Introduction
アレナウイルスは、自然界1-3のげっ歯類で主に維持されている包まれ、一本鎖RNAウイルスのファミリーです。これらのウイルスは、通常、齧歯類貯水池1,2に無症候性、持続感染を確立しているが、それらは、ヒト3に重篤な疾患を引き起こす可能性があります。重要な病原性の種は、新世界フニンウイルス（JUNV）4とそれぞれアルゼンチン南米出血熱、アフリカのラッサ熱の病因剤である旧世界ラッサウイルス5が含まれます。リンパ球性脈絡髄膜炎ウイルス（LCMV）、家族6の原型ウイルスは、世界的な分布を持っており、免疫抑制における免疫応答性個体6で無菌性髄膜炎、胎児7に重篤な先天性欠損、または高い致死率を含む種々の疾患状態の原因であります固形臓器移植8,9を以下の個人。米国の欠如これらのウイルスに対抗するための食品医薬品局（FDA）が承認したワクチンや有効な抗ウイルス薬は、治療これらの新興/再新興病原体を標的とする新たな戦略を開発するための重要な必要性を強調しています。
アレナウイルスのゲノムは、2つの一本鎖RNAセグメント、大（L）（〜7.2キロバイト）と小（S）（〜3.6キロバイト）セグメント10から構成されています。 Lセグメントはウイルスポリメラーゼ（L）、およびマトリックスタンパク質（Z）をコードしながら、Sセグメントはウイルス核タンパク質（NP）およびエンベロープ糖タンパク質（GP）をコードします。 LとSのゲノムRNAセグメント（のvRNA）は、ビリオン10-12にパッケージ化されています。アレナウイルス感染の初期段階は、ウイルス粒子の付着はJUNVのために、ヒトトランスフェリン受容体1（hTfR1）13,14を含み、ウイルスGPとそれに対応する宿主細胞受容体との間の相互作用を介して細胞をホストすることです。添付ファイルの後、JUNV粒子はクラスリン依存性エンドサイトーシス15を介して細胞内に取り込まれます。その後、粒子このコンパートメントの低pHはGP 16,17の活性化を誘発後期エンドソームへのトラフィック。いったんウイルスおよびエンドソーム膜の融合を開始し、エンドソーム膜に、GP-コードされる融合ペプチド挿入を活性化しました。彼らは、ゲノムの複製および転写のための鋳型としての役割を果たす細胞質内へのビリオンにパッケージのvRNAのリリースで成功融合結果。ウイルス構造タンパク質とのvRNAの十分な量が生成されると、新しい粒子がライフサイクル18を完了するために感染細胞からアセンブルし芽。
治療的に病原性アレナウイルスを標的とするために新たな戦略の発見を容易にするために、当社グループは、ホスト用のウイルス増殖のために重要な、しかし必須では宿主因子の同定に焦点を当ててきました。この文脈において、そのような宿主因子によって制御されるウイルスのライフサイクルの正確なステージ（複数可）を定義する案内することが必要です抗ウイルス戦略の開発。ここで、我々は、選択された宿主タンパク質および/ または抗ウイルス性分子がウイルス侵入19のこの初期の段階に影響を与えるかどうかを識別するためにアレナウイルス-細胞接着を測定するために使用することができる定量的（q）はRT-PCRに基づくアッセイを記載します。アレナウイルス-細胞付着を測定するための別のアプローチは、ビオチン20で標識されたビリオン、蛍光染料21、または放射性同位元素22を特色にしています。これらの方法の欠点は、入力されたウイルスの大量の要求（感染の例えば、高多重度（MOI））、放射能の使用、および/ または入力ウイルスを調製するための追加の処理工程（ 例えば、濃度および/ またはウイルスの標識）を含むことができます。特に、高いMOIを用いることが困難な非生産添付イベント15,23対生産性を区別することができます。ここに記載のqRT-PCRに基づくアッセイは、20プラークとしていくつかを使用して、添付イベントを検出することができます。48ウェルプレートのために0.0004のMOIに変換ウイルスの明単位（PFUの）、。したがって、アッセイの強い感度が高いMOIの要件だけでなく、任意のウイルス標識または濃縮工程を克服します。さらに、アッセイは、ⅰ）融合後のビリオンのエンドサイトーシスと同様に細胞質へのウイルスゲノムの放出を測定するように構成することができると、ii）参照、例のために（ウイルス特異的定量RT-PCR試薬の開発を通じて、他のウイルスで使用するために仕立て24-27）。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
注：記載されているプロトコルは、（前のPCR実験室とどのように良いプレPCR法を用いた実験を行うための設定方法についての優れた概要については28を参照のこと ）、厳格な事前-PCR法を用いて行うことが重要です。すべての試薬および装置は定量PCR標的配列を含む増幅されたDNAを含まないと、適切なコントロールは、このような汚染を検出するための場所にあることが肝要です。プロトコルの概要を図1に示されています。
1. 48ウェルプレート中のメディアや種子細胞を準備します
- 50 mlで添加することにより、10％ウシ胎児血清、1％ペニシリン - ストレプトマイシン、1％HEPES（N-2-ヒドロキシエチルピペラジン-N-2-エタンスルホン酸）を含有する完全ダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）を500mlの緩衝液を調製熱不活性化ウシ胎児血清、5mlのDMEM 500mlのボトルに100Xペニシリン - ストレプトマイシンおよび100X HEPES緩衝液の各々の。この試薬は4℃で保存することができます76;ヶ月間C。
- 完全DMEM500μlの最終体積で48ウェル組織培養プレート中のウェル当たりの種子2.5×10 4のVero E6細胞。 10〜18時間、5％CO 2を含む加湿インキュベーター中、37℃でプレートをインキュベートします。
- 終業時にプレートをシード。いずれかの複製または三連のウェル中の各ウイルスのサンプルをテストします。
注：このアッセイのために48ウェルベースのプラットフォームが記載されているが、96または384ウェルプレート中でダウン使用するためのアッセイをスケーリングすることが可能であるべきです。
- 終業時にプレートをシード。いずれかの複製または三連のウェル中の各ウイルスのサンプルをテストします。
2.ウイルスの細胞アタッチメントを行います
注：このプロトコルで使用されるウイルス、JUNV株率直＃1（C＃1）は、成功しJUNV病29の予防のための弱毒生ワクチンとして使用されてきました。 JUNV C＃1は、in vivoおよびin vitroの両方でシリアル通路を通って病原性JUNV株XJに由来し、12個のアミノ酸30による親XJ株と異なりました。 Becaus＃1は、バイオセーフティーレベル（BSL）-2-定格病原体である電子JUNV Cは、このセクションの説明作業は、適切なBSL-2プラクティス31を使用して行わなければなりません。これは、個人用保護具（ 例えば眼の保護、白衣、二重手袋）、クラスIIバイオセーフティキャビネットの使用を含む、すべての職員が制度的訓練と安全にこの生物を処理するために必要な承認を受けていることを保証します。
- 希望のPFUにテストされるJUNV C＃1のサンプル（複数可）を希釈するか、氷冷完全DMEMに形成単位を集中し、各ウェルに追加する直前まで、氷上で保存します。
注：完全DMEMで希釈したウイルスとの結合試験を実施する代わりに、低血清濃度（2％）、血清がウイルスの添付ファイルとの干渉を引き起こす可能性があるかどうかを確立するために、適切な緩衝液を用いてPBSを含む最小培地を使用しています。代替ウイルスの同様の添付ファイルプロトコルはbicarboないRPMI 1640培地を使用することを報告しています0.2％ウシ血清アルブミン、10mMの（2-（モルホリノ）エタンスルホン酸）、および10mM HEPES、pH6.8の32を含むネイト。この結合のメディアは、メディアがインキュベーターのCO 2 -environmentから削除されたときに発生する可能性のpHの変化を防ぐために優れていることがあります。- 非生産添付イベントを制限するために、200から2000までの範囲のPFUでウェルを接種します。 図2に示すように、このアッセイは、わずか20 PFU（又は多くの6×10 2 PFUなど）を使用して添付ファイルを検出することができます。
- 細胞に接種するためのウイルスのマスターミックスを作成します。各ウイルスサンプルは、ウェルあたり50μlの容量で二連のウェルに接種されます。したがって、ウェルあたりのウイルス2000のPFUの添加が望まれる場合には、氷の120μlの総容積に4800のPFUを希釈DMEMを完了コールド。
- アッセイの特異性を制御するために、いずれかTfR1（TRVb）またはEXPを発現しないチャイニーズハムスター卵巣細胞株のペアを使用しRESS hTfR1（TRVb-1）これらの細胞にJUNVの添付ファイルとしてはどちらか減少かどうか、それぞれ13,33れるべきです。また、アレナウイルス添付ファイル34またはエントリ35を防止するために、このようなプロテイナーゼKなどのプロテアーゼで細胞を処理します。可溶性hTfR1またはhTfR1に特異的でありするモノクローナル抗体のch128.1は、また、それらが細胞13,36へJUNVの侵入を阻止することが知られているとみなすことができます。さらに、遊離マンノース14またはJUNV特異的中和抗体37を有する粒子のインキュベーションによる細胞の前処理は、ウイルス侵入を阻害することができます。
- しかし、これらの後者の試薬とアプローチすることを、JUNVエントリを遮断するにもかかわらず、これは可能性の高い説明であるが、添付ファイルをブロックすることが確認されていないのでご注意ください。ここで説明するプロトコルは、形式的に、これらの様々なアプローチの衝撃ビリオン付着するかどうかを決定するために使用することができます。
- 37℃のインキュベーターからプレートを取り外し、4℃の冷蔵庫中またはエンドサイトーシスを行うためにプレートされた細胞の能力を阻害するために15分間氷上に置きどちら。
- 次に、各ウェルから完全DMEMを吸引し、急速に氷冷PBS（リン酸緩衝生理食塩水）pH7.4の100μlのを使用して二回各ウェルを洗浄します。その後、適切なウェルに（ステップ2.1で調製した）前希釈したウイルスサンプルの50μlを添加します。
- プラスチックラップでプレートを包み、すぐにウイルス添付ファイルが発生することを可能にするために1.5時間に1のために戻って氷の上または4℃の冷蔵庫内にどちらかに配置します。このステップを通して4℃で冷緩衝液を洗浄、プレートを維持し、ウイルスサンプル。
- 4℃でのインキュベーションの終了後、ウイルス接種物を吸引し、氷冷したPBS200μlで各ウェルを3回洗浄します。
3.ウイルスRNA抽出
- JUNVのC＃からウイルスRNAを精製市販のキット（ 例えば 、RNeasyミニキット）を用いて、単層に付着した1粒子アコー製造業者のプロトコルに鼎。具体的には、以下のとおり変更とのRNeasy Miniプロトコール（ 第 4版、2006年4月）内のページ23-28の「スピン技術のプロトコルを用いて動物細胞からの全RNAの精製」に従ってください。
- 溶解を各ウェルに直接溶解緩衝液RLT350μlのを追加することにより、ステップ1（b）に指示されるように細胞が。細胞溶解を確実にするために、バッファを数回混合します。細胞は簡単にこのバッファに溶解し、完全な溶解が倒立顕微鏡下で井戸を見ることによって確認することができることに注意してください。
- キットカラム（ステップ3a）に得られた細胞溶解液を移し、記載されているように、プロトコルの残りの部分に従います。プロトコルの残りのステップは、クラスIIバイオセーフティキャビネットの外で行うことができますので、この時点では、ウイルスは、溶解緩衝液によって中和されたキット管が感染性ウイルスで汚染されていなかった提供。
- ADDITある製造業者のプロトコルから任意のステップ9を含み、Buffer RPEのキャリーオーバーの可能性を排除するためのスピンカラムのional遠心分離。
- 最後のステップでは、製造業者のプロトコール（ステップ10）は、ヌクレアーゼフリーのddH 2 O30μlのを使用してスピンカラムから精製されたRNAを溶出しますこの時点で-80℃で保存RNAまたは定量RT-PCRアッセイで直接使用します。ヌクレアーゼによって精製されたウイルスRNAサンプルの分解を防止するために、ヌクレアーゼフリーの試薬および機器を使用し、氷上で解凍したRNAサンプルを保ちます。
注：バッファーRLTとRW1はグアニジン塩を含んでいる漂白剤と混合しないでください。 Buffer RW1は、エタノールが含まれています。
4.ウイルスゲノムの定量RT-PCR測定
- その後の定量PCR用のcDNAにJUNV C＃1 SセグメントRNAを変換するには、総容量50μlでRTに（ステップ3.1.4で生成された）ウイルスRNAを施します。
- ヌクレアーゼの6.75μlの：RT反応を設定するには、最初の反応あたり以下の試薬のそれぞれを含むマスターミックスを作成フリーのddH 2 O、SセグメントゲノムRNAのNPの領域に相補的である2075-へRTプライマーS 2098-2μMの株式の5μlの（5'-AAGGGTTTAAAAATGGTAGCAGAC-3 '）、5μlの10X PCR緩衝液II、25のMgCl 2溶液、RT酵素の1.25μlの（62.5単位）、RNaseインヒビターの1μL（0.4単位）、およびdNTPの500μMのストックの10μlを11μlの。
注：アレナウイルス複製の過程で、4ウイルスSセグメントRNA種が生成されます。完全長ゲノムRNA（vRNAの）、全長アンチゲノムRNA（vcRNA）（つまり、vRNAのの逆相補体である）、および2つのサブゲノムmRNAをそれぞれ、NPおよびGP遺伝子をコードします。ここに記載されているRTプライマーはSセグメントのvRNAはなく、vcRNA、NPのmRNA、またはGPのmRNAに特異的です。 - ゆっくりRTマスターミックスを混合し、次いで、個々の0.2ミリリットルのPCRチューブに40μlずつ分注し。各チューブにウイルスRNAを10μlを加えます。含めるⅰ）鋳型なしコントロールチューブ（ 例えば 、。ヌクレアーゼフリーのddH 2 O 40にマスターミックスのμL）およびii）無RT酵素制御10μlのを（ 例えば受信しなかったマスターミックスの40μlに知られている陽性ウイルスRNAサンプルの10μlを添加する追加ウイルスの標的配列を含む増幅されたDNAを用いたRT試薬の汚染をスクリーニングするための任意のRT酵素）。細胞RNAの存在下でのアッセイ特異性を制御するための完全なRTマスターミックスと非感染細胞から抽出したRNAを含みます。
- また、RT試薬の品質を検証するための完全マスターミックスに知られている陽性ウイルスRNAサンプルが含まれます。必要であれば、RT反応の体積は25μlに減少させることができることに留意されたいです。
- ヌクレアーゼの6.75μlの：RT反応を設定するには、最初の反応あたり以下の試薬のそれぞれを含むマスターミックスを作成フリーのddH 2 O、SセグメントゲノムRNAのNPの領域に相補的である2075-へRTプライマーS 2098-2μMの株式の5μlの（5'-AAGGGTTTAAAAATGGTAGCAGAC-3 '）、5μlの10X PCR緩衝液II、25のMgCl 2溶液、RT酵素の1.25μlの（62.5単位）、RNaseインヒビターの1μL（0.4単位）、およびdNTPの500μMのストックの10μlを11μlの。
- 5分間、10分間、30分間、48°C、95°C、25°C以下のサイクリング条件をRT管を施します。サンプルは4℃のステップを追加することで、この時点では、-20℃で保存するか、またはサーモサイクラー中で一晩放置することができることに注意してください。
- P総量25μlでerform定量PCR。
- 以下を組み合わせることにより、定量PCRマスターミックスを行います。各の（9μM株式の）2.5μlのフォワードPCRプライマーS1937 +（5'-CATGGAGGTCAAACAACTTCCT-3 '）を1958+と1982にPCRプライマーS 2001-を逆にする（5 qPCRプローブS 1960+の「-GCCTCCAGACATGGTTGTGA-3 '）、2μM株式の2.5μlの（）1975+（5'-6FAM-ATGTCATCGGATCCTT-MGBNFQ-3'）、および2Xユニバーサル定量PCRマスター12.5μlのミックス。 JUNV C＃1に特異的である、ここで報告されたフォワードプライマーは、ntの病原性JUNV株ロメロを対象とし、元々報告プライマー配列38から1によって異なることに注意してください。
- 溶液を穏やかに混合し、次いで、各ウェルのqPCRに20μlを添加します。適切な定量PCRウェルに各RT反応の5μlを添加します。試験した各サンプルについて3回定量PCRを実施します。必要に応じてPCR反応容積は、わずか12.5μlに減少させることができることに注意してください。
注：関連付けられているソフトウェア定量PCRマシンは、定量PCRプライマーの標的であるJUNV C＃1 NP遺伝子をコードするプラスミドの標準希釈系列に各未知試料の値とを比較することにより、JUNV C＃1 SセグメントゲノムRNAの絶対的なコピー数を生成しますおよびプローブセット。定量PCRアッセイは、標準曲線の範囲内に入る値の定量化を提供することができます。 5、50、×10 3 5、5×10 5、5×10 7コピーウェルあたり：このため、以下の（三連のウェル中）プラスミドの量が含まれます。
- 1分15秒、60℃で10分間および95℃での40サイクル：95℃サーモサイクラーに定量PCRプレートをロードし、以下の反応条件を実行します。
- 製造業者のプロトコールに従って、各試料中のウイルスRNAの存在量を決定するためにデータを収集し、分析します。
- 定量PCRタールを含むプラスミドの新たに精製されたサンプルを使用して標準曲線を確立するために、シーケンスを取得し、最初にこの溶液中でのプラスミドのコピー数を決定します。
- プラスミドの分子量を計算します。プラスミド全体の配列が知られている場合は、以下の式を使用して、これを計算する：MW =（[A * 312.2] + [G * 328.2] + [C * 288.2] + [T * 303.2] - 61.13）。二本鎖プラスミドの各鎖上に見出される特定のヌクレオチドの合計数を含めることを忘れないでください。
- プラスミドのサイズは知られているが、その正確な配列がない場合、各二本鎖DNAの塩基対は、600のMWを有するという仮定の下でMWを計算します。
注意：ここで使用したpCAGGS-JUNV C＃1 NPプラスミドは、4.2×10 6のMWを持っています。 - プラスミドのMWが決定されると、1μl当たりどのように多くのコピーを計算ストックプラスミド溶液中に存在します。
- 最初のx 1 6.9その後、プラスミドの69μgのは、300μlの水に含まれている場合は、プラスミド（ 例えばのモル数にこれを変換した後、溶液中でのプラスミドの合計μgのを計算コピー数に変換することができるプラスミド* 1モルの0 -5グラム/プラスミドの4.2×10 6グラム =プラスミドの1.6×10 -11モル）、（ 例えば、プラスミドの1.6×10 -11モル* 6.022×10 23分子/モル= 9.8×10 12分子（またはコピー））。
- 1μl当たりのコピーを取得するために、その溶液の容積によってプラスミド溶液中のプラスミドの総コピーを分割し（ 例えば 9.8×10 12コピー/300μlの= 3.28×10 10コピー）。
- 5μlの容積は、標準曲線を確立するために必要なコピー数の範囲を提供するために、PCRプレートにロードすることができるように、適切にこの溶液を希釈します。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
プロトコルの第4節で説明したように定量PCRアッセイの感度とダイナミックレンジを実証するために、JUNV C＃1（範囲5-5×10 7コピー）のNP遺伝子をコードするプラスミドの既知量を定量PCRに供しました。アッセイは敏感であり、確実に標的核酸の5コピー（ 図2）のようにいくつか検出することができます。さらに、アッセイのダイナミックレンジが大きく、 図2に示すように、テンプレートの少なくとも7ログを覆うことができます。図示していないが、我々は、核酸のような多くの9×10 5のようなコピーを検出しました。
プロトコールに記載されるようにJUNV C＃1粒子付着を測定するためのアッセイの有用性を例示するために、JUNV C＃1の様々な量は、ベロE6細胞に予め結合させました。未結合粒子を洗浄した後、細胞をRNA精製のために溶解し、得られたRNA試料を定量RTに供しました-PCR。 図3に示すように 、このアッセイは、わずか20として、またはそれぞれ0.0004及び40ののMOIに変換などの多くの10×2として6 PFUを用いてウイルス添付イベントを検出することができます。
図4に示されるように 、それだけでなく、ウイルス付着でなく、時間をかけて受信ウイルス粒子中に含まれるゲノムの増幅率を測定するためのプロトコルを変更することが可能です。この修正されたアプローチは、ウイルス侵入（ 例えば、粒子のエンドサイトーシスおよび/ または融合および細胞質へのウイルスゲノムの放出）の残りのステップにおけるさらなる欠陥が発生する可能性があるかどうかを決定するための代用として使用することができます。興味深いことに、ウイルスゲノムの量が入ってくるウイルスゲノムの一部が劣化することを示唆している最初の6時間以下の添付ファイル、中に減少すると思われます。これは、細胞内に取り込まれるときにエラーが発生する粒子に起こるとextracellに低下する可能性がありますエンドリソソームネットワーク内の劣化によるおそらくウラルスペースか。示したデータは、12または18時間後に感染がアクティブなゲノム複製をスクリーニングするために最適な時間になることを示しています。
図1：プロトコル・ワークフローの描写ウイルス-細胞付着アッセイの主要なステップは1）4℃で細胞とウイルス粒子のインキュベーションは、未結合のウイルスを除去するために、ウイルスの細胞付着が洗浄に続いて起こることができるようになっている、2）精製細胞からのウイルスRNAの、3）逆転写（RT）をcDNAにJUNV SセグメントゲノムRNA（vRNAのを）変換する、および4）定量PCRは、ウイルスの細胞付着の尺度としてJUNV SのvRNAのコピーを列挙する。 こちらをクリックしてくださいこの図の拡大版を表示します。
図2：JUNV Sセグメントゲノムを検出するための定量PCRアッセイは敏感であり、広いダイナミックレンジにわたって使用することができる JUNV Sセグメント定量PCRプライマー-プローブセットは、正確に知られた量を測定する能力について試験した（5、16.6、50、標的配列をコードするDNAを、標準対照プラスミドの5×10 3、5×10 5、または5×10 7コピー）。図示増幅プロット（A）と、標準曲線適合線（B）です。 R 2、プライマー-プローブセットの相関係数は。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。
図3：JUNV-細胞付着アッセイ確実に措置20 PFU、わずかとして使用して、粒子の付着。ベロE6細胞をJUNV C＃1の既知量と予め結合した（2×10 1、×10 2 2、2×10 3、2×10 4、×10 5、または2 2 ×10 6 PFU）4℃で1.5時間。結合していない粒子を洗浄により除去し、細胞をRNA抽出のために溶解し、得られたRNAサンプルを、ベロE6細胞への粒子付着の測度としてJUNV C＃1 SセグメントのvRNAを検出するためのqRT-PCRに供しました。データは、平均±SEM重複ウェルからウェルあたりの平均コピー数を表します。
図4：感染後のJUNV C＃1ゲノムの複製の速度論ベロE6細胞を、4℃で1.5時間JUNV C＃1の2×10 3 PFU（0.04のMOI）と共にインキュベートしました。氷冷PBSで数回洗浄後、細胞は、直ちに回収した（0時間の時点）またはコレクションの前に示された時間のために37℃に温めました。それぞれの場合において、総RNAを細胞から抽出し、JUNV C＃1 SセグメントのvRNAを検出するための定量RT-PCRを行いました。値は平均±SEM二連のウェルからウェル当たり、平均コピーを一覧表示されます。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
私たちが説明するプロトコルは簡単であり、堅牢では、次の重要な考慮事項が観察されました。まず、厳格な事前-PCR法は、（優れたレビューのために28を参照） を使用しなければなりません。すべての試薬および装置は定量PCR標的配列を含む増幅されたDNAを含まないと、適切なコントロールは、このような汚染を検出するための場所にあることが肝要です。第二に、プロトコル、ウイルス、細胞および培地のウイルス - 細胞接着部に表面に結合したビリオンのエンドサイトーシスを防止するために4℃に保たれなければなりません。第三に、RNA抽出のために回収した細胞の量は、RNA精製フィルタのRNA結合容量を超えてはなりません。第四に、精製されたウイルスRNAサンプルは、ヌクレアーゼフリーの試薬や機器を使用することにより解凍時に氷の上にそれらを保つことによってリボヌクレアーゼ媒介分解から保護されなければなりません。第五に、定量PCRアッセイに含まれる標準曲線の範囲が十分に大きくなければなりません未知のサンプルから観察すべての値をキャプチャします。第六に、技術的反復は、アッセイのウイルス - 細胞の取付部だけでなく、個々のRNAサンプルの定量PCRの両方に含まれるべきです。第七に、コントロール（hTfR1を発現するかどうかなどの細胞株）は、アッセイの特異性を制御するために含まれ得ます。最後に、すべての職員は、感染JUNVのC＃1または他の病原性アレナウイルスを処理するために適切なバイオセーフティトレーニングや制度の承認を持っている必要があります。
プロトコルの定量PCR部は、主に、PCR反応の各段階の間に増幅される産物の特異性を保証するために、定量PCRプローブを必要とします。アッセイのコストは、（ 例えば、非対称染料SYBRグリーンI 25を使用）および/ または体積を減少させることによって、プローブを必要としない別の定量PCR化学を優先して、この定量PCRプローブを除去することによって、しかしながら、低減することができ定量PCR反応混合物を使用しました。プローブに依存しない定量PCRアプリの場合ローチを使用する場合、反応条件は、定量PCRプライマーの特異性を確実にするのに十分にストリンジェントであることを確認することが重要であろう。アレナウイルスRNAは、細胞またはビリオンから抽出されたかどうか、非特異的にウイルス特異的RTプライマー12の非存在下でのRT中のcDNAを形成するためにプライミングされたことができることを知っておくことも重要です。したがって、vRNAを特異的RTプライマーを用いて検出コピー数は、厳密にRTプライマーが標的とだけのvRNA種を反映するものではありません。ゲノムまたはアンチゲノムに対する特異性が必要な場合、我々は、ビオチニル化RTプライマーおよびストレプトアビジンビーズ12を使用することにより、この非特異的プライミング現象を回避する方法を報告しています。
このアッセイの重要な強みは、その極端な感度です。放射性標識22を備えた他のアレナウイルス-細胞接着アッセイ、20をビオチン化または蛍光標識された21の粒子は、それぞれ、0.2、100、または1000ののMOIを必要としていましたLY。良好な感度で放射性標識された粒子の結果を用いるが、それはこの特定のアッセイに関連したロジスティック複雑さと安全性の懸念を増大させる、放射能の使用を必要とします。ここで説明した定量PCRベースの方法は、20 PFU（48ウェルプレート中〜0.0004のMOI）のように少しを必要とし、確実に（0.0004から少なくとも40 例のMOI）のMOIの大きなダイナミックレンジを超える添付ファイルを検出することができます（ 図3 ）。このアッセイの強力な感度は、標準的な感染性ウイルスによって生産結合事象のより正確な測定のために低いのMOIを使用することができます。高感度はまた、有意でビリオンを標識し、アッセイに必要なウイルスの量を低減し、そうすることで、ビリオンの品質に影響を与えることができる、追加の処理ステップが（アッセイでのビリオンの、例えばポリエチレングリコールベースの沈殿を使用している制限しますフルオロフォアまたは放射性同位体および/またはvirioのスクロースバンディングナノ秒）。さらに、定量PCRアッセイ自体は非常に正確で再現性のと同様に実行することは簡単です。
記載の細胞付着アッセイは、ウイルス粒子のエンドサイトーシスと同様に細胞質へのウイルスゲノムの放出であるウイルス融合の最終工程、を含むウイルスエントリの追加の段を測定するように変更することができます。粒子のエンドサイトーシスを測定するために、添付のプロトコルの同じ手順を4℃で細胞への粒子の付着である、ステップ2.5を介して続くことになります。次いで、細胞を22,24が記載されているようにエンドサイトーシスされなかった外部結合ビリオンを除去するプロテアーゼで処理することにより、ウイルス粒子のエンドサイトーシスされるように暖めることになります。このプロトコルのセクション3と4は、次に、ウイルスRNAを抽出し、エンドサイトーシスの指標としてウイルスゲノムRNAの複製を定量するために従うことになります。ウイルスおよびエンドソーム膜の融合以下のゲノム脱殻を測定するために、細胞を予め結合されるだろう4℃でのウイルスは、（エンドサイトーシスおよび融合を可能にするために）加温し、外部粒子が取り除かれ、その後の分析のために収集しました。 1つのアプローチでは、細胞は、細胞内小胞を維持するために等張緩衝液中に溶解することができ、その後2分画に分け：RNアーゼのカクテルで処理されることになる一方（コーティングされていないウイルスRNAの分解に感受性である）および他なりません39 。あるいは、細胞は、細胞質ゾルまたはエンドソーム画分40とに分離することができます。両方の場合において、定量RT-PCRは、ウイルスゲノムの脱殻の尺度として細胞質中のウイルスゲノムを定量するために使用されます。最後に、定量RT-PCRアッセイは、容易に他のウイルスのウイルス結合、エンドサイトーシス、または融合を研究するために修飾することができる（実施例24-27を参照）RT-PCR試薬は、関心のある新しいウイルスに合わせて提供されます。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
著者は、彼らが競合する金融利害関係を持たないことを宣言します。
Acknowledgments
我々は、助成金T32 AI055402（JK）、R21 AI088059（JB）、およびP20RR021905（JB）を介してこれらの研究をサポートするために役立つ議論や国立衛生研究所のためにマルクス・ターリー、ネイサンロイ、クリストファー・ツィーグラー、エミリーブルース、とベンジャミン王に感謝します。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| DMEM | Life Technologies | 11965-118 | |
| Penicillin-Streptomycin | Life Technologies | 15140-163 | 100x |
| HEPES Buffer Solution | Life Technologies | 15630-130 | 100x |
| PBS pH 7.4 | Life Technologies | 10010-023 | 1x |
| Vero E6 cells | American Type Culture Collection | CRL-1586 | |
| Costar 48-well plate | Corning | 3548 | |
| RNeasy mini kit | Qiagen | 74106 | do not mix buffers RLT or RW1 with bleach |
| QIAshredder homogenizer | Qiagen | 79654 | |
| Taqman Universal PCR Master Mix | Life Technologies | 4326614 | |
| Multiscribe Reverse Transcriptase (50U/µl) | Life Technologies | 4311235 | |
| dNTP Mixture (10 mM; 2.5 mM each dNTP) | Life Technologies | N808-0260 | |
| GeneAmp 10X PCR Buffer II and 25 mM MgCl2 solution | Life Technologies | N808-0010 | |
| RNase Inhibitor (5000U/100 µl) | Life Technologies | N808-0119 | |
| RT primer 5’-AAGGGTTTAAAAAT GGTAGCAGAC-3’ |
Integrated DNA Technologies | 250 nmol DNA oligo | standard desalting |
| Forward qPCR primer 5’-CATGGAGGTCAAACAACTTCCT-3’ | Life Technologies | 4304971 | standard desalting |
| Reverse qPCR primer 5’-GCCTCCAGACATGGTTGTGA-3’ | Life Technologies | 4304971 | standard desalting |
| TaqMan Probe 5’-6FAM-ATGTCATCGGATCCTT-MGBNFQ-3’ | Life Technologies | 4316033 | HPLC purified |
| MicroAmp Fast Optical 96-well reaction plate (0.1 mL) | Life Technologies | 4346906 | |
| StepOnePlus Real-Time PCR System | Life Technologies | 4376598 | or other qPCR instrument |
References
- Childs, J. C., Peters, C. J. The Arenaviridae. Salvato, M. S. , Plenum Press. 331-373 (1993).
- Salazar-Bravo, J., Ruedas, L. A., Yates, T. L. Mammalian reservoirs of arenaviruses. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 262, 25-63 (2002).
- Buchmeier, M. J., de la Torre, J. C., Peters, C. J., et al. Ch. 50. Fields Virology. Knipe, D. M. 2, Wolters Kluwer Health/Lippincott Williams & Wilkins. 1791-1827 (2007).
- Parodi, A. S., et al. Sobre la etiologia del brote epidemico de Junin (Nota previa). Dia Medico. 30, (1958).
- Frame, J. D., Baldwin, J. M., Gocke, D. J., Troup, J. M. Lassa fever, a new virus disease of man from West Africa. I. Clinical description and pathological findings. Am. J. Trop. Med. Hyg. 19, 670-676 (1970).
- Buchmeier, M. J., Zajac, A. J. Lymphocytic Choriomenigitis Virus. , John Wiley & Sons Ltd. (1999).
- Barton, L. L., Mets, M. B., Beauchamp, C. L. Lymphocytic choriomeningitis virus: emerging fetal teratogen. Am. J. Obstet. Gynecol. 187, 1715-1716 (2002).
- Fischer, S. A., et al. Transmission of lymphocytic choriomeningitis virus by organ transplantation. N. Engl. J. Med. 354, 2235-2249 (2006).
- Palacios, G., et al. A new arenavirus in a cluster of fatal transplant-associated diseases. N. Engl. J. Med. 358, 991-998 (2008).
- Meyer, B. J., de la Torre, J. C., Southern, P. J. Arenaviruses: genomic RNAs, transcription, and replication. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 262, 139-157 (2002).
- Meyer, B. J., Southern, P. J. Sequence heterogeneity in the termini of lymphocytic choriomeningitis virus genomic and antigenomic RNAs. J. Virol. 68, 7659-7664 (1994).
- Haist, K., Ziegler, C., Botten, J. Strand-Specific Quantitative Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction Assay for Measurement of Arenavirus Genomic and Antigenomic RNAs. PLoS One. 10, e0120043 (2015).
- Radoshitzky, S. R., et al. Transferrin receptor 1 is a cellular receptor for New World haemorrhagic fever arenaviruses. Nature. 446, 92-96 (2007).
- Martinez, M. G., et al. Utilization of human DC-SIGN and L-SIGN for entry and infection of host cells by the New World arenavirus, Junin virus. Biochem. Biophys. Res. Commun. 441, 612-617 (2013).
- Martinez, M. G., Cordo, S. M., Candurra, N. A. Characterization of Junin arenavirus cell entry. J. Gen. Virol. 88, 1776-1784 (2007).
- Martinez, M. G., Forlenza, M. B., Candurra, N. A. Involvement of cellular proteins in Junin arenavirus entry. Biotechnol J. 4, 866-870 (2009).
- Nunberg, J. H., York, J. The Curious Case of Arenavirus Entry, and Its Inhibition. Viruses. 4, 83-101 (2012).
- Botten, J., King, B., Klaus, J., Zielger, C. Viral Hemorrhagic Fevers. , CRC Press. 233-260 (2013).
- Klaus, J. P., et al. The intracellular cargo receptor ERGIC-53 is required for the production of infectious arenavirus, coronavirus, and filovirus particles. Cell Host Microbe. 14, 522-534 (2013).
- Rojek, J. M., Perez, M., Kunz, S. Cellular entry of lymphocytic choriomeningitis virus. J. Virol. 82, 1505-1517 (2008).
- Lavanya, M., Cuevas, C. D., Thomas, M., Cherry, S., Ross, S. R. siRNA screen for genes that affect Junin virus entry uncovers voltage-gated calcium channels as a therapeutic target. Sci Transl Med. 5, 204ra131 (2013).
- Ellenberg, P., Edreira, M., Scolaro, L. Resistance to superinfection of Vero cells persistently infected with Junin virus. Arch. Virol. 149, 507-522 (2004).
- Brandenburg, B., et al. Imaging poliovirus entry in live cells. PLoS Biol. 5, e183 (2007).
- Petersen, J., et al. The Major Cellular Sterol Regulatory Pathway Is Required for Andes Virus Infection. PLoS pathogens. 10, e1003911 (2014).
- Jonsson, N., Gullberg, M., Israelsson, S., Lindberg, A. M. A rapid and efficient method for studies of virus interaction at the host cell surface using enteroviruses and real-time PCR. Virol J. 6, 217 (2009).
- Jiang, J., et al. Hepatitis C virus attachment mediated by apolipoprotein E binding to cell surface heparan sulfate. J. Virol. 86, 7256-7267 (2012).
- Shannon-Lowe, C., et al. Epstein-Barr virus-induced B-cell transformation: quantitating events from virus binding to cell outgrowth. J. Gen. Virol. 86, 3009-3019 (2005).
- Mifflin, T. E. Setting up a PCR laboratory. CSH Protoc. 2007, pdb top14 (2007).
- Maiztegui, J. I., et al. Protective efficacy of a live attenuated vaccine against Argentine hemorrhagic fever. AHF Study Group. J. Infect. Dis. 177, 277-283 (1998).
- Goni, S. E., et al. Genomic features of attenuated Junin virus vaccine strain candidate. Virus Genes. 32, 37-41 (2006).
- Chosewood, L. C., Wilson, D. E. Centers for Disease Control and Prevention (U.S.). Biosafety in microbiological and biomedical laboratories. , 5th edn, U.S. Dept. of Health and Human Services, Public Health Service, Centers for Disease Control and Prevention, National Institutes of Health. (2009).
- White, J., Matlin, K., Helenius, A. Cell fusion by Semliki Forest, influenza, and vesicular stomatitis viruses. J. Cell Biol. 89, 674-679 (1981).
- McGraw, T. E., Greenfield, L., Maxfield, F. R. Functional expression of the human transferrin receptor cDNA in Chinese hamster ovary cells deficient in endogenous transferrin receptor. J. Cell Biol. 105, 207-214 (1987).
- Borrow, P., Oldstone, M. B. Characterization of lymphocytic choriomeningitis virus-binding protein(s): a candidate cellular receptor for the virus. J. Virol. 66, 7270-7281 (1992).
- Rojek, J. M., Spiropoulou, C. F., Kunz, S. Characterization of the cellular receptors for the South American hemorrhagic fever viruses Junin, Guanarito, and Machupo. 346. , 476-491 (2006).
- Helguera, G., et al. An antibody recognizing the apical domain of human transferrin receptor 1 efficiently inhibits the entry of all new world hemorrhagic Fever arenaviruses. J. Virol. 86, 4024-4028 (2012).
- Sanchez, A., et al. Junin virus monoclonal antibodies: characterization and cross-reactivity with other arenaviruses. J. Gen. Virol. 70, 1125-1132 (1989).
- Trombley, A. R., et al. Comprehensive panel of real-time TaqMan polymerase chain reaction assays for detection and absolute quantification of filoviruses, arenaviruses, and New World hantaviruses. Am. J. Trop. Med. Hyg. 82, 954-960 (2010).
- Helenius, A., Marsh, M., White, J. Inhibition of Semliki forest virus penetration by lysosomotropic weak bases. J. Gen. Virol. 58 (Pt 1), 47-61 (1982).
- Nour, A. M., Li, Y., Wolenski, J., Modis, Y. Viral membrane fusion and nucleocapsid delivery into the cytoplasm are distinct events in some flaviviruses. PLoS pathogens. 9, e1003585 (2013).
