Abstract
이 원고는 생체 내에서 전사 종결 결함을 검출하는 프로토콜을 설명한다. 사용 BrUTP 여기서 설명한 가닥 특이 TRO 프로토콜은 생리 학적 조건 하에서 전사 종결 결함 분석을위한 강력한 실험 방법이다. 전통적인 TRO 분석 마찬가지로 전사 종결 결함 하나의 지표로서 유전자의 3 '말단을 넘어 전사적 활성 폴리머의 존재에 의존한다. 그것은 기존의 TRO 분석으로 발생하는 두 가지 주요 문제를 극복한다. 첫째, 종료 신호를 통해 판독 효소가 프로모터 근위 부위에서 전사를 개시 한 경우, 검출 또는 수 단순히 어딘가에 본문에서 비특이적 개시된 pervasively 전사 효소 또는 3 '을 나타내는 경우 유전자의 끝. 둘째, 구별 할 수 있습니다 경우 넘어 전사적으로 활성 효소 신호터미네이터 영역은 진정으로 readthrough 감지 mRNA의 전사 중합 효소 또는 터미네이터 시작 비 코딩 안티센스 RNA 신호이다. 간략하게, 프로토콜, 기하 급수적으로 성장하는 효모 세포 permeabilizing 친화 방식으로 BrUTP 표지 RNA 정제의 BrUTP 염기의 존재 하에서 신장 생체 내에서 개시 사체 허용 수반 정제 초기 RNA를 전사하고 cDNA를 증폭하여 역방향 프로모터와 유전자 (2)의 종결 영역을 플 랭킹 가닥 특이 적 프라이머.
Introduction
진핵 전사 사이클은 세 가지 주요 단계로 구성; 개시, 신장 및 종료. RNA 중합 효소 II에 의한 전사의 종료는 두 가지, 상호 의존적 인 3 단계로 구성되어 있습니다. 첫 번째 단계는 템플릿에서 분열, 및 폴리아 데 닐화 mRNA를 분리를 포함하고, 바로 템플릿 폴리머의 결합 해제에 의해 표시된 두번째 단계로 이어진다. 적절한 종료와 RNA (4, 5)를 비 - 코딩 전반의 전사를 제한함으로써 점검 비정상적인 전사를 유지하는 하류 유전자의 전사와 간섭을 방지하기 위해, 전사 개시 / 재개시하는 동안 폴리머의 재활용을 위해 중요하다. 최근의 진보에도 불구하고, 종료는 RNA 중합 효소 II 전사주기까지 상기 단계에 의해 이해된다. 안정적인 종단 분석은 메커니즘 underlyin 연구를위한 필수적이다생체 내에서 RNA 중합 효소 II에 의한 전사의 g 종료.
실험적인 접근 방법은 생리 조건 하에서 활발히 유전자 전사 종결 결함을 검출하기 위해 사용된다. 이 북부 오 점, 종료 인자 칩 (염색질 면역 침전) 및 기존의 TRO 분석을 포함한다. 이들 기술은 각각 장단점을 갖는다. 사용되는 전통적인 TRO 분석은 생체 내 1에서 전사 종결 결함의 검출을위한 가장 신뢰할 수 있고 중요한 방법이 될 수 있습니다. 이 분석은 세포 내부 유전자의 상이한 영역의 전사적 활성 폴리머 분자 편재. 정상적인 조건에서 분석은 엄격히 유전자 (그림 1A)의 프로모터와 터미네이터 영역 사이에 분산 된 전사적으로 참여 중합 효소 분자를 보여줍니다. 결함 종료시 그러나, 폴리머는 종료 신호를 판독 할 수없는상기 유전자 (도 1b)의 3 '말단의 하류 영역에서 검출된다.
전사 종결 결함이 프로모터 근위 영역으로부터 시작된 센스 속기 폴리머의 존재 하에서 적하하고, 종료 신호를 읽을 수 되,도에 도시 된 바와 같이, 유전자의 3 '말단의 하류 영역을 전사 계속 2A. 진핵 게놈 및 유전자 6, 7, 8, 9, 약 10 압도적 보급 점에서 전사뿐만 아니라 안티센스 방향을 나타낸다 실현으로 곧 전통적인 TRO 분석 검출 할 수없는 것은 명백되었다 폴리머 IF 신호 유전자의 하류는 프로모터 시작 성적 증명서 (그림 2A) 또는 솜을 시작 탈선 RNA를 나타냅니다유전자 또는 종단 요소 (도 2b) 또는 유전자 (도 2c)의 3 '말단에서 안티센스 방향의 폴리머 속기 하류의 중간 ewhere. 관찰 readthrough 중합 효소 신호가 프로모터 시작 확장 된 감각의 mRNA 또는 시험에서 유전자의 하류를 시작 안티 센스 성적표를 나타내는 경우 사용 BrUTP는 여기에 설명 된 가닥 특정 TRO 분석은 구별 할 수 있습니다. 우리는 성공적으로 효모 2 신진에서 전사 종료에 Kin28 키나제의 역할을 보여주기 위해이 방법을 사용하고 있습니다. 여기에 방법을 사용하는 우리는 같은 단백질이 효모 신진에서 ASC1의 전사의 종료를 위해 필요하다는 것을 보여준다.
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Protocol
참고 :이 방법은 Medler, S 및 안사리, A. 2에보고 된 연구 문서에서 사용되었다.
1. 배양 및 수확 세포
- 갓 줄무늬 사카로 마이 세스 세레 비지 판에서 YPD 배지 (10g / L의 효모 추출물, 20g / L 펩톤, 2 % 덱 스트로스)에있는 세포의 5 mL의 문화를 시작합니다.
- 30 ° C, 250 rpm으로 궤도 통에 하룻밤 세포를 성장.
- 250 ㎖의 배플 플라스크 내의 성장 밤새 배양을 YPD 배지 100 ㎖의 최종 부피는 100 배 희석.
참고 : 문화 100 ㎖의 총 TRO 반응에 따라 필요합니다; 여러 반응이 필요한 경우에, 배양의 더 큰 부피를 사용해야한다. - 0.8의 광학 밀도로 세포를 성장 - 1.0 600 nm에서 (A (600) ~ 0.8 - 1.0).
- 멸균 50 ML 원뿔 튜브에 4 ° C에서 5 분 동안 820 XG에서 원심 분리하여 세포를 수확.
- 차가운 얼음 TMN의 BU 10ml에 세포를 재현 탁ffer (10 mM 트리스 - 염산 pH를 7.5, 5 밀리미터의 MgCl 2, 100 mM의 염화나트륨)과 5 분 동안 얼음 위에서 배양한다.
- 4 ° C에서 5 분 동안 820 XG에 원심 분리기 세포 펠렛합니다. 조심스럽게 흡인에 의해 뜨는을 제거합니다.
분석 실행 기능 2. Permeabilizing 및 준비 세포
- 로 pipetting 아래로 부드럽게 절단 된 P 1000 팁을 사용하여 0.6 %의 sarkosyl 용액 1 ㎖의 세포를 재현 탁. 냉장 1.5 ML의 microcentrifuge 관에 세포 현탁액을 전송합니다.
- 플랫폼 통에 25 분 동안 4 ° C에서 부드럽게 세포를 흔들어.
주 : 마이크로 원심 튜브는이 단계에서 발생하는 프로모터에서 새로운 개시 이벤트의 가능성을 피하기 위해, 차가운 온도를 유지하기 위해 얼음과 50 ㎖ 원뿔형 튜브에 충전한다. - 탁상 냉장 원심 분리기를 사용하여 4 ° C에서 6 분 동안 1,200 XG에서 세포를 원심 분리기.
- 조심스럽게 당에서 초과 액체를 제거하기 위해 뜨는을 대기음meabilized 세포 펠렛.
3. 전사 런타임에 반응
- 전사의 150 μL를 추가 실행에 버퍼 (50 mM 트리스 - 염산의 pH 7.5, 100 mM의 KCl을 10 mM의의 MgCl 2, 2 mM의 DTT (디티 오 트레이 톨), 0.75 mM의 ATP, CTP, GTP, 및 BrUTP, 200 U의 RNase 각 투과성이 세포 펠렛에 억제제).
- 최대 피펫 팅에 의해 잘린 P 200 팁을 사용하여 아래로 부드럽게 섞는다.
참고 : 여러 샘플을 처리하는 경우, 모든 샘플이 준비가 될 때까지 얼음에 모든 것을 유지하고 다음 단계로 진행합니다. - 수욕에서 30 ℃에서 5 분 동안 인큐베이션.
참고 : 초기 RNA에 BrUTP의 최적의 통합을 보장하기 위해 1 ~ 5 분 사이의 배양 시간을 조정합니다. - 냉간 즉시 사용 RNA 분리 시약 500 μL를 첨가하여 반응을 정지. 실온에서 5 분 동안 인큐베이션.
4. RNA 추출
- 셀 suspensi에 산 세척 유리 구슬 200 μL를 추가(34 단계)와, 볼텍스 믹서에 4 ° C에서 20 분 동안 격렬하게 진탕에.
- 핫 22 G 바늘을 사용 microcentrifuge 관의 바닥에 구멍 및 15 mL의 멸균 원뿔 관의 상단에 배치.
- 4 ° C에서 1 분 300 XG에 원심 분리기는 세포 용 해물을 수집합니다. 1.5 ML의 microcentrifuge 튜브에 세포 용 해물을 전송.
- 차가운 RNA 분리 시약 500 μL와 세포 용 해물을 클로로포름 200 μL를 추가한다. 4 ° C에서 20 분 동안 16,168 XG에 소용돌이 믹서 및 원심 분리기에 대한 내용을 섞는다.
- 새로운 microcentrifuge 관에 위 수성 위상을 전송합니다.
- pH를 4-5 이소 아밀 알코올 / (: 24 1 125) 차가운 페놀 / 클로로포름의 동일한 볼륨을 추가합니다. 4 ℃에서 15 분 동안 16,168 XG에 소용돌이 믹서 및 원심 분리기에 적극적으로 흔들어.
- 새로운 microcentrifuge 관에 위 수성 상을 포함하는 RNA를 전송합니다. 단계를 반복 4.6 두 번 더.
- 최종 RNA 함유하는 수성 상에 5 M의 NaCl를 추가 STOCM. 0.3의 최종 농도는 RNA를 침전을 3 회 냉 에탄올의 양을 추가 얻을 케이.
- 1 시간 동안 또는 밤새 -20 ℃에서 인큐베이션.
참고 : - 안티 BrdU의 비드 (단계 5.3 참조) 차단 배양되는 동안 4.11 단계 4.9을 수행합니다.
- 1 시간 동안 또는 밤새 -20 ℃에서 인큐베이션.
- 4 ℃에서 20 분 동안 16,168 XG에 원심 분리기. 상층 액을 제거하고 DEPC (디 에틸 피로 카보) 물 100 μL의 RNA 펠렛을 재현 탁.
- 통합되지 않은 BrUTP 뉴클레오티드에서 RNA를 분리하는 RNA 분리 미니 키트를 사용합니다. 의 RNase가없는 물 100 μL로 열로부터 RNA를 용출시킨다.
- 5 분 동안 65 ° C의 물을 용기에 RNA를 부화 한 후, 적어도 2 분 동안 얼음으로 옮긴다.
BrUTP 표지 RNA 5. 선호도 정화
- 25 μL에 안티 BrdU의 추가, 구슬 해결 500 0.25 배씩 SSPE (나트륨 염 인산 EDTA) 결합 버퍼 (20 배 SSPE의 μL : 3 M의 NaCl, 0.2 M의 NaH 2 PO 4
- 단계를 반복 5.1 세 번.
- 구슬 (1 mg의 울트라 순수 소 혈청 알부민 (BSA) 버퍼, 0.1 %의 폴리 비닐 피 롤리 돈, 1 배 결합) 버퍼를 차단의 500 μL를 추가하고 부드럽게 1 흔들어 - 플랫폼 흔드는에 4 ° C에서 2 시간.
- 단계 5.1에 기술 된 바와 같이, 결합 완충액 500 μL로 구슬을 두 번 더 씻는다.
- 구슬에 버퍼를 바인딩의 400 μL를 추가합니다.
- 구슬에 직접 (단계 4.11)에서 RNA의 100 μL를 전송합니다. 플랫폼 흔드는에 4 ° C에서 2 시간 - 부드러운가 1 진탕 품어.
- 결합 완충액 500 μL, 낮은 소금 버퍼 500 μL (0.2 배씩 SSPE, 1 mM의 EDTA, 0.05 % 트윈), 높은 소금 버퍼 500 μL (0.25 배씩 SSPE, 1 mM의 EDTA, 0.05 % 트윈와 구슬 순차적으로 세척, 100 mM의 염화나트륨), 회 TET 완충액 500 μL (1X TE, 0.05 % 트윈)에서 회전하는각 세척 사이에 4 ° C에서 30 초 동안 200 XG.
- 150 μL로 두 번 순차적으로 비드의 BrUTP 표지 된 RNA를 용출 번 용출 완충액 (20 mM의 DTT, 150 mM의 염화나트륨, 50mM 트리스 - 염산 pH를 7.5, 1 mM의 EDTA, 0.1 % SDS) 200 μL와 함께 배양하여 상층 액에서 구슬을 분리 짧은 스핀 다음 수욕에서 42 ° C에서 4 분.
BrUTP 레이블 RNA의 6 강수량
- 이소 아밀 알코올 / 차가운 페놀 / 클로로포름 500 μL를 추가 (: 24 : 125 1) pH가 4-5을 BrUTP 정제 선호도로는 RNA를 표시. 4 ° C에서 15 분 동안 16,168 XG에 소용돌이 믹서 및 원심 분리기에 섞는다.
- 새로운 microcentrifuge 관에 위 수성 위상을 전송합니다.
- RNA의 침전을 냉 에탄올, 0.3 M의 3 배 부피의 최종 농도를 얻기 위해 5 M NaCl을 주식을 추가한다.
- -20 ° C에서 밤새 품어.
- 4 ° C에서 30 분 동안 16,168 XG에서 원심 분리하여 침전 된 RNA를 수집합니다. </ 리>
- 상층 액을 제거하고 10 분 동안 공기 건조에 펠렛을 할 수 있습니다.
- DEPC 물 26 μL의 RNA 펠렛을 재현 탁.
- 분광 광도계를 사용하여 260 nm에서 흡광도를 측정하여 최종 RNA 농도를 결정한다. 또한, 280 분의 260 비율을 결정합니다. 비율 ~ 2 순수 RNA 시료를 나타낸다.
- cDNA 합성에 필요한 때까지 -80 ° C에서 분취 량의 RNA 샘플을 저장합니다.
BrUTP 표지 RNA의 7 역전사
- 100 NG에 RNA 농도를 조정 / μL은 DEPC 물을 사용. 각 cDNA 합성 반응에 RNA 0.5 μg의를 사용합니다.
참고 : RNA 템플릿의 농도는 최적의 cDNA 합성을 달성하기 위해 0.5 ~ 1.0 μg의 다를 수 있습니다. - 도 3a에 도시 된 바와 같이 하류 폴리 (A)에 위치 (종료 위치)의 여러 설계 역방향 프라이머를 이용하여 RNA를 역 전사.
- 각각 역전사 반응, RNA의 templat 5 μL를 추가E (0.5 μg의), 1 μL의의 dNTP 믹스 (10 mM의 각), 역방향 프라이머 C, D, E, F 또는 G 2 μL (50 μM 각) 및 클레아 자유 수 (도 3a 참조). 각 튜브의 최종 반응 부피가 13 μL이다.
주 : 역전사 반응의 수는 cDNA 합성에 사용되는 역방향 프라이머의 수에 의존 할 것이다. 예를 들어, ASC1 다섯 역방향 프라이머를 사용 하였다 따라서 오 역전사 반응을 설정 하였다. cDNA 합성에 사용되는 역방향 프라이머를 기초 C, D, E, F 및 G로 튜브 라벨. - 어떤 차 구조 형태를 제거하는 5 분 동안 65 ° C에서 열 순환기에 RNA 템플릿의 dNTP 믹스와 프라이머를 포함하는 튜브를 품어, 적어도 2 분 동안 4 ° C에 다음 차가운.
- 1 μL는 효소 (200 U / μL)를 역 추가, 4 μL는 버퍼와 RNA 템플릿과 프라이머를 포함하는 각각의 튜브에 0.1 M DTT의 2 μL (7.4 단계). 위아래로 부드럽게 피펫 팅에 의해 섞는다.
- 60 분 동안 42 ℃에서 열 순환기에서 반응 혼합물을 배양하여 역전사 반응을 수행한다.
- 20 분 동안 65 ℃에서 역전사 효소를 불 활성화.
- -20 ° C에서의 cDNA를 저장하거나 다음 단계로 진행합니다.
cDNA를 8. 증폭
- 단계 7.8, 1.0 μL 포워드 프라이머 B (10 μM), 1.0 μL의 3.0 μL의 cDNA 주형을 다음과 같이 단계 7.8에서 (ASC1위한 C, D, E, F 및 G 표시) 각각의 cDNA 제제의 증폭을위한 PCR 반응을 수행 역방향 프라이머 C 또는 D 또는 E 또는 F 또는 G (10 μM), 2.5 μL 10 배 중합 효소 PCR 버퍼, 0.5 μL의의 dNTP 믹스 (10 mM의 각), 1.0 μL의 MgCl 2 (2.5 mM)을 15.5 μL PCR 등급 물, 0.5 μL 열 안정성 중합 효소.
참고 : 5 1 : 1까지의 cDNA 템플릿의 다른 희석 (100)는 PCR 제품 수율을 최적화하기 위해 테스트해야합니다. 단일 프로모터 근위 정방향 프라이머는 cDNA를 증폭하기 위해 사용될다른 역방향 프라이머를 이용하여 얻어진. 예를 들어, 프로모터 근처에 위치한 하나의 전방 프라이머 B는 G에 대한 ASC1 C에서 5 역방향 프라이머와 조합하여 사용 하였다. BC는, BD는,도 3a에 도시 된 바와 같이, BF와 BG는 각각 C, D, E, F 및 G로 표시 튜브에 사용하여, 될 수있다. - 다음 열 사이클링 매개 변수를 사용하여 PCR을 실행하여 1주기를 2 분 동안 95 ° C (중합 효소의 활성화를위한 핫 스타트), 30-40 사이클 30 초 (변성), 15 초 동안 54 ° C 95 ° C (어닐링) 1 분 (연장), 1 사이클 5 분 동안 68 ° C (최종 확장) 68 ° C.
주 : 소둔 온도는 사용되는 특정 프라이머에 따라 달라질 것이며, 연기 시간이 예상되는 제품의 크기에 따라 달라진다. - 0.8 %, 1.5 %, 또는 제품의 예상 크기에 따라 2 % 아가로 오스 겔 전기 영동에 의해 PCR 생성물을 분리한다.
- 엘 Kaderi 동부 등의 설명에 따라 PCR 생성물을 정량화. (20)12 11.
참고 : 다른 방법으로, 초기 성적의 양을 정량 실시간 RT-qPCR에 전략을 사용합니다.
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Representative Results
전사 종결 결함을 검출에 BrUTP 가닥 특정 TRO 절차의 적용을 설명하기 위해, 우리는 같은 단백질의 종료 불량, 온도에 민감한 돌연변이가 rna14-1라고 사용. RNA 중합 효소 II에 의한 전사 종료에 같은 단백질의 역할은 선택된 유전자 1 터미네이터 - 인접 지역에서 RNA를 검출 기존의 TRO 분석을 이용하여 증명되었다. 비 - 허용 온도에서 rna14-1 돌연변이의 터미네이터 영역 이후 RNA 신호의 검출을 종료 결함으로 해석 하였다. 관측 된 신호는, 그러나,도 2b에 도시 된 바와 같이 대체로 유전자의 3 '말단 부근에서 전사를 개시 pervasively 속기 폴리머에 기인 할 수있다. 결정적으로 종료에 같은 단백질의 역할을 설명하기 위해, 우리는 rna14-1에 BrUTP 가닥 특정 TRO를 수행돌연변이와 37 ° C에서 동종 야생형 균주. 우리는도 1a에 도시 된 바와 같이, 야생형 균주에서, TRO 신호는 상기 프로모터 및 종결 영역 사이에 구속 될 것으로 예상. rna14-1 돌연변이 그러나, 중합 효소는 종료 신호를 통해 판독되고도 1b 및도 2a에 도시 된 바와 같이 TRO 신호는 유전자의 3 '말단을 넘어 검출한다.
간단히 말해서, 우리는 rna14-1 돌연변이 중반 로그 단계로 25 ° C에서의 동종 야생 형 세포를 성장 후 3 시간 동안 37 ° C로 세포를 이동했다. 전사의 실행은-에 분석 상술 한 바와 같이 적극적으로 전사 RNA 중합 효소에 의해 합성 초기 RNA에 BrUTP을 통합 하였다. BrUTP는 RNA 정제는도 3a에 도시 된 프라이머 C, D, E, F, 및 G를 사용하여 역전사 표지. 해당 cDNA를 PCR USI를 증폭NG 프라이머 쌍 BC, BD, BE, BF, 및 BG와 아가 로스 젤 (그림 3B)에 분별. 젤의 정량화 그림 3C에 표시됩니다. 프라이머 쌍으로 PCR 증폭 산물의 존재는, BF, 그리고 BG는 rna14-1 변이체의 표현형을 판독 종료 (도 3b, 레인 11-13, 및도 3c, 영역 E, F 및 G) 반영한다. 야생형 세포 그러나, TRO 신호 터미네이터 요소까지 제한 하였다 (도 3b, 레인 2, 3 및도 3c, 영역 C 및 D). 터미네이터 영역 외의 검출 TRO 신호가 없었다 (그림 3B, 레인 4-6 및 그림 3C, 지역 E, F 및 G). 따라서, 우리는 따라서이 단백질들은 종결 인자임을 확인 돌연변이뿐만 아니라 야생형 세포에서 종료 신호를 읽어 프로모터 개시 초기 전 사체를 검출 할 수있다.
그림 1 : 전사 런타임에 (TRO) 분석은 유전자의 다른 지역에서 전사적으로 활성 RNA 중합 효소의 존재를 감지합니다. 정상 종료 인 경우 (A), 터미네이터 영역 외의 중합 신호가 없다. 결함이 종료되면 (B)는, 중합 효소는 종료 신호를 판독 할 수없고 유전자의 3 '말단 이상으로 검출 될 수있다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2 : 해변 특정 TRO의 분석. 스트랜드 특정 TRO 분석은 검출 할 수있는 경우 t의 3 '말단을 넘어 전사적으로 활성 효소의 존재그 유전자 인해 종료 신호 (A)를 통해 판독 프로모터 개시 중합에 진정한 종단 결함, 또는 단순히 감지 방향 pervasively 전사 폴리머 속기 (B), 또는 그 ncRNA 개시 중합 효소 전사 안티센스 인 3 '말단 (C)에서. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3 : 중합 효소가 rna14-1 돌연변이의 종료 신호를 읽어들로 같은 단백질은 종단 요인이다. (A) 정방향 프라이머 B 다섯 역방향 프라이머, C, D, E, F, 및 G의 위치를 나타내는 ASC1 유전자의 개략도 정제 BrUTP 표지 된 RNA의 cDNA 합성을 위해 사용된다. (역방향 프라이머 C, D, E에서 만든 B)의 cDNA, F 및 G는 각각 PCR 프라이머 쌍 BC, BD, BE, BF와 BG를 이용하여 증폭 하였다. (C) 37 ℃에서 야생형과 rna14-1 세포에서 상기 (B)에 도시 TRO 데이터의 정량 분석. 5 S RNA는 정규화 대조군으로 사용 하였다. 오류 바는 세 가지 시험의 최소 기반으로 표준 편차의 하나의 전체 단위를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
여기서 사용 가닥 특이 TRO 프로토콜은 포유 동물 세포에서 12 GRO-SEQ (글로벌 도망 시퀀싱) 분석을 위해 사용 된 프로토콜에서 적응시켰다. 우리는 성공적으로 효모 신진에서 초기 전사를 연구하는 프로토콜을 수정했습니다. 특히 전사 종결 결함을 분석하기 위해, 우리는 RNA 가수 분해 공정 치우는하여 상기 프로토콜을 조정했다. 이것은 우리가 특히 프로모터 영역 근처의 전사 개시 부위에서 시작 전장 초기 전 사체를 검출 할 수 있었다.
의미있는 결과를 얻기 위해 최대한주의해서 수행해야 프로토콜의 여러 중요한 단계가 있습니다. 첫째, 프로토콜은 기하 급수적으로 증가 효모로 수행되어야한다. 로그 단계에서 세포 (A 600 ~ 0.8-1.0)이 단계에서 세포의 대부분으로주는 최상의 결과를 적극적으로 성장하고 강력한 전사를 전시하고 있습니다. 둘째, RNA 분리 성4 °의 C - EP 2의 온도에서 가능한 한 빨리 수행되어야한다. 브롬-UMP의 친 화성 정제 RNA를 표시하기 전에 세 번째로, 비법 인 BrUTP는 RNA 준비에서 제거해야합니다. 우리는 정제 된 RNA 준비에서 BrUTP 제거하는 RNA 키트를 사용했다. 넷째, 강력한 역전사 효소를 사용하는 프로토콜의 성공을 성취 중요하다.
더 빨리, 더 민감하고 높은 해상도를 나타내는 여기에 사용 된 가닥 특정 TRO 프로토콜은 종료 결함을 검출에서 노던 블롯 기술을 통해 이점이있다. 그것의 안티센스 전 사체로부터의 센스 전 사체를 구별하고, 관찰 결과에 의한 경우, 프로모터의 하류 영역부터 전사 또는 비정상적인 전사를 프로모터 시작될 수이 프로토콜은 기존의 TRO 프로토콜보다 낫다. 스트랜드 특정 TRO 프로토콜은 몇 가지 제한 사항이 있습니다. 그것은 더 힘든 시간 정상 성보다 소요됩니다mRNA의 검출 기술을 먹었다. 그것은 세포의 많은 수를 필요로한다. 따라서, 낮은하게 스크립트 유전자의 전사의 분석에 문제가있을 수 있습니다.
우리는 성공적 효모 2 신진에서 RNA 중합 효소 II 전사 사이클의 종단 결함을 연구하는이 기술을 사용했다. 접근 방식은뿐만 아니라 효모 RNA 중합 효소 I 및 RNA 중합 효소 III에 의해 전사의 종료를 연구하기 위해 확장 할 수 있습니다. 적절한 변형으로, 어프로치는 높은 진핵 생물에서 전사 종결 결함 연구에 적용될 수있다. 전반적으로,이 기술은 높은 재현성, 상대적으로 저렴하고 분자 생물학 실험실에서 사용되는 표준 장비가 필요합니다.
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Phenol-chloroform-isoamyl alcohol mixture | Sigma-Aldrich | 77619 | pH 4-5 |
| TRIzol reagent | Life technologies | 15596-026 | |
| RNase Inhibitor, human placenta | New England Biolabs | M0307S | |
| Anti-BrdU beads | Santa Cruz Biotechnology | sc-32323AC | |
| Protoscript II | New England Biolabs | M03368L | or an equivalent enzyme |
| Advantage 2 polymerase Mix | Clontech | 639201 | or an equivalent enzyme |
| 5-Bromouridine 5' triphosphate sodium salt | Santa Cruz Biotechnology | sc-214314A | |
| RNeasy Mini kit | Qiagen | 74104 | |
| ATP | New England Biolabs | N0451AA | |
| CTP | N0454AA | ||
| GTP | N0452AA | ||
| Ultra-pure bovine serum albumin (BSA) | MC Labs | UBSA-100 | |
| Asc1 B | AGATTCGTCGGTCACAAGTCC | ||
| Asc1 C | GAACTTTATACATATTCTTAGTT AGCAGTC |
||
| Asc1 D | TGTACATATGTATTTTCGCAGCA | ||
| Asc1 E | GCCAAGGAGACTGAATTTAATG | ||
| Asc1 F | CTATGGAATGGGGGTTTTAAG | ||
| Asc1 G | GGTTATGGCAGACATGCCAC | ||
| 5s cDNA | AGATTGCAGCACCTGAGT | ||
| 5’ 5s reverse | GGTTGCGGCCATATCTAC | ||
| 3’ 5s reverse | TGAGTTTCGCGTATGGTC |
References
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