Summary
우리는 성인 생쥐에서 일관된 contusive 척수 손상을 일으킬 수있는 조직 변위 기반 논란 척수 손상 모델을 소개합니다.
Abstract
일관되고 재현성있는 contusive 척수 손상 (SCI)을 생성하는 것은 실험 동물 간의 행동 및 조직 변화를 최소화하는 데 중요합니다. 서로 다른 메커니즘을 사용하여 상해를 유발하는 여러 contiveive SCI 모델이 개발되었습니다. SCI의 심각도는 주어진 체중이 떨어지는 높이, 부상당하는 힘 또는 척수의 변위에 근거합니다. 본 연구에서는 높은 상해 속도와 정확도를 갖는 변위 기반 SCI를 생성 할 수있는 새로운 마우스 타박상 SCI 장치 인 LISA (Louisville Injury System Apparatus)를 소개합니다. 이 시스템은 고급 소프트웨어와 결합 된 레이저 거리 센서를 사용하여 등급이 매겨지고 재현성이 높은 상해를 일으 킵니다. 우리는 마우스의 10 번째 흉추 (T10) 수준에서 까다로운 SCI를 수행하여 단계별 절차를 시연했습니다. 이 모델은 자궁 경부 및 척추 수준에도 적용 할 수 있습니다.
Introduction
인간에서 발생하는 가장 흔한 척수 손상 (SCI)은 까다로운 SCI 1 입니다. SCI를 따르는 손상 및 다양한 치료 전략의 메커니즘을 조사하기 위해 설치류에서 정확하고 일관되며 재현성있는 타박상 SCI 모델이 필요하다.
다양한 상해 유발 메커니즘을 가진 많은 척수 외상 손상 모델이 실험적 SCI 연구 2 , 3 , 4 , 5 , 6 에서 사용되어왔다. 오하이오 주립 대학교 (OSU) 임팩터 / 전자기 SCI 장치 (ESCID) 5 , 3 , 6 , 뉴욕 대학 (NYU) / 다기관 동물 척수 손상 연구 (MASCIS) 도 7 에서,무한 수평선 (Infinite Horizon, IH) 임팩터 4 , 8 은 SCI 연구 분야에서 널리 받아 들여지고있다. NYU / MASCIS 임팩터 또는 이와 동등한 척도는 다른 높이에서 고정 된 무게를 목표 척수로 떨어 뜨려 다발성 중증도 3 , 6 을 만들어 상해를 유발합니다. OSU / ESCID는 조직 변위를 유도하여 상해를 유발합니다 5 , 7 . IH 임팩터는 척수 4 , 8 에 다른 힘을가함으로써 손상을 일으 킵니다. 각 충격 장치는 다른 속도를 사용하는데 이는 부상 결과에 영향을 미치는 중요한 매개 변수입니다. NYU / MASCIS 장치는 0.33-0.9 m / s 범위의 속도를 생성합니다. IH 장치의 최대 속도는 0.13m / s입니다. OSU / ESCID 임팩터는 0.148m / s의 고정 된 속도를 가진다. 특히,se 모델은 일반적으로 1.0 m / s를 초과하는 임상 속도에서 관찰 된 모델보다 낮습니다.
여기에서는 충격 속도가 높은 마우스에서 SCI를 생산하기 위해 Louisville Injury System Apparatus (LISA)라고 불리는 새로운 변위 기반 SCI 장치를 소개합니다. 이 시스템은 손상 부위에서 척추골을 단단히 안정화시켜 일정하고 재현성있는 SCI를 생성 할 수있는 척추 안정제를 포함합니다. 장치의 레이저 센서는 조직 변위의 정확한 결정과 결과적으로 SCI의 심각성을 보장합니다. 척수와의 접촉점에서 플런저의 속도는 0.5에서 2m / s로 조정할 수 있습니다. 이러한 상해 매개 변수는 임상 적으로 보인 외상성 SCI를 복제합니다.
Protocol
모든 수술 및 동물 취급 절차는 실험실 동물의 관리 및 사용 안내서 (National Research Council) 및 Indiana University School of Institutional Animal Care and Use Committee의 지침에 따라 승인 된대로 수행되었습니다.
1. 동물 준비 및 T10 척추 절제술 시행
- 외과 용기구와 금속 등뼈 안정제를 고압 증기 멸균기에서 소독하십시오. 수술 용 수술대를 청소하십시오. 가열 패드를 37 ° C로 따뜻하게합니다. 발열 패드를 수술대 위에 놓고 무균 수술 용 커튼으로 덮습니다. 수술 중 멸균 기술을 사용하십시오.
- 이 연구를 위해 10 주 된 여성 젊은 성인 C57 / 6J 마우스를 사용하십시오. 케타민 (87.7 MG / kg)과 xylazine (12.3 mg / kg) 혼합물의 복강 내 (ip) 주사로 각 동물을 마취. paw pinch-induced nociception stimulation에 아무런 반응이 없으면 완전한 마취를 확인하십시오. ng>
- 진통제 인 buprenorphine (0.01-0.05 mg / kg)과 비 스테로이드 성 항염증제 인 carprofen (5 mg / kg)을 피하 투여합니다.
- 전기 깎기를 사용하여 흉 요추 척추 위로 머리카락을 면도하십시오. 베타 인 용액과 70 % 알콜 와이프로 피부를 문질러주십시오.
- 수술 중 눈이 건조 해지지 않도록 각막에 안과 용 연고를 바르십시오.
- 메스를 사용하여 동물의 뒷면에 1.5cm의 정중선 피부 절개를 만들어 9 번째 에서 11 번째 흉추 척추를 노출시킵니다. 피하 지방 조직을 가식적으로 밉니다. 각 측면의 측면면쪽으로 관절면 근육을 가시 돌기와 박판에서 해부합니다.
- 마우스를 안정제의 U 형 홈에 위치시킵니다 ( 그림 2A 및 2B ). T10 척추골의 노출 된면 아래에 스테인레스 스틸 암을 양측으로 클램핑합니다 (g "> 그림 4A) 팔에 부착 된 손잡이 나사를 사용하여 조입니다 ( 그림 2A ).
- 척수를 덮고있는 경막을 노출시키는 마이크로 - 근관을 사용하여 T10의 척추의 과정과 박판 (박판 절제술)을 제거하십시오 ( 그림 4B ).
2. LISA 임팩터를 사용하여 T10 뇌염 상해 수행
- 질소 탱크에서 압력 조절기의 노브를 돌려 압축 질소를 20 PSI 또는 138 kPa로 설정하십시오 ( 그림 1A ).
참고 : 압력은 10-120 PSI에서 조절할 수 있습니다. 압력이 높을수록 속도가 더 빨라집니다. 직경 1.2mm의 SCI 장치 팁은 쥐를 위해 설계되었으며, 직경 2.2mm의 팁은 쥐를 위해 설계되었습니다. 생쥐에서 쥐로 바꿀 때 금속 팁 (id 1.2 mm / od 2.2 mm)에 링을 추가하여 더 큰 직경의 팁을 만들 수 있습니다. 이 마우스 SCI에서 1.2 mm 팁을 사용했습니다.tudy. 사용하기 전에 SCI 팁을 소독하십시오. - 컴퓨터를 켜서 소프트웨어를 시작하십시오. 임팩터 팁을 완전히 펼친 위치로 활성화하려면 버튼 1 ( 그림 1B )을 누릅니다 ( 그림 3A -1 ).
참고 : 버튼 1의 기능은 공압 실린더를 수동으로 활성화 또는 비활성화하는 것입니다. - 무대에 마우스가있는 U 자형 컨테이너를 놓습니다 ( 그림 2B ). 마운트의 엄지 나사를 조여서 스테이지를 고정시킵니다 ( 그림 2B ).
- "SET ZERO LEVEL"구역 (녹색)에서 "START READING"버튼 ( 그림 3A )을 클릭하여 완전히 확장 된 플런저 팁까지의 거리를 측정하는 레이저 센서로 제로 레벨을 설정하십시오. 거리는이 구역의 "범위"매개 변수에 표시됩니다 ( 그림 3A ). "SET ZERO"버튼을 클릭하십시오 (
예 : 8.951mm, 그림 3A 참조 ). - 버튼 1 ( 그림 1B )을 눌러 임팩터 팁 ( 그림 3B -1 , 위쪽 화살표로 표시)을 빼고 나사 1 ( 그림 2B )의 잠금을 풉니 다. 나사를 오른쪽 위치로 잡아 당겨 ( 그림 3B -1 , 옆 화살표로 표시) 팁을 레이저 광선 경로에서 멀리 이동시키고 나사를 90 ° 시계 방향으로 돌려 나사를 잠급니다.
- 정면 및 측면 마이크로 드라이버 ( 그림 1C )를 조정하여 무대를 움직여 레이저 광선을 노출 된 척수 척추의 중심으로 향하게합니다. 부상 위치를 목표로 한 후, "부상을 입습니다."아래의 "START READING"버튼을 클릭하여 조직 거리를 측정하십시오EVEL "영역 (파란색) ( 그림 3B 및 3B-1 ).
- "SET INJURY LEVEL"영역에서 수직 마이크로 드라이버 ( 그림 1C )를 통해 센서와 척수 사이의 거리를 천천히 조정하여 원하는 변위 매개 변수 ( 예 : 0.500 mm, "상해"매개 변수 상자 참조)에 도달하십시오 (파란색) ( 그림 3B ).
- 원하는 상해 변위에 도달하면 조직 거리를 기록하십시오 ( 예 : "Range"매개 변수 상자에 표시된 8.451 mm) ( 그림 3B ). 원하는 변위 (상해) = 선단 거리 (영) - 조직 거리 (범위) ( 그림 3B )를 정의하십시오. 원하는 부상 ( 예 : 0.500 mm 조직 변위)에 도달하면 ( 그림 3B ) "부상 수준 설정"영역 아래의 "부상 설정"버튼을 클릭하여부상을 입히십시오.
- 스크류 1을 반 시계 방향으로 90 ° 돌려 스크류를 풀고 충격 팁을 레이저 빔 궤적 ( 그림 3C -1 , 화살표 방향)으로 다시 밀고 나사 1을 시계 방향으로 90 ° 돌려서 잠급니다.
- 빨간색 "RUN EXPERIMENT"영역 ( 그림 3C ) 아래에서 실행 버튼을 클릭하여 영향을 실행하십시오. 이 구역 아래의 매개 변수 상자에는 부상 시간, 힘 (mV), 속도 (m / s) 및 부상 변위 (mm)가 표시됩니다 ( 그림 3C ).
- 부상 데이터가 모두 기록되고 저장되면 무대에서 마우스로 U 자형 트로프를 제거합니다. 수술 현미경으로 척수 손상을 육안으로 확인하십시오 ( 그림 4C ).
- 3-0 실크 (Henry Schein, 776-SK)를 이용한 연속 봉합을 사용하여 척추 근, 표재 근막 및 피부를 봉합합니다.
- 주사하다동물을 0.9 % 식염수 1 mL와 함께 피하 수화시키고 완전한 의식이 회복 될 때까지 온도 조절 패드 위에 놓습니다. 접근 가능한 음식과 물이 들어있는 새장에 마우스를 놓습니다.
- 수술 후 치료를 위해 방광 배뇨가 자연 재해 할 때까지 수동으로 방광을 표현하십시오. 진통제는 2 일 동안 하루에 8-12 시간 Buprenorphine (0.05-2.0 mg / kg, SQ)을 주입하십시오. 방광염이 발생하면 7-10 일 동안 Baytril (SQ, 0.1 mL에 5-10 mg / kg, 1 일 1 회)을 투여하십시오. 지역 / 전신 감염이 발생하면 4 일 동안 겐타 마이신 (SQ, 5-8 mg / kg, 멸균 생리 식염수 1 mL에 8-12 시간마다 희석)을 주입하십시오.
- SCI 후 14 일에 봉합사를 제거하십시오.
- 부상 후 42 일째에, 마우스는 재관류에 의해 희생 될 것이다. 1.2로 적절한 마취 후, 그들은 0.01 M PBS에서 30 ML (0.01M) 인산염 완충 식염수 (PBS)와 30 ML 4 % paraformaldehyde로 관류됩니다. 병변 서사를 포함한 척수 1 센티미터enter는 수집되고 절편화 및 조직 학적 분석을 위해 처리됩니다.
Representative Results
이 장치는 (1) 임팩터 팁이있는 몸체 ( 그림 1C ), (2) 소프트웨어가있는 컴퓨터 ( 그림 1B ), (3) 전기 제어 상자 ( 그림 1B ), (4) 척추 안정기 ( 그림 2A ), 및 (5) 압축 공기 (공압 제어 시스템 용) ( 그림 1A ). 정확한 조직 변위를 유도하기 위해 시스템은 완전히 확장 된 플런저 팁과 표적 척수 배면 사이의 거리를 측정하기 위해 레이저 센서를 사용합니다. 이 소프트웨어는 레이저 빔이 임팩터의 반사 표면에만 도달하기 때문에 팁의 4mm 두께를 고려합니다 ( 그림 2B 및 그림 3A -1 ). 플런저 팁을 배치 할 수있는 위치는 두 가지입니다. (1) in 레이저 광선 ( 그림 3A -1 ) 또는 (2)의 레이저 광선으로부터 먼 위치에서의 경로 ( 그림 3B -1 ). 플런저가 레이저 빔 경로 ( 그림 3A -1 )에있을 때, 이는 임팩터 팁으로부터의 거리를 측정하고, 신축과 후퇴 사이의 모션 동안 임팩터 팁의 속도를 모니터링합니다. 플런저가 레이저 빔 경로 ( 그림 3B -1 )에서 멀리 떨어진 측면 위치에있을 때 레이저와 척수 사이의 거리가 측정됩니다.
척추 안정제를 사용하는 T10 척추의 안정화는 절차의 필수 요소입니다 ( 그림 2A ) 10 , 11 . 레이저 센서를 사용하여 신뢰할 수있는 거리 측정은목표가 움직일 가능성이 있다면 왜곡 될 수 있습니다. 이 시스템의 정확성과 일관성을 결정하기 위해 8 마리의 마우스에게 0.5mm 변위 상해를 가했다. 이 동물들은 ± 0.001 mm (± SD)의 변위 변동성을 나타내어 시스템이 매우 정확하고 재현성이 있음을 나타냅니다. 그림 4 는 수술 현미경으로 안정화 장치 ( 그림 4A )와 노출 된 T10 척수 ( 그림 4B )와 후 ( 그림 4C )의 척추 고정 된 대상 척추를 보여줍니다.
압축 공기의 압력은 부상 순간의 충격 장치의 속도를 제어합니다. 우리의 데이터는 충격 속도가 138 kPa의 압력에서 0.81 ± 0.0345 m / s (평균 ± 표준 편차)임을 입증합니다. 전기 박스 컨트롤의 손잡이 ( 그림 1B )부상 후 팁 - 코드 접촉 시간 (dwell time)은 0에서 5,000ms 사이에서 조정할 수 있습니다. 대부분의 실험에서 팁 - 코드 체류 시간은 0.32 ± 0.0147 초 (평균 ± 표준 편차)로 설정됩니다 ( 그림 5 ). 이 장치를 사용하여 성인 마우스에서 0 mm (가짜 제어), 0.2 mm (경미한 부상), 0.5 mm (보통의 부상) 및 0.8 mm (심한 부상)의 조직 변위로 심각도에 따라 다량의 상해를 입을 수 있습니다 ( 그림 6 ).
그림 1 : 루이빌 상해 시스템 장치 (LISA). ( A ) 시스템은 임팩터, 제어 시스템 및 압축 공기 공급원으로 구성됩니다. ( B ) 제어 시스템은 제어 박스와 랩탑 컴퓨터를 포함한다. 컨트롤 박스의 소프트웨어 및 컨트롤 버튼으로 사용자는lish 상해 매개 변수. ( C ) 레이저 센서는 장치의 주요 구성 요소이며 부상 대상의 위치, 척수에서 센서까지의 거리 및 부상 속도를 측정합니다. 충돌 팁의 신속한 상하 이동은 압축 공기로 이루어집니다. 부상 위치와 조직 변위의 정도는 3 차원 운동을 제어하는 마이크로 드라이버에 의해 조정됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2 : 안정기와 마우스 홀더. ( A ) 등뼈 안정 장치는 U 형 트로프와 마우스 척추를 고정하는 두 개의 금속 팔로 구성됩니다. ( B ) 그런 다음 스태빌라이저가 충격 장치에 장착됩니다. 티그는 빨간색 선이 레이저 빔 경로를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3 : Contive SCI를 생성하는 방법. ( A - C ) 3 가지 부상 파라미터 / 영역이있는 그래픽 사용자 인터페이스 (GUI) 소프트웨어가 표시됩니다. ( A , A-1 ) 녹색 영역 (SET ZERO LEVEL)은 플런저 끝의 거리를 보정합니다. 빨간색 선은 레이저 빔 경로를 나타냅니다. ( B , B-1 ) 청색 영역은 부상 수준을 설정하는 데 사용됩니다 (부상 수준 설정). 임팩터는 들어 올려지고 레이저 광선이 척수의 등쪽 표면에 도달하여 제로 수준을 설정하도록 오른쪽으로 측면으로 이동합니다. 빨간색 선은 레이저 b를 나타냅니다. 경로. ( C , C-1 ) 충격 전에 팁을 레이저 빔 경로로 다시 이동시켜 부상 (RUN)을 실행합니다. 부상 매개 변수는 빨간색 영역 (RUN EXPERIMENT) 아래에 있습니다. 빨간색 선은 레이저 빔 경로를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 4 : 상해 노출 및 평가. ( A ) 등뼈 안정 장치의 금속 팔은 T10 척추를 안정시킵니다. ( B ) 척수를 노출시키기위한 T10 절제술. ( C ) 척수의 등쪽 표면에 충격으로 인한 타박상 (화살표)이 상해를 확인합니다. 눈금 막대 = 2mm.g4large.jpg "target ="_ blank ">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 5 : 상해 파라미터. 일관된 상해 매개 변수에는 조직 변위 (mm), 상해 속도 (m / s) 및 팁 체류 시간이 포함됩니다. N = 8, 평균 ± 표준 편차. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 6 : 조직 학적 평가. Cresyl Violet과 Eosin으로 염색 된 척수의 대표적인 단면은 ( A ) 가짜 (0 mm), ( B ) 가벼운 (0.2 mm), ( C) D ) 심한 (0.8 mm) 까악 돌기가있는 SCI를 측정 하였다. 이미지는 부상 진원지에서 촬영되었습니다. 스케일 바 = 500 μm. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
Discussion
1911 년 Allen은 고정 체중을 사용하여 첫 번째 체중 감소 모델을 설명하여 개들의 노출 된 척수에 부상을 유도했습니다. NYU / MASCIS 임팩터 3 , 6 , 13 , 14 를 포함한 Allen 모델을 기반으로 비슷한 체중 감소 모델이 개발되었습니다. 체중 감소 모델 외에도 다른 SCI 장치가 생성되었습니다. OSU / ESCID 5 , 7 모델은 조직 변위 메커니즘을 사용하여 상해의 심각성을 제어하고 IH 모델 4 , 8 은 힘을 사용하여 경사각 SCI를 만듭니다. 이러한 시스템에서, 척추 안정화는 주둥이와 장골 부위를 부상 부위에 고정시킴으로써 이루어진다. 이 장치는 낮은 상해 속도, 특히 0.33 - 0.9 m / s (NYU / MASCIS), 0.148 m / s (OSU / ESCID),및 0.13 m / s (1H). 주둥이와 꼬리의 가시 돌기를 안정시키는 것은 충격 중에 척추의 유연성과 척추 움직임을 유발할 수 있으며 이는 부상의 정확성에 영향을 줄 수 있습니다.
LISA 방법은 기존 모델의 단점, 특히 척추의 불안정성과 낮은 부상 속도를 극복하려고 시도합니다. 이 방법은 양측면 안정화를 사용하고 부상과 관련된 움직임 인공물을 피합니다. 이 장치는 0.5-2m / s 11 , 15 사이에서 설정할 수있는 높은 충격 속도를 사용합니다. 레이저 센서는 ESCID 모델에 사용 된 링 진동기보다 더 진보되었으며 조직 접촉을 필요로하지 않고 척수 표면으로부터의 거리를 정확하게 측정합니다. 모델은 원래 쥐 SCI를 생산하기 위해 개발되었으며, 수정 된 상태로 마우스 및 비인간 영장류에서 SCI를 생산하기 위해 개발되었습니다.
척추abilization은 모든 실험 SCI 방법, 특히 조직 변위 모델의 가변성을 줄입니다. 레이저 거리 센서는 호흡 운동 중에 척수의 조직 변위의 정도를 결정합니다. 레이저가 초점을 맞춘 척수의 지점은 임팩터가 부딪힌 동일한 지점이어야합니다. 이 단계는 임팩터 팁과 레이저 빔이 정렬 된 교정 단계 ( 그림 3 ) 중에 수행됩니다. 이 모델의 잠재적 약점은 조직 변위의 크기가 경막 표면에서 측정된다는 것입니다. 경막의 두께가 동물 사이에 무시할만한 차이를 만들어 내지 만 뇌척수액 (CSF)으로 채워진 지주막 하 공간에 상당한 변화가있을 수 있습니다. 작은 조직 변위를 사용하여 매우 약한 타박상을 일으킬 때 상해 결과의 다양성이 발생할 수 있습니다. 전체적으로, 상해의 일관성은 주로 의존적입니다조직 변위의 정확성 및 플런저의 속도 및 조직 접촉 시간에 영향을 미친다.
조직 변위의 범위는 넓습니다 (정확도 : 0-10 ± 0.005 mm). 설치류 및 비인간 영장류에 대한 이전의 시험 데이터 및 발표 된 정보를 토대로, SC의 전후 직경의 20 %의 변위는 경도의 SCI를 초래하고, 30-40 %의 변위는 적당한 SCI를 생성하고,> 50 %의 변위 1 m / s 속도에서 심각한 SCI를 생성합니다. 동물 종에 따라 약간의 차이가있을 것입니다. 드웰 시간은 시간 릴레이를 사용하여 0에서 5 초까지 조정할 수 있습니다. 우리의 연구에서, 체류 시간은 300 ms로 설정되었다. 이것은 NYU 및 IH 모델을 포함한 다른 SCI 장치의 휴지 시간을 복제하기 위해 쉽게 조정할 수 있습니다.
요약하면, 우리는 어른 생쥐에서 contiveive SCI의 변위 기반 모델을 개발했습니다. 이 모델은 코드를 피하면서 양측 척추면을 안정화시키기 위해 U 형 안정기를 사용합니다코드 표면의 레이저 유도 측정과 관련된 동작 인공물. 이 모델은 0.5-2m / s에서 고속 코드 손상을 일으킬 수 있습니다. 레이저 센서는 충격 표면까지의 속도와 거리를 결정하는 기존의 방법보다 정확합니다. 이 모델은 경미한 수준에서 심각한 수준까지 모든 수준에서 척수 손상을 일으킬 수 있습니다. 변형 된 경우,이 장치는 또한 쥐 및 비인간 영장류와 같은 대형 동물에서 상해를 유발할 수 있습니다.
Disclosures
Christopher B. Shields, MD는 Louisville Impactor System, LLC가 제작 한 LISA (Louisville Injury System Apparatus)의 소유권을 가지고 있습니다.
Acknowledgments
이 작품은 부분적으로 NIH NS059622, NS073636, DOD CDMRP W81XWH-12-1-0562; 미 육군 참전 용사 부 (Department of Veterans Affairs)의 우수 리뷰 상 I01 BX002356; Craig H Neilsen Foundation 296749; 인디애나 척수 및 뇌 손상 연구 재단 및 Mari Hulman George 기증 기금 (XMX); 노턴 헬스 케어, 루이스 빌, 켄터키 주 (YPZ); 인디애나 주 ISDH 13679 (XW); 및 NeuroCures 재단.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Ketamine (7.2 mg/mL)/Xylazine (0.475 mg/mL)/Acepromazine | Patterson Veterinary | 07-890-8598/07-869-7632/07-808-1947 | Anesthetic agent |
| Buprenorphine(0.03 mg/mL) | Patterson Veterinary | 07-891-9756 | Pain relief agent |
| Carprofen | Patterson Veterinary | 07-844-7425 | antibiotic agent |
| Purdue Products Betadine Surgerical Scrub | Fisher Scientific | 19-027132 | for sterilizing skin |
| Dukal Gauze Sponges | Fisher Scientific | 22-415-490 | for sterilizing skin |
| Decon Ethanol 200 Proof | Fisher Scientific | 04-355-450 | for sterilizing skin |
| 1 mL NORM-JECT | HENKE SASS WOLF | D-78532 | for anethesia/pain relief/antibiotic agent injection |
| 10 mL Syringe | TERUMO | REF SS-10L | for saline injection |
| Artificial Tears Eye Ointment | Webster Veterinary | 07-870-5261 | provent eyes from dry |
| Antiobiotic Ointment | Webster Veterinary | 07-877-0876 | provent surgery cut from infection |
| Cotton Tipped Applicators | Fisher Scientific | 1006015 | stop bleeding |
| Instrument Sterilizer | Fine Science Tools | 18000-50 | for sterilizing surgery tool |
| Fine Forceps | Fine Science Tools | 11223-20 | grasp tissue |
| Scalpel | Fine Science Tools | 10003-12 | skin cut |
| Scalpel Blade #15 | Fisher Scientific | 10015-00 | skin cut |
| Hemostat | Fine Science Tools | 13004-14 | stop bleeding |
| Rongeur | Fine Science Tools | 16021-14 | laminectomy |
| Agricola Retractor | Fine Science Tools | 17005-04 | keep the surgery view open |
| Fine scissors | Fine Science Tools | 14040-10 | for muscle seperated from spine |
| Sterile sutures | Fine Science Tools | 12051-10 | skin closure |
| Mouse Vertebral stabilizer | Louisville Impactor System | N/A | Stabilize and expose the vertebra |
| LISA | Louisville Impactor System | N/A | Produce an experimental contusion injury of the spinal cord in mice |
References
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