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Neuroscience

激光制导神经跟踪在脑外植体

Published: November 25, 2015 doi: 10.3791/53333

Summary

我们描述了一种技术,通过顺行或逆行示踪剂注射标记的神经元和它们的过程变成使用体外制备脑核。我们修改的I N通过利用荧光标记的小鼠突变体和基本的光学设备,以便增加贴标精度体外示踪剂电穿孔的现有方法。

Abstract

我们提出结合体外示踪剂注射方案,它使用了一系列的电气和压力脉冲的过程中,通过电穿孔,增加脑外植体与靶向激光照明和匹配滤波器护目镜染料吸收的技术。 在体外的电本身所描述的技术产生了比较良好的视觉控制目标定位大脑的某些区域。通过将其与荧光遗传标记的激光激发和它们的读出通过带传递滤波器护目镜,其中可以拿起遗传标记的细胞/细胞核和荧光示踪染料的排放量,研究者可以大幅提高注射剂的精度相结合通过找到感兴趣的区域,并更有效地控制了该染料扩散/吸收在注射区域。此外,激光照射技术允许研究给定neurocircuit通过省的功能iding约神经元投射到一特定区域的情况下的GFP表达被链接到发射机的由神经元的亚群表达的类型的类型的信息。

Introduction

为了定义一个特定的神经元(微)电路,必须通过找出所述电路,和它们的连接图形的各个参与者启动。自从沃勒的出版约neurofiber通过损毁1种类繁多的神经解剖跟踪技术跟踪已经建立。这些技术的一些可以在固定的组织验尸2-4被应用,更为依赖于染料的活的神经元的活性的运输,如发现于1971年5-6。后者可进一步细分为两组利用活性逆行方法区分(从注入区域到给定突起的来源所突出的所述区的神经元的胞 ​​体)和活性顺行(从注入面积给定突起的目标轴突突起和标记的神经元)传输的轴突终端。此外,在一些情况下,TRA减量材料注入活的动物,然后注入由数天或数周体内示踪剂注射)存活,而在其他情况下取出的大脑注射和注入人工脑脊液后孵育几个小时体外示踪剂注射) 。

在这个协议中,我们修改了现有的体外电击技术7-8在使用霍乱毒素亚基B和四甲右旋糖酐作为跟踪物质顺行和逆行追踪实验标记神经元胞体和进程。此协议的总体目标是提供神经科学家与一个有效的工具来跟踪不同的大脑核团神经元之间的连接方式,同时采取可转基因小鼠线和基本的光学设备的优势,以便在示踪剂注射,以增加定位精度。虽然顺行和逆行追踪的方法,用霍乱毒素和葡聚糖胺和它们各自的荧光标记的偶联物是不是新的9-13,(由于是电穿孔的方法 ,例如:Haas14),示踪注射涉及脑组织的块的组合与电穿孔体外制备是一个比较新的发展7。使用相同类型的示踪染料的活体动物过度神经元的跟踪技术的主要优点是由于较高的效率与该电穿孔的染料被拉紧的神经元的增加的标记强度。一个附加的优点是示踪剂注射期间缩短的潜伏期(用于染料运输)和其增加的目标准确度,因为实验者具有视觉地控制喷射的目标区域。后者也意味着不需要昂贵的立体定向的设备,需要找到感兴趣的核或大脑区域。

为了阿迪tionally增加靶向准确性,我们采取了转基因小鼠系,它表达的GFP在其甘氨酸神经元15和基本的光学设备组成的405nm的波长和匹配带通滤波护目镜的手持式激光指针(450的亚群的优势- 700纳米)。因此,我们在通过其荧光信号识别注射区靶向精度和通过提供一种更细的方式,通过观测土著GFP信号和所述示踪剂的相互作用的时,控制该注射区域内的染料扩散取得显著进一步增加荧光。我们的技术还允许揭示的电路的功能以及通过识别GFP阳性抑制性神经元及其连通(或兴奋性在其它小鼠品系)填充的示踪剂。

总之,我们进一步增强了强大的神经科学工具,研究脊椎动物脑的连接组和评估吨他给定neurocircuit不同的神经解剖学特征。通过使用转基因小鼠以及便宜且广泛可用的光学设备,我们能够显著增加我们注射剂的靶向精度。此外,转基因小鼠使我们能够确定被跟踪的连接,这有助于揭示在听觉脑干的抑制微电路的功能类型。

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Protocol

1.光学基因分型

乳鼠1.光学基因分型

  1. 检查使用适当的激发波长的激光指针的各荧光标记物的表达(在这里描述的实验中为405nm)和相应的过滤器护目镜阻断激发波长不过将发射波长(450 - 700在此处描述的实验纳米) 。点激光指示器在头部或鼠标小狗脊髓的背面( 参见图1)。避免闪耀的激光进入眼睛和皮肤的激光的冗长曝光。

较早的动物2.光学基因分型

  1. 通过腹膜内注射(120毫克/公斤体重)深深麻醉小鼠(老化P14到在这里描述的实验P138)用戊巴比妥的过量。通过检查动​​物的反射确认适当的麻醉(简称捏个尖Ë耳朵或后腿之一,引起耳或腿)的回缩反射。
  2. 注意:尽管使用戊巴比妥(120毫克/千克体重)的过量,我们指的是注射过程为“深度麻醉”,而不是安乐死,因为动物是理想情况下还活着( 它的心脏还在跳动),当手术和灌注开始。这确保了内部器官包括脑的更有效的灌注。
  3. 一旦动物没有显示任何反射,小心地通过使在皮肤覆盖头部的背面的切口和切割到头骨的中部去除皮肤覆盖在头骨图2A)。暴露揭露头骨激光光并如上所述通过过滤器护目镜观察荧光。如果一个积极的信号GFP观察,继续执行步骤2,如果不通过断头牺牲动物(秒/确保安乐死下列表格我们IACUC规定)。

注意:在更老的小鼠(> 1个月)的荧光可以通过动物的眼睛中观察到。

2.穿心灌注和脑准备

  1. 用冰冷的磷酸盐缓冲盐水灌注transcardially(PBS;氯化钠:137毫,氯化钾:2.7毫,KH 2 PO 4:1.76毫米, Na 2 HPO 4:10毫米),使用地下30注射器针从很大程度上除去血这个动物。
    1. 首先,小心地打开胸廓用锋利的剪刀,然后将针头推入心脏的左心室。启动抽PBS到心脏和主动脉,并紧跟这一步打开心脏的右心房与剪刀允许血液离开人体。注意:灌注需要5 - 10分钟取决于动物的大小。
  2. 通过灌注放血后,杀头的动物,保护其头部引脚needles(或为30G注射器针头)通过眼窝刺入他们的准备菜,从头骨取出大脑。
    1. 首先,用锋利的剪刀剪下皮肤覆盖在颅骨:做一个小切口在脑后,然后沿头部的背侧中线切开,切成只是尾部的动物的眼睛两侧而在尾方向最后切到了脑后彻底清除皮肤的皮瓣。
    2. 接下来,重复颅骨本身相同的切削模式,确保在这个过程中删除这两个耳蜗,因为这将显著简化到底切除脑干。此过程后大脑的尾半应处于完全暴露。
    3. 在下一步骤,使用锋利刀片或手术刀贯穿全前脑削减在约45°至约2毫米喙从小脑的角度。舀出大脑中与AB的分离的前半耳鼻喉科锅铲。
    4. 使用抹刀提升大脑的尾侧一半在其嘴侧端并通过仍连接到脑干其腹侧脑神经随后切割。作为一个最终的结果,脑包括脑干尾端一半应该自由地脱落配制的动物头的其余部分。
    5. 翻转大脑以暴露其腹侧的除去尾半和沿冠状面只是喙切(对于顺行注射)或只是尾椎(对于逆行注射)的含有梯形体的腹侧位于“灯泡”(见步骤2.3)。
      1. 始终使用锋利的刀片或手术刀的切割程序,以尽量减少对组织造成过度的机械应力性细胞死亡。作为一个最终的结果,应该已经获得了脑外植体跨越长度约1厘米,并包含沿等脑区的完整的上橄榄复合体。
    </ LI>

注意:此协议演示程序示踪剂注射入位于听觉脑干梯形体。根据需要适应切割面和注射部位的位置和方向。如果兴趣谎言足够接近脑表面,使得它们可以被识别并且不切断脑部注射的荧光脑区(参见图2B),然后在冠状切割步骤可以省略。

  1. 确定梯形体含有梯形体(VNTB)腹侧核2腹突出的“灯泡”。

注:有关这些切割面的近似立体定位进一步解剖参考,请参阅寰富兰克林和Paxinos,2008年面板78,前囟〜-5.7毫米显示内侧核的梯形体(= MNTB)的标示为“Tz的“。面板69显示梯形波腹核DY(VNTB)标记为“MVPO”(medioventral periolivary核)19。

3.顺行/逆行追踪

注意:在RT(25℃)下进行所有下面的步骤。

  1. 切割后,将脑干外植体在制备培养皿含有充氧(95%O 2,5%的CO 2)解剖溶液(氯化钠:125毫,氯化钾:2.5毫米, 氯化镁 :1mM的, 氯化钙 2:0.1毫米,葡萄糖:25mM的,将NaH 2 PO 4:1.25毫, 碳酸氢钠 :25mM的,抗坏血酸:0.4mM的,肌醇:3毫米,丙酮酸:2毫米),用30克的注射器针头固定它。确保注射区域朝上。
  2. 从硼硅玻璃拉注射移液器,并与以下三种溶液中的一个填充它们:a)一种为1.0mg / ml的溶液霍乱毒素亚基-B的共轭到Alexa的荧光团555在PBS 12-13日 (主要用于逆行运输),B )1%-dilution在葡聚糖四甲555(3000兆瓦,主要用于逆行运输)或c)1%-dilution的0.9%盐水中的万MW葡聚糖TRITC 555 0.9%的盐水(主要用于顺行运输)。
    1. 确保注射针的电阻范围为2.5至3.5兆欧姆,并且他们在3被制造 - 4拉周期。对于这里描述的实验中,通过在吸管拉马选择预编程的拉算法实现这一目标。
  3. 照亮使用适当波长的静态安装激光指示器大脑外植体(项目编号2 3A;在这里描述的实验中405nm的波长)。使用激光指针作为用于注射剂的导向,并且旨在将激光束在荧光标记的脑核或感兴趣的细胞将被注入。
  4. 查找并通过双目显微镜观察照射目标区域,而穿着兼容的过滤器眼罩(450 - 700纳米的带通滤波器在这里描述的实验)。插入通过显微注射电极到感兴趣的区域。
  5. 注射示踪物质。注射由2 - 10压脉冲在15psi的每个50毫秒,利用压力注射装置,定向垂直成的感兴趣区(ROI)的区域中的脑切片内。管理每个压力脉冲的10个间隔 - 15秒,以允许染料扩散。
  6. 在四甲(TRITC)注射剂的情况下,附加地刺激电极通过电穿孔,以提高上染率与放置在感兴趣的脑区域(MNTB和VNTB在这里描述的实验)的电极。
    1. 使用的8伏的TTL 8脉冲50毫秒与50毫秒脉冲间间隔,通过刺激器驱动并放大到55 V用刺激隔离单元(项目图3B中第7号和9)。使用10 - 20重复该协议,adminis的羊羔数分钟7,8。确保正确接地电极 - 接地线应接在洗澡的解决方案!
  7. 检查注射成功。自的荧光示踪剂具有较长的发射波长也发射在激光激发的荧光信号以更短的波长,在视觉上检查该染料吸收/分散在注射的目标区域而照射与激光​​的区域,并通过过滤器护目镜观察。

4.孵化

  1. 注射后,孵育脑干中含氧人工脑脊液(ACSF;氯化钠:125毫,氯化钾:2.5毫米, 氯化镁 :1mM的, 氯化钙 2:2毫米,葡萄糖:25毫米,的NaH 2 PO 4:1.25毫,的NaHCO 3:25毫米,抗坏血酸:0.4mM的,肌醇:3毫米,丙酮酸:2毫米,通入95%O 2 - 5%的CO 2)在室温(RT,25℃)为1 - 4小时,而染料被输送。泡沫在整个孵化期的解决方案。
  2. 接着,转移脑干中的4%多聚甲醛(PFA)溶解在PBS(约100个​​ml的; pH为7的PFA / PBS中混合),并培育它们在4℃下,以允许后固定过夜(O / N)。

5.组织切片和安装

  1. 第二天,洗涤脑干三次在PBS(5分钟,每次洗涤步骤),包括它在4%琼脂,然后切成50 - 80微米厚的薄片上的vibratome。使用在载玻片上,和盖玻片封固剂安装片。
  2. 任选,(以1例如蓝色尼斯尔:100稀释在AB培养基)标记有荧光尼氏切片25分钟。
    1. 为了制备AB介质,混合250个毫升0.2M磷酸缓冲液(PB; 51毫KH 2 PO 4,150mM磷酸氢二钠),15毫升5 M氯化钠,15毫升10%的Triton-X,220 ml的DDH 2 O的和5g牛血清白蛋白。
    2. Prece德和成功由3洗涤步骤的尼斯尔标记步骤在PBS(每次10分钟)。

注意:在情况下,厚的部分需要安装和分析(在这里描述的这种切片实验是100 - 厚以保持过更大的距离轴突连接500微米),该技术可以与组织清除组合。我们发现ClearT2 12是成功的20。当一个组织清除步骤包括,安装部分之前执行它。

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Representative Results

图1和2示出了如何将激光指针和激光护目镜可用于快速,低成本从垫料基因型GFP阳性的动物。在年轻小鼠幼仔情况下,该技术可以用于通过头骨和覆盖皮肤图1A - D)的非侵入性地确定在动物的大脑的GFP标签。发射的荧光可以通过皮肤和小鼠幼仔头骨至少高达3日龄图1C)可以看出。该过程于图1,为绿色荧光蛋白(GFP)标记的在其甘氨酸神经元的亚群(GlyT2-GFP)的表达GFP小鼠系。在老年动物具有较厚头骨和色素沉着皮肤,将GFP标签显示较差通过皮肤和骨,并因此在头部和/或颈部的皮肤所需要的光学基因分型图2A)之前要除去。

灌流后,动物大脑取出,并再次照射找到感兴趣的荧光标记的核。亮起的靠近 2B脑干的腹侧表面上的明亮的结构是斜方体,这是我们同时用作导向和一个目标为示踪剂注射两腹侧核。 图4和图5示出的代表性结果一个顺行注射到梯形体(VNTB),使用四甲基葡聚糖(TRITC;图4)的腹侧核和两个逆行注射入内侧核梯形体(MNTB)使用霍乱毒素亚基B(CTB;图5A 和B)和 TRITC( 图5C和D)。明亮的轴突标记指示(在此情况下,抑制)突起从VNTB到MNTB可以以下内容的顺行注入VNTB(图4)中可以看出。 图5A和5C示出的概述在现场注射(MNTB)与含有它旁边的逆标细胞(VNTB)核的;5B和5D表示放大了的逆行图像作为显示在图5A和图5C标记胞体甘氨酸VNTB细胞在相同的部分。注意如何逆行追踪与CTB导致更点状图案12-13日 图5B),而VNTB细胞逆行标记用TRITC显示非常密集的高尔基样贴标21(图5D)。

图1
图1:的GlyT2-GFP阳性光学基因分型和GlyT2-GFP阴性小鼠的GFP阳性小鼠下(A)的正常光照条件下,(B)的拍摄时激光照射有405nm激光指示器没有绿光过滤护目镜和(C)在与激光和UV护目镜激光照射。了强烈的GFP信号是在小脑和脑干上方的区域中可见。(D)中与此相反,来自相同鼠标线和年龄(P2)GlyT2-GFP阴性幼鼠不显示荧光的任何迹象,在同一地区(后脑勺和脊髓)的。蓝色激光的光被有效地护目镜过滤。

图2
图2:光学基因分型,并事先准备好的脑外植体。 (A)P4 GlyT2-GFP鼠标小狗的颅骨暴露在激光照射,并通过带通滤波护目镜观看。的荧光GFP可以通过头骨中时激光照射的制剂盘进行观察。(B)的甲脑外植体从相同小狗,穿过过滤护目镜看。甘氨酸轴突和脑核,如梯形体(VNTB)的腹侧核可以被看作是版本Ÿ光明结构接近脑表面。

图3
图3:概述在体外压力注射和电安装。 (A)的 1:立体镜,2:安装激光指针(波长405nm),3:安装在显微探头与注射针,4:安装MC刺激软件,6是PC:含有脑外植体,5制备菜:压注设备,连接到通过管子注射针(B)7:刺激隔离单元,8:高强度照明灯,9:刺激。刺激器被连接到所述电极中通过刺激隔离单元的吸管和由PC驱动的。

图4
图4:从VNTB梯形体的内侧核抑制连接的顺行追踪(MNTB)显示的是在一个水平片段跨越在深度约200微米的P14 GlyT2-GFP小鼠的脑清除截取的共焦堆栈的最大投影。以下一个四甲葡聚糖(TRITC)注射到VNTB的caudo-中间部分,亮标记的轴突连接(并且在一些情况下,它们的末端结尾)从VNTB到MNTB可以观察到。比例尺:200μm左右。

图5
图5:逆行示踪剂注射到MNTB显示填充甘氨酸细胞的VNTB显示的是最大的预测在P88的冠状切片取焦堆栈(A,B)和 P80的(C,D(横跨约50微米)。 )GlyT2-GFP小鼠。(A)一种霍乱毒素亚基B的概述(CTB)注射到MNTB的中间部分。(B)的甘氨酸中的细胞VNTB填充有CTB(红色泪点的细胞胞体内部),如图5A所示的注射的结果。一些泪点的出现的细胞,这可能表明在VNTB其他GFP阴性(非甘氨酸)的细胞类型的填充,以及外(因为通道在注射区域的损伤纤维,例如) (C)一种逆行TRITC注射靶向MNTB的另一概述。注意,如何多个小区以下电穿孔(相对于纯粹压力注射CTB 5A中)填充有TRITC在MNTB。(D)一种 TRITC注射于MNTB后甘氨酸能VNTB细胞逆行标记(同样的注射如图5C)。大部分细胞显示,因为两种荧光信号(土著GFP表达和填充与红色TRITC)的混合物的密集的黄色或橙色标识,。带有GFP阳性细胞进行比较,由于某种原因不占用染料(蓝色箭头),并出现深红,并可能填补因注射液(红色箭头)的区域的轴索损伤,示踪标记的绿色荧光蛋白阴性细胞。注意细胞胞体的逆行示踪剂注射使用CTB(图5B)和TRITC(图5D)的不同染色模式。标度棒: 图5A和5C:200微米5B和图5D:20微米。

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Discussion

体外示踪剂电穿孔的一般强度,相对于在体内跟踪研究中,是可以让研究人员的利益,因此大脑区域更好的访问,不涉及昂贵立体定向(通常电)设备。此外,所需的脑外植体存活期跨越只有几个小时(1 - 4)中的体内示踪注射的情况下,而不是数天或甚至数周(见关于使用葡聚糖胺和在其他示踪剂的详细审查体内注射由Lanciego和Wouterlood,2011 22,但也罗德里格斯-Contreras的, 等人,200823),以便不成功注射可以早在注射程序过程中检测到或最迟,第二天,所以该注入参数可以相应地调整。短生存期脑外植体也意味着,通常有之间的<差异较小EM>有效(区,那里的染料,就由神经元在顺行或逆行注射轴突终端) 表观(区域所在的染料洒,而不被拉紧)注射部位,但这种差异不能排除完全,并且只能进行量化/控制以事后,在某些情况下可以是完全不可能的(见Albrecht人,2014年为更详细的讨论24)。

应当指出的,几乎任何长度的连接,可以研究用这种方法,只要实验者是能够保存两个注入区和轴突突起在一个单件的脑组织的目标或源区。这种连接的可视化可以通过两种重建切片和安装脑(如下所述)后获得的共聚焦图像堆栈或全脑/脑板成像技术的执行组织明确后可达到荷兰国际集团的协议(见本协议第5节的例子)。

我们的激光制导体外电穿孔的技术的主要优点是在过程中示踪剂注射靶向精度显著增加。 体外电穿孔的原始方法依赖于只是视觉控制通过靶向特定的地形标记或使用它们作为近似导轨用于注射的面积。相同的情况也适用于染料扩散目标区域中:可以观察的染料扩散,但它是不容易控制的染料扩散以更精细的方式。用这种方法的激光修改,研究者可以很容易地找到细胞核和所关注的细胞,并通过土著基因从动荧光的相互作用和染料的荧光观察染料扩散在感兴趣的核/细胞群。因此,通过最小化antero-或逆行误报研究员的收益更多地控制他/她的跟踪实验馅料,因为所关注的核/区域之外的细胞/终末注入,以及在填充。显然,这并不意味着绝对控制注射的有效部位,其中,如前面所提到的,可以从表观站点不同。这种技术的一个警告显然是转基因生物的可用性。小鼠是在哺乳动物的研究中,这也适用于听觉字段一种广泛使用的遗传模型有机体,但一些哺乳动物模型可以考虑更好,因为它们类似于人类听力图更精确。因此,其它技术可被用来标记在其他物种更适合于某种类型的研究领域的野生型动物的神经元群体例如,在听觉系统25-28的研究沙鼠或栗鼠):这可能包括病毒注射趁着靶向脑和表达fluoresc的仅某些隔室一定的启动子耳鼻喉科标记在脑细胞中,只有一个子集。自然,加倍小心需要采取以确保所表达的遗传构建的有效性在神经元,右亚群不管这种构建体病毒表达的野生型动物或本国中敲入小鼠系。

正如前面指出的,对表达的神经元的特定亚群荧光蛋白的小鼠突变的优势,也让大脑电路的功能特性(在本例中,我们能够抑制预测从一个听觉脑干细胞核的纯可视化描述,以另外 24我们的跟踪试验的结果)。再次,需要表达的遗传构建的有效性被确认之前的跟踪实验的结果的任何解释才能进行。

体外电的另一个综合实力是其与超视距兼容性呃解剖的方法,如(免疫)组织化学和脑清除。这表现先前24,它不会受诸如尼氏染色附加技术的应用,或被叫ClearT2 12 20,24脑清除方法。一个人必须牢记的主要缺点是,穿透深度尼氏和抗体污渍将随组织厚度减小,因此人们必须权衡的轴突过程保存的选项中较厚的切片相对于额外(免疫)信号强度组织化学染色实验于需要同时解剖学标记方法。当然,另外一个因素要考虑的是不同的荧光标记的激发/发射带宽的分离,因为标签的最小数量开始于三个标志在这一点上(土著荧光蛋白的表达,示踪和尼氏/抗体标记)。

很显然,我们的上述方法可扩展到任何种类的荧光标记物(包括量子珠)进入脑外植体或甚至脑的转基因小鼠的切片的注射。因为喷射精度取决于两个,一个清晰的目标检测(观察荧光标记的细胞核和细胞的),并在荧光染料的泄漏更精细的控制中,只有一个这两个因素的应足以增加喷射精度,即使当另一种是不存在的。这意味着,不同的非荧光标记物(如病毒构建或其他DNA / RNA载体)可以以更高的精度被注射到感兴趣脑核,只要靶核都清晰可见的实验者。后者的应用是特别有趣,因为电确实允许DNA物质的有效吸收,以及29-30,使得我们的方法几乎适合这种类型的注射。需要考虑的唯一的缺点是DNA结构需要时间来表达和活TI问题ssue保鲜出现。这可以通过建立器官型脑切片培养物中克服31-32基于注入脑切片(或重新切片的脑组织的块),其允许活组织保存周的数量级上。

当然和其他转基因小鼠突变体可用于调查其他神经元类型,如胆碱能神经元的连接( 例如,在聊天的GFP小鼠33),从而使该方法的多功能工具以研究连接和脑(微)电路的功能性。

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Disclosures

我们什么都没有透露。

Acknowledgments

由美国国立卫生研究院/ NCRR科罗​​拉多CTSI授权号UL1 RR025780和落基山脉Neurlogical障碍核心中心授予美国国立卫生研究院P30NS048154部分支持NIH / NIDCD R01 DC 011582.成像实验在美国科罗拉多州安舒茨医学校区先进的光学显微镜核心的大学进行支撑。萨沙迪拉克博士索尔克研究所为我们提供了GlyT2-GFP小鼠。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Sodium chloride Sigma-Aldrich S7653 All chemicals are from Sigma-Aldrich, unless noted otherwise.
Potassium chloride  P9333
Potassium phosphate monobasic P5655
Sodium phosphate di-basic S907
Magnesium chloride M2670
Calcium chloride C5080
Glucose G7528
Sodium bicarbonate S6297
Ascorbic acid A4544
Myo-inositol I5125
Sodium pyruvate P2256
Bovine serum albumine A2153 optional, for additional (immuno)histochemistry
Triton-X-100 X100 optional, for additional (immuno)histochemistry
Poly(ethylene glycol), 8000 MW P2139 optional, for brain clearing
Formamide Fisher Scientific F84 optional, for brain clearing
Choleratoxin subunit-b Molecular Probes C-34776 (Alexa 555) 
Dextrane tetramethyl-rhodamine Molecular Probes D-7162 (Alexa 555)
Fluorescent Nissl Invitrogen N-21479 (blue) optional
Paraformaldehyde Fisher Scientific SF93
Agarose Invitrogen 16520
Fluoromount-G Southern Biotech 0100-01
Pentobarbi-tal Vortech Pharmaceuticals Fatal-Plus 
Borosilicate glass filaments Harvard Apparatus G150F-10
Pipette puller Zeitz Instruments, Germany DMZ Universal Puller
Perfusion setup Custom-made
Laser pointer  laserpointerpro.com, Hong Kong HK-88007294 (405 nm)
Filter/safety goggles Dragon Lasers, China LSG09 (band-pass 450-700 nm)
Bionocular microscope  Wild Heerbrugg, Switzerland Wild M3 Equipped with high-intensity illuminator (MI-150; Dolan-Jenner Inc.) 
Picospritzer Parker Instruments Picospritzer III
PC with installed MC Stimulus software Multi Channel Sys-tems, Germany (software)
2-channel stimulator Multi Channel Sys-tems, Germany STG-1002
Stimulation isolation unit A.M.P.I., Israel Iso-Flex
Micromanipulator Narishige, Japan YOU-1
Vibratome Leica, Germany VT1000S

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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激光制导神经跟踪在脑外植体
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Albrecht, O., Klug, A. Laser-guided Neuronal Tracing In Brain Explants. J. Vis. Exp. (105), e53333, doi:10.3791/53333 (2015).

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