Introduction
Das Ziel dieser Methode ist das Rückenmark sowie zu identifizieren und zu isolieren DRGs 1, 2 zu isolieren. Hydraulik Extrusion des Rückenmarks ist ein wesentlich schnelleres Verfahren als die traditionelle Art des Rückenmarks Isolierung durch Laminektomie, dh durch die Wirbelsäule eine nach brechen, und dieses Verfahren verringert das Risiko von Gewebe durch die Dissektion Prozess verursachten Schaden 3, 4 . DRGs kann schwierig sein, zu identifizieren. Die korrekte Identifizierung ist für Gewebeanalyse sehr wichtig, zB Ischiasnerv Verletzung folgen. Durch die Nummerierung der DRGs nach ihrer Lokalisation in Bezug auf die Costae, DRGs konsistent identifiziert werden.
Gewebe durch die hier gezeigt , isoliert Techniken können auf eine Vielzahl von Analysen , einschließlich Western - Blotting 5 aufgebracht werden,6, qPCR 7 und immunhistochemischen Färbung 8.
Wenn DRGs identifizieren, ist es wichtig zu berücksichtigen , daß die Anzahl der Rückenmarkssegmente bekannt ist mit Tiertyp und Dehnungs 9, 10, 11 zu variieren. Die Vorteile bei der Durchführung dieses Verfahrens bei Mäusen sind die hohe Anzahl von gentechnisch veränderten Varianten und den relativ niedrigen Wohnkosten. Die Vorteile bei der Verwendung von Ratten sind die relativ hohen Gewebeausbeute und wenn Nervenverletzungen beteiligt, wird das Verfahren mit der Größe erleichtert werden.
Protocol
Alle Tiere wurden in voller Übereinstimmung mit dem dänischen und europäischen Vorschriften behandelt. Permission Nummer: 2012-15-2934.
1. Vorbereitung der Spritze für Hydraulik Extrusion des Spinal Cord
- Für einen erwachsenen Ratte, eine 10-ml-Spritze verwenden. Für einen erwachsenen Maus, verwenden Sie eine 5-ml-Spritze. Für Welpen, verwenden Sie eine 2,5-ml-Spritze.
- Stellen Sie eine nicht-Filterpipettenspitze universell passend für 2-200 ul Pipetten durch das große Ende der Pipettenspitze trimmen, bis sie fest auf die Spritze passt. Legen Sie die eingestellte Pipettenspitze auf der Spritze. Für Welpen, eine 23 G oder ähnliche Nadel anstelle einer angepassten Pipettenspitze verwenden.
- Absaugen eiskaltem sterilem PBS und die Spritze auf Eis bis zur weiteren Verwendung überlassen.
2. Euthanasie
- Nicht Genickbruch führen, da dies die Wirbelsäule Extrusion unmöglich macht stören.
- Für erwachsene Ratte / Maus, einschläfern Gas wie CO 2 oder isofluRane. Diese Substanzen sind schädlich. Führen Sie die Euthanasie in einer Abzugshaube und behandeln die Substanzen gemäß Institution Richtlinien. (ACHTUNG: CO 2: H280, P410, P403, Isofluran: H361d, P260, P281, P280)
- Um sicherzustellen, dass das Nagetier tot ist, sicherzustellen, ohne Reflex durch eine Pfote mit einer Pinzette Kneifen. Enthaupten die Nager mit großen Schere. Für Welpen, durch Enthauptung einschläfern.
3. Isolierung der Wirbelsäule
- Streuen Sie Wasser auf das Fell die Haare zu steuern.
- Verwendung einer Schere aufgeschnitten das Fell entlang der Wirbelsäule in einer distalen Richtung und isolieren der Wirbelsäule durch entlang der Wirbelsäule vorbei an der Beckenknochen auf beiden Seiten zu schneiden. Schneiden Sie das Rückenmark distal mit dem Beckenknochen mit einer Schere.
HINWEIS: Die rostral-caudale Achse wird als die proximal-distale Achse gesamten Protokoll bezeichnet.- Schneiden Sie die Wirbelsäule mit einer Schere die proximal zu vermeidenesten und am weitesten distal gelegenen Bereiche wie diese können die Wirbelsäule zu S-förmig für eine erfolgreiche Extrusion Rückenmark machen. Stellen Sie sicher, dass das Rückenmark an beiden Enden sichtbar ist. Wenn das Rückenmark nicht sichtbar ist, schneiden Sie die Wirbelsäule mit einer Schere, bis das Rückenmark sichtbar wird.
4. Hydraulik Extrusion des Rückenmarks
- Legen Sie eine Petrischale (100 mm Durchmesser) gefüllt mit sterilem PBS auf Eis.
- Begradigen die Wirbelsäule durch einen Zeigefinger auf dem gebogenen Teil (am weitesten proximal gelegenen Ende) der Wirbelsäule Anwendung, wodurch die Wirbelsäule so viel wie möglich Begradigung.
- Für Welpen, vermeiden Sie die Wirbelsäule Biegen, als die Wirbel wird Rendering Rückenmark Extrusion unmöglich gestört werden.
- Legen Sie die Pipettenspitze (23 G-Nadel für Welpen, alternativ 18 G-Nadel für erwachsene Mäuse) an der am meisten distalen Ende der Wirbelsäule. Wenn es richtig eingesetzt ist, wird die Spitze im Rücken Hohlraum stabilisiert.
- Sicherzustellen, dass die Wirbelsäule so viel wie möglich begradigt wird. Wenden Sie stetigen Druck, und extrudieren das Rückenmark in die Petrischale auf Eis. Stellen Sie sicher, dass das Rückenmark auf Eis feucht zu halten, indem sie es in PBS, bis die weitere Handhabung zu halten.
Abbildung 1: Repräsentative Rückenmark. Hydraulisch Rückenmark extrudiert. Von links nach rechts: erwachsenen Ratte, erwachsenen Maus, Maus pup. Lendenwirbel Vergrößerungen von Feld markiert. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
5. Identifizierung von Dorsalwurzelganglien (DRGs)
- Teilen Sie die Wirbelsäule in zwei gleiche Teile Längs Schere und legen Sie die geteilte Wirbelsäule unter dem Mikroskop.
- Identifizieren Sie die T13 Wirbels Segment die Bindungsstelle des am weitesten distal gelegenen Costae auf die Wirbelsäule Aufmerksamkeit Ortung nicht Costae mit den nahe gelegenen Interkostalnerven zu verwirren. Die am weitesten distal gelegenen Costae werden dem proximalen Teil des Wirbels T13 Segment befestigt und das T13 DRG distal zu Wirbel T13 und proximal zu Wirbels L1 angeordnet.
- Identifizieren gleichzeitige DRGs in distaler Richtung. Für einen erwachsenen Ratte, erscheinen die gleichzeitige DRGs weiß mit deutlich sichtbaren dorsalen und ventralen Wurzeln. Für einen erwachsenen Maus, erscheint begleitend DRGs weiß mit deutlich sichtbaren dorsalen und ventralen Wurzeln. Für Welpen, erscheinen die gleichzeitige DRGs als klare Sphären.
Abbildung 2: Identifizierung von DRGs in der Wirbelsäule nach der Extrusion des Rückenmarks. Die Wirbelsäule wurde aufgeteilt Visualisierung von DRGs ermöglicht, wie durch Pfeile angedeutet ist. Am Beispiel von erwachsenen Ratte und Maus pup. ref = "http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55226/55226fig2large.jpg" target = "_ blank"> Bitte hier klicken, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
6. Isolierung von DRGs
- Anzahl Petrischalen (30 mm Durchmesser) entsprechend der spezifischen DRGs isoliert werden, beispielsweise L3, L4, L5. Füllen Sie die Petrischalen mit eiskaltem sterilem PBS und legen Sie sie auf Eis.
- Mit Mikro Schere, schnitt dorsalen und ventralen Wurzeln so nah an den DRGs wie möglich, sie zu lösen, während die DRGs zu vermeiden beschädigen.
- Mit der Spitze geschlossenen Pinzette, Schaufel sanft DRGs und übertragen sie an die entsprechenden nummerierten Petrischalen.
Abbildung 3: Repräsentative isoliert DRGs. Von links nach rechts: erwachsenen Ratte, erwachsenen Maus, Maus pup."_blank"> Bitte hier klicken, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
7. Verarbeitung von Geweben für die weitere Analyse
- Western-Blotting
- Isolieren Sie die Gewebebereich von Interesse, wie zB das Rückenmark Lendenanschwellung. Bei Bedarf trennen das Rückenmark in ipsilateralen und kontralateralen Seiten und weiter in dorsalen und ventralen Hörnern.
- Platzieren des Gewebes in Lysepuffer wie TNE Lysepuffer (10 mM Tris-Base, 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 1% NP40 in doppelt destilliertem H 2 O) , die geeignete Enzyminhibitoren auf Eis.
- Homogenisieren für das Gewebe etwa 30 s auf Eis ein mechanisches Schleifen Stößel.
- Zentrifuge für 15 min bei 16000 × g bei 4 ° C und mit den Überstand zur weiteren Verarbeitung nach Standardprotokollen 5, 6 oder Halten der Überstand bei -20 ° C bis zur weiteren Verwendung.
- RNA-Analyse
- Isolieren Sie das Gewebe von Interesse.
- Ab sofort setzen das Gewebe in Lösung RNA-Stabilisierung der RNA für die Lagerung zu stabilisieren.
- Isolieren RNA nach Standardprotokollen 7.
- Konvertieren RNA zu cDNA und führen qPCR nach Standardprotokollen 7.
- Immunhistochemie
- Für gefrorenes Frischgewebe (für Rückenmark):
- Bereiten Sie Trockeneispulver durch Trockeneis Würfel Pulverisieren zu einer Menge, die zwei Esslöffel Pulver entspricht. Decken trocken Eiswürfel in ein Tuch und pulverisieren die Würfel mit einem Hammer. Platzieren Silberfolie (ca. 5 cm x 5 cm) auf einer Schicht aus trockenem Eiswürfel und decken die Silberfolie mit Trockeneispulver.
- Legen Sie das Rückenmark-Bereich für weitere Analysen auf der Trockeneispulver ausgewählt Pinzette, lassen Sie es Snap-freeze, und übertragen das Rückenmark zu einem Kryo Röhrchen. Halten Sie es auf Trockeneis zu allen Zeiten oder lagern Sie es bei -80 ° C bis uns weitere.
- Übertragen, das Rückenmark zu einem Kryostaten (-20 ° C). Wenn nötig, schneiden Sie das Rückenmark im Inneren des Kryostaten. Legen Sie das Rückenmark in Einbettungsmaterial im Innern des Kryostaten, um es an die Objektplatte zu befestigen.
- Schneiden Sie das Rückenmark in der gewünschten Dicke, beispielsweise 5 & mgr; m, und sammeln sich auf Glasplatten. Erhitzen Sie die Glasplatten mit einem Finger unmittelbar vor der Gewebesammlung für eine bessere Befestigung. Halten Sie alle übrig gebliebenen Gewebe in Kryoröhrchen bei -80 ° C bis zur weiteren Verwendung.
- Lassen Sie die Abschnitte auf Glasplatten im Inneren des Kryostaten, bis sie bereit für die Post-Befestigung.
- Post-fix die Abschnitte durch Eintauchen in 4% PFA für 10 min bei Raumtemperatur.
- Führen nach Standardprotokollen Anfärben 8.
- Fixiertem Gewebe für Kryo-Schnitte (für Rückenmark und DRGs)
- Fix Rückenmark und DRGs in 4% PFA (2 h für Rückenmark, 1,5 h für Maus DRGs und 4 h für Ratten-DRGs) bei4 ° C (in horizontaler Lage des Rückenmarks zu verhindern, dass in einer gebogenen Stellung von Befestigung).
- Übertragen, um das Gewebe zu 25% w / v Saccharose über Nacht bei 4 ° C. Das Gewebe kann in 25% w / v Sucrose gespeichert werden Azid supplementiert mit wenigen Tropfen 10% -iger mikrobieller Kontamination bei 4 ° C bis zur weiteren Verwendung zu verhindern. Wenn nötig, schneiden Sie das Rückenmark nur die Lendenanschwellung zu bilden auf einem Silikon-Karton oder ähnliches.
- Mit der Spitze eines Papiertuch, aspirieren aus dem Gewebe überschüssige Saccharoselösung.
- Füllen Sie eine Kryo Form halber Strecke Material mit einzubetten. Schieben Sie alle Blasen an den Seiten der Kryo-Form mit Werkzeugen wie geschlossene Pinzette.
- Legen Sie das Gewebe auf dem Einbettungsmaterial mit einer Pinzette und sorgen für die gewünschte Gewebeorientierung.
- Füllen Sie die Kryo Form vollständig mit Einbettungsmaterial und schieben so weit weg von dem Gewebe wie möglich alle Blasen (zB durch geschlossene Pinzette).
- Füllen Sie eine Petrischale (100 mmim Durchmesser) mit 2-methylbutan. Diese Substanz ist schädlich. Führen Sie diesen Schritt in einer Abzugshaube und geht mit dem Stoff gemäß Institution Richtlinien (ACHTUNG: H224, H304, H336, H411, P210, P280, P273, P301, P331, P304 / P340, P309 / P310).
- Legen Sie die Petrischale auf einer Schicht aus Trockeneis und fügen Sie zwei trockene Eiswürfel in die Petrischale. Legen Sie die Kryo-Form in der Petrischale und erlauben es dem Einbettungsmaterial vollständig einzufrieren.
- Halten Sie das eingebettete Gewebe auf Trockeneis zu allen Zeiten oder bei -80 ° C in Parafilm bis zur weiteren Verarbeitung gewickelt.
- Schneiden Sie das Gewebe auf einem Kryostaten (-20 ° C) in die gewünschte Dicke, beispielsweise 5 um.
- Führen nach Standardprotokollen Anfärben 8.
- Fixiertem Gewebe für Paraffineinbettung (für Rückenmark und DRGs)
- Fix Rückenmark und DRGs in 4% PFA (2 h für Rückenmark, 1,5 h für Maus DRGs und 4 h für Ratten-DRGs) bei 4 ° C (Platz Rückenmarkin horizontaler Lage aus Fixierung in einer gebogenen Position zu verhindern).
- Übertragen, um das Gewebe zu 25% w / v Saccharose über Nacht bei 4 ° C. Das Gewebe kann in 25% w / v Sucrose gespeichert werden Azid supplementiert mit wenigen Tropfen 10% -iger mikrobieller Kontamination bei 4 ° C bis zur weiteren Verwendung zu verhindern.
- Isolieren Sie die Gewebebereich von Interesse, wie zB das Rückenmark Lendenanschwellung.
- Füllen Sie eine Einbettform zur Hälfte mit Paraffin.
- Kühlen Sie den Einbettform kurz, indem sie auf die Kühlfläche des Einbettungs Maschine platzieren das Paraffin leicht zu härten. Dies ermöglicht eine bessere Gewebe Positionierung.
- Platzieren das Gewebe in der gewünschten Orientierung in dem Einbettungsform. Füllen Sie die Einbettform mit Paraffin und kühlen sofort.
- Legen Sie das paraffinhaltige bei 4 ° C über Nacht Einbettform zu lassen, es härtet vollständig und entfernen Sie den Paraffinblock das Gewebe aus der Einbettform enthält.
- Cut Abschnitte ona Mikrotom in der gewünschten Dicke, beispielsweise 5 um.
- Führen nach Standardprotokollen Anfärben 8.
- Für gefrorenes Frischgewebe (für Rückenmark):
Representative Results
Hydraulisch extrudiert Rückenmark zeigen eine glatte unbeschädigten Oberfläche in Figur 1 gezeigt. Die Lendenanschwellung kann leicht als der verdickte Bereich des Rückenmarks identifiziert werden, boxed in Abbildung 1. Die dorsalen und ventralen Seiten des Rückenmarks kann entsprechend der Morphologie durch Auge identifiziert werden. In Figur 1 ist die Bauchseite dem Betrachter zugewandt, identifizierbar durch eine klare Mittellinie entlang der gesamten Rückenmarks. Zwei breitere Linien entlang des Rückenmarks ermöglichen Identifizierung der dorsalen Seite. Am distalsten Ende der Cauda equina manchmal bleiben bei erwachsenen Ratten und erwachsene Mäuse befestigt.
Einzel DRGs kann nur während in der Wirbelsäule, Figur 2 befindet identifiziert werden. Nach der Isolierung, Figur 3 können die einzelnen DRGs nicht Aussehen identifiziert werden. Bei Bedarf ist es daherwichtig, dass sie eindeutig auf Trennung getrennt zu halten. Nach der Isolierung kann das Rückenmark und die DRGs verarbeitet und gefärbt werden , wie in Schritt 7.3 und dargestellt in Abbildung 4 dargestellt. 4a zeigt eine immunhistochemische Färbung eines DRG - Abschnitt , wo die Neuronen und deren umgebenden Satelliten Gliazellen deutlich sichtbar sind. Durch die korrekte Identifizierung der DRG ist es möglich, die Wirkung der Ischiasnerv Verletzungen am soma des verletzten Neuronen sowie auf deren umgebenden Satelliten Gliazellen zu analysieren. Figur 4b zeigt eine Nissl - Färbung eines hydraulisch extrudiert Rückenmark , wo das Gewebe intakt ist , wie durch die glatten Kanten des Abschnitts reflektiert.
Abbildung 4: Repräsentative Gewebeschnitten. A. Immunhistochemische Färbung von DRG-Seite. B. Nissl gefärbten Section von hydraulisch extrudiert Rückenmark. Bitte klicken Sie hier , um eine größere Version dieser Figur zu sehen.
Discussion
Wenn die Wirbelsäule gestört wird, beispielsweise durch zervikale Dislokation, wird das Rückenmark bei der Extrusion aufgespalten. Wenn das Rückenmark nicht extrudiert werden kann, kann die Wirbelsäule leicht an beiden Enden abgeschnitten werden und die Extrusionsversuch wiederholt werden kann. Falls das gesamte Rückenmark für eine weitere Analyse erforderlich, dh der Halsanschwellung bestehend sowie der Lenden- Erweiterung sollte die Wirbelsäule nur geringfügig beschnitten werden. Wenn nur die Lendenanschwellung für die weitere Analyse erforderlich ist, sollte das Rückenmark nach der vorliegenden Protokoll getrimmt werden. Die Wirbelsäule sollte mit den Fingerspitzen gerade gerichtet werden Extrusion zu erleichtern.
Das Protokoll ist für Nagetiere aller Altersgruppen und hier wird von einer erwachsenen Maus (8 Wochen), eine Maus pup (5 Tage) und einer erwachsenen Ratte (10 Wochen) veranschaulicht. Je nach Tierart und Stamm, die Anzahl der thorakalen und lumbalen Abschnitte variieren 9, 10, 11. In Abhängigkeit von den Proteinen zu analysiere erwachsenen Nagetieren können mit enzymhemmende Lösungen vor der Euthanasie perfundiert werden. Wenn ein Experiment durchführen einseitige Nervenschaden, kann das Rückenmark in ipsilateralen und kontralateralen Seiten aufgeteilt werden unter Verwendung von ultrafeinen Pinzette sofort nach der Extrusion. Ferner kann jede Seite in dorsalen und ventralen Seiten aufgeteilt werden. Das Gewebe kann dann für weitere Analysen, wie zB Western - Blot verarbeitet werden.
Transkardialer Perfusionsfixierung mit PFA vor dem Rückenmark Extrusion sollte vermieden werden, da dies das Rückenmark nicht flexibel macht und verhindert, dass das Rückenmark hydraulischen Extrusion. Hydraulische Rückenmark Extrusion werden die dorsalen Wurzeln abreißen. Für Experimente, wo angebracht Dorsalwurzeln notwendig sind, wird laminectomy empfohlen. Darüber hinaus werden durch hydraulische Rückenmarkshäuten Extrusion verloren, die durch Standard laminectomy vermieden werden können Hydraulik Extrusion des Rückenmarks und DRG Isolierung auch könnte unter Verwendung oxygenierten künstliche Zerebrospinalflüssigkeit (ACSF) anstelle von eiskaltem PBS durchgeführt. Die Verwendung von ACSF ermöglicht die Erhaltung des isolierten Gewebes in einer besseren physiologischen Umgebung, die bei der anschließenden elektrophysiologischen Ableitungen 12 besonders wichtig ist, 13. Eine Alternative zu ACSF könnte PBS , enthaltend 1 g / l Glucose zur Erzeugung von Primär DRG - Kulturen 14. Hydraulik Extrusion des Rückenmarks ist ein wesentlich schnelleres Verfahren als die traditionelle Art des Rückenmarks Isolierung durch Laminektomie, wodurch Gewebebehandlungszeit und damit die Gefahr von Proteinschädigung vermindert wird. Perfusion mit einem Fixiermittel vor das Rückenmark durch Laminektomie zu isolieren, das Risiko von Gewebeschäden bei der Präparation und bei der endgültigen Entfernung des verringern kannRückenmark von der Wirbelsäule. Allerdings schließt Gewebefixierung seine Anwendbarkeit auf Analysen wie Western Blotting. Hydraulische Extrusions Ausbeuten strukturell unbeschädigte Gewebe 3 geeignet für ein breiteres Spektrum von Analysen. Konsistente Erkennung von DRGs kann schwierig sein. Dies ist jedoch für die Gewebeanalyse unerlässlich, zB Ischiasnerv Verletzung folgen. Durch die Nummerierung der DRGs nach ihrer Lokalisation in Bezug auf die Costae, DRGs konsistent identifiziert werden. Die Färbung der Rückenmarksgewebe sowie von DRGs kann durch Ausführen der dargestellten Gewebebehandlung Variationen in Protokollschritt 7 skizziert optimiert werden.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Bonn scissors, extra fine, straight, 8.5 cm | F.S.C. (Fine Science Tools) | # 14084-08 | For cutting open the spinal cord prior to isolation of DRGs (adult mouse, adult rat); Other manufacturer may be used |
| Centrifuge | Eppendorf | # 5427 R | For centrifugation of homogenized tissue |
| Cryostat microtome | Leica Biosystems | # CM 3050 S | For cutting the embedded tissue prior to staining; Other model and manufacturer may be used |
| Forceps, Dumont, # 3 | F.S.C. (Fine Science Tools) | # 11231-30 | For handling of spinal cord after extrusion; Other manufacturer/type may be used |
| Forceps, Dumont, # 5 | F.S.C. (Fine Science Tools) | # 11252-20 | For isolation of DRGs (adult mouse, adult rat, pup); Other manufacturer may be used |
| Isoflurane (furane) IsoFlo Vet 100% | Abbott | # 002185 | For euthanization; Other manufacturer may be used; CAUTION: toxic |
| Iso-pentane GPR rectapur | VWR chemicals | # 24872.298 | For snap-freezing of tissue; Other manufacturer may be used; CAUTION: toxic |
| Microtome | Leica Biosystems | # RM 2155 | For sectioning of paraffin embedded tissue; Other model and manufacturer may be used |
| Paraffin wax pellets | Sigma-Aldrich | # 76243 | For paraffin embedding; Other manufacturer may be used |
| Paraffin tissue embedding station | Leica Biosystems | # EG1160 | For paraffin embedding of tissue for later sectionning; Other model and manufacturer may be used |
| Pellet pestel, motor cordless | Sigma-Aldrich | # Z359971-1EA | For mechanical homogenization of isolated tissue prior to Western blotting; Other manufacturer may be used |
| Petri dish, 35 mm | Thermo Fischer Scientific | # 121V | For storage of isolated DRGs; Other manufacturer and size may be used |
| Petri dish, 100 mm | Sigma-Aldrich | # P7741 | For spinal cord extrusion; Other manufacturer and size may be used |
| Phosphatase inhibitor, Phosstop | Sigma-Aldrich | # 04906845001 | Phosphatase inhibitor cocktail for addition to TNE-lysis buffer if needed; Other manufacturer may be used |
| Pipette tip, 1-200 μL, no filter | Sarstedt | # 70.1189.105 | For hydraulic extrusion; Other manufacturer may be used |
| Protease inhibitor, Complete | Sigma-Aldrich | # 05892791001 | Protease inhibitor cocktail for addition to TNE-lysis buffer if needed; Other manufacturer may be used |
| RNAlater solution | Sigma-Aldrich | # R0901 | For RNA stabilization for storage; Other manufacturer may be used |
| Rneasy Protect Mini KiT | Qiagen | # 74124 | For RNA isolation; Other manufacturer may be used |
| Scalpel; Swann-Morton surgical blade no. 11 | Swann-Morton | # REF0203 | For isolation of spinal cord lumbar area; Other manufacturer/type may be used |
| Scissors, straight, type 3, 25 mm cutting edge | Bochem | # 4070 | For isolation of spine; Other manufacturer/type may be used |
| Scissors, 130 mm cutting edge | Hounisen | # 1902.0130 | For isolation of spinal cord (adult rat) |
| Spring scissors, straight, 8 mm cutting edge | F.S.C. (Fine Science Tools) | # 15009-08 | For cutting open the spinal column prior to isolation of DRGs (pup) and for isolation of DRGs (adult mouse, adult rat, pup); Other manufacturer may be used |
| Standard syringes, 2.5 mL, 5 mL, 10 mL | Terumo | # SS02SE1; # SS05SE1; # SS10SE1 | For hydraulic extrusion; Other manufacturer may be used |
| Stereomicroscope MZ12.5 with objective 1X and eyepiece 10X | Leica | # 10446370 | Other manufacturer/type may be used |
| Sterile PBS | GIBCO | # 10010-015 | For hydraulic extrusion; Can also be made according to standard protocols |
| Syringe needle 23 G x 1", 0.6 x 25 mm | Terumo Neolus | # NN-2325R | For hydraulic extrusion in pups; Other manufacturer/type may be used |
| Syringe needle 18 G x 1 1/2, 1.2 x 40 mm | Terumo Neolus | # NN-1838S | Alternative to pipette tip for hydraulic extrusion in adult mice; Other manufacturer may be used |
| Tissue-Tek | Sakura | # 4583 | Tssue embedding material for later cryosectionning |
| TNE-lysis buffer | VWR chemicals | # 10128-582 | For tissue lysis prior to Western blotting; Other manufacturer may be used; Can also be made according to standard protocols |
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