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Summary
우리는 여기에서 마이크로 RNA-200의 가족과 같은 grainyhead 2 (GRHL2)의 결합에 기초 이소성 발현 육종 세포에서 중간 엽 상피 전환 (MET)을 유도하는 세포 배양 방법을 제시한다. 이 방법은 암의 공격성과 치료에 대한 표현형 가소성의 생물학적 영향을 이해하기 더 적합합니다.
Abstract
표현형 소성은 세포가 일시적으로 다른 혈통의 특성을 얻을하는 현상을 말한다. 암 진행하는 동안, 표현형의 가소성은 침공, 보급 및 전이를 구동한다. 표현형 가소성 연구의 대부분은 상피 유래 암의 맥락에서되었지만 실제로, 그것은 mesenchymal- 유사한 현상을 겪고 육종의 부분 집합으로, 또한 표현형의 가소성을 전시, 기원 중간 엽 있습니다 육종을 밝혀 상피 성 전이 (MET). 여기서는 각각 순차적 GRHL2 및 미르 200 패밀리는 세포 형질 도입 및 형질 전환을 이용하여 표현 육종 환자 samples.We 관찰이 메티오닌과 같은 현상을 모방 미르-200 가족 grainyhead 같은 2 (GRHL2)를 포함하는 방법을 개발 더 나은 육종 세포에서 이러한 형질 전환의 분자 토대를 이해합니다. 미르 200S 및 GRHL2 표현 육종 세포는 상피 향상된 characterist 입증세포 형태와 상피와 중간 엽 바이오 마커의 변화에 ICS. 이러한 방법을 사용하여 앞으로의 연구는 더 나은 등의 이동, 침윤, 전이 성향 및 치료 저항 등의 육종 세포에 대한 MET-같은 프로세스의 표현형의 결과를 이해하는 데 사용할 수 있습니다.
Introduction
표현형 가소성 세포 표현형 사이의 가역적 인 변화를 의미하고, 일반적으로 두 가지 유형, 상피 간 간엽 (EMT) 전환 및 중간 엽 간 상피 천이 (MET)로 분할된다. 이 표현형의 가소성은 개발 및 상처 치유 1과 다세포 생물의 정상적인 과정에서 중요한 역할을한다; 그러나,이 같은 경로 유전자 발현 프로그램 또한 섬유증, 질병을 초래할 수있다 (검토를 2, 3, 4), 암 전이 (참고 문헌 5, 6, 7의 평가 8). 전이 동안, 예를 들어, EMT 세포 극성, 세포 - 세포 상호 작용을 방해하고, 침략 9, 10 추진하고 있습니다. 함께, EMT 기여암 세포의 보급을 촉진하는 표현형 상태로의. 또한 EMT는 암 세포 대사 (6)의 규제 완화 약물 저항 (11), (12)의 개발을 포함 공격적인 표현형을 유도 다른 표현형 변화, 증가 된 종양 개시 능력 (13), (14)와 면역 회피 15 호스트의 호스트로 이끈다.
표현형 소성 잘 암의 진행에서 연구되고있다; 그러나, 육종은 표현형의 가소성을 나타낸다. 암의 표현형 가소성 같은 드라이버 중 일부는 또한 육종 소성 및 공격성에 기여하는 것처럼 흥미롭게도,이 나타납니다. 예를 들어, 육종 환자의 순환 성 종양 세포 (CTCS은)는 EpCAM, 일반적으로 상피 세포 (16)에서 발견되는 세포 표면 단백질을 발현하는 것으로 나타났다. ADDI전통적으로, 250 개 연조직 육종 샘플 상피 형상 또는 간엽 같은 유전자 발현에 기초로 분류 하였다. 상피와 같은 바이오 마커의 서명이있는 환자는 중간 엽 같은 바이오 마커의 서명 (17)을 가진 환자보다 더 나은 예후를했다. 이것은 더 상피와 같은 암 환자보다 중간 엽 같은 종양 18 환자에 비해 더 나은 결과를 보유하고있는 많은 암과 일치한다.
일부 육종이 생체와 MET와 일치 유전자 발현 경로를 표시하지만,이 표현형 가소성의 분자 토대는 잘 이해되지 유지. 육종 MET의 메커니즘과 드라이버를 연구하기 위해 우리는 두 가지 상피 특정 요소를 사용하여 MET 유도의 모델을 개발, 마이크로 RNA (은 miR) -200 가족과 grainyhead 같은 2 (GRHL2). 미르-200S는 messen의 3 '의 UTRs에 결합함으로써 유전자 발현을 조절하는 작은 비 RNA를 코딩하는 가족게르 RNA와 단백질에 방지 번역. 미르 141, 미르 (200A)를 포함 하나, 미르-200B, 200C 미르, 미르-429을 포함한 타 - 미르-200 가족 개의 서브 그룹들로 구성된다. 미르-200 계열의 구성원은 상피 조직에 충실 미르-200S 손실은 암 (19)의 전이와 관련된다. 미르-200 계열은 정상 조직에 비해 20 연조직 육종에서 하향 조절된다. 미르-200S 유사하게, GRHL2 상피 개발 (21)에 대한 중요 핵심 레귤레이터이다. GRHL2 전사 인자는 E-cadherin의 상피 유전자를 상향 조절하는 방법은 두 가지 작용 1) 상피 세포에서 GRHL2 직접 EMT 마스터 레귤레이터 억압을 ZEB1 22; 2) GRHL2 직접 상피 유전자 (23)의 전사를 활성화합니다. 우리의 이전 연구는 것으로 나타났습니다 육종 세포 미르-200S와 GRHL2의 결합 된 표현MET-같은 표현형 (24)를 유도한다. 여기서는은 miR-200S 및 GRHL2의 이소성 발현하여 육종 세포에서 MET 유도 시험 관내 모델을 작성하는 구체적인 프로토콜을 제안한다.
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Protocol
시약의 제조 1.
- 소 태아 혈청 (FBS) 및 페니실린 - 스트렙토 마이신 (5,000 U / ㎖) 500 ㎖의 DMEM에 5 mL의 50 ㎖를 첨가하여 세포를 DMEM 배양을 준비한다. 이 매체는 최대 6 개월 동안 4 ° C에 저장할 수 있습니다.
- 10 μM의 최종 농도 핵산 분해 효소가없는 물에 동결 건조 된 프라이머를 재현 탁. 저장 -20 ° C에서 프라이머를 재 - 중단.
- radioimmunoprecipitation 분석 (RIPA) 완충액 (150 mM의 염화나트륨, 0.5 % 나트륨 데 옥시 콜레이트, 0.1 % SDS, 50 개 mM 트리스, pH를 8.0)을 준비한다. 사용하기 전에 프로테아제 억제제 칵테일 보충 및 사용시 얼음에 버퍼를 유지한다. 4 ℃에서 보관하십시오.
- 0.45 ㎛의 폴리 필터를 이용하여 멸균 물 및 주사기 필터에 10 ㎎ / ㎖의 폴리 브렌 (hexadimethrine 브로마이드)를 준비한다. 솔루션은 최대 6 개월 동안 4 ° C에 저장할 수 있습니다.
- PBS 10 ㎖의 10 ㎎을 용해시켜 니트로 블루 테트라 졸륨 클로라이드의 1 ㎎ / ㎖ 작업 용액을 제조 하였다. 4 ℃에서 보관하십시오.
GRHL2 2. 렌티 바이러스 형질 도입
1 일
- 접시 보충 DMEM 2 ㎖로 6 웰 플레이트에 웰당 3 × 105 HEK293T 세포. 자동 세포 계수기를 사용하여 세포를 정량화. 5 % CO 2, 37 ℃에서 밤새 배양 한 후 60 % 융합 - 셀 40이어야한다.
제 2 일
- 1.8 pΔ8.9의 μg의 및을 pCMV-VSV의 0.2 μg의와 함께 혈청이없는 미디어의 200 μL에 2 빈 벡터의 μg의 (을 pCMV-UBC-EGFP) 또는 둘을 pCMV-GRHL2-UBC-EGFP 24 μg의 25 희석 -G 도우미 플라스미드. 별도의 튜브에, 형질 당 혈청이없는 배지 (두 샘플 400 μL 8 μL)을 200 μL의 지질 계 형질 감염 시약 4 μL 희석. 각 플라스미드 용액으로 형질 전환 시약 혼합물을 200 μL를 첨가하고 실온에서 20 분 동안 배양한다.
- incuba 동안능은, 진공 흡인에 의해 배지를 제거하고 PBS 1 ㎖로 세포를 세척함으로써 HEK293T 세포를 세척한다. 혈청이없는 미디어의 800 μL와 PBS를 교체합니다. 5 % CO 2, 37 ℃에서 2 시간 동안 세포를 각 웰에 적하 단계 2.2에서 플라스미드 혼합물을 배양하고 20 분 후에, 트랜 스펙 션 시약 200 μL를 추가한다.
- 조심스럽게 진공 흡인 형질 감염 배지를 제거하고 보충 된 DMEM 2 mL로 교체한다. 하룻밤 문화 인큐베이터로 세포를 반환합니다.
참고 : HEK293T 세포는 느슨하게 부착합니다. 미디어 교체 접시 또는 플라스크의 바닥으로부터 세포를 제거하기 위해주의를 제한하여 수행되어야한다.
3 일
- 보충 된 DMEM 2 ㎖로 형질 HEK293T 세포 플레이트에 6 웰 플레이트의 웰 당 3 × 105 RD 세포를 새로 고침 매체. 하룻밤 문화 전지. RD 세포는 시판 인간 횡문근 육종 세포주이다.
4 일
- 주사기 배럴로 단계 260에서 수집 된 바이러스 미디어를 추가하고, 폴리 브렌을 함유하는 새로운 50 개 ㎖ 원뿔형 튜브에 미디어를 뛰어. 진공 흡인 RD 세포로부터 용지를 분리 RD 세포 바이러스 여과 매체를 추가한다.
5 일
- 바이러스 미디어가 수집 한 후 반복 일 4. HEK293T 세포는 폐기 될 수있다.
7 일 강한>
- 워시 RD의 PBS 1 ㎖로 세포를 200 0.05 % 트립신 μL 웰 당을 추가한다. 5 분 동안 37 ℃에서 인큐베이션 보충 미디어 2 ㎖를 추가하고, 새로운 15ml의 원뿔에 세포 현탁액을 이동. 실온 대기음 매체에서 5 분 동안 원심 분리기 (250) XG 세포. DMEM 1 ㎖에 재현 탁은 (5 % FBS 및 1 %의 페니실린 스트렙토 마이신이 보충).
참고 : FBS의 높은 비율을 사용하여 유동 세포 계측법 동안 막힘이 발생할 수 있습니다- 유동 세포 계측법에 대한 필터 세포. 얼음 튜브 대신 파이프를 유세포 분석기로 30 μm의 필터를 사용하여 1 ㎖의 RD 세포 현탁액을 적용하기 위해 피펫을 사용한다.
- 0.5ml의 DMEM을 함유하는 1.5 mL의의 마이크로 원심 튜브에 놓아 + EGFP 셀 26 얼음에 10 % FBS와 1 % 페니실린 - 스트렙토 마이신으로 보충 장소. 플레이트는 EGFP + 배양 인큐베이터에서 12 웰 플레이트와 장소의 단일 웰에 첨가 DMEM 1 ㎖의 총 세포를 분류.
; 참고 : 흐름 계측법이 전달 후 EGFP + 세포의 수율은 일반적으로 저 (50000 개 세포)이다. 3 단계로 진행하기 14 일 전 - 세포는 10 배양해야 할 수도 있습니다.
미르 200S 3. 역방향 형질
- 반복 된 동결 / 해동 사이클을 피하기 위하여 -20 ° C에서 클레아없는 H 2 O. 나누어 축적량 및 저장소를 사용하여 결과 miR-200 모방 50 개 μM 주식을 준비한다.
- 혈청이없는 배지 300 μL 300 μL의 혈청이없는 배지에서 50 μM 음성 대조군 miRNA를 9 μL 각 50 μM은 miR-200 모방 (미르 200A 미르-200B, 미르-200C) 3 μL를 추가한다.
- 혈청이없는 배지 600 μL에 siRNA를 형질 특정 시약 6 μL를 첨가하고 두 튜브, 단계 3.2에서 두 미르 혼합물의 각 하나에이 혼합물을 300 μL를 나눈다. 형질 전환 시약 300 μL를 혼합하여, 각 단계에서 3.2 미르 혼합물의 300 μL를 결합. 방 TE에서 20 분 동안 인큐베이션mperature.
- 배양하는 동안, 2.4 ㎖의 생성 된 제 2 또는 EV GRHL2 EGFP 발현 600000 개 + RD 세포의 세포 현탁액 처리 당 혈청 매체 (250 세포 / μL)을 준비한다.
- 24- 웰 플레이트에서, 여섯 개 웰로은 miR-200 혼합 또는 단계 3.3 대조군 혼합물의 웰 당 100 μL를 추가 한 다음 각 미르 믹스 세 웰에 각각의 세포 현탁액을 400 μL를 추가한다.
- 5 % CO 2에서 37 ℃에서 세포를 밤새 인큐베이션 미디어 변경 완전히 다음날 DMEM을 첨가한다. 적절한 완충액 (하기 참조)을 이용하여 분석을 2 일 후, 세포를 수집한다. MET를 겪고 RD 육종 세포의 시간 경과 영상은 보충 자료로 사용할 수 있습니다. 이미지 자동 라이브 셀 이미 저 (27)를 사용하여 10 배 목적으로 각 웰마다 2 시간.
4. RNA 추출, 역전사 및 qPCR에
- 표준 RNA를 사용하여 제조업체의 지침에 따라 RNA를 추출추출 키트 (24). 추출 된 RNA는 -80 ° C에 저장할 수 있습니다.
- RNA 농도를 정량화. 해동 얼음에 RNA와 함께 작동합니다. , RNA 농도를 정량화 제조사의 프로토콜에 따라 플레이트 리더 분광 광도계로 260 nm에서 UV 흡광도를 측정한다. 핵산 분해 효소가없는 물을 낮은 농도의 모든 샘플을 희석.
- 상보 적 DNA (cDNA의) 총 RNA로 역전사를 수행한다. 20 μL의 반응 부피 24 효소 및 뉴 클레아없는 물을 역 PCR 완충액의 dNTP 믹스 (100 mM)을 랜덤 헥사 머 프라이머와 총 RNA의 덜 100 NG를 결합하지 않는다. 제조의 프로토콜에 따라 RT주기를 실행합니다. cDNA를 -20 ° C에서 장기 저장할 수 있습니다.
- 뉴 클레아 제 무 H 2 O 80 μL에 100 μL에 20 μL 반응 희석
- 형광 기반 인터 염료 배 qPCR의 마스터 믹스를 5 μL, 각각 10 μM의 프라이머 0.06 μL를 섞어샘플 당 희석 RT 반응 ND 2 μL.
- 형광 기반의 마스터 믹스 제조 업체의 프로토콜에 따라 실행 qPCR에.
- 델타 CT 법에 의해 mRNA의 상대적인 양을 정량화 GAPDH로 정상화. 각 치료 그룹에 대한 표준 편차 ± 생물 복제의 평균 mRNA 발현을 그린다.
참고 : 등의 RNase없는 플라스틱 및 시약을 사용하는 등 RNases과 접촉을 피하기 위해 RNA로 작업 할 때 특별한 예방 조치가 취해 져야한다. 비 일회용 장비는 RNases을 제거하기 위해 사용하기 전에 처리해야합니다.
5. 면역 형광 염색
- 24- 웰 포맷에서 RD 세포로부터 진공 흡인 단계 3.6 대기음 미디어 다음.
- 웰당 4 % 파라 포름 알데히드 (PFA) 500 μL를 첨가하여 세포를 고정하고, 실온에서 15 분 (RT) 동안 배양. 정착 이후, 인산 장소 세포 밤새 필요한 경우 39 ° C에서 생리 식염수 (PBS) 및 스토어 버퍼.
- Permeabilize 하시려면PBS + 0.2 % 트리톤 X100 500 μL를 첨가하고, RT에서 30 분 동안 배양하여 세포. 진공 흡인, permeabilization 버퍼를 제거하고 PBS로 3 회 세척 하였다.
- 5 % 소 혈청 알부민 500 μL (BSA) / PBS에서 차단하고 RT에서 30 분 동안 세포를 배양한다. 세포를 밤새 필요한 경우 4 ℃에서 저장 될 수있다.
- 차 항체 희석을 준비한다. 15 ML 원뿔로 5 % BSA 피펫 200 μL / 웰 당 PBS (12 웰 = 2.4 mL) 및 5 % BSA 1 ㎖ 당 1 차 항체 μL를 추가 / PBS를 필요로했다. 진공 흡인 차단 완충액을 제거하고, 각 웰에 희석 된 일차 항체의 200 μL 분주.
- 1 세포를 인큐베이션 : 5 % BSA에서 희석 된 1000 개 차 항체 / PBS 실온에서 1 시간 동안 또는 밤새 4 ℃에서. 부화 후, PBS로 세포를 두 번 씻는다.
- 상기와 같이, 5 % BSA / PBS 동량의 차 항체 희석을 준비한다. 2,000 희석 : 1을 사용하여 원적외선 염료 복합 이차 항체를 추가합니다. 또한 추가믹스 훽스트 염료 1 ㎍ / mL로. PBS를 제거하고 각 웰에 믹스 200 μL를 추가합니다.
- 어둠 속에서 실온에서 1 시간 동안 인큐베이션. PBS로 3 회 세척, PBS에서 셀을두고 호일을 사용하여 빛으로부터 세포를 보호합니다. 필요한 경우 세포를 4 ℃에서 저장 될 수있다.
- 650 나노 미터 - 여기 파장 (594)와 반전 된 표면 형광 현미경의 400 배의 총 배율에서 이미지 셀.
6. 웨스턴 블로 팅
- 얼음처럼 차가운 PBS로 두 번 3.6에서 세포를 씻으십시오. 얼음, 1X RIPA 50 μL와 세포를 Lyse 1X 프로테아제 억제제 칵테일 보충 버퍼입니다.
- 15 분 동안 4 ℃에서 락 해물을 5 분 샘플을 명확히하기위한 고속 (20,000 XG)에 1.5 ㎖의 튜브에 해물을 원심 분리 수집. 필요한 경우 세포 용 해물은 -80 ° C에서 장기 저장할 수 있습니다.
- 브래드 포드 분석을 이용하여 총 단백질을 정량화 된 새로운 1.5 ㎖의 마이크로 원심 튜브에 단백질의 동일한 양 나누어지는. 브린2- 머 캅토 에탄올이 보충 된 RIPA 완충액과 3X 램리 로딩 완충액을 사용하여 동일한 부피 샘플 g.
- 95 ° C에서 5 분 동안 1X 램 믈리 시료 완충액 로딩 샘플을 인큐베이션하고 45 분 동안 200 V에서 4-12 % 트리스 - 글리신 겔을 사용하여 SDS-PAGE를 실행. 세포주에 따라 단백질 적재 범위의 양. 어떤 경우에는, 총 단백질의 50 ~ 100 μg의는 중간 엽 세포 라인에서 E-cadherin의를 감지하기 위해 필요합니다.
- 1X 트리스 - 글리신 전송 버퍼에서 50 V에서 2 시간 동안 니트로 셀룰로오스 막 상으로 전달 단백질.
- 실온에서 밤새 또는 BSA 기반 차단 완충액 4 ° C에서 1 시간 동안 차단 막.
- 차단 완충액 5 mL 중에 1000 농도로 희석 멤브레인을 추가하고 부드러운 실온에서 또는 밤새 4 ℃에서 1 시간 동안 흔들 함께 배양 1 주에서 항체를 희석. 0.05 % 트윈 20과 함께 PBS에서 세척 막을 3 회.
- 적외선 형광 결합 secondar 함께 RT에서 1 시간 동안 막을 인큐베이션예 1에서 항체 : 위와 블로킹 완충액에 희석 20,000.
- 0.05 % 트윈 20과 함께 PBS로 막 두 번 세척하고 PBS에 다음 한 시간.
- 표준 적외선 형광 검출을 이용하여, 화상을 막.
7. 앵커리지 독립적 인 성장 분석
참고 : 자세한 부드러운 한천 분석 프로토콜의 28을 참조하십시오.
- 온수욕에서 42 ° C로 예열 멸균 배 DMEM 배지. 이 시간 동안, 열은 3 분 동안 전자 레인지에서 1 % 아가로 미리 멸균. 필요하거나 완전히 용해 될 때까지로 한 번에 추가로 30 초 동안 전자 레인지. 42 ° C의 물을 욕조에 아가로 이동합니다.
- 무균 후드에서 42 ° C의 물과 함께 비이커에 50ml의 원뿔형 튜브를 배치하고, 1을 1 % 아가 로즈 및 배 DMEM 배지를 혼합 : 6 웰 플레이트에 웰 당 혼합물을 1.5 mL의 1 비율 회계. 항상 DMEM 아가로 오스 피펫 오류에 대해 설명 할 / 추가로 준비하고 거품을 피하기 위해.
- 받는 사람 혼합물을 추가기포를 확보하지 웰의 측면, 형태 및 RT에서 30 분 동안 방치하자.
- 하부 층이 고화되는 동안 미디어를 흡입하고 1 ㎖의 PBS로 한번 세척 3 단계에서 형질 RD 세포의 각 그룹을 준비한다. 대기음 PBS 및 0.05 % 트립신, 0.2 mL를 첨가하고 5 분 동안 37 ℃에서 배양한다.
- 단일 세포 현탁액을 형성하기 위하여 미디어 씹다 세포를 0.8 mL의 트립신을 중화. 15 mL의 원뿔형 튜브에 세포 현탁액을 전송.
- 세포를 세어 웰 당 10,000 세포에 필요한 세포 현탁액의 양을 계산한다.
- 완전히 용해 될 때까지 한 번에 30 초 다음 3 분 동안 전자 레인지에서 0.6 % 아가로 가열한다. 42 ° C의 물을 욕조에 아가로 이동합니다.
- 무균 후드에서 42 ° C의 물과 함께 비이커에 50ml의 원뿔형 튜브를 놓는다. 6 웰 플레이트에 웰 당 1.5 ㎖의 혼합물을 제조 한 비 : 1의 0.6 % 아가로 희석 세포 현탁액을 혼합한다. 항상 피펫 오류를 설명하는 혼합 아가로 오스 / 여분의 세포 현탁액을 준비하고거품을 방지한다.
참고 : 여기에 42 ° C에서 작동하는 것이 중요합니다. 온도가 너무 낮 으면, 혼합물 도금 전에 고체화되고, 42 ° C 이상의 온도가 세포 생존에 영향을 미칠 것이다. - 세포를 여러 번으로 분쇄하여 잘 혼합 및 기포 형태를 보장하지 웰에 세포 혼합액을 추가하고, 실온에서 20 분 동안 응고하자.
- 각 보충 미디어 2 용액을 웰에 첨가하고 플레이트를 인큐베이터를 이동.
- 3~4주 또는 다세포 식민지 형성 할 때까지 일주일에 한 번 미디어를 변경합니다. 진공 흡인에 의해 용지를 제거 할 때 한천을 만지지 않도록주의하십시오. 대안 적으로, 액체 매질의 상층을 제거하는 P1000을 사용한다.
- 200 μL 니트로 블루 테트라 졸륨 클로라이드 용액을 첨가하여 (1 밀리그램 / PBS 용액에서) 소프트 한천 플레이트 얼룩과 37 ℃에서 밤새 배양 접시. 영상 PBS로 다음날 매체를 교체합니다.
- 거꾸로 현미경에 40X 총 배율에서 이미지 우물.
- 식민지 지역 및 번호 ImageJ에에 분석을 수행합니다. 플롯은 생물 복제의 콜로니 수는 표준 편차를 ± 의미한다.
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Representative Results
육종 세포에서 MET 유도를위한 스키마
육종 세포에서 MET와 같은 변화의 도입을위한 일반적인 타임 라인은도 1에 도시되어있다. 프로토콜은 미르-200 계열 (도 1b)의 형질 GRHL2 하였다 (도 1a)을 열 변환하는 것으로 시작한다. GRHL2 또는은 miR-200 가족만으로는 표현할 때 RD 세포의 모양에 영향을 미칠 수 없었다하지만 함께 GRHL2 미르-200S의 이소성 발현 RD 상피 세포와 같은 형태 변화의 결과. 증가 된 세포 - 세포 접촉 (도 1C)와 더 둥근 모양으로 방추형의 세포 형태의 변화.
육종 세포에서 MET-같은 변화 유도
GRHL2 미르 RD-200에 따라 세포의 형태 변화과발현 상피 마커 E-cadherin의 (도 2a)의 상향 조절을 수반 하였다. 미르 200S 첨가만으로는 E-cadherin의 상향 조절을하지만은 miR-200S 및 GRHL2 과발현이 상승적 E-cadherin의 발현 향상 결합 (도 2a를, 로그 스케일 생략). 또한, (도 2B) (도 1 조나의 occludens, ZO-1이라고 함) 상피 부착 분자, 및 TJP1는 EpCAM, 흰색 화살표의 세포 - 세포 연접에서 증가 하였다.
MET 유도 육종 세포의 콜로니 형성 능력을 감소
상피는 단백질의 상향 조절은 miR-200의 대상 알려진 중간 엽 유전자 Zeb1 및 Notch1 (도 3a)의 하향 조절을 수반 하였다. 콜로니 수 (도 3b)에 의해 측정 MET의 유도 RD 세포의 앵커리지 - 독립된 성장을 감소시켰다. 이 촉진제억제 형은 miR-200S 구동 한 WTH; GRHL2 과발현 앵커리지 독립적 성장 (도 3)의 증가를 이끌었다. 이 앵커리지 독립적 인 성장 (22)을 유도 GRHL2 식을 보여주는 이전의보고와 일치한다.
도 1 : GRHL2 과발현은 miR-200와 형질과 MET 유도 타임 라인. 표적 세포에서의 이소성 GRHL2 과발현의 (A) 타임 라인. 표적 세포 미르-200 가족의 역 형질 감염을 통해 MET 유도 (B) 타임 라인. (C) GRHL2 미르-200 과발현 MET와 일치 표적 세포의 형태 변화되었다. 스케일 바 = 75 μm의 여기를 클릭하십시오이 그림의 더 큰 버전을 볼 수 있습니다.
그림 2 : 동시 이상의 표현 GRHL2 미르-200S의 대상 세포에 MET되었다. GRHL2 미르-200S의 조합 발현은 mRNA의 모두에서 E-cadherin의 발현에 상승 효과 (평균 ± 표준 편차 값) 및 단백질 수준을 제작하는 동안은 miR-200S의 (A) 식 높은 E-cadherin의 발현되었다. (B) GRHL2 미르-200S 결합의 발현은 세포 간 접촉 (화살표)으로는 EpCAM 및 TJP1의 발현이 증가되었다. 스케일 바는 20 μm의 =. * 0.05 Tukey에의 사후 correction.This도 24을 참조로하여 수정 된 ANOVA를 이용하여 분석 <p를 나타낸다. 미생물학, 분자 세포 생물학, 볼륨 36, 문제 19, 2,503에서 2,513 사이, 2에 대한 저작권 © 미국 사회016 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3 :은 miR-200S를 억제 중간 엽 마커 및 육종 세포의 감소 앵커리지 독립적 인 성장의 발현. (A) 오버 - 미르 200S 발현하지만 GRHL2는 Zeb1 및 Notch1 mRNA 발현 (평균값 ± 표준 편차)을 억제 하였다. 과발현은 miR-200S의 (B)이지만 육종 세포의 억제되지 GRHL2 anoikis 저항. 염색 콜로니 (눈금 막대 = 200 μm의) 콜로니 수 (평균 ± 표준 편차 값)의 정량의 대표적인 이미지를 나타낸다. * p <0.05, R로부터 수정 된 Tukey에의 사후 correction.This도 ANOVA로 분석하여 나타낸다명 서 (24). 미생물학, 분자 세포 생물학, 볼륨 36, 문제 19, 2,503에서 2,513 사이, 2016 년에 대한 저작권 © 미국 사회는 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
보충 비디오 : 빈 벡터 및 음성 대조군의 miRNA를 발현하는 RD 세포. 영화는 빈 벡터 및 자동화 라이브 셀 이미 저를 사용하여 두 시간마다 획득 한 음성 대조군의 miRNA로 트랜 RD 세포의 이미지에서 컴파일 된. 이 동영상을 보려면 여기를 클릭하십시오. (다운로드하려면 마우스 오른쪽 버튼을 클릭합니다.)
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보충 비디오 2 : GRHL2-EGFP 및 음성 대조군 miRNA가 표현 RD 세포. 영화는 자동화 된 라이브 셀 이미 저를 사용하여 두 시간마다 획득 GRHL2-EGFP 및 음성 대조군 miRNA가로 트랜 RD 세포의 이미지에서 컴파일 된. 이 동영상을 보려면 여기를 클릭하십시오. (다운로드하려면 마우스 오른쪽 버튼을 클릭합니다.)
보충 비디오 3 : 빈 벡터 및 miR200의 miRNAs 표현 RD 세포. 영화는 자동화 된 라이브 셀 이미 저를 사용하여 두 시간마다 획득 한 빈 벡터 및 miR200의 miRNA로 트랜 RD 세포의 이미지에서 컴파일 된. 이 동영상을 보려면 여기를 클릭하십시오. (다운로드하려면 마우스 오른쪽 버튼을 클릭합니다.)
보충 비디오 4 : GRHL2-EGFP 및 miR200의 miRNAs 표현 RD 세포. GRHL2-EGFP 및 miR200의 miRNA로 트랜 RD 세포의 이미지에서 컴파일 된 비디오는 자동화 된 라이브 셀 이미 저를 사용하여 두 시간마다 인수했다. 이 동영상을 보려면 여기를 클릭하십시오. (다운로드하려면 마우스 오른쪽 버튼을 클릭합니다.)
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Discussion
육종은 중간 엽 계보의 희귀하지만, 매우 공격적인 암이다. 자신의 중간 엽 혈통에도 불구하고, 육종의 부분 집합은 더 상피와 같은 상태로 형질 전환을 겪을 것으로 보인다. 더 상피와 같은 종양을 가진 환자가 24 덜 공격적으로이 MET-같은 스위치는, 예후 관련이있다. 임상 관련성에도 불구하고, 육종 이러한 형질 전환을 운전하는 분자 메커니즘을 해결 몇몇 연구가있다.
육종 세포에서 MET-같은 전환을 검토하기 위해, 우리는 상피 요인 GRHL2와 미르-200 가족의 발현을 결합하여 MET-유도 모델을 개발했다. 이 방법은 급속히 형태와 유전자 발현 변화에 의해 측정되는 더 많은 상피 추천 될 육종 세포를 유도한다. 육종 세포에서 MET를 유도하기 위해이 프로토콜을 사용하여 육종 침략 등을 드라이브 표현형에서 이러한 전환의 영향의 연구를 용이하게마이그레이션, 침입, 증식과 죽음에 저항하는 방법으로 생물학에서 이러한 변경의 각 약물 저항에 영향을 줄 수 있습니다.
상피 유래 암종의 맥락에서 하나 개의 중간 엽 인자의 발현은 종종 EMT (14)를 유도하기에 충분하다. 그러나, MET 개의 상피 요인 GRHL2 미르-200S의 발현이 유도 육종 모델에서 요구된다. GRHL2 견고하게 ZEB1 24 등만을 상피 유전자 리프레의 결과 miR-200 기반의 억제의 존재하에 상피 유전자를 활성화 할 수있는 동안 흥미롭게 미르-200S 혼자 GRHL2보다 MET 대부분 생체에 강한 영향을 미쳤다. 그것은 어떤 간엽 세포 유형 상피 유전자가 될 필요가있다 모두 탈 억제 (예를 통해 미르 200S) 및 활성 (예를 통해 GRHL2) MET를 구동한다.
우리는 다른 CEL에서 GRHL2 발현의 수준에서 변화를 경험했다L 라인. 이 문제를 극복하기 위해, 우리는 또한 이전 실험에 EGFP 양성 세포 유동 세포 계측법에 의해 정렬 EGFP 25 표현하는 GRHL2 발현 플라스미드를 사용했다. 서로 다른 세포 유형 미르-200S와 GRHL2의 기능을 확인하는 것이 중요하다. EMT는 세포주, 암 종류, 치료 등 그러므로에 기초한 콘텍스트 - 의존 변화를 가질 수 상피 및 간엽 - 관련 유전자의 발현에 기초하여 스펙트럼으로 볼 때, 우리는에 미르 200 GRHL2 의해 조절 다섯 개 유전자 분석 세포 상황에 따라 변화를 설명. 이 분석의 또 다른 단서는 MET 유도 용은 miR-200S의 일시적 형질 전환에 의존한다. 여러 반복 형질이 필요하게되면 따라서, 장기간의 실험은 비용이 많이 들고 복잡해질 수 있습니다. 이것은은 miR-200의 발현 플라스미드를 사용하여 극복 될 수있다.
다른 연구는 육종에서 MET의 증거를보고했다. 예를 들어, MET는 leiomyosa의 하위 집합에서 관찰되었다rcomas와는 환자의 생존율과 연관이 있었다. 기계적으로, 양 등. siRNA와 함께 슬러그의 평활근 육종 세포주 억제 MET-29 등의 변화를 유도하기에 충분한 것을 발견했다. 마찬가지로, 중간 엽 줄기 세포의 또 다른 중간 엽 인자, 달팽이, 고갈 생쥐의 육종 (30) 형성을 감소시켰다. 따라서, 세포의 종류에 따라 다를 수있는 MET 같은 표현형에 다중 경로가 존재하는 문헌으로부터 명백하다. 이 MET를 유도 할 수있는 유일한 방법은 아니지만, 우리는 횡문근 육종 (RD 세포)와 골육종 (143B 세포)를 포함하는 두 개의 육종의 아형에 MET를 유도하기 위해 우리의 방법을 사용했다. 앞으로, 육종 세포의 넓은 범위에서 서로 다른 방법을 비교하는 흥미로운 일이 될 것이다. 예를 들어, 특정 육종 하위 유형 MET 유도에 더 또는 덜 민감하게 기본 유전 적 또는 후생 유전 학적 변화가 있습니까?
MET의 영향을 확인육종 세포의 생물학적 출력의 다양한에 대한 자세한 상피 같은 육종 환자가 개선 된 예후 이유의 더 나은 이해를 제공 할 수있다. 또한, 우리의 생물학적 이해를 깊게하고 육종 환자의 현재 치료에 대한 응답에 통보 할 상태 사이의 형질 전환을 운전에 대한 치료의 영향을 이해.
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Disclosures
저자가 공개하는 게 없다.
Acknowledgments
JAS는 듀크 암 연구소, 듀크 대학 비뇨 생식기 종양학 연구소 및 정형 외과의 듀크 대학교의 지원을 인정합니다. HL은 이론 생물 물리학에 대한 국립 과학 재단 (National Science Foundation, NSF) 센터에 의해 지원되었다 (NSF PHY-1427654)와 NSF DMS-1361411, 텍사스 주 암 연구에 CPRIT로 (암 예방 및 텍사스 연구소) 학술 라이스 대학 (Rice University)에서. KEW는 NIH F32 CA192630 MKJ 지원하고 HL 메리 C. Farach-카슨 JN Onuchic 사미르 M. Hanash, 케네스 J 피엔타, 도널드 S. 코피 유용한 논의 혜택.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Countess automated counter | Life technologies | AMQAX1000 | |
Countess cell counting chamber slides | Invitrogen | C10283 | |
SimpliAmp Thermal Cycler | Thermo Fisher | A24811 | |
Odyssey Fc | LI-COR Inc | ||
ViiA7 Real Time PCR System | Thermo Fisher | 4453536 | |
PCR microplate | Corning | 321-29-051 | |
KAPA SYBR Fast Universal qPCR Kit | KAPA Biosystems | KK4602 | |
Starting Block (PBS) Blocking Buffer | Thermo Fisher | 37538 | BSA-based blocking buffer |
Agarose General Purpose LE | Genesee Scientific | 20-102 | |
10x Tris/Glycine/SDS Buffer | Bio-Rad Laboratories Inc | 161-0732 | Running buffer |
10x Tris/Glycine Buffer | Bio-Rad Laboratories Inc | 161-0734 | Transfer buffer |
RIPA Buffer | Sigma Life Sciences | SLBG8489 | |
Amersham Protran 0.45 μm nitrocellulose | GE Healthcare Lifesciences | 10600012 | |
Quick-RNA MiniPrep Kit | Genesee Scientific | 11-358 | |
Laemmli Sample Buffer (4X) | Bio-Rad Laboratories Inc | 1610747 | |
Mini Trans-Blot Cell | Bio-Rad Laboratories Inc | 1703930 | |
Mini-Protean Tetra Cell | Bio-Rad Laboratories Inc | 1658005EDU | |
DPBS | Life technologies | 14190-144 | |
0.05% Trypsin-EDTA | Life technologies | 11995-065 | |
DMEM | Life technologies | 11995-065 | |
Lipofectamine RNAi Max | Thermo Fisher | 13778150 | |
Lipofectamine 2000 Ragents | Thermo Fisher | 11668019 | |
Penicillin Streptomycin | Life technologies | 15140-122 | |
miRVana miRNA mimic negative control #1 | Thermo Fisher | 4464058 | neg miRNA |
hsa-miR-200 mirVana miRNA mimic | Thermo Fisher | 4464066 | miR200A |
has-miR-200 mirVana miRNA mimic | Thermo Fisher | 4404066 | miR200B |
has-miR-200 mirVana miRNA mimic | Thermo Fisher | 4404066 | miR200C |
Opti-MEM | Life technologies | 11088-021 | serum-free media |
anti-Ecadherin antibody | BD Bioscience | 610182 | |
anti-beta actin | Santa Cruz Biotechnology | sc-69879 | |
anti-EpCam | Ab Serotec | MCA18706 | |
anti-ZO1 | Invitrogen | 402200 | |
IRDye 800W | LI-COR Inc | 925-32210 | |
IRDye 680 | LI-COR Inc | 926-32223 | |
anti-mouse AlexaFluor 647 | Thermo Fisher | A211241 | |
anti-rabbit AlexaFluor 647 | Thermo Fisher | ab150075 | |
Halt Protease and Phosphatesse Inhibitor | Thermo Fisher | 1861281 | |
Precision Plus Protein Dual Color | Bio-Rad Laboratories Inc | 161-0374 | |
Partec CellTrics | Sysmex | 04-004-2326 | 30 μm filter for flow |
GAPDH-F | IDT | AGCCACATCGCTCAGACAC | |
GAPDH-R | IDT | GCCCAATACGACCAAATCC | |
Ecadherin-F | IDT | TGGAGGAATTCTTGCTTTGC | |
Ecadherin-R | IDT | CGCTCTCCTCCGAAGAAAC | |
ZEB1-F | IDT | GCATACAGAACCCAACTTGAACGTC | |
ZEB1-R | IDT | CGATTACACCCAGACTGC | |
NOTCH-F | IDT | GGCAATCCGAGGACTATGAG | |
NOTCH-R | IDT | CTCAGAACGCACTCGTTGAT | |
nitro blue tetrazolium | Sigma | N5514 | |
hexadimethrine bromide | Sigma | H9268 | polybrene |
3 mL syringe | BD Bioscience | 309657 | |
Sterile syringe filter | VWR | 28145-505 | |
5mL polypropylene round-bottom tube | 352063 | flow cytometry tubes | |
High-Capacity cDNA Reverse Transcription Kit | Thermo Fisher | 4368814 | reverse transcription kit |
4% paraformaldyhyde | Santa Cruz Biotechnology | sc-281612 | |
Triton-X100 | Sigma | 93443 | |
bovine serum albumin | Sigma | A7906 |
References
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발생 생물학 판 (122) 중간 엽 상피 전환 육종 형질 감염 마이크로 RNA-200 가족 GRHL2 세포 배양 상피 가소성Erratum
Formal Correction: Erratum: Induction of Mesenchymal-Epithelial Transitions in Sarcoma Cells
Posted by JoVE Editors on 07/03/2018.
Citeable Link.
An erratum was issued for: Induction of Mesenchymal-Epithelial Transitions in Sarcoma Cells. An author name was updated.
One of the authors' names was corrected from:
Shenghan Xu
to:
Shengnan Xu