15, anti-CD56 y anticuerpos (Tabla 1). Incubar durante 30 minutos a 4 ° C en la oscuridad.
- Después de 2 lavados con PBS 1x, se analizarán las células en 500 l de tampón de tinción utilizando un citómetro de flujo. Una representación de la estrategia de gating utilizado para analizar las subpoblaciones de leucocitos que se encuentran en los tejidos deciduales se muestra en la Figura 4.
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Representative Results
. La disección de los tejidos humanos en la interfase materno-fetal (decidua basal y decidua parietal) se muestra en la Figura 1 Este procedimiento incluye la disección de la placa basal, que incluye la decidua basal (Figura 1A - D). La decidua basal se obtiene mediante la eliminación de las vellosidades de la placenta (lado fetal) de la placa basal (Figura 1C). La decidua parietal se recoge raspando suavemente la membrana coriónica (Figura 1E - F). La figura 2 muestra la morfología de macrófagos aislados (CD14 +) recogidos de la decidua parietal en un embarazo a término utilizando la clasificación de células magnético. Macrófagos aislados mantienen la capacidad de liberar citoquinas después de 3 días de cultivo (datos no mostrados). El rendimiento de células viables aisladas a partir de la decidua basal y decidua parietal se muestra en la Figura 3, y es mayor que 90% en ambos.
Figura 1. Humano materno-fetal interface:. Placenta y membranas corioamnióticas (A) placa basal se diseca de la placenta; (B) la placa basal se separa de la vellosidades placentarias; (C) vellosidades placentarias se recorta de la placa basal incluyendo la decidua basal; (D) basa decidua lis se enjuaga en 1x PBS; Se obtiene (E) un fragmento de la membrana coriónica y los coágulos de sangre se retiran suavemente; (F) decidua parietal se raspa suavemente; y (G) decidua parietal (línea punteada) se separa de la membrana coriónica. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 2. macrófagos deciduales en cultivo. Los macrófagos (células CD14 +) fueron aisladas de la decidua parietal en embarazo a término. Los macrófagos se colocaron en placas en portaobjetos de cámara de plástico con RPMI1640 + 10% de FBS + 1% de penicilina-estreptomicina + 50 ng / ml MCSF. Las fotos fueron tomadas en el momento de chapado (A) y después de 3 días en cultivo (C).3 / 52863fig3large.jpg "target =" _ blank "> Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3. viabilidad celular total. La viabilidad de las células totales aislados de la decidua basal y la decidua parietal se determinó gradiente de densidad siguiente utilizando un tinte viabilidad corregible (paso 6.2). La viabilidad de las células aisladas es> 95% de acuerdo con la tinción de la viabilidad celular en vivo / muerto. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 4. Estrategia para la Supresión de leucocitos decidual subpoblaciones. Los leucocitos fueron cerrada con FSC y SSC. Las células vivas fueron gated acuerdo con la puerta de la viabilidad (Live). Las células viables fueron separados en neutrophils (CD15 +) y macrófagos (CD14 +). A continuación, la población CD14-CD15- se separó aún más en las células NK (CD3-CD56 +), células NKT (CD3 + CD56 +), células T (CD3 +), y células B (CD19 +). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
. Figura 5. subpoblaciones de leucocitos en los tejidos deciduales neutrófilos (CD15 +) y macrófagos (CD14 +) fueron cerrada dentro de la puerta de viabilidad; Las células T (CD3 +) y células B (CD19 +) fueron cerrada dentro de la puerta-CD14 CD15-. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 6. leucocitos Raras subpoblaciones en la DECIDtejidos ual. células NK (CD56 +) y células NKT (CD56 + CD3 +) fueron cerrada dentro de la puerta-CD14 CD15-. Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
| Lista de Anticuerpos | Empresa | Catalog No. |
| BD Pharmingen anti-humano CD56-PE-Cy7 | BD Biosciences | 557747 |
| CD15-BV605 BD Horizonte anti-humana | BD Biosciences | 562980 |
| BD Horizonte Anti-CD14 humano-BUV395 | BD Biosciences | 563561 |
| BD Horizonte Anti-CD19 humano-BUV737 | BD Biosciences | 564303 |
| Brilliant Violet 650 anti-CD3 humano Anticuerpo | Biolegend | 317323 |
Tabla 1. Lista de los anticuerpos utilizados para leucocitos subconjunto inmunofenotipado
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Discussion
Caracterización de las propiedades funcionales y fenotípicas de la infiltración de leucocitos en la interfase materno-fetal humano es esencial para la comprensión de los mecanismos inmunológicos que conducen a trastornos del embarazo. Varias técnicas se han descrito con el fin de aislar los leucocitos de la interfaz materno-fetal durante el embarazo humano 10,14,25,28,37,42,43. Sin embargo, cada una de estas técnicas es distinta, utiliza enzimas o combinaciones de enzimas diferentes, requiere diferentes tiempos de disociación, no especifica cantidades de tejido, y, lo más importante, no siempre especificar la viabilidad de las células aisladas. El protocolo se describe en este documento permite el aislamiento de la infiltración de leucocitos en la interfase materno-fetal humano (decidua basal y decidua parietal) que resulta en un alto rendimiento de viabilidad y proporciona información detallada sobre los reactivos comerciales, la preparación de amortiguamiento, cantidades de tejido, y los tiempos de incubación validated en nuestro laboratorio.
El primer paso fundamental del proceso de aislamiento de leucocitos es la disociación de tejidos; este paso implica desagregación mecánica y / o la disociación enzimática. Desagregación mecánica se realizó con éxito raspando el corion al aislar la decidua parietal (Figura 1F) y por el recorte de las vellosidades de la placenta de la placa basal al aislar la decidua basal (Figura 1C) 10,28. Por lo tanto, el protocolo descrito en el presente documento incluye tanto procedimientos como pasos iniciales. Sin embargo, es importante tener en cuenta que la placa basal (tejidos maternos) y el vellosidades placentarias (tejidos fetales) están íntimamente unidos, que puede causar la contaminación de los leucocitos fetales cuando el aislamiento de leucocitos de la decidua basal. Para evitar la contaminación fetal, el protocolo en el presente documento recomienda lavar la placa basal recortado dos o tres veces (Figura 1D). Tras raspado celular o recortede la decidua basal o decidua parietal, un paso adicional para la disgregación del tejido mecánico ha recomendado 39. Se recomienda este paso porque los leucocitos infiltrantes en la interfaz expresas moléculas de adhesión celular materno-fetales que les sujetan firmemente a la matriz extracelular 6,7. Por lo tanto, el protocolo descrito en este documento implica la desagregación mecánica con un disociador tejido automático que aumenta la consistencia, mientras que el ahorro de tiempo y mano de obra en comparación con picado tradicional con escalpelos, hojas de afeitar o tijeras quirúrgicas 10,28.
Un segundo paso crítico en el proceso de disociación de tejidos es la disociación enzimática. Enzimas individuales y una combinación de diferentes enzimas se han utilizado para aislar los leucocitos infiltrantes de la decidua basal y decidua parietal 10,14,25,28,37,42,43. En muchos casos, esas enzimas preparados para una cierta concentración a mano en el laboratory puede estar sujeto a errores humanos. Aquí, en cambio, una lista para el uso de colagenasa purificada / cóctel proteasa neutra, Accutase, se ha implementado en el laboratorio; como una enzima comercial, se ha demostrado proporcionar resultados fiables en cultivo celular 51. Accutase (una solución desprendimiento de las células) se conoce para separar eficazmente los macrófagos de placas de cultivo sin raspar y, lo más importante, sin perder superficie antígenos de 51. Esta enzima preparado también se ha utilizado para procesar la digestión de los tejidos del sistema nervioso humanos y animales, lo que resulta en células aisladas viables que permanecen sostenible durante un largo período de que, con el tiempo, permite su cultivo celular 52. Además, esta solución también conserva la antigenicidad CD24 en células aisladas de los tejidos del sistema nervioso central 52. Cuando se compara con Liberase-1, otro cóctel de colagenasa y proteasa neutra, ni Accutase ni Liberase-1 generar agregados de ADN libre; sin embargo, es Accutase gEntler que Liberase-1 durante la disociación del tejido 52. Debido a esto, Accutase no se disocia agregados de células después de la digestión 52. Para superar esta limitación, el protocolo descrito en el presente documento incluye la desagregación del tejido automática de la decidua basal y decidua parietalis antes de la disociación del tejido con la solución. Accutase también ha demostrado su superioridad a la tripsina en la preservación de CD44, una madre del cáncer marcador de superficie celular 53. Los estudios de nuestro laboratorio han señalado reiteradamente que la solución desprendimiento conserva los antígenos de superficie. De hecho, se han encontrado diferencias entre los trastornos del embarazo y embarazos normales en la expresión de varios marcadores extracelulares e intracelulares en los macrófagos (células CD14 +), neutrófilos (CD15 + células), células T (células CD3 +), y las células B (CD19 + células), incluyendo CD80, CD86, CD163, CD209, ICAM3, CD45RO, CD45RA, CXCR3, CCR7, CCR6, CD4, CD8, CD25, FOXP3, CD24, CD38, CD27, CD38, CD43, CD23, IgM, IgD, CD5, T-bet, GATA-3, y RORγt, y en la liberación de citoquinas. Por lo tanto, el protocolo descrito en el presente documento es óptimo para inmunofenotipo de los leucocitos de infiltración en la interfase materno-fetal humano como se muestra en los resultados representativos.
Una ventaja importante del protocolo descrito en este documento es que permite para el aislamiento de los leucocitos con un alto rendimiento de células viables. El representante de datos muestra que> 90% de las células aisladas son viables. Esto es de gran importancia ya que este protocolo ha permitido el estudio de las propiedades funcionales de las células aisladas de tejidos humanos en la interfase materno-fetal. Por ejemplo, las culturas de los macrófagos deciduales y el estudio de la liberación de citoquinas bajo estimulación se han realizado utilizando este protocolo.
Para lograr resultados exitosos utilizando el protocolo descrito, es importante tener en cuenta los siguientes factores: 1) Collecti tejidoel debe realizarse dentro de 1-2 horas después del parto, y estos tejidos se debe colocar en un recipiente con 1x PBS a 4 ° C para preservar la viabilidad de las células aisladas; 2) desagregación del tejido mecánico debe llevarse a cabo utilizando un homogeneizador automática en momentos validados, como se describe en este protocolo; 3) la duración de la incubación con la solución de desprendimiento de las células debe ser inferior a 1 hr ya que su actividad disminuye después de este tiempo; 4) la temperatura de la incubación con la solución de desprendimiento celular debe mantenerse a 37 ° C para obtener la actividad óptima de esta enzima; 5) la manipulación sedimento celular se debe hacer suavemente con micropipetas porque el uso del vórtice puede dañar la integridad de las células (recuerde que las células aisladas son diferenciados y manipulación brusca puede reducir fácilmente su viabilidad); 6) tampón y las temperaturas de centrífuga deben mantenerse a la misma temperatura que la suspensión de células; 7) las células aisladas se deben procesar inmunofenotípica o utilizados inmetamente como su viabilidad reduce rápidamente; y 8) al realizar la inmunofenotipificación, las muestras deben ser adquiridos usando un citómetro de flujo inmediatamente para mejores resultados.
Una de las limitaciones de este protocolo es el costo de Accutase, que es más caro que otras enzimas con funciones similares, por ejemplo, tripsina, dispasa II y colagenasa. Sin embargo, las ventajas que accutase muestra por encima de esas enzimas son superiores. Una segunda limitación del protocolo es la exigencia de un disociador tejido automático, que no es un instrumento común de laboratorio y, por lo tanto, puede ser costoso. Para superar esta limitación, la eliminación de la segregación de tejido también se puede realizar utilizando pequeñas tijeras quirúrgicas; sin embargo, este paso no puede exceder de 3-5 minutos desde períodos más largos se han demostrado para reducir el rendimiento de células viables. Todas las disociaciones deben ser realizadas por el mismo investigador para minimizar la variabilidad.
En resumen, el protocol en el presente documento ofrece un nuevo enfoque que combina el uso de técnicas de disociación de tejidos mecánicos y enzimáticos suaves para preservar la integridad de los marcadores extracelulares e intracelulares en los leucocitos aislados de los tejidos humanos en la interfase materno-fetal. Aparte de inmunofenotipo, cultivo celular, y la clasificación de células, las aplicaciones futuras de este protocolo son numerosas y variadas. Hemos estado utilizando con éxito este protocolo para aislar los leucocitos deciduales para estudios in vitro de la funcionalidad de leucocitos (es decir, la citotoxicidad, la proliferación de células T y la plasticidad, etc.), y la producción de especies reactivas del oxígeno en los leucocitos aislados de tejidos (datos no deciduales se muestra). De hecho, utilizando el protocolo descrito, nuestro laboratorio ha sido capaz de describir nuevos y raros leucocitos en la interfase materno-fetal.
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Acknowledgments
Este trabajo fue apoyado por el Instituto Nacional Eunice Kennedy Shriver de Salud Infantil y Desarrollo Humano, NIH / DHHS. Este trabajo también fue apoyado, en parte, por la iniciativa de la Universidad de Wayne State Perinatal en maternas, perinatales y Salud Infantil. Agradecemos Maureen McGerty (Wayne State University) por sus lecturas críticas del manuscrito.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Dissection | |||
| Sterile dissection tools: surgical scissors, forceps, and fine-tip tweezers | Any vendor | 20012-027 | |
| 1X phosphate buffered saline (PBS) | Life Technologies | (1X PBS) | |
| Large and small Petri dishes | Any vendor | ||
| Dissociation | |||
| Accutase | Life Technologies | A11105-01 | (cell detachment solution) |
| Sterile 2 ml safe-lock conical tubes | Any vendor | ||
| 50 ml conical centrifuge tubes | Any vendor | ||
| 100 µm cell strainers | FALCON/Corning | 352360 | |
| 5 ml round bottom polystyrene test tubes | Any vendor | ||
| Transfer pipettes | Any vendor | ||
| C tubes | Miltenyi Biotec | 130-093-237 | |
| Cell Culture | |||
| RPMI culture medium 1640 | Life Technologies | 22400-089 | (1X) (10% FBS and 1% P/S) |
| Plastic chamber slides | Thermo Scientific | 177437 | |
| Incubator | Thermo Scientific Corporation | HEPA Class 100 | |
| Water bath | Fisher Scientific | ISOTEMP 110 | |
| Cell counter | Nexelcom | Cellometer Auto2000 | |
| Microscope | Olympus | Olympus CKX41 | |
| Cell Separation | |||
| MS columns | Miltenyi Biotec | 130-042-201 | |
| Cell separator | Miltenyi Biotec | 130-042-109 | |
| 30 μm pre-separation filters | Miltenyi Biotec | 130-041-40 | |
| Multistand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | |
| 15 ml safe-lock conical tubes | Any Vendor | ||
| MACS buffer | (0.5% bovine serum albumin, 2 mM EDTA and 1X PBS) | ||
| Reagents | |||
| FcR Blocking | Miltenyi Biotec | 130-059-901 | (Fc Block) |
| Anti-human cell surface antigen antibodies | BD Biosciences | (Table 1) | |
| Bovine serum albumin | Sigma | A7906 | |
| LIVE/DEAD viability dye | BD Biosciences | 564406 | |
| Lyse/Fix buffer | BD Biosciences | 346202 | |
| FACS buffer | (0.1% BSA, 0.05% Sodium Azide, and 1X PBS, pH=7.4) | ||
| Staining buffer | BD Biosciences | 554656 | |
| Trypan Blue solution 0.4% | Life Technologies | 15250-011 | |
| Ficoll | GE Healthcare | 17-1440-02 | 20% density gradient media (1.077 + 0.001 g/ml) |
| Additional Instruments | |||
| Incubator with shaker | Thermo Scientific | MAXQ 4450 | |
| Flow cytometer | BD Biosciences | LSR-Fortessa | |
| Centrifuge | Beckman Coulter | SpinChron DLX | |
| Vacuum system | Any vendor | ||
| Automatic tissue dissociator | Miltenyi Biotec | gentleMACS Dissociator | |
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