Summary
Здесь мы представляем протокол для оценки воздействия пептидов на миграции бронхиальной эпителиальных клеток. Этот метод позволяет для быстрого и высокую воспроизводимость получения количественных данных на скорость миграции и раны закрытия клеток.
Abstract
Цель этой работы заключается в том, чтобы показать новый метод для оценки способности некоторых иммуномодулирующих молекул, например антимикробных пептидов (AMPs), чтобы стимулировать миграцию клеток. Важно отметить, что миграция клеток является событием ограничения скорости во время процесса заживления раны, чтобы восстановить целостность и нормальной функции слоев ткани после травмы. Преимущество этого метода над классической assay, которая основана на вручную сделал нуля в монослое клеток, является использование культуры специальных силиконовых вставок предоставление двух отсеков для создания псевдо-рану поля свободной ячейки с четко определенной ширины (500 мкм ). Кроме того благодаря автоматизированной изображения анализ платформы, можно быстро получить количественные данные о скорости закрытия и ячейки миграции рану. Более точно будет показан эффект двух лягушка кожи усилителей на миграции бронхиальной эпителиальных клеток. Кроме того Предварительная обработка этих клеток с специфичные ингибиторы представит информацию о молекулярных механизмов, лежащих в основе таких событий.
Introduction
Основном, известно, что заживление ран в животных является основополагающим процесс для восстановления целостности и нормальной функции слоев ткани после травмы1. Несмотря на эпителиальные поверхности, подвергшихся воздействию внешней среды (например, кожи, органов дыхания и желудочно-кишечного тракта) образуют защитный барьер от физических и химических оскорбления, формирование раны может легко произойти, особенно после операция или микробной инфекции2. В качестве примера колонизации легочной ткани, оппортунистических бактериальных патогенов Pseudomonas aeruginosa, особенно в страдающих кистозный фиброз (CF), приводит к повреждению эпителия дыхательных путей с последующим дыхательной недостаточности3, 4. Заживление ран — это сложный узел ремонт механизм для восстановления нормальной архитектура пораженных тканей5. Он характеризуется начальной воспаления, последовал период регенерации эпителизации, ангиогенез и тканей ремоделирования с коллагена и ячейки дифференциация6,7,8 . Для обеспечения целостности эпителиальных и контролировать распространение микробов, все живые организмы производят молекулы обороны, включая антимикробных пептидов (AMPs)9,10. Процесс заживления очень трудно имитировать в пробирке из-за недостатка клеток мусора и сложного взаимодействия различных типов клеток. Однако в пробирке способности пептидной ускорить закрытие псевдо-раны, стимулируя миграцию эпителиальных клеток свидетельствует о ее способности исцелять скомпрометированных эпителия. Действительно миграции клеток является событием ограничения скорости в заживлении ран, и изучение факторов, которые могут повлиять на миграцию клеток поможет для целевой терапии для улучшения заживления ран.
Здесь высоко воспроизводимых экспериментальных пробирного предоставляется на основании специальных силиконовых вставок культуры для оценки миграции клеток в пробирке. Он основан на создании разрыв 500 мкм (псевдо-раны) на вырожденная клетки однослойная. Клетки на краю искусственные поля «раненый» начнется переход в ячейку свободно OBLASTь, формирование новых клеток контакты. Культуры вставка представляет собой новый инструмент для быстрого заживления экспериментов. Предоставляются два водохранилища, разделенных стеной 500 мкм, и они могут быть надлежащим образом размещены в 3-см блюдо тарелку или в колодец 12-ну плиты. Заполнение каждого отсека вставки с суспензию клеток позволяет клеткам расти в каждой области, назначенные до слияния, в то время как удаление Вставка породит чистой сотовый бесплатно разрыв примерно 500 мкм (равна ширине разделительной стены). Надлежащего клеток питательной среды, дополнена тест соединения можно добавить в блюдо пластины/хорошо. После разрыва могут быть визуализированы в разные временные интервалы под инвертированным микроскопом, желательно один, оснащены видео камеры для захвата изображений. Наконец измерение изменений в области охватывает ячейки по программе анализа веб-автоматизированных изображения позволит количественная оценка скорости закрытия и ячейки миграции рану. В целом этот метод является шагом вперед в отношении классических assay, где нуля производится вручную промо вырожденная клеток монослои стерильной иглой или пипетки Совет11. Действительно, последняя процедура может разрушить пластиковые дно тарелки пластины/Ну и покрытия, создавая морщины. Кроме того «раненых» область не имеет четко определенной ширины по всей длине разрыв, как это сильно зависит от давления исследователями на кончик иглы. Кроме того выбили клетки могут образовывать сгустки живых и мертвых клеток на краях нуля; Кроме того распространение живых клеток в область «раненый» может помешать скорость миграции клеток, генерации невоспроизводимых результатов12.
Кроме того благодаря нуля изображения анализ платформы, пользователи могут быстро получить (в течение нескольких минут) количественные данные о миграционных поведение отдельных клеток без необходимости приобретения дополнительного программного обеспечения. Эта платформа способна анализа фазы контраст микроскопии изображений низкого (~ 5 X), средний (~ 10 X) и высокой (~ 20 X) увеличение. После загрузки zip-файл изображений (в *.jpg, *.jpeg, *.jp2, *.png, *.gif, *.tiff формат) для создания файла резюме, который показывает процент клеток охватывает районы и скретч областях, а также скорость ячейки автоматически проводится анализ миграция, на различных временных интервалах.
В этой работе, с помощью AMP-производная лягушка кожи, т.е. Esc(1-21) и его diastereomer Esc(1-21) - 1 c13и бронхиальной клеточная линия, выражая функциональные CF трансмембранной проводимости регулятор (МВТР)14,15, предоставляется пример пептид индуцированной клеток миграции по сравнению с необработанной (управления) образцов. Обратите внимание, что эпителия дыхательных путей и МВТР играть решающую роль в поддержании функции легких и ранение ремонт16. Кроме того, с помощью селективных ингибиторов (например, AG1478)17 рецептора эпидермального фактора роста (EGFR), доказательства того, что миграция бронхиальной клеток, вызванные вышеупомянутыми пептиды включает активацию EGFR12, 18 сообщается.
В резюме цель этой процедуры заключается в том, чтобы показать, как использование таких силиконовые вставки культура представляет собой быстрый и легко доступный пробирного для точного определения миграции адэрентных клеток (например, бронхиальной эпителиальных клеток) и молекулярной механизмы контроля таких событий.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Подготовка клетки
- Семенной 2, 5х106 ячеек в 10 мл из минимальных основных средних (MEM) дополнены глютамин 2 мм (MEMg), плюс 10% плода бычьим сывороточным (ФБС), антибиотики (0,1 мг/мл пенициллина и стрептомицина) и puromycin (0,5 мкг/мл для отбора и техническое обслуживание ячейки строки) в колбе T75. Инкубируйте настой при 37 ° C и 5% CO2 на 2 дня. Перед началом эксперимента, проверьте слияния клеток под инвертированным микроскопом.
Примечание: Ячеек, которые используются для эксперимента, увековечен человека бронхиальной эпителиальных клеток, преобразованы с лентивирусные вектор присвоении сопротивление puromycin. Они стабильно Экспресс функциональная МВТР14,15. - После слияния клеток достигла 90-100%, аспирационная среднего из колбы и отменить его в бутылку отходов под биологической безопасности шкаф класса II. Вымойте клетки с 6 мл фосфата буфер солевой без кальция и магния (CMF-PBS). Мягко рок колбу вручную и отбросить CMF-PBS.
Примечание: Будьте осторожны, чтобы не коснуться монослое клеток с пипеткой. - Добавить 10 мл CMF-PBS и инкубировать настой при 37 ° C и 5% CO2 за 10 мин.
- Аспирационная CMF-PBS и выбросьте его. Затем добавьте 2 мл трипсина/ЭДТА в колбу.
- Встряхните флакон, позволяя решение полностью покрыть клетки и инкубировать настой при 37 ° C и 5% CO2 за 10 мин до тех пор, пока клетки заметно отдельностоящий под микроскопом.
Примечание: В конце время инкубации, клетки должен появиться округлые и не привязан к пластиковой поверхности. Если клетки не хорошо отдельностоящий, может потребоваться вручную агитации. - Добавить 10 мл MEMg плюс 10% FBS инактивирует трипсина и собирать клетки путем промывания в нижней части колбы. Перевести тома в конической 50 мл трубки.
- Центрифуга трубки для 5 мин на 80 x g.
- Аспирационная супернатант и вновь приостановить клетки в 6 мл MEMg плюс 10% FBS. Пипетка неоднократно, чтобы разрушить любые сгустки.
- Взять 10 мкл суспензии клеток с микропипеткой и придать объем под покровным стеклом, ранее положить над Burker или Нойбауэр камеры.
- Подсчитать ячейки.
2. заполнение в культуре клеток вставляет
- В каждом хорошо 12-ну плиты передачи культуры Вставка стерильным пинцетом (рис. 1). Использование пинцета нажать по краям вставки, чтобы исправить их на поверхность пластины.
Примечание: Вставки имеют липкий нижней, что позволяет адгезии.
Рисунок 1 : Схематическое представление силиконовые культуры вставок, правильно введена в скважины плиты 12-а. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
- Правильно развести суспензию клеток в MEMg плюс 10% FBS. Заполните каждый отсек кассеты с 70 мкл суспензии клеток (о 3.5x104 клетки/палата).
Примечание: Плотность ячеек, применяемых в каждом отсеке зависит от типа клеток. Рекомендуется использовать плотность клеток, которая приводит к полной слияния в течение 24 ч. - Под микроскопом убедитесь, что клетки не утечка из отсеков вставки и инкубировать 12-ну пластина для 24 ч при 37 ° C и 5% CO2.
3. псевдо-рану исцеления Assay
- После инкубации Визуализируйте клетки под инвертированным микроскопом, чтобы убедиться, что были сформированы монослои вырожденная клеток.
- Вновь приостановите испытания соединений (например, AMPs) в 1 мл MEMg.
Примечание: Подготовьте свежие разведений AMPs, начиная от Стоковый раствор хранится при температуре-20 ° C. - Аккуратно удалите вставок, стерильным пинцетом. Будьте осторожны, чтобы не сломать монослои ячейки. Передача операций вставки на абсорбирующий бумаги.
Примечание: Для повторного использования же вставок, стерилизуйте их в 70% этанола для по крайней мере 3 h. Рекомендуется чтобы выбросить их потом. - Чтобы удалить ячейки non сторонник, добавьте 1 mL MEMg на хорошо с помощью микропипеткой. Закройте пластины и осторожно покачайте его.
Примечание: Не добавляйте среднего непосредственно поверх ячейки монослои, чтобы избежать их нарушения. - Аспирационная среднего и заменить его 1 мл MEMg на хорошо. Закройте пластины и визуализировать клетки бесплатно пробелы (созданная путем вставки) под инвертированным микроскопом при 4-кратном, оснащены видео камеры. Получение изображений во время ноль (T0) и сохранять их в формате .jpg.
- Удалите носитель из скважин, вымыть их с 1 мл раствора PBS и отменить его.
- Добавьте тест соединений (в точке 3.2) скважин. Для без лечения контрольных образцов добавьте 1 мл MEMg. Инкубируйте пластины при 37 ° C и 5% CO2.
- После 15, 20 и 24 h лечения наблюдать миграции клеток под микроскопом при 4-кратном и приобрести изображений.
Примечание: Во время этого шага, пытаются захватить изображения в тех же областях, что касается T0. Выбор временных интервалов, в которые записываются изображения зависит от скорости миграции клеток. - Для изучения влияния некоторых селективных ингибиторов, т.е. AG1478, о миграции клеток, аспирационная среднего от каждого отсека вставки перед удалением вставок.
- Мыть каждый отсек с свежими MEMg и заполнить его с 70 мкл MEMg с AG1478.
- После 30 минут инкубации при 37 ° C и 5% CO2действуйте, как описано от пункта 3.3.
Примечание: Во время стирки шаг и предварительной обработки клеток монослои с специфичные ингибиторы, будьте осторожны, чтобы не удалить вставки.
4. анализ
- По окончании эксперимента выберите изображения наиболее репрезентативных выборок различных экспериментальных групп и создать zip-файл, содержащий отдельные изображения в T0, Т15, T20 и T24 h.
Примечание: Отдельные изображения принимаются на выбранных временных интервалов для всех образцов. Запустите triplicates для каждого эксперимента, который повторяется по крайней мере три раза. В конце, для всех экспериментальных групп, минимум 3 изображения («a», «b», «c», и т.д., вытекающие из каждого независимый эксперимент) на каждом этапе анализируются. - Загрузите zip-файл в программное обеспечение анализа изображений, которое автоматически обеспечивает по электронной почте резюме файл электронной таблицы, содержащие экспериментальных данных охватывает ячейки и скретч районах (в процентах) в точках выбранного времени.
Примечание: Признание переднего края и поверхности во многом основан на метод обнаружения края (направленных на выявление точек, в которых резко меняет яркость изображения). - Сохраните данные и собирать их. Нормализовать все данные в отношении среднее значение в момент нулевой. Вычислить среднее значение нормализованных данных всех реплицирует на каждом этапе и относительной стандартная ошибка (SEM). С помощью двухсторонней дисперсионный анализ (ANOVA), выполните статистический анализ с программным обеспечением надлежащих статистических данных. Различия между пептид лечение и управления группами в разные временные интервалы, считаются статистически значительному для p< 0,05.
- Участок полученные данные в диаграмму как гистограмму, которая показывает процент клеток-окрестности всех образцов группы против выбранного интервала.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Этот протокол был использован для определения ранозаживляющее действие Esc(1-21) и Esc(1-21) - 1 c с точки зрения миграции активность клеток, индуцированной на бронхиальную эпителиальных клеток, выражая функциональные МВТР. В этот assay, культуры пластины были помещены в скважинах плиты 12-Ну, и каждый отсек был посеян с 35.000 клеток в MEMg с 10% FBS. Клетки достигли полного слияния в течение 24 ч. После этого, был создан разрыв 500 мкм, и каждый хорошо был наполнен MEMg, содержащих пептидов в различных концентрациях. Эксперимент был повторен в четыре раза. Как указано на рисунке 2, почти полное закрытие псевдо-рану поля производится в монослое клеток было вызвано двумя пептидов в течение ~ 20 h, в оптимальных концентрациях 1 мкм и 10 мкм для Esc(1-21) - 1 c и Esc(1-21), соответственно. Это означает, что Esc(1-21) - 1 c является более эффективным в продвижении эпителизация псевдо-раны в бронхиальной клеток.
Рисунок 2 : Эффект esculentin-1a производных усилителей на закрытие псевдо-раны, созданный в монослое бронхиальной эпителиальных клеток. Клетки были посеяны в каждом отсеке силиконовую вставку культуры и, после его удаления, клетки были сфотографированы для доказательства миграции клеток, 15, 20 и 24 часов после добавления пептиды. Процент клеток крытая площадь на каждый раз, когда точка была рассчитана по сравнению с необработанными управления клетки (Ctrl) и сообщается на оси y. Все данные средства из четырех независимых экспериментах ± SEM и взяты из предыдущего исследования14. Уровень статистической значимости для тестов между элементом управления и обработанные образцы являются: *p< 0,05, **p< 0.01, ***p< 0,001, и ***p< 0,0001. Сообщается также о микроскопии, показаны после лечения клеток с каждой пептида в концентрации 1 мкм, по сравнению с элементом управления, представитель результаты перед (T0) и 20 h. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Чтобы проверить ли активация EGFR сыграл роль в Esc индуцированной рану закрытия, бронхиальной клетки были преинкубации за 30 минут с 5 мкм AG1478, ингибитор селективного EGFR, до удаления вставки. Так как процент клеток крытая площадь значительно сократилась промежутки времени, по сравнению с нашли, когда клетки были не подвергают предварительной с администрацией предварительного пептидных ингибиторов (рис. 3), это указывает на то, что пептид индуцированной клетки миграция включает активацию EGFR. Однако дальнейшие исследования необходимо будет уточнить молекулярные события, вызванные Esc пептиды (например, прямые EGFR активации или транс активации при посредничестве металлопротеаз, которые показали, чтобы расщеплять мембраны якорь EGFR лиганды 19).
Рисунок 3 : Эффект ингибитора AG1478 пептид индуцированной миграции бронхиальной эпителиальных клеток. До удаления вставки, клетки были предварительно инкубируют с 5 мкм AG1478 30 мин и впоследствии относились с пептидной только на такой же концентрации. Все данные являются средствами из четырех независимых экспериментах ± SEM и взяты из нашей предыдущей работы14. Уровень статистической значимости для тестов между указанной группы образцов: *p< 0,05; p< 0,0001. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Клетки миграция является важным процессом во многих физиологических и патологических мероприятиях, включая заживление ран, развития эмбриона и метастазов рака. Основная процедура для изучения клеток миграции в пробирке включает в себя: (i) создание монослое клеток, (ii) производство псевдо-рана в вырожденная слой клеток, (iii) захвата изображений в разные временные интервалы до заживления закрытие достигается и (iv) анализ последовательности изображений для того, чтобы определить скорость миграции выбранной ячейки.
Наши результаты показали, что применение вставок культуры является объективной и надежной Экспериментальная техника для количественной оценки характеристик миграции клеток. Этот assay может выполняться любой исследовательской группой с основного лабораторного оборудования. Однако некоторые важнейшие шаги протокола следует добиться воспроизводимости. Например важно определить, экспериментального эксперименты, точное количество клеток семян в каждом отсеке для получения той же степени слияния во всех индивидуальных пробах. С этой целью имея клетки с фазой синхронизированного цикла и избежать скопления клеток перед посевом имеет решающее значение. Возможный способ свести к минимуму слипания является нежный проход суспензию клеток через иголку шприца. Однако увеличивая размер образцов будет значительный вклад снижение изменчивости среди клеток.
Кроме того важно создание разрыв с четко определенной ширины во всех образцах. Для этой цели силиконовые вставки не должны повторно использоваться более чем в два раза. Кроме того следует избегать рост клеток под Силиконовой разделительной стены. Чтобы предотвратить эту неприятность, мягкого давления на вершине вставки, однажды помещаются в блюдо пластины/Ну, может применяться вручную с помощью стерильных пинцетов для повышения адгезии чтобы пластиковая вставка. Осторожного удаления вставки будет также препятствовать расширения клетки свободной поверхности с нарушением монослоя клеток.
Однако после вставки правильно выбили и псевдо-раны прекрасно подготовлены, некоторые клеточные линии можно отсоединить от пластиковой поверхности, особенно если они инкубируют в средствах массовой информации без сыворотки или добавки, такие как витамины, аминокислоты и факторы роста. Отсутствие этих факторов в среде культуры клеток может быть продиктован тот факт, что они могут мешать заживление содействие деятельности испытания соединений. Чтобы обойти эту проблему, настоятельно рекомендуется рациональный выбор культуры среднего состава.
Еще один важный шаг рассмотреть до создания этой ранозаживляющее процедура является скорость различных миграции, которая существует между различных типов клеток. Также в этом случае предварительные эксперименты должны быть запланированы с целью определения правильного временных интервалов, на которые изображения должны быть захвачены. Это также необходимо учитывать, что одно ограничение, связанное с этим методом является, что такие культуры вставки не может использоваться для изучения миграции клеток, которые растут в суспензии (например, полиморфноядерных лейкоцитов).
Несмотря на заживление анализы выполняются с культурой силиконовые вставки дороже, чем классический нуля assay, они позволяют быстрое и точное воспроизведение данных о миграции активность клеток. Важно отметить, что после установки системы, она может использоваться для расширения знаний о молекулярный механизм, лежащий в основе ранозаживляющее деятельность стимулируется эндогенных или экзогенных факторов. С этой целью предварительной монослои клеток с конкретных молекул (например ингибиторов) может осуществляться до создания псевдо-раны. Пример приводится в предварительной обработки клеток с (i клеток митомицин блокирования распространения C изучить ли закрытие поле «раненых», вызванных усилители под влиянием деление клеток скорость20 или (ii) metalloprotease ингибиторов для проверки вклад металлопротеаз в активации EGFR-опосредованной сигнальный путь12.
Важно отметить, что во время процесса закрытия раны, образцы могут быть фиксированной и относились с соответствующие пятна для обнаружения цитоскелета и ядер (Фаллоидин и DAPI, соответственно) визуализировать изменения в морфологический аспект клеток (например, формирование lamellipodia на переднем крае), флуоресцентный/confocal микроскопии. Кроме того лечение клеток с люминесцентной меткой AMP может включить визуализацию своей сотовой распределения (поверхности мембраны или внутриклеточных/внутриядерных локализации) в разное время, с самого начала миграционных активности клеток. Кроме того эти вставки могут быть использованы для анализа рану исцеления активности на поляризованных и дифференцированной эпителиальных клеток (например, первичной бронхиальной клетки, поддерживается на интерфейсе воздуха жидкость), после разместив их на подходящий transwell проницаемые поддерживает.
В заключение описан метод имеет значительный потенциал для значительного улучшения понимания миграционных особенности различных типов адэрентных животных клеток/эпителиальных тканей, а также на выбор наиболее перспективных заживления ран промоутеры и/или ингибиторы, в короткие сроки и с высокой точностью.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы не имеют ничего сообщать
Acknowledgments
Эта работа была поддержана финансирование от университета Ла Сапиенца и итальянский фонд исследований кистозный фиброз (проект FFC #11/2014 принят делегациями FFC от Сиены, Валчиавенна Sondrio, Череа Il Sorriso ди Дженни и Павии). Частью этой работы также было поддержано в Филы Филы Prot. Грант-RU-2014-1020.
Мы благодарны доктора Лоретты Ferrera (U.O.C. генетики Медика, Istituto Giannina Gaslini, Генуя, Италия) для предоставления бронхиальной эпителиальных клеток.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Minimum essential medium (MEM) | Euroclone | ECB2071L | Warm in 37 °C water bath before use |
| Glutamine | Euroclone | ECB3000D | |
| Heat inactivated Fetal Bovine Serum (FBS) | Euroclone | ECS0180DH | |
| Penicillin and Streptomycin | Euroclone | ECB3001D | |
| Puromycin | Sigma-Aldrich | P8833 | |
| Trypsin/EDTA 1X in PBS | Euroclone | ECB3052D | Warm at room temperature before use |
| DPBS without calcium and magnesium (CMF-PBS) | Sigma-Aldrich | D8537 | |
| DPBS with calcium and magnesium (PBS) | Sigma-Aldrich | D8662 | |
| Ibidi Culture-Insert 2 well | Ibidi | 80209 | |
| Wimasis Image Analysis | Ibidi | 30002 | |
| PRISM software | GraphPad | version 6.0 |
References
- Enyedi, B., Niethammer, P. Mechanisms of epithelial wound detection. Trends Cell Biol. 25, 398-407 (2015).
- Kujath, P., Kujath, C. Complicated skin, skin structure and soft tissue infections - are we threatened by multi-resistant pathogens? Eur J Med Res. 15, 544-553 (2010).
- Moreau-Marquis, S., Stanton, B. A., O'Toole, G. A. Pseudomonas aeruginosa biofilm formation in the cystic fibrosis airway. Pulm Pharmacol Ther. 21, 595-599 (2008).
- Chiappini, E., Taccetti, G., de Martino, M. Bacterial lung infections in cystic fibrosis patients: an update. Pediatr Infect Dis J. 33, 653-654 (2014).
- Mangoni, M. L., McDermott, A. M., Zasloff, M. Antimicrobial peptides and wound healing: biological and therapeutic considerations. Exp Dermatol. 25, 167-173 (2016).
- Lau, K., Paus, R., Tiede, S., Day, P., Bayat, A. Exploring the role of stem cells in cutaneous wound healing. Exp Dermatol. 18, 921-933 (2009).
- Hu, M. S., et al. Tissue engineering and regenerative repair in wound healing. Ann Biomed Eng. 42, 1494-1507 (2014).
- Ramot, Y., et al. The role of PPARgamma-mediated signalling in skin biology and pathology: new targets and opportunities for clinical dermatology. Exp Dermatol. 24, 245-251 (2015).
- Lai, Y., Gallo, R. L. AMPed up immunity: how antimicrobial peptides have multiple roles in immune defense. Trends Immunol. 30, 131-141 (2009).
- Zasloff, M. Antimicrobial peptides of multicellular organisms. Nature. 415, 389-395 (2002).
- Hulkower, K. I., Herber, R. L. Cell migration and invasion assays as tools for drug discovery. Pharmaceutics. 3, 107-124 (2011).
- Di Grazia, A., et al. The frog skin-derived antimicrobial peptide esculentin-1a(1-21)NH2 promotes the migration of human HaCaT keratinocytes in an EGF receptor-dependent manner: a novel promoter of human skin wound healing? PLoS One. 10, e0128663 (2015).
- Di Grazia, A., et al. D-Amino acids incorporation in the frog skin-derived peptide esculentin-1a(1-21)NH2 is beneficial for its multiple functions. Amino Acids. 47, 2505-2519 (2015).
- Cappiello, F., et al. Esculentin-1a-derived peptides promote clearance of Pseudomonas aeruginosa internalized in bronchial cells of cystic fibrosis patients and lung cell migration: biochemical properties and a plausible mode of action. Antimicrob Agents Chemother. 60, 7252-7262 (2016).
- Bebok, Z., et al. Failure of cAMP agonists to activate rescued deltaF508 CFTR in CFBE41o- airway epithelial monolayers. J Physiol. 569, 601-615 (2005).
- Trinh, N. T., et al. Improvement of defective cystic fibrosis airway epithelial wound repair after CFTR rescue. Eur Respir J. 40, 1390-1400 (2012).
- Gan, H. K., et al. The epidermal growth factor receptor (EGFR) tyrosine kinase inhibitor AG1478 increases the formation of inactive untethered EGFR dimers. Implications for combination therapy with monoclonal antibody 806. J Biol Chem. 282, 2840-2850 (2007).
- Tokumaru, S., et al. Induction of keratinocyte migration via transactivation of the epidermal growth factor receptor by the antimicrobial peptide LL-37. J Immunol. 175, 4662-4668 (2005).
- Tjabringa, G. S., et al. The antimicrobial peptide LL-37 activates innate immunity at the airway epithelial surface by transactivation of the epidermal growth factor receptor. J Immunol. 171, 6690-6696 (2003).
- Di Grazia, A., Luca, V., Segev-Zarko, L. A., Shai, Y., Mangoni, M. L. Temporins A and B stimulate migration of HaCaT keratinocytes and kill intracellular Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother. 58, 2520-2527 (2014).
