Summary
Микродиализ является широко используется метод в области нейронаук. Поэтому коммерческие зонды в большой demand.In эта работа сборка зонд подробно, чтобы построить надежный, концентрические, на заказ микродиализа зонд менее чем за $ 10.
Abstract
Микродиализ является широко используется метод в области нейронаук. Поэтому коммерческие зонды большим спросом контролировать физиологические, фармакологические и патологические изменения в спинномозговой жидкости. К сожалению, коммерческие зонды дорого для научно-исследовательских групп в государственных учреждениях. В этой работе, сборка зонд подробно построить надежную, концентрические, на заказ микродиализа зонд менее чем за $ 10. Микродиализ зонд состоит из полисульфона мембраны с молекул рным отсечением 30 кДа. Зонд в пробирке восстановление веществ с различной молекулярной массой (в диапазоне 100-1,600 DA) и различными физико-химическими свойствами по сравнению. Зонд дает восстановление в пробирке примерно 20% для небольших соединений глюкозы, лактата, ацетилхолина и АТФ. В пробирке извлечения для нейропептидов с молекулярной массой от 1,000-1,600 Да составляют 2-6%. Таким образом, в то время как более высокой молекулярной Wвосемь из нейропептидов снижена значений пробирке восстановления, диализ соединений в нижнем диапазоне (до 500 Da) молекулярных весов не имеет огромное влияние на в пробирке скорости восстановления. Данный способ позволяет использование диализа мембраны с другим значением отсечения и мембранного материала. Таким образом, этот заказ сборки зонда имеет преимущество достаточной гибкостью, чтобы диализа веществ в широком диапазоне молекулярных масс. Здесь мы вводим микродиализа зонд с обменным длиной 2 мм, которая применима для микродиализа в мыши и крысы областях головного мозга. Тем не менее, размеры зонда может быть легко адаптирована для больших длин обмена для использования в более крупных животных.
Introduction
Микродиализ является широко используется метод в области нейронаук. За последние 50 лет, минимально-инвазивная методика микродиализа постоянно совершенствовалась, чтобы стать хорошо создана метод контроля локальных концентраций мелких соединений молекулярным весом в межклеточное пространство. Почти каждый межклеточной жидкости ткани могут быть исследованы в свободно движущихся животных.
Gaddum представил технику двухтактный в 1960-х. Он изменил подход от Feldberg и др., В которых тубокурарин вливают через канюлю заканчивается в боковой желудочек и сбора эффлюента также через канюлю 1. Gaddum разработана методика двухтактный, в котором канюли, состоящий из двух концентрических стальных игл был имплантирован в различных областях головного мозга и перфузии раствором, одновременно удаляя нейротрансмиттеры, высвобождаемые из нейронов, окружающих верхушку 2. К сожалению, ткани дамаGE вызвано канюли вокруг кончика ограничивает применение этого метода. В дальнейшем продвижении этого метода, Бито и его коллеги ввели метод диализа, в котором собраны раствор отделили от окружающей ткани с диализной мембраны. Они имплантировали диализа мешок в подкожной ткани собак шеи. Содержание диализа является белков и не могут быть проанализированы многие недели для ионов и аминокислот 3. Следующим шагом в развитии была dialytrode, примитивный микродиализ зонд, который первоначально был описан в 1972 Delgado 4. Наконец, Ungerstedt и его коллеги улучшили схему микродиализа зонда так, чтобы она была меньше и меньше смещены ткани 5.
Концентрические микродиализа зонд ведет себя подобно капиллярной крови. Система постоянно перфузии раствором с участием ионный состав окружающей тканевой жидкости, а не имея интерес аналит. Чте диализа мембраны воздействию внешнего раствора или ткани является полупроницаемой. Это позволяет пассивной диффузии веществ в зонд вдоль градиента их концентрации 6. Проницаемость зависит от многих факторов, таких как молекулярной массы, формы, заряда и рН соединения. Он также ограничен из-за свойств материала мембраны, размер пор мембраны и скорость потока 7.
1 и 2 показывают концентрическую микродиализные зонд. Перфузионной жидкости поступает через впускной трубки в металлической гильзе, которая окружает кварцевого стекла. Внутри металлического рукава, он стекает по плавленого кварца и оставляет его на кончике. В пространстве между диализной мембраны и политетрафторэтилен (ПТФЭ) -tubing (например, тефлон) перфузии жидкости затем течет вверх. Здесь диффузии веществ из ткани происходит, которые окружают мембраны. Диализат оставляет зонд через ПТФE-трубки, который соединен с выпускной трубки и может быть собрана.
Методика микродиализа имеет несколько преимуществ по сравнению с другими методами в естественных условиях. Зонд представляет собой физический барьер в результате чего диализат не содержит ферментов или клеток. Таким образом, нет необходимости в очистке элюата перед анализом, и не ферментативное расщепление аналитов не происходит. Окислительной деградации может произойти во время прохождения аналитов в трубке, но это часто может быть предотвращено путем добавления антиоксиданта (например, аскорбиновая кислота) в перфузат. В качестве альтернативы, окислительное повреждение нейропептидов, например, было эффективно подавлено путем замены трубки на выходе с наконечником для сбора диализата 8. Диализат может быть исследована непосредственно с почти любой вид аналитического метода и несколько аналитов могут быть собраны одновременно. Эта система может быть использована в активных животных, и почти все области мозга может бытьрассмотрел. Кроме того, вливание препаратов через зонд можно (retrodialysis). Тем не менее, есть также ограничения метода микродиализа. Несколько раз с низким разрешением не предоставлять информацию в режиме реального времени об изменениях нейромедиаторов. Потому что это агрессивная техника, зонд имплантация вызывает хирургическую травму и анестезии, которые могут повлиять на нейротрансмиттеров концентрации, необходимый во время этого шага 7,9,10.
Концентрация соединения в диализате составляет лишь небольшое количество фактического концентрации соединения во внеклеточной жидкости. Для расчета неизвестной концентрации соединения во внеклеточной жидкости, относительная восстановления в пробирке должен быть рассчитан. Определение индивидуального родственника в пробирке извлечения для каждого зонда и каждого соединения необходимо перед началом эксперимента в естественных условиях. Для этого, зонд погружают в раствор, содержащийинтерес аналит, тогда как перфузионной жидкости в тот же раствор не имея интерес аналит. После определения концентрации соединения в диализат, эти данные должны быть отнесены к их концентрации в окружающей жидкости. In Vitro восстановления определений различных веществ могут быть реализованы одновременно 9.
Многие неврологии исследовательских групп используют технику микродиализные исследовать нейротрансмиттеров и метаболитов во внеклеточном пространстве в различных областях головного мозга. Таким образом, коммерческие зонды большим спросом в неврологии исследовательской среды. Большим преимуществом коммерчески доступных зондов высокая функциональная надежность. Экспериментальная установка для коммерческих зондов хорошо известна и утверждена для многих известных нейротрансмиттеров и метаболитов. Тем не менее, в то время как коммерчески доступный микродиализ оборудование стоит дорого и имеет меньшую гибкость в применении 11, в гоэто работать в сборе микродиализ зонда представлена в деталях, которые могут быть адаптированы к любым приложением, и может быть изготовлен менее чем за $ 10. Это заказ зонд концентрические микродиализа зонд испытания для исследований в различных областях головного мозга 8.
В пробирке зонда извлечения веществ с различной молекулярной массой (диапазон 100-1,600 DA) и сравнивают с различными физико-химическими свойствами. В пробирке определение восстановления глюкозы, лактата и ацетилхолина с молекулярной массой менее 200 Da, АТФ с молекулярной массой приблизительно 500 Да и нейропептиды ангиотензина II, вещество Р и соматостатина с молекулярной массой выше 1000 дальтон выполняется.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Подготовка ПТФЭ-трубка
- Сократить PTFE-трубы в 2.5 см. Используйте бумагу масштаб оценить физические размеры. (Рис 3а)
- Отрежьте один конец под углом для облегчения подключения на выходе трубы. (Рис 3а)
- Шероховатым ПТФЭ-трубки с использованием наждачной бумаги, чтобы склеивание с эпоксидным клеем.
2. Подготовка плавленого кварца
- Сократить кварцевого стекла в 2,25 см кусок. (Рис 3а)
3. Установка кварцевой в PTFE-трубы
- Вставьте 30 G канюли в полый PTFE волокна пробить его на расстоянии 1 см от плоского конца. Согните PTFE-шланг для упрощения процесса. (Рис 3b)
- Вставьте кварцевого стекла в ПТФЭ-трубки с использованием канюли в качестве руководства. (Рис 3в)
- Аккуратно снимите канюлю и закрепить кварцевого стекла. (УвидетьРис 3)
- Плавленый кварц должен выступать на 5 мм на торце. (Рис 3e)
- Клей кварцевой на месте на месте прокола цианакрилатного клея и дайте ему затвердеть в течение ночи. (Рис 3e)
4. Подготовка эпоксидного клея (клей Двухкомпонентный)
- Добавить 30 частей желтого отвердителя 70 частей черного эпоксидного клея с помощью тонкой иглы и смешайте его нежно. Это непосредственно готовы к использованию.
5. Применение мембраны (Все дальнейшие шаги должны быть выполнены под микроскопом и масштаб работы, применяется для определения физических Размеры)
- Потяните полисульфоновое мембрану тщательно над плавленого кварца, а затем потяните мембрану в PTFE-трубы и отрегулировать мембрану до 5,5 мм, используя острый скальпель. (Рис 3F)
- Установите маркировку точки на мембране с тонкой ручкой для определения обменного длину 2 ммот конца оболочки.
- Нанесите небольшое количество эпоксидного клея, чтобы покрыть наконечник мембраны с помощью тонкой иглы. (Рис 3g)
- Закрывают стык между диализа мембраны и волокон ПТФЭ с помощью той же тонкой иглой, используемого на стадии 5.3) с эпоксидным клеем. (Рис 3g)
- Добавьте достаточно эпоксидный клей на мембране до метки точки для обеспечения обмена длину 2 мм. Позвольте ему затвердеть в течение ночи. (Рис 3G) До определения длины обмена, мембрана 5,5 мм. После нанесения эпоксидного клея на мембране, только на 2 мм мембраны доступна для диффузии.
6. Применение металлической гильзе
- Вырезать 25 G иглу в 1 см металлический рукав куски помощью гибочного плоскогубцами.
- Потяните 1 см металлической муфты (25 г) на остальной части плавленого кварца. Металлическая втулка позже позволяет подключение впускного трубопровода с MICRODIAлизис зонд. (Рис 3h)
- Печать соединения между металлическим рукавом и PTFE-трубы с оставшимся эпоксидным клеем. Позвольте ему затвердеть в течение, по крайней мере 24 часов. (Рис 3i)
- Применяя горячий клей вокруг бифуркации зонда для дополнительной фиксации и стабилизации.
Примечание: на входе внутренний объем зонда 0,045 мкл и выпускной внутренний объем 2,5 мкл. Таким образом, при скорости потока 1 мкл / мин, это занимает приблизительно 2,5 мин, после соединения впускной трубы, чтобы начать сбор диализата. С настоящего Протокола, процедура сборки зонда дает микродиализа зондов, которые 95% надежным.
7. Выполнение экспериментов In Vitro восстановления
- Падение зонда с отсечкой 30 кДа и обмена длиной 2 мм в маточного раствора, состоящего из ACSF, содержащего 1 мМ глюкозы и 1 мМ лактата и, в отдельном эксперименте, в CSF, содержащий 100нМ АТФ и 100 нМ ацетилхолина.
- Заливать зондов с ACSF. Указан расход 1 мкл / мин и проводить эксперименты при комнатной температуре (22 ° С). Разрешить зонды для уравновешивания в течение 1 часа в маточном растворе, а не собирать образцы каждые 30 мин после этого и хранят при -80 ° С до измерения.
- Для расчета извлечения в пробирке, сравнивать концентрации аналитов в диализате с известными концентрациями аналита в маточном растворе. Экспресс результаты в процентах от концентрации вещества в диализат против исходного раствора.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Концентрические заказ микродиализ зонд состоит из полисульфона мембраны с молекул рным отсечением 30 кДа. Сборка зонд показано на рисунке 3.
Это выставлены восстановление в пробирке для глюкозы мало энергии метаболитов (180,16 Da) и лактата (112,06 Da) в 19.10 ± 1.2% и 21.2 ± 1.6%, соответственно. Для положительно заряженной ацетилхолина с молекулярной массой 181.66 Да, он показал ин витро восстановительной стоимости 22,6 ± 1,4%. АТФ с молекулярной массой 551,62 дальтон и три отрицательно заряженных фосфатных остатков дал восстановление в пробирке в сопоставимой степени (22,4 ± 0,7%). В пробирке восстановление малых молекул приведены на фиг.4А.
Нейропептиды с молекулярной массой выше 1000 дальтон показали ниже в пробирке извлечения по сравнению с более мелкие молекулы (<500 Да) (см Fi фигура 4В). Среди протестированных нейропептидов, ангиотензин II (1,046.18 Да) является наименьшим пептид с 8 аминокислот. Это выставлены восстановление в пробирке 6,1 ± 0,3%. Остаток кислоты вещество Р 11 амино (1,347.63 Да) и соматостатин кислоты 14 амино (1,637.88 Да) показали примерно равны в пробирке значений рекуперации 2,2 ± 0,3% и 2,3 ± 0,1%, соответственно. В пробирке извлечения нашего 30 кДа зонда сопоставимы с восстановлений в пробирке коммерчески доступных микродиализные зондов (СМА микродиализа, Стокгольм, Швеция), например. лактат 23% и 13% глюкозы (см приложение, обратите внимание, нет. 1)
Рисунок 1: Фотография заказной зонда.
8 / 53048fig2.jpg "/>
Рисунок 2: Схематическое изображение из микродиализа зонда (Перепечатано из Lietsche др, 2014, с разрешения Elsevier.).
Рисунок 3: Схематическое изображение узла зонда; шаг ай подробнее см протокол (перепечатано из Lietsche др., 2014 г., с разрешения Elsevier).
Рисунок 4: Восстановление небольших молекул и нейропептидов (а) восстановление пробирке глюкозы, лактата, ацетилхолина и АТФ.. Раствор содержал 1 мМ глюкозы и лактата и, альтернативно, от 100 нм АТФ и 100 нм ацетилхолин для каждой экспериментальной состоянии. Результаты выражали в процентах от вещества Concentration в диализат / раствора. Значения исследуемых веществ являются средством ± SD п = 22 для глюкозы, п = 22 для лактата, п = 11 для ацетилхолина и п = 13 для АТФ. (Б) в пробирке восстановление нейропептидов ангиотензина II, вещества Р и соматостатин. Раствор содержал 100 нМ ангиотензин II, вещество Р и соматостатин для каждой экспериментальной состоянии. Результаты выражали в процентах от концентрации вещества в диализат / маточного раствора. Значения столбцов средства ± SD п = 6 для каждого зонда.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Фиг.3 показывает примерную сборку зонда. Правильные размеры внутренней и внешний диаметр должны быть внимательно следили за труб (OD 1,6 мм; ID 350 мкм), плавленого кварца (OD 105 мкм; ID 40 мкм) и диализной мембраны (OD 245 мкм; ID 210 мкм). Важно также, чтобы сохранить пространство между мембраной и плавленого кварца из (105 мкм), а также между мембраной и трубкой (105 мкм), а. Если значения различаются, давление в зонде может расти и привести к утечке мембраны.
Здесь мы вводим микродиализа зонд с обменным длиной 2 мм, которая применима для микродиализа в регионах мозга мыши. Однако размеры могут быть легко приспособлены для больших длин обмена для использования в более крупных животных.
Некоторые части сборки могут быть заменены. Например, нет необходимости в использовании ПТФЭ трубку. Применение полиэтиленовой трубки также возможно с одинаковыми внешний и гостиницыэ размеры диаметр. Шероховатости трубы необходимо только при использовании ПТФЭ-трубки. Замена мембраны диализа также возможно. Для настоящего зондового, 30 кДа отсечки мембраны используют, но и любой другой диализа мембраны могут быть использованы с идентичными размерами. Таким образом, наш заказ сборки зонда имеет преимущество большой гибкости диализировать вещества с широким диапазоном молекулярной массы; чем выше молекулярная масса отсечки, чем выше молекулярная масса вещества, которое может быть диализу. В пробирке восстановление, как правило, увеличивается с молекулярно-весовое отсечение диализной мембраны.
Для покрытия наконечник мембраны, эпоксидный клей необходимо закрыть стык между диализа мембраны и PTFE-трубы и для определения длины курса. Применение цианоакрилатный клей не возможно на этом этапе, потому что это влияет на диализной мембраны и приводит к утечке. Цианоакрилатный клей для склеивания плASTIC следует применять для фиксации плавленого кварца с трубки на месте на месте прокола.
Следует отметить, что эта конструкция датчика не был протестирован с направляющие канюли. Наша лаборатория предпочитает имплантировать зонды низкого диаметра для острых экспериментов, в которых у нас есть 48-72 ч экспериментальной времени, прежде чем астроглиоз вызывает неисправность зонда. Для этого типа эксперимента, руководство канюли не имеют преимущество, потому что руководство канюли больше и вызывают больше повреждение тканей. Более того, даже с направляющей канюли в место, зонд всегда должен быть вставлен в здоровой ткани головного мозга, вызывая острое поражение в области диализа. Повторное введение и удаление зонда через направляющие канюли вызывает повторный ущерб, ситуацию, которая избежать одной-времени, то есть острой вставки. Гематоэнцефалический барьер было показано, что интактные несколько часов после имплантации 12. Направляющие канюли являются предпочтительными, однако, когда серии измерений чпр быть сделано в течение нескольких дней или недель. Наконец, летучие анестетики должны использоваться для зонда имплантации, поскольку инъецируемые анестетики мешать последующих экспериментах в течение 1-2 дней.
В пробирке восстановлений для глюкозы, лактата, ацетилхолина и АТФ примерно 20%, то есть для всех протестированных небольшие веществ молекулярным весом, восстановление в пробирке почти равны. Очевидно, что в нижнем диапазоне (до 500 Da), молекулярная масса не имеет большого влияния на в пробирке скорости восстановления. Молекулярная масса отсечки 30 кДа также позволяет диализировать нейропептиды. В связи с более высокой молекулярной массой из нейропептидов, в пробирке значение восстановления ниже. Вещество Р (1,348 Да) и соматостатин (1638 Да) может быть диализу в той же степени, в пробирке с значениями восстановления 2-3%. Хотя оба пептида имеют массовый сдвиг приблизительно 300 дальтон, в пробирке восстановление остаются теми же. Оба ПодстANCE Р и соматостатина положительно заряжены в водном растворе и может демонстрировать подобные физико-химические свойства. Ангиотензин II с молекулярной массой 1046 Да показывает высокую в пробирке восстановление до 6%, что в три раза больше, чем у двух других нейропептидов. Следовательно, молекулярные массы выше 500 Да ясно влияет на восстановление в пробирке, даже если при вещества загружают нейтральным в водном растворе. В этом случае восстановление в пробирке не зависит от расхода Диализованный веществ. Тем не менее, при использовании других мембранных материалов, восстановление заряженных соединений могут влиять 8.
В заключение, сборка на заказ микродиализа зонда приемлемой альтернативой коммерческим зондов. Наши самодельные датчики крепкий, имеют высокую надежность и хорошую воспроизводимость.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Epoxy glue | SunChrom GmbH, Fiedrichsdorf, Germany | ||
Fused silica ID 40 µm OD 105 µm | Ziemer-Chromatographie, Mannheim, Germany | Art. No: 6.040105 | |
Polysulfone membrane (haemodialysis filter FX Cor Diax 600) | Fresenius Medical Care AG & Co. KGaA, Bad Homburg, Germany | REF: F00001593 | |
Cyanacrylate glue (Pattex® superglue plastic) | Henkel AG&Co. KGaA, Düsseldorf, Germany | ||
TEFLON-tubing 1.6 x 0.35 mm | SunChrom® GmbH, Friedberg, Germany | Art. No: 969-195.219 | |
Scalpel (Feather® Surgical Blade No. 10) | pfm medical ag, cologne, Germany | Art. No: 07310 | |
Microscope | MEIJI Techno | EMZ-8TR | |
30 G x 11" (0.3 x 25 mm) cannula Sterican® Z | B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | REF: 9324500 | |
25 G x 11/2" (0.5 x 40 mm) cannula 100 Sterican® | B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | REF: 9186166 | |
Fine pen (Stabilo point 88 fine 0.4) | Schwan-STABILO Schwanhäußer GmbH & Co. KG | Art. No: 88/36 | |
Hot glue (Glue sticks ULTRA Power x 11 mm) | Steinel® GmbH, Herzebrock-Clarholz, Germany | Art. No: 4007841046910 | |
Sandpaper P60 230 x 280 | Robert Bosch GmbH, Gerlingen-Schillerhöhe, Germany | Catalog Number: 2608605397 |
References
- Feldberg, W., Malcom, J. Experiments on the site of action of tubocurarine when applied via the cerebral ventricles. J Physiol. 149, 58-77 (1959).
- Gaddum, J. H.
Push-pull cannulae. J Physiol. 155 (1 P), (1961). - Bito, L., Davson, H., Levin, E., Murray, M., Snider, N. The concentrations of free amino acids and other electrolytes in cerebrospinal fluid, in vivo dialysate of brain, and blood plasma of the dog. J Neurochem. 13 (11), 1057-1067 (1966).
- Delgado, J. M., Lerma, J., Martín del Río, R., Solís, J. M. Dialytrode technology and local profiles of amino acids in the awake cat brain. J Neurochem. 42 (5), 1218-1228 (1984).
- Ungerstedt, U., Pycock, C.
Functional correlates of dopamine neurotransmission. Bull Schweiz Akad Med Wiss. 30 (1-3), 44-55 (1974). - Ungerstedt, U. Microdialysis--principles and applications for studies in animals and man. J Intern Med. 230 (4), 365-373 (1991).
- Bourne, J. A. Intracerebral microdialys: 30 years as a tool for the neuroscientist. Clin Exp Pharmacol Physiol. 30 (1-2), 16-24 (2003).
- Lietsche, J., Gorka, J., Hardt, S., Karas, M., Klein, J. Self-built microdialysis probes with improved recoveries of ATP and neuropeptides. J Neurosci Methods. 237, 1-8 (2014).
- Chefer, V. I., Thompson, A. C., Zapata, A., Shippenberg, T. S.
Overview of Brain Microdialysis. Curr Protoc Neurosci. 7, Unit 7.1 (2009). - Neurochem, J.
Brain Microdialysis. J. Neurochem. 52 (6), 1667-1679 (1989). - Jolly, D., Vezina, P. In vivo microdialysis in the rat: low cost and low labor construction of a small diameter, removable, concentric-style microdialysis probe system. J Neurosci Methods. 68 (2), 259-267 (1996).
- Sumbria, R., Klein, J., Bickel, U. Acute depression of energy metabolism after microdialysis probe implantation is distinct from ischemia-induced changes in mouse brain. Neurochem Res. 36, 109-116 (2010).