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Biochemistry

Proteomic 분석에 대 한 인간의 망막과 맥락 막의 RPE의 해 부

Published: November 12, 2017 doi: 10.3791/56203
* These authors contributed equally

Summary

인간의 망막 fovea, 흑점, 그리고 주변 망막을 포함 하 여 기능 및 분자로 별개 영역 구성 됩니다. 여기, 펀치 생 검 및 인간의 눈에서 조직 층의 수동 제거를 사용 하 여 부하 다운스트림 proteomic 분석이 고유한 망막 영역을 수집 하는 방법을 설명 합니다.

Abstract

인간의 망막 혈관 맥락 막 층을 단단히 complexed은 감각 neuroretina 및 근본적인 망막 안료 상피 (RPE)의 구성 됩니다. 망막의 다른 영역은 해부학 및 분자로 독특한, 독특한 기능을 촉진 하 고 질병에 차동 민감성을 보여주는입니다. 각 이러한 영역 및 레이어 Proteomic 분석 연령 황 반 변성 (AMD), 녹 내장, 당뇨병, 등 많은 질병의 분자 과정에 중요 한 통찰력을 제공할 수 있습니다. 그러나, 망막 지역과 계층의 분리 정량 proteomic 분석을 수행할 수 있습니다 전에 필수적 이다. 여기, 해 부 및 컬렉션의 시야, 황 반, 및 주변 망막 영역 및 근본적인 RPE 맥락 막 복잡 한, 지역 펀치 생 검 및 인간의 눈에서 조직 층의 수동 제거를 포함 하는 방법을 설명 합니다. 액체 크로마토그래피 탠덤 질량 분석 (LC-MS/MS) 등 다운스트림 proteomic 분석 뿐만 아니라 1 차원 SDS 페이지 사용할 수 있습니다 각 해 부 망막 층에 단백질을 식별 하기 위해 망막 질환에 대 한 분자 biomarkers를 공개.

Introduction

망막, RPE, 및 맥락 막 단백질 표정, 생리 적 기능 및 병 적인 감정1,2에서 중요 한 지역 차이 보여 주는 복잡 한 조직이 있습니다. 예를 들어 등 의학 황 반 변성 (AMD), 망막 화, 중심 장 액 망막 질환 각 질병 특성 지역화 fovea, 흑점, 또는 망막 주변1,3, 설명 4,6. 여기, 우리가 어떻게 다른 망막 영역 수 수 독립적으로 샘플링 하지를 보여주는 방법 제시. 이 방법의 전반적인 목표 proteomic 분석에 대 한 인간의 망막 및 RPE 맥락 막 시야, 황 반, 및 주변 지역에서 조직 샘플의 컬렉션에 대 한 신뢰할 수 있는 가이드를 제공 하는 것입니다. 개발 및이 기술의 사용에 대 한 근거는 이러한 특정 망막 지역, 중요 한 분자 통찰력이이 지역의 생리 및 병 태 생리 기능에 기록 될 수 있습니다의 proteomic 분석을 통해.

이 접근에는 상대 지역 질병 감정, proteomic 기초를 공개 하 고 새로운 구체적인 치료 목표의 식별을 용이 하 게 약속 드립니다. 실제로, 유리 체 및 망막에와 함께 자사의 상호 작용의 proteomic 조사 분자 조성과 건강 하 고 병에 걸리는 조직5,,78 의 기능에 중요 한 통찰력 제공 , 9 , 10 , 11 , 12 , 그러나 13. 별개의 망막 영역의 명확한 비교 proteomic 분석 결여 되는. 기술은 안정적이 고 재현 가능한 조직 컬렉션 접근으로 다른 방법 이상의 장점을 제공이 많이 필요한 연구를 지원 하기 위해 도움이 됩니다. 더 많은 그래서, 방식은 매우 접근 하 고, 표준 사이즈와 쉽게 사용할 수 있는 조직 펀치 생 검 도구 활용 합니다. 우리의 기술 강조 적절 한 수집 및 proteomic 처리, 단백질 안정성과 성능 저하에 대 한 중요 한 고려 사항에 대 한 조직의 저장 합니다. 따라서,이 방법은 proteomic 요인의 다운스트림 분자 분석을 고려 하 고 조사에 가장 적합 합니다.

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Protocol

이 연구는 아이오와의 대학에 의해 승인 되었다 ' s 기관 검토 위원회와 헬싱키의 선언에 명시 된 신조에 고착.

1. Foveal 및 황 반 생 검 펀치

    오픈 및 나비 인간의 눈, 그것은 조직의 4 별도 플랩의 이전 게시에 설명 된 대로 구성 되어 그런
  1. . 5
  2. butterflied 육안 페 트리 접시에 배치와 함께 시작, 4 m m 펀치 생 검 도구는 fovea에 센터, 누르고는 fovea 주위 절 개를 만든 때까지 부드럽게 롤.
  3. 다음, 중심 및 망막의 아케이드 내 8 m m 피부 펀치 생 검 도구를 누르고, 부드러운 압력을 적용 및 압 연 하 여 황 반 주위 절 개를 생성 합니다. 이 조직 둘러싼 첫 번째의 두 번째, 외부 반지를 생산할 예정 이다.

2. 주변 망막 생 검 펀치

아케이드 밖에 주변 망막에서 펀치의 시리즈를 만들기 위하여
  1. 사용 4 mm 피부 펀치 생 검 도구. 여기, 각 사분면 플랩에 대 한 두 개의 펀치를 확인.
    참고: 모든 펀치 만들어집니다, 눈 fovea 및 망막, 대표 센터, 2 개의 동심 펀치를 가질 것이 고 두 각 플랩 총의 기지에서 펀치 후 8 펀치 주변 망막에서.

3. Fovea 및 망막 생 컬렉션

  1. 조직 완충, 이제는 별도 microfuge 관에 모든 조직 생 검을 수집 하 고 액체 질소를 사용 하 여 다운스트림 처리에 대 한 고정. 활용도까지-80 ° C에서 모든 샘플을 저장.
  2. 곡선된 0.12 Colibri 집게를 사용 하 여 망막 fovea의 반투명 직물의 가장자리를 잡아. 수집, 상승 하 고 근본적인 RPE 맥락 막에서 시야 조직 분리.
  3. 에서는 마찬가지로 0.12 Colibri 집게를 사용 하 여 반투명 망막 직물의 외부 반지를 파악. 조직 내부 또는 인접 조직에 연결 아직도, Westcott가 위를 사용 하 여 신중 하 게 그냥 망막 구성 요소를 캡처하는 펀치에 포함 된 모든 시 신경 조직을 멀리 해 부 가장자리 트림.

4. 주변 망막 컬렉션

  1. 곡선된 0.12 Colibri 집게를 사용 하 여 부드럽게 근본적인 RPE 맥락 막 및 개별 microfuge 관 내에서 주변 망막 조직 디스크 구분.
  2. 잔여 유리 체 젤의 경우 리프트 젤 멀리 분리 하는 겸 자 사용 망막 직물의 수집 하기 전에 가능한 만큼 많이. 일단 망막 제거 된 안료 RPE 맥락 막 아래 남아.

5. 시야와 망막 RPE 맥락 막 컬렉션

  1. 제거 fovea의 영역 아래 어두운 RPE 맥락 막 조직의 가장자리 파악 하 사용은 0.12 Colibri 집게. 조심 스럽게 sclera 및 수집에서이 조직 분리.
  2. 어두운 RPE 맥락 막 조직의 제거 된 황 반 지역 기본 외부 링의 가장자리를 잡고 같은 집게를 사용 하 여. 조심 스럽게 반지 주위 다른 지점에서 가장자리를 파악 하 고 가볍게 당겨 여는 sclera에서이 조직을 구분 합니다. 결국, RPE 맥락 막 조직의 반지 dislodged 됩니다 및 수집 될 수 있습니다.
    참고: 반대 손으로 보조 겸 RPE 맥락 막 조직을 제거 하는 동안 조작에 유용할 수 있습니다. 망막 조직 처럼 웨스 콧은 위 펀치 도구를 사용 하 여 완전히 베 하지는 모든 조직을 제거에 도움을 사용할 수 있습니다.

6. 주변 망막 RPE 맥락 막 컬렉션

  1. 0.12 Colibri 집게를 사용 하 여 벗 겨 8 주변 펀치 영역에서 RPE 맥락 막.
  2. 이전, RPE 맥락 막 조직 microfuge 관에서 놓고 다운스트림 처리에 대 한 액체 질소를 사용 하 여 고정 합니다. 활용도까지-80 ° C에서 모든 샘플을 유지.

7. 해 부가 위

참고: 펀치 생 검 칼 날이 무딘 또는 펀치 생 검 도구는 충분히 열심히 강요 하지, 있을 수 있습니다 하지 맵시 주변 조직.

  1. 이러한 경우 멀리 당겨 조직을 가능한 한 많이, 다음 Westcott가 위를 사용 하 여 장식 하 고 분리.

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Representative Results

망막 및 맥락 막의 RPE 조직 개별 조사에 맞게 다양 한 방법으로 처리할 수 있습니다. 수령 후, 연구원 망막 및 RPE 맥락 막 시야 지역, 외부 망막 및 주변 망막 (그림 1)에서 조직 샘플을가지고 것입니다. 특히, 시야 지역 펀치는 fovea, parafovea, 및 인접 한 perifovea의 작은 금액을 포함 됩니다. 황 반 펀치 perifoveal 지역 뿐만 아니라 인접 한 근처 주변 지역의 작은 금액 나머지 포함 됩니다. 마지막으로, 주변 펀치 샘플 중간 주변 멀리 주변 지역. 대표적인 실험에서 조직 샘플 트립 신 소화 했다 고 단백질 함량 (그림 2A)을 시각화 하기 위해 1 차원 SDS 페이지를 사용 하 여 분석. 이 분석의 결과 것 망막의 여러 지역 중에서 독특한 단백질을 좋습니다. 액체 크로마토그래피 탠덤 질량 분석 (LC-MS/MS)6 에 의해 분석은 제대로 rhodopsin, 매우 풍부 하 고 독특한 망막 단백질에서에서 펩 티 드를 확인. Macular 지역에서 얻은 대표적인 rhodopsin 스펙트럼 그림 2B에 표시 됩니다. 단백질 함량의 추가 분석 망막의 해부학 고유 영역의 분자 기능에 대 한 통찰력을 제공할 것입니다. 해 부, 신중 하 게 수행 되지 않습니다 및 망막 RPE 맥락 막에서 제대로 분리 되지는 경우,이 두 조직 간의 단백질 함량 차이 뚜렷한 되지 않습니다.

Figure 1
그림 1 . 망막 영역. 건강 한 인간의 망막의 대표 이미지입니다. 점선 원으로 다른 망막 영역 강조 표시 하 고 지역 펀치 생 검에 의해 샘플링 단단한 원형으로 표시 됩니다. 점선된 원 대표 fovea, parafovea, 및 perifovea (중심에서 바깥쪽으로 여행), 노란색 고체 원 동안 시야 영역 노란색 4mm 시야 펀치를 나타냅니다. 파란색 점선된 원 해부학 황 반 지역을 나타내고 파란색 단색 원 8 m m 황 반 펀치를 나타냅니다. 마지막으로, 분홍색 점선된 원 망막 주변 지역 (중반 P)까지 주변 지역 (멀리 P) 중간 근처 망막 주변 지역을 (근처 P)를 나타냅니다. 핑크 솔리드 원 중반 P와 P까지 영역을 포함 하는 4 m m 주변 망막 펀치를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 2
그림 2 . 망막 단백질의 id. 주변 망막, 황 반, 및 시야 영역 biopsied proteomic 분석을 위해 사용 했다. (A) One-Dimensional SDS 페이지와 실버 얼룩 시각 망막 각 지역에 있는 단백질. (B) 망막 조직 샘플 액체 크로마토그래피 탠덤 질량 분석 (LC-MS/MS) 분석 대상이 됐다. 표시 된 대표적인 스펙트럼 macular 지역에서 확인 된 rhodopsin 단백질입니다. 이 스펙트럼 망막에서 확인 된 5 개의 독특한 rhodopsin 펩 티 드 중 하나를 나타냅니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

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Discussion

조직 후 컬렉션, 샘플 처리 및 치료입니다 중요 한 고려 사항14. 액체 질소에 보존은 선호 화학 기정에 후자 손상 될 수 있습니다 다운스트림 분석을 기울일 수 있는 단백질 구조. 또한, 액체 질소 보존 샘플의 포함 하지 않는 방법을 선호입니다. 특히, 페 러 외. 4 ° C 또는 0 ° C15에 저장에 비해 상 온에서 보존 하는 뇌 샘플 사이 단백질 수준에서 큰 차이가 나타났다. 또한, 그것은 어는 단백질 수준 및 포스트 번역 상 수정16,17를 변경 하기 전에 특정 화학 및 물리 치료로 샘플을 처리할 때 주의 해야 하는 것이 중요. 이 샘플의 의도 다운스트림 분석 고려의 중요성을 강조. 별도로, 사후 타이밍 수확 하는 조직 수준 및 특정 단백질의 안정성에 영향을 미칠 수 있는 또 다른 요인은 이다. 저하는 시간 사후 및 저장 온도18,,1920에 따라 샘플 프로테옴을 발생할 수 있습니다. 또한, 질병 조직 사이의 건강 한 조직, 내부 제어의 사용 하 여 같은 시간 사후 저하에 대 한 제어 결정적 이다. 타이밍 요소를 무시 하는 경우 저하 결과 왜곡 수 있습니다. 일반적으로 빨리 조직 분석된-사후, 연구 결과 변경 하는 저하에 대 한 더 적은 위험입니다.

여러 프로시저 수정 더 구체적인 연구 질문에 맞게이 프로토콜을 만들 수 있습니다. 한 수정은 다른 크기 피부 펀치 생 검 도구 다른 양의 조직 샘플을 수집 하는 데 사용할 수 있습니다. 더 적은 또는 더 많은 조직 다운스트림 proteomic 수량 또는 관심사의 특정 단백질의 안정성에 따라 처리에 대 한 필요할 수 있습니다. 또한, 조직 펀치 생 검의 크기 RPE 맥락 막과 망막의 특정 지역 것입니다 샘플링 하는 조잡 한 방법을 확인할 수 있습니다. 예를 들어 pathologic 조직의 특정, 좋은 지역 필요한 경우, 작은 피부 펀치 생 검 도구 필요할 수 있습니다. 또한, 섹션 그것 펀치 생 검 도구 기능 떨어지면 너무 괜찮아요, 서 필요한21을 수 있습니다. 또한, 해 범위 또는 돋보기, 같은 시각 도구를 사용 하 여 수 있습니다 원조 조직 컬렉션 프로세스-특히 작은 세계 크기의 경우에에서와 같은 유아 눈 조직으로.

마지막으로, 그것은 그 동안이 기술을 그룹 RPE 및 맥락 막 조직 단일 복합물으로,이 조직 구분 분자로 및 기능적으로 중요 한. 실제로, proteomes는이 두 조직 사이 현저 하 게 다르다. 그러나, 그럼에도 불구 하 고 이러한 차이, RPE 및 맥락 막 남아 해부학, 기능, 및 임상2,,67연결. 따라서이 키 구별 모든 다운스트림 proteomic 분석 RPE 맥락 막 복잡 한 마음에 부담 한다.

이 원고는 간단, 신뢰할 수 있는, 낮은 오버 헤드가 접근 fovea, 흑점, 및 주변 망막 인간의 눈에 RPE 맥락 막 조직 proteomic 분석에 대 한 샘플 컬렉션을 보여 줍니다. 수 사관의 재량에, 수정 컬렉션 프로세스 또는 조직 처리, 사전 컬렉션 의도 다운스트림 proteomic 분석에 따라 후 컬렉션을 만들 수 있습니다.

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Disclosures

관심 없음 충돌 선언.

Acknowledgments

VBM은 NIH 교부 금 [K08EY020530, R01EY024665, R01EY025225, R01EY024698, R21AG050437], 도리스 듀크 자선 재단 보조금 지원 #: 2013103, 및 연구를 방지 실명 (RPB), 뉴욕, 뉴욕. MT 및 GV는 NIH에서 지원 T32GM007337를 부여.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
4-mm skin punch biopsy tool Miltex REF 33-34
8-mm skin punch biopsy tool Miltex REF 33-37
0.12 Colibri Forceps Stephens Instruments S5-1145
Wescott Scissors Sklar Surgical Instruments 64-3146
Microfuge tubes Eppendorf #022364111 1.5 mL
Liquid Nitrogen Praxair, Inc. 7727-37-9 [R]

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References

  1. Chirco, K. R., Sohn, E. H., Stone, E. M., Tucker, B. A., Mullins, R. F. Structural and molecular changes in the aging choroid: implications for age-related macular degeneration. Eye (Lond). , (2016).
  2. Zhang, P., et al. Defining the proteome of human iris, ciliary body, retinal pigment epithelium, and choroid. Proteomics. 16 (7), 1146-1153 (2016).
  3. Funke, S., et al. Glaucoma related Proteomic Alterations in Human Retina Samples. Sci Rep. 6, 29759 (2016).
  4. Decanini, A., et al. Human retinal pigment epithelium proteome changes in early diabetes. Diabetologia. 51 (6), 1051-1061 (2008).
  5. Skeie, J. M., Mahajan, V. B. Dissection of human vitreous body elements for proteomic analysis. J Vis Exp. (47), (2011).
  6. Skeie, J. M., Mahajan, V. B. Proteomic landscape of the human choroid-retinal pigment epithelial complex. JAMA Ophthalmol. 132 (11), 1271-1281 (2014).
  7. Skeie, J. M., Tsang, S. H., Mahajan, V. B. Evisceration of mouse vitreous and retina for proteomic analyses. J Vis Exp. (50), (2011).
  8. Skeie, J. M., et al. Proteomic analysis of vitreous biopsy techniques. Retina. 32 (10), 2141-2149 (2012).
  9. Skeie, J. M., Mahajan, V. B. Proteomic interactions in the mouse vitreous-retina complex. PLoS One. 8 (11), e82140 (2013).
  10. Mahajan, V. B., Skeie, J. M. Translational vitreous proteomics. Proteomics Clin Appl. 8 (3-4), 204-208 (2014).
  11. Skeie, J. M., Roybal, C. N., Mahajan, V. B. Proteomic insight into the molecular function of the vitreous. PLoS One. 10 (5), e0127567 (2015).
  12. Velez, G., et al. Precision Medicine: Personalized Proteomics for the Diagnosis and Treatment of Idiopathic Inflammatory Disease. JAMA Ophthalmol. 134 (4), 444-448 (2016).
  13. Velez, G., et al. Proteomic analysis of elevated intraocular pressure with retinal detachment. Am J Ophthalmol Case Rep. 5, 107-110 (2017).
  14. Skeie, J. M., et al. A biorepository for ophthalmic surgical specimens. Proteomics Clin Appl. 8 (3-4), 209-217 (2014).
  15. Ferrer, I., et al. Brain protein preservation largely depends on the postmortem storage temperature: implications for study of proteins in human neurologic diseases and management of brain banks: a BrainNet Europe Study. J Neuropathol Exp Neurol. 66 (1), 35-46 (2007).
  16. Ahmed, M. M., Gardiner, K. J. Preserving protein profiles in tissue samples: differing outcomes with and without heat stabilization. J Neurosci Methods. 196 (1), 99-106 (2011).
  17. Kanshin, E., Tyers, M., Thibault, P. Sample Collection Method Bias Effects in Quantitative Phosphoproteomics. J Proteome Res. 14 (7), 2998-3004 (2015).
  18. Crecelius, A., et al. Assessing quantitative post-mortem changes in the gray matter of the human frontal cortex proteome by 2-D DIGE. Proteomics. 8 (6), 1276-1291 (2008).
  19. Oka, T., Tagawa, K., Ito, H., Okazawa, H. Dynamic changes of the phosphoproteome in postmortem mouse brains. PLoS One. 6 (6), e21405 (2011).
  20. Nagy, C., et al. Effects of postmortem interval on biomolecule integrity in the brain. J Neuropathol Exp Neurol. 74 (5), 459-469 (2015).
  21. Mukherjee, S., et al. Proteomic analysis of frozen tissue samples using laser capture microdissection. Methods Mol Biol. 1002, 71-83 (2013).

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Cabral, T., Toral, M. A., Velez, G., More

Cabral, T., Toral, M. A., Velez, G., DiCarlo, J. E., Gore, A. M., Mahajan, M., Tsang, S. H., Bassuk, A. G., Mahajan, V. B. Dissection of Human Retina and RPE-Choroid for Proteomic Analysis. J. Vis. Exp. (129), e56203, doi:10.3791/56203 (2017).

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