Summary
Dieses Protokoll beschreibt, wie eine in-vitro- isoliert Schildkröte Kopf Vorbereitung zu verwenden, um die Kinematik des ihre Augenbewegungen zu messen. Nach der Entnahme des Gehirns aus dem Schädel können Hirnnerven mit Strömungen, Drehungen des Auges und Veränderungen der Pupille Größen quantifizieren angeregt werden.
Abstract
Nachdem Tiere eingeschläfert werden, beginnen ihre Gewebe zu sterben. Schildkröten bieten einen Vorteil wegen eine längere Überlebenszeit von ihrem Gewebe, vor allem im Vergleich zu warmblütige Wirbeltiere. Aus diesem Grund können in-vitro- Experimente in der Schildkröten für längere Zeit zu untersuchen, die neuronale Signale und Kontrolle ihrer Ziel-Aktionen durchgeführt werden. Mit einem isolierten Leiter Vorbereitung, wir Maßen die Kinematik der Augenbewegungen in Schildkröten und deren Modulation durch elektrische Signale, die von Hirnnerven durchgeführt. Nachdem das Gehirn aus dem Schädel entfernt wurde, war intakt die Hirnnerven, seziert Kopf in eine kardanische Augenbewegungen zu kalibrieren platziert. Glaselektroden wurden angebracht, um Hirnnerven (okulomotorischen, trochlear, und rectus) und stimulierte mit Strömungen, Augenbewegungen zu erwähnen. Wir überwachen Augenbewegungen mit einem Infrarot-Video-tracking-System und quantifizierte Rotationen der Augen. Strom-Impulse mit einer Reihe von Amplituden, Frequenzen, und Zug Dauer wurden verwendet, um die Auswirkungen auf die Reaktionen zu beobachten. Da die Vorbereitung vom Gehirn getrennt ist, kann der ableitenden Weg zu Muskel-Ziele isoliert untersuchen neuronale Signalisierung bei fehlender zentral verarbeitet sensorische Informationen untersucht werden.
Introduction
Begründung für die Verwendung von rot-eared Slider Schildkröten in elektrophysiologischen Experimenten:
Rot-eared Slider Schildkröten (ist Scripta Elegans), gelten als eine der weltweit schlimmsten invasiven Arten1 und können angeben, dass ein Ökosystem in Schwierigkeiten ist. Rot-eared Slider Schildkröten sind deshalb so erfolgreich ist wenig bekannt, aber es kann teilweise durch ihre tolerante Physiologie und des Besitzes von Nervengewebe, die unter hypoxischen Bedingungen2,3,4 überleben können . Verwenden sie für Experimente nicht ihre Zahl gefährdet und mit minimalem Aufwand, elektrophysiologische Vorbereitungen lebensfähig über längere Dauer, so lange wie 18 Stunden5,6 bleiben können. Der Vorteil ist ähnlich wie der Vorteil der Verwendung von wirbellosen Tiere wie Krebse7, die auch geringe Mengen an Sauerstoff8standhalten können.
Techniken zur Messung der Augenbewegungen:
Ansätze zur Messung der Augenbewegungen in Frontal-eyed Tiere mit nicht-menschlichen Primaten sind gut entwickelte9gewesen. Das Auge dreht sich im Orbit um drei Achsen: horizontale, vertikale und Torsionssteifigkeit. Die magnetische Spule Suchmethode gilt allgemein als die zuverlässigste Messung Umdrehungen, aber ist invasiv und erfordert kleine Spulen in den Scleras der Tiere10,11eingefügt werden soll. Video-basierte Systeme können auch Rotationen Messen und haben den Vorteil, nicht-invasiv. Die Entwicklung von besseren Kameras zusammen mit innovativen Bildverarbeitung verbessert ihre Funktionalität, Video-basierte Systeme eine attraktive Alternative zu erwägen,12,13,14.
Techniken entwickelt, die zur Messung der Augenbewegungen in Nonmammals wurden viel weniger bedeutend. Maßnahmen sind entweder niedrige Auflösung oder beschreiben nur einige Umdrehungen15,16,17,18. Der Mangel an Entwicklung kann teilweise auf die Schwierigkeiten bei der Ausbildung Nonmammals, visuellen Ziele Folgen verantwortlich gemacht werden. Obwohl Augenbewegungen auch in rot-eared Slider Schildkröten19,20,21,22,23,24,25 untersucht wurden ,26,27,28,29,30, wegen der Herausforderung in Ausbildung Tiere verfolgen Ziele, die präzise Kinematik des ihre Augenbewegungen ist schlecht verstanden.
Rot-eared Slider Schildkröten gelten in der Regel Lateral-eyed Wirbeltiere, sondern weil sie ihre Köpfe in ihre Schale31vollständig zurückziehen können, erhebliche Okklusion der seitlichen Gesichtsfeld durch die Panzer tritt32. Das Ergebnis ist, dass ihre visuelle Sichtverbindung nach vorne, so dass sie eher wie Frontal-eyed Säugetiere Verhalten gezwungen ist. Ihre Verwendung als Modell für die Entwicklung von Ansätzen zur Messung der Augenbewegungen bietet daher auch eine einzigartige evolutionäre Perspektive.
In dieser Arbeit beschriebene Protokoll verwendet eine in-vitro- isoliert Kopf Vorbereitung um die Kinematik der Augenbewegungen in rot-eared Slider Schildkröten zu identifizieren. Gehirne sind aus den Schädeln der Hirnnerven intakt seziert. Köpfe sind in eine kardanische kalibrieren Augenbewegungen und evozieren Reaktionen durch elektrische Stimulation der Hirnnerven innervieren die Augenmuskeln gelegt. Maßnahmen der Rotationen von den Augen erfolgt durch ein Video-basiertes System mit Software-Algorithmen, die die dunkle Pupille und die Markierungen der Iris zu verfolgen. Die Vorbereitung bietet die Möglichkeit, die Kinematik der beiden extraokulären (d.h., horizontale, vertikale und Torsionssteifigkeit Rotationen) messen32 und intraokularen (d.h. Schüler Änderungen)33 Bewegungen.
Modellsystem zur Analyse der ableitenden Nervenbahnen:
Im Allgemeinen bietet der Ansatz Ermittler die Möglichkeit zu studieren wie ableitenden neuralen Signale generieren Augenbewegungen, wenn Muskeln aus ihren entspannten Zuständen und in Ermangelung von integrierten Sinnesinformationen verarbeitet das Gehirn32beginnen, 33. Daher kann die Auge Kinematik im Modellsystem untersucht werden, in denen sie ausschließlich durch den ableitenden neuronale Weg verlassen das Gehirn und an den muskelsegmenten synapsing verarbeitet werden.
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Protocol
Hinweis: Rot-eared Slider Schildkröten, männlich und weiblich, wurden von einem Händler gekauft. Schildkröten lebten in einer warmen Tier Suite mit zwei 60-Gallone-Wannen mit Backstein-Inseln zum Sonnen unter 250-W Infrarot-Leuchten ausgestattet. Die Umwelt blieb auf einem 14/10-h-Hell/Dunkel-Zyklus mit der Wassertemperatur auf 22 ° C. Lichter waren eingeschaltet um 06:00 und um 20:00 ausgeschaltet. Die Tanks mit Filtersystemen ausgestattet wurden wöchentlich gereinigt, und Schildkröten wurden Ad Libitum jeden zweiten Tag gefüttert. Die Pflege der rot-eared Slider Schildkröten und alle der folgenden experimentellen Verfahren beschrieben hier32,33 durch die institutionelle Tier Pflege und Nutzung Committee (IACUC) am Lafayette College angenommen wurden.
1. Geräte-Setup
- Bereiten Sie die Schildkröte Ringer-Lösung. Fügen Sie Folgendes hinzu destilliertes Wasser in dieser Reihenfolge: Natriumchlorid 96,5 mM (58.44 g/Mol), Kaliumchlorid 2,6 mM (74,56 g/Mol), Magnesiumchlorid 2,0 mM (203.31 g/Mol), Natriumbicarbonat 31,5 mM (84.01 g/Mol), Traubenzucker 20,0 mM (180.16 g/Mol), konzentriert Salzsäure zur Einstellung des pH-Wertes auf 7,51 und Calciumchlorid 4,0 mM (110.98 g/Mol) (siehe Tabelle der Materialien). Mischen Sie die Lösung, während jedes Salz hinzugefügt.
Achtung: Konzentrierte HCl ist gefährlich (Haut, Augen, Inhalation und Verschlucken Gefahren). - Tipps für die saugelektroden von 5 cm langen Kapillare machen Glas (siehe Tabelle der Materialien), durch Feuer-Polieren, verschiedene Größen von Innendurchmesser um Hirnnerven unterschiedlicher Dicke Rechnung zu tragen.
- Verwenden Sie eine kleine Datei, um eine Linie über ein Stück der Kapillare Glas zu ätzen. In Seidenpapier und brechen Sie entzwei.
- Langsam Rollen eines der Enden der Kapillare Glas in der Flamme einen Bunsenbrenner. In regelmäßigen Abständen prüfen die Tipp für Größe, Glätte und Symmetrie eine Dissektion mit Umfang und eine Fiber optic Licht Quelle (siehe Tabelle der Materialien).
Hinweis: Für Schildkröten mit Kopf Breite zwischen 20 und 30 mm Größen optimale Passform Innendurchmesser in der Regel reichen von 0,4 bis 0,8 mm für den Oculomotor Nerv (nIII), 0,3 bis 0,6 mm für trochlearis (nIV) und 0,2 bis 0,4 mm für den rectus Nerv (nVI).
- Reinigen und Rongeurs, eine stumpfe Dissektion Sonde, Microscissors, feine Pinzette, gebogenen Pinzette und Skalpell Griff mit klingen (siehe Tabelle der Materialien) für die Dissektion zu organisieren.
Hinweis: Sterilisation von Instrumenten ist optional.
(2) Anästhesie und Euthanasie
- Ort die Schildkröte in einem Eis Eimer für 60 min. zu Cryoanesthetize es.
- Die Schildkröte durch Enthauptung mit einem kleinen Tier Guillotine einschläfern (siehe Tabelle der Materialien).
- Hebeln Sie sanft die Backen des tierischen eröffnet mit einem kleinen Spatel mit einem Gewicht von, so dass ein Haken kann eingefügt und wandte sich unter der Spitze des Oberkiefers passen.
- Ziehen Sie mit gleichmäßigen Druck auf den Kopf des Tieres durch die Guillotine zu verlängern. Enthaupten Sie rasch das Tier.
- Legen Sie Schildkröte Kopf in einer Dissektion Schale. Haben Sie genug Schildkröte Ringer-Lösung zur Verfügung, um das Gewebe zu bewässern. Die Lösung mit 95/5 O2Co2 oxygenize (siehe Tabelle der Materialien).
- Pflegen Sie das Gewebe bei 4 ° C, indem man Eis um die Außenseite der Schale.
(3) Dissektion
- Verwenden Sie die Dissektion Bereich mit einer Faser Optik Lichtquelle, die Dissektion durchzuführen.
- Entfernen Sie den Unterkiefer. Legen Sie eine stumpfe Dissektion Sonde durch den Mund, um einfacher Handhabung des Kopfes zu gewährleisten. Schneiden Sie das Gelenk verbindet die dentale Knochen auf den Schädel mit einem Skalpell. Verwenden Sie Rongeurs, um den Unterkiefer Weg von den Schädel zu ziehen. Verwenden Sie Rongeurs zum Abziehen der Haut und Muskulatur aus ihren Anlagen an der dorsalen und lateralen Regionen des Schädels.
- Entfernen Sie die vertebrale Spalte.
- Identifizieren Sie die Wirbelsäule am kaudalen Ende des Schädels. Biegen der Wirbelsäule ventral um das Rückenmark zu entlarven. Verwenden Sie Microscissors, um das Rückenmark zu schnippeln. Verwenden Sie Rongeurs, um die vertebrale Spalte und andere Gewebe aus dem Schädel zu entfernen, indem kaudal ziehen.
- Entfernen Sie das Gehirn aus dem Schädel nach dem Schneiden der Hirnnerven.
- Verwenden Sie das Foramen Magnum ab, Rongeurs um zwei Einschnitte auf der dorsalen Schädel geschnitten. Kürzen Sie um eine Beschädigung des Gehirns unter oberflächlichen.
- Verwenden Sie Rongeurs die dorsalen Schädel vorsichtig abziehen. Verwenden Sie Microscissors, um die 1880er, den Rest des Gehirns aussetzen zu entfernen. Genügend 1880er zu entfernen, bis die olfaktorischen Birnen in die vorderen Schädelhöhle identifiziert werden können (siehe Abbildung 1A). Weiterhin das Gehirn mit Schildkröte Ringer-Lösung, bei Bedarf zu bewässern.
- Verwenden Sie gebogene Pinzette sanft das Großhirn kaudal ziehen und leichten Spannung auf die Hirnnerven zu produzieren. Sorgfältig weggeschnitten und die olfaktorischen Birnen und Großhirn mit gebogenen Pinzette entfernen.
- Verwenden Sie Microscissors, schieben Sie das Mittelhirn in Richtung der Mittellinie, die Hirnnerven verfügbar zu machen; nIII, ca. 0,6 mm, sehen vor nIV, und der Durchmesser der nIV werden etwas weniger als nIII. NIII und nIV schneiden, wo legen sie auf dem Mittelhirn (siehe Abbildung 1 b). Wiederholen Sie diesen Vorgang auf der anderen Seite.
- Schneiden Sie den linken und rechten Sehnerv (nII) mit Microscissors. Dann kippen Sie den Hirnstamm auf der einen Seite. NVI aus der ventralen Oberfläche in der Nähe der Kreuzung von der Pons und der Medulla zu beobachten (siehe Abbildung 1); der Durchmesser des nVI ist klein und ca. 0,3 mm. Schneiden sowohl die linken und rechten nVI.
- Entfernen Sie die restlichen Teile der Hirnstamm aus der Schildkröte mit feinen Zangen und Microscissors. Sobald die Schädel leer ist, prüfen Sie die Schädelhöhle Boden. Identifizieren Sie nIII, nIV und nVI.
- Entfernen Sie die oberen und unteren Augenlider mit feinen Zangen und Microscissors.
4. Kalibrierung der Augenbewegungen
- Verwenden Sie eine starre Tabelle (siehe Tabelle der Materialien), die Platzierung der Gimbal und andere Instrumente zu unterstützen. Legen Sie die Schildkröte Kopf in das Gimbal-Futter, so dass die dorsale Oberfläche des Kopfes parallel zum Horizont mit eine kleine Wasserwaage ruht auf dem Schädel ist. Grob ein Auge in der Mitte der horizontalen und vertikalen Rotationen der Gimbal zu positionieren.
- Legen Sie die Infrarot-Kamera, ausgestattet mit einem Infrarot-Licht emittierende Diode (LED), die Bestandteil der videobasierten Eye-tracking System ist (siehe Tabelle der Materialien), in einem Betrachtungsabstand von etwa 12 cm von der Schildkröte Auge.
- Winkel der Kameras 45 Grad über der Sichtlinie des Auges. Die LED sollte die 11:00-Position bei der Betrachtung der Kameralinse. Die LED Zentrum entlang der optischen Achse des Auges. Die Kamera werden leicht aus Achse (von oben das Auge betrachtet).
- Einstellen Sie die Entfernung von der Kamera aus dem Auge so, dass die Kamera-Ansicht maximal durch den Augapfel gefüllt wird. Stellen Sie sicher, dass die Ecken der Augen (Augenwinkel) an den Rändern der horizontalen Ansicht sind.
- Schließen Sie die Kamera, die Video-basierte Eye-tracking System zur Verarbeitung der Daten. Teilen Sie das Signal an einen DVD-Rekorder, die raw-Video zu erfassen. Fokussieren Sie die Kamera um ein klares Bild des Auges zu erhalten. Achten Sie darauf, fein-Position das Auge in der Mitte der Kameraansicht, indem die drei Grade der lineare Anpassung (X, y, Z) mit der Gimbal versehen.
- Erkennen Sie die dunkle Pupille durch Einstellen der Schwelle und Kontrast entsprechend mit dem Programm mit der videobasierten Eye-tracking-System zur Verfügung gestellt.
- Mit der Maus, klicken Sie im Menü "Video" und wählen Sie unter "Modus" "Hohe Präzision", Bilder bei einer Abtastrate von 30 Hz (Auflösung von 640 Pixel 480 Zeilen) zu erfassen. Auch unter "Video", wählen Sie "Dunkle Pupille" für "Schüler" und "Ellipse (gedrehte Ellipse)" für "Schüler-Segmentierung-Methode".
- Klicken Sie im Fenster "EyeCamera" auf das Symbol "Schüler Suche Bereich Adjustment" (kleine vertikale Rechteck mit einem Punkt in der Mitte). Verwenden Sie die Maus, um ein Rechteck ziehen, die eine Fläche um die Pupille begrenzt. Vermeiden Sie dunkle Bereiche, die verwechselt werden könnte mit der Pupille.
- Bestätigen Sie im Fenster "Controls", dass die Kontrollkästchen für "Auto Bild" und "Positive-Lock Schwelle-Tracking" aktiviert sind. Klicken Sie auf "Auto-Schwelle" zur Optimierung der Dichte des Scannens, die über die dunkle Pupille als grüne Punkte angezeigt werden.
- Kalibrieren Sie die Video-Anzeige von der Video-basierte Eye-tracking-Programm auf die Drehbewegungen des Gimbals 12,5 ° (+/-) um seine horizontale Achse und 10° (+/-) um seine vertikale Achse.
- Klicken Sie im Fenster "Controls" auf "Anzeigen". Aktivieren Sie die Kontrollkästchen unter "Blick" und "Stim" für "Blick-Punkt", "Calib Region" und "Geometrie Grid". Nach dem Markieren der Kästchen unter"Geometrie", wird ein Fenster pop-up und sagen: "die Reiz-Display-Geometrie gemessen werden muss bevor das Geometrie-Raster angezeigt werden kann. Wünschen Sie dies jetzt tun?" Wählen Sie "Y" für ja.
- Mit der Maus, klicken Sie auf das Menü "Fenster" und wählen Sie "Stimulus". Der "Stimulus" Fenster wird geöffnet, eine vertikale und horizontale Linie Kreuzung in der Mitte des Displays. Messen Sie die Länge der Zeilen auf die nächste mm. Drücken Sie "Esc" auf der Tastatur, um den "Stimulus" Fenster zu schließen.
- Mit der Maus, klicken Sie im Menü "Stimulus" und wählen Sie "Geometrie Setup". Geben Sie die Länge der Linien, die nur gemessen wurden. Einstellen Sie den Betrachtungsabstand so, dass die Grad/Zeile gleich 25 ° für die horizontale Linie und 20° für die vertikale Linie. Klicken Sie auf "Speichern" und schließen Sie das Fenster.
- Wählen Sie im Fenster "EyeSpace" die Anzahl der Kalibrierung "Datenpunkt" bis "9" sein. Klicken Sie mit der Schildkröte Auge in der Mitte positioniert das Center Daten zeigen Sie und klicken Sie auf "Neu präsentieren".
Hinweis: Das "Stimulus" Fenster wird geöffnet, und "Get Ready" erscheint in der Mitte des Bildschirms. Eine Kiste erscheint an der Center-Position und dann verschwinden. Auf seinem verschwinden wird das "Stimulus" Fenster zu schließen. Die mittlere Position sollte jetzt kalibriert werden. - Wiederholen Sie den Vorgang, durch den Gimbal rechts/links, +12,5 ° /-12,50 °, drehen und nach oben/unten + 10°/-10 °, die übrigen Datenpunkte zu kalibrieren.
- Zum Kalibrieren Torsionssteifigkeit Drehung mit Hilfe der Schablone passend Algorithmus mit der videobasierten Eye-tracking-Programm zur Verfügung gestellt. Der Algorithmus setzt eine Nullstellung anhand der Markierungen der Iris und einen Drehwinkel berechnet, wenn die Markierungen von den Schwerpunkt des Schülers versetzt werden.
- Mit dem Mauszeiger, klicken Sie auf das Menü "Fenster" und wählen Sie "Torsion". Klicken Sie auf die Schaltfläche "START" im Fenster "Torsion". Im Fenster "EyeCamera" erscheint ein Bogen über das Bild des Auges.
- Stellen Sie den Radius, den Winkel und die Länge des Bogens mit den Schiebereglern an einem Ort wo unregelmäßige Markierungen in der Iris vorhanden sind. Aktivieren Sie die Kontrollkästchen für "Echtzeit-Grafiken" und "Auto-Set nach anpassen". Falls erforderlich, stellen Sie die Helligkeit und Kontrast im Fenster mit den Steuerelementen und Re-Schwelle die dunkle Pupille (siehe Schritt 4). Klicken Sie auf die Schaltfläche "Vorlage festlegen".
- Legen Sie ein Lineal in der gleichen Brennebene als die Pupille und zeichnen Sie die Breite der vollen Kameraansicht auf. Der Wert wird später verwendet werden, um die tatsächliche Breite des Schülers zu bestimmen.
(5) Positionierung der Saug-Elektrode auf Hirnnerven, Augenbewegungen zu erwähnen
- Legen Sie vorsichtig eine Referenzelektrode Pin in das Bindegewebe oder Muskel Gewebe noch auf den Kopf.
- Legen Sie die Saug-Elektrode (siehe Tabelle der Materialien) an den Hirnnerven mit einem Mikromanipulator und Dissektion Bereich auf einem Ausleger montiert. Verwenden Sie eine Faser Optik Lichtquelle zum Anzeigen und leiten die Platzierung.
- Passen Sie die Größe eines Nervs zu einer Kapillare Glas-Spitze. Trial And Error ist notwendig, eine ausgleichsgerade rund um den Durchmesser eines Nervs zu erhalten (siehe Schritt 1.2 für Größenempfehlungen). Setzen Sie die Glas-Spitze auf die Absaugung Elektrode. Füllen Sie die Saug-Elektrode mit Ringer Lösung und stellen Sie die Lautstärke in die Spritze auf etwa die Hälfte seiner Kapazität.
- Vorsichtig bewegen die Glas-Spitze der Elektrode mit dem Mikromanipulator in eine Position über dem Schnitt-Ende des ausgewählten Nerven. Stellen Sie sicher, dass Ringer Lösung die Schädel füllt und die Spitze unter der Oberfläche ist. Verwenden Sie ggf. die Modelliermasse zu Aufnahmeorten dam wo die Ringer-Lösung aus dem Schädel undicht ist.
- Ziehen Sie den Kolben der Spritze zurück.
Hinweis: Das Vakuum wird den Nerv in Ende der Kapillare Spitze ziehen. Eine gute Passform wird durch den Nerv noch in der Spitze mit wenig oder gar keine zusätzliche Vakuum angewendet.
6. Förderung der Hirnnerven und Analyse von Augenbewegungen
- Eine Allzweck-Nerv/Muskel-Stimulator mit einem aktuellen Isolation Gerät verwenden (siehe Tabelle der Materialien) zu den Hirnnerven über die Absaugung Elektrode stimulieren.
- Schließen Sie die Saug-Elektrode an das Stromgerät Isolierung über ein Kabel an. Verbinden Sie das Kabel von der Pin-Referenz-Elektrode, die Erdung des Gerätes isoliert.
- Wählen Sie die Parameter der Ströme mit den Zifferblättern und schaltet auf dem Stimulator und Isolation Gerät. Verwenden Sie eine Reihe von Ströme von 1 bis 100 µA mit Frequenz von 10 bis 400, die Hz mit 1 oder 2 ms in den Zügen von 100, 500 oder 1.000 ms pulsiert.
- Notieren Sie das Timing der Stimulationen.
Hinweis: Transistor-Transistor-Logik (TTL) Hülsenfrüchte werden synchronisiert mit den Lieferungen der Ströme aus den Stimulator und kommunizieren Sie in Echtzeit über ein Kabel mit Eingangskanäle der videobasierten Eye-tracking System. Ein Software-Modul zur Verfügung gestellt mit der videobasierten Eye tracking Programm steuert die Kommunikation.- Um das Timing der aktuellen Anwendungen und deren Einfluss auf Augenbewegungen sichtbar zu machen, klicken Sie im Menü "PenPlots". "Wählen Sie X blicken Position", "Y-Blick-Position", "Torsion" und "Pupillenweite" Real-Time Rohdaten Grundstücke zeigen für X und Y Positionen, Torsion und Pupillenweite Auge. Wählen Sie auch die "Sekunden & Marken" aus dem Menü "PenPlots" ein Timing-Grundstück mit Teilstrichen, zeigen die in 1 s Abständen erscheinen.
Hinweis: Ein Großbuchstabe "T" erscheint markiert den Beginn des TTL-Impulses, gleichzeitig mit der aktuellen Anwendung auftreten. - Um die Daten der Augenbewegungen, hervorgerufen durch Strömungen zu speichern, klicken Sie auf das Menü "Datei" und wählen Sie "Neue Datei" unter "Daten". Geben Sie einen Dateinamen ein und drücken Sie "Enter". Speichern Daten können pausiert werden und dann neu gestartet, mit der Kombination der wichtigsten Befehle, "Strg" + "p". Wenn eine experimentelle Sitzung abgeschlossen ist, wählen Sie "Datei schließen Daten" off "Datei"-Menü unter "Daten".
- Um die Art der Ströme angewendet den Überblick behalten, klicken Sie auf das Menü "Fenster" und wählen Sie "Daten-Pad". "Tastatur/Datenpunktmarkierungen" Fenster wird angezeigt. Klicken Sie auf einen Buchstaben oder eine Zahl, um die Parameter der aktuellen Stimulationen an den Nerv zu identifizieren.
Hinweis: zum Beispiel "X" stehen könnte für 10 µA. speichert durch Klicken auf "X" Einzug in die Datendatei in Echtzeit für die post-Hoc Analyse. Es erscheint auch auf der "PenPlot" für "Sekunden & Marker" für die laufende Beobachtung.
- Um das Timing der aktuellen Anwendungen und deren Einfluss auf Augenbewegungen sichtbar zu machen, klicken Sie im Menü "PenPlots". "Wählen Sie X blicken Position", "Y-Blick-Position", "Torsion" und "Pupillenweite" Real-Time Rohdaten Grundstücke zeigen für X und Y Positionen, Torsion und Pupillenweite Auge. Wählen Sie auch die "Sekunden & Marken" aus dem Menü "PenPlots" ein Timing-Grundstück mit Teilstrichen, zeigen die in 1 s Abständen erscheinen.
- Analysieren von Daten aus der Eye-Tracker-System.
- Öffnen Sie die gespeicherte Datendatei, die in einem Textformat abgegrenzt ist, in eine Ausbreitung Blatt Programm Ihrer Wahl zu organisieren der Daten und statistische Analysen durchzuführen.
- Konvertieren Sie die Pupille Breitenwerte in der Datei zu realen Größen in mm gespeichert.
- Konvertieren Sie die Werte von X und Y Augen-Positionen und Torsionen in Einheiten von Grad und Konventionen für die Beschreibung von Augenbewegungen zu verwenden; daher positive Richtungen der Drehungen: Intorsion, Höhe und Adduktion; und negative Richtungen der Drehungen: Machtmissbrauchs, Depression und Entführung.
- Kopieren Sie die Header-Informationen in einem neuen Arbeitsblatt. Dazu gehören Werte für die Display-Größe (Breite und Höhe) und der Betrachtungsabstand. Acht Säulen der Daten mit einer Rate von 30 Hz werden unterhalb der Headerinformationen folgen.
- Gehen Sie zurück in das Arbeitsblatt enthält die Rohdaten. Führen Sie eine "Entdeckung" für "X" in der letzten Spalte mit dem Titel "Marker" um zu suchen, wo die Stimulation mit 10 µA. angewandt wurde finden Inzidenz von "T", markiert den Beginn der aktuellen Stimulation. 15 Zeilen kopieren (0,5 s) von Daten, die vor dem "T" und 90 Frames nach "T" (3.0 s); d. h.3,5 s gesamt. Fügen Sie die Daten in das neue Arbeitsblatt unterhalb der Headerinformationen.
- Fügen Sie eine leere Spalte nach "PupilWidth". In die leere Spalte Konvertieren der kalibrierten Dimension in mm:
Horizontale Schüler Durchmesser = "PupilWidth" × die Dimension der Kamera Ansicht Breite - Fügen Sie 2 leere Spalten nach "X_Gaze" und "Y_Gaze". Positionen auf die Abmessungen des Bildschirms anzeigen zu normalisieren: Koordinaten (0, 0) an der Spitze der Bildschirm erweitern Links (1, 1) unten rechts. In der ersten leeren Spalte übersetzen Positionen auf ein Koordinatensystem mit (0, 0) in der Mitte des Bildschirms. Nehmen Sie die Umstellung auf die Abmessungen des Bildschirms in mm:
X = (0,5 × Breite) – ("X_Gaze" × Breite); Y = (0,5 × Höhe) – ("Y_Gaze" × Höhe)
Hinweis: Die Reihenfolge der Betrieb ist für das linke Auge. Die Reihenfolge muss für das rechte Auge rückgängig gemacht werden, um die Konvention von Negativität für Entführung und Positivität für Adduktion zu folgen. - Verwenden Sie in der zweiten Spalte Trigonometrie Funktionen zum Konvertieren in Winkel (°) der Drehung:
horizontale Drehung = Arctan (X/viewing Abstand); vertikale Rotation = Arctan (Y-/viewing-Abstand) - Torsion ist in Einheiten von Grad bereits gezeigt, aber angepasst zur Konvention der Positivität für Intorsion, wenn Messung auf dem linken Auge erfolgt, mit-1 multipliziert. Für das rechte Auge ist keine Vervielfachung notwendig. Das Programm-codes Drehung im Uhrzeigersinn positiv.
- Darstellen Sie der Durchmesser der Pupille und Rotationen als Funktion der Zeit.
- Öffnen Sie die gespeicherte Datendatei, die in einem Textformat abgegrenzt ist, in eine Ausbreitung Blatt Programm Ihrer Wahl zu organisieren der Daten und statistische Analysen durchzuführen.
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Representative Results
Abbildung 1 zeigt Standbilder von Bilder aus einem Video beschreibt die Dissektion. Bilder bieten typische Standorte der Nerven vor dem Schneiden aus dem Gehirn.
Abbildung 1: Standbilder von Bildern aus dem Video von der Dissektion anzuzeigenden Standorte der Sehnerv (nII), Oculomotor Nerv (nIII), trochlearis (nIV) und rectus Nerv (nVI). (A) Bild mit gekennzeichneten Regionen des Gehirns nach Entfernung von den 1880er. Weiße Skala bar = 10 mm. (B) Bild zeigt Lage des nII, nIII und nIV wo sie verbinden Sie mit der rechten Seite des Zwischenhirns (nach Entfernung des olfaktorischen Birnen und Großhirn). (C) Bild zeigt Position des nVI wo es auf die linke Seite der Hirnstamm (nach Entfernung des Zwischenhirns) verbindet. Um die Nerven sind weiße gestrichelte Linien gezeichnet. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Abbildung 2 zeigt die mittlere Änderung in Schüler Durchmesser nach eintretende Stimulierung nIII. Extrinsische Augenbewegungen auch beobachtet werden, die die Position des Schülers ändern, bleibt das Maß der Aktion durch den Sphinkter Pupillae der Iris zuverlässig. Maßnahmen sind von einem Präparat und zeigen die typische Variabilität der Reaktionen auf wiederholte aktuelle Stimulationen. Meine Schüler Durchmesser reduziert sich von 1,95 ± 0,01 mm 1,60 ± 0,01 mm. Die schmalen Standardabweichung zeigt eine erfolgreiche Passform der Elektrode des Nervs. Bei der Messung unter verschiedenen Zubereitungen (N = 5), typische Variabilität ist ± 0,08 mm. Obwohl noch relativ schmal, ist der Wert etwa acht Mal größer als die Variabilität, die aus einer einzigen Zubereitung beobachtet.
Abbildung 2: Beispiel für Schüler Verengung, hervorgerufen durch die Stimulierung der Oculomotor Nerv (nIII) bei der Vorbereitung der ganze Kopf. Schwarze Spur ist der mittlere Schüler Durchmesser (PD) von sechs Stimulationen in einem Präparat und gestrichelte Linien zeigen ± Standardabweichung (SD). Rechteckige Wellenform auf der x-Achse steht für Beginn und Versatz eines 100-Hz-Zuges von 1 ms Impulsen mit einer Amplitude von 50 µA. Die Skizze unten links zeigt die Ausrichtung der Iris-Linie im Auge vor der Stimulation und Bilder unten zeigen Standbilder aus einer repräsentativen Studie vor (A), während (B), und nach der Stimulation (C). Weiße Skala bar = 1 mm. Diese Zahl hat mit Erlaubnis33abgedruckt. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Maßnahmen der Schüler Antworten benötigen keine Kalibrierung des Auges Rotationen; Allerdings muss wenn extrinsische Bewegungen Messen, Platzierung des Kopfes in eine kardanische sorgfältig getan werden, um Vergleiche unter Vorbereitungen (Abbildung 3). Wenn der Kopf in der Gimbal mit der dorsalen Oberfläche des Schädels parallel mit dem Horizont befindet, ist die Iris aus dem Horizont in Richtung das Nasenloch Versatz. 3D Abbildung zeigt einen typischen Offset (28,6 °) in Vorbereitung. Für drei verschiedene Vorbereitungen wurde der mittlere Offset 30,1 ± 9,0 °. Ein Winkel von Offset innerhalb der Standardabweichung zeigt an, dass innerhalb der Gimbal akzeptabel passen.
Abbildung 3: eine isolierte Schildkröte den Kopf Vorbereitung in den Gimbal positioniert. (A) und Umgebung: das weiße Rechteck zeigt die Position des Kopfes Schildkröte in ein Foto von der Geräte-Setup. (B) Magnified Blick auf das weiße Rechteck (sieben Mal). Punktierte weiße Linie ist auf dem Bild vom Nasenloch zum Schüler Mitte gezogen und ist mit dem Horizont. Eine durchgezogene weiße Linie ist überlagert und parallel zu den Iris-Linie. (C) Karikatur von der linken Seite des Kopfes. (D) Bild des Auges von der Kamera die videobasierte Eye-tracking-System erfasst. Schwarze Skala Bar: 5 mm in B; 1 mm D. Diese Zahl wurde mit Erlaubnis32geändert. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Abbildung 4 zeigt die mittlere Drehungen der Augen aus zehn Präparaten hervorgerufen durch Stimulation der nIV gonna die überlegene schräger Bauchmuskel. Typische Spitze Rotationen für Intorsion, Elevation und Abduktion (in Erwiderung auf 70 µA, orange Spur) sind 10,0 ± 5,7 °, 2,8 ± 1,2 ° und 3,0 ± 2,1 ° bzw.. Größen gemessen für Rotationen in einzelnen Zubereitungen zu wiederholten Stimulationen ähneln, aber mit weniger Variabilität (z.B.N = 5), 14,8 ± 1,0 ° für Intorsion, 3,2 ± 0,2 ° Höhen- und 2,4 ± 0,2 ° für Entführung. Das Muster der Variabilitäten unter verschiedenen Zubereitungen im Vergleich zu einer einzigen Zubereitung (innerhalb einer logarithmischen Einheit) vergleichbar ist, was für Maßnahmen der Schüler Änderungen beobachtet wird: für Intorsion und Elevation, 11 mal größer für 6 mal höher Entführung.
Abbildung 4: meine Auge Rotationen nach Stimulierung der linken trochlearis (nIV) evoziert mit 500-ms 100-Hz-Züge von 2 ms Impulsen in 10 Zubereitungen (sechs auf der linken Seite und vier auf der rechten Seite, fünf Studien, die für jeden gemessenen angewendet angewendet). Die rechteckige Wellenform auf der x-Achse der unteren Handlung bezeichnet Timing des Reizes. Antworten von linken und rechten Augen waren nicht signifikant verschieden von einander. Intorsion wurde von Elevation und Abduktion (siehe darüberliegende Cartoon der frontalen Blick auf die Schildkröte, deren Pfeile, die Komponenten der Augenbewegungen zusammenfassen) begleitet. Die Auge bewegungsamplitude entspricht in etwa der sieben aktuelle Amplituden auf nIV angewendet (siehe Code im legendenfeld). Diese Zahl wurde mit Erlaubnis32nachgedruckt. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Im Gegensatz zu nIV, geht nur auf die überlegene schräger Bauchmuskel innervieren nIII und nVI mehrere Muskeln, so dass Bewegungen schwieriger sind zu interpretieren. Daraus resultierende Augenbewegungen abhängen, welche motorischen Einheiten rekrutiert werden (Abbildung 5) (siehe Diskussion). Infolgedessen kann Variabilität von der Vorbereitung zur Vorbereitung an Bedeutung gewinnen. Beispielsweise ruft nVI Intorsion, Elevation und Abduktion (Abbildung 5). Entführung ist wahrscheinlich aus der motorischen Einheiten, die Förderung von Maßnahmen des seitlichen Rectus; Intorsion und Höhe ergeben sich stattdessen aus anderen motorischen Einheiten zu Zielen wie der Retraktor Bulbi oder blinzelnde Membran.
Abbildung 5: Auge Bewegung Reaktionen hervorgerufen durch die Stimulierung der drei Hirnnerven mit 10, 50, 100 und 400-Hz-Züge in vier Vorbereitungen bedeuten. Die Impuls-Züge waren alle 500 ms Dauer, bestehend aus 2-ms Pulse mit Amplitude von 70 µA, einen Wert oberhalb der Schwelle. Augenbewegungen sind nach wie vor mit Spalten A–C zeigt Reaktionen auf Anregung von nIII, nIV und nVI, bzw. angezeigt. Diese Zahl wurde mit Erlaubnis32nachgedruckt. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Da nIII mehrere Ziele (überlegener Rectus, minderwertige Rectus, minderwertige schräg, mediale Rectus und Sphinkter Pupillae) innerviert, Analyse der evozierten Bewegungen sind die komplexesten. Für das Beispiel in Abbildung 5Aerfolgt Machtmissbrauchs, Adduktion und Höhe. Auf dieser Grundlage ist eine angemessene Deutung, dass die Aktionen meist aus minderwertigen schräg mit möglichen Beitrag von medialen Rectus. Überlegener Rectus und minderwertige Rectus können sich gegenseitig aufheben. Eine höhere Variabilität der Aktionen für nIII wahrscheinlich ergibt sich aus der größeren Verzweigung der den Nerv und die Lage des Schnittes zur Anbringung der Elektroden.
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Discussion
Wichtige Schritte:
Die entscheidenden Schritte innerhalb dieses Protokolls sind die folgenden: 1) die Zerlegung und die Sorgfalt, die zur Aufrechterhaltung der Lebensfähigkeit der durchtrennten Nerven; (2) die passenden Größen von saugelektroden, Hirnnerven, konsistente Antworten bereitzustellen; und 3) die Platzierung des Kopfes in den Gimbal, adäquate Kalibrierung der Umdrehungen des Auges zu bieten.
Fehlerbehebung:
Die Dissektion kann eine Herausforderung sein, aber danach ein paar Mal die Schritte sollten relativ geradlinig geworden. Wenn Nerven nicht mehr reagiert angezeigt, ist die wahrscheinlichste Ursache ein Ausfall der Dissektion. Während der Entfernung des Gehirns nur minimale Spannungen und Druck auf die Nerven während ihrer schneiden anzuwenden. Berührung der Nerven mit metallischen chirurgischen Instrumenten sollte auch vermieden werden, so weit wie möglich, und so Glas Haken und plastikpinzette kann ersetzen Metallwerkzeuge wenn Probleme34 bestehen. Obwohl die Schildkröte Gewebe frisch gemacht die Möglichkeit haben, Variable Mengen an Sauerstoff, die Verwendung von überleben Schildkröte Ringer-Lösung gesprudelt mit 95/5 % O2Co2 und gekühlt ist ratsam; Dies ist jedoch weniger kritisch. Immerhin ist der Vorteil der Verwendung der Zubereitung die Überlebensfähigkeit unter unterschiedlichem Sauerstoffgehalt und Temperatur Schwankungen2,3,4,35. Umso wichtiger ist die regelmäßige Bewässerung der Zubereitung mit Schildkröte Ringer Lösung zur Austrocknung des Gewebes zu vermeiden.
Machen eine Reihe von Tipps in verschiedenen Größen für die Absaugung Elektrode vor Durchführung eines Experiments verbessert die Chancen für eine gute Passform des Nervs. Ähnlich wie bei der Dissektion, Feuer polieren die Spitzen erfordert einige Übung. Erhaltung eines Kopfes mit Nerven aus einem vorherigen Experiment und als Referenz verwenden, während die Tipps helfen können. Vermittlung von Tipps von kleinen bis großen Durchmesser Größe und speichert sie auf einige Modelliermasse ermöglicht schnelle Montage während eines Experiments. Kleinere Tipps benötigt mehr Zeit, die Tipps in Flammen zu Rollen. Die Spitzen sollten frei von Rissen und besitzen glatte Kanten, um eine gute Abdichtung auf den Nerv zu ermöglichen.
Die Ausrichtung des Kopfes in den Gimbal muss angemessen sein. Ist dies nicht der Fall, wird die Achse der Messungen verzerrt werden. Zum Beispiel zeigt eine Drehung nach rechts, der größer ist als die gleiche Schrittweite auf der linken Seite, dass die Mitte des Auges ist ausgeglichen und nach rechts verschoben werden muss. Einige Probleme kann auch auftreten, dabei ein zuverlässiges Signal aus der Schüler während der Drehungen. Anpassung der Beleuchtung des Schülers durch die Infrarot LED etwas helfen kann, bessere Ergebnisse zu erzielen.
Einschränkungen:
Ein Manko der Zubereitung ist die Schwierigkeit bei der Ermittlung der Kinematik der Aktionen von bestimmten Muskeln. Dies gilt insbesondere für Bewegungen nach Stimulationen nIII und nVI gemessen. Eine Möglichkeit, einzelne Muskel-Aktionen zu lösen ist, systematische Transections nervenäste zu machen, um einen Weg Reisen in einen bestimmten Muskel zu isolieren. Zum Beispiel haben wir schneiden nIII distal zum ciliary Ganglien und stimuliert die kurze ciliary Nerven zu isolieren, die Aktion der Sphinkter Pupillae33,36erfolgreich. Ein anderer Ansatz ist ein DMS System auf die Agonisten und Antagonisten zu montieren und dann entsprechen die Bewegungen mit den Aktivitäten von bestimmten Muskeln37,38 . Für diese Methode wäre Isolierung eines Pfades Reisen in einen bestimmten Muskel nicht so notwendig.
Die Vorbereitung ermöglicht auch eine passive Dehnung verbunden mit Visco-elastische Elemente, die in entgegengesetzte Richtungen auf die entsprechenden Muskeln (z.B., seitlichen Rectus gegen mediale Rectus Muskeln oder Schließmuskel Dilatator versus Sphinkter pupillae )39. Um zu analysieren, Visco-elastische Elemente können die Antworten, die durch anregende durchtrennten Nerven wie hier beschrieben verglichen werden, denen, die unter Verwendung einer Zubereitung, die subkortikale Bereiche und das Kleinhirn kämpfte sind; Daher hält die funktionale neuronalen Integratoren intakt, und dann ist es möglich, einzelne Motoneuron Bereiche innerhalb der Hirnstamm innervieren jeder Muskel-40zu stimulieren.
Bedeutung in Bezug auf andere Vertebrate Modelle:
Obwohl Cryoanesthesia für Schildkröten akzeptabel ist, kann dieser Ansatz mit Arbeit in warmblütigen Tieren41,42zugestimmt werden. Daher ist eine pharmakologische Mittel wie Pentobarbital oder Ketamin notwendig. Die Agenten, verwechseln jedoch Auge Bewegungen43. Dennoch, der Ansatz eignet sich für Reptilien und könnte auf andere seitliche Augen nicht-Säugetiere, Amphibien und Fische44,45, angewendet werden, weil dadurch Vergleich von Verhaltensweisen, die durch eine isolierte ableitenden neuronale erzeugt Weg, die von einer intakten Tier32,33.
Zukünftige Anwendungen:
Die Vorbereitung könnte als ein Test für die Überlebensfähigkeit des Nervengewebes dienen. Ein Protokoll könnte, soll systematisch anzugehen, wie verschiedene Faktoren beeinflussen Augenbewegungen. Ansätzen könnte so einfach wie das Testen von verschiedenen Temperaturen oder pharmakologischer Substanzen einschließlich Analgetika. Da Bewegungen schwieriger, nIII und nVI zu interpretieren sind, ist deren Nutzung begrenzter. NIV wäre daher wahrscheinlich die beste Wahl für Manipulation.
Jedoch zur Behebung einzelner Muskel Kinematik von anregenden nIII und nVI, Änderung der Vorbereitung notwendig, wie zum Beispiel eine systematische Durchtrennung der Zweige der Nerven oder Dehnungsmessstreifen auf gezielte Muskel-Sets inklusive wäre. Zu guter Letzt Messen Antworten in einer Zubereitung wo neuronale Integratoren sind intakt gehalten würde es ermöglichen, Entschlossenheit wie Visco-elastische Elemente möglicherweise Quantifizierungen der Kinematik limitierend sein könnte.
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Disclosures
Die Autoren haben nichts preisgeben.
Acknowledgments
Die Autoren danken Frau Paulette McKenna und Lisa Pezzino in dieser Studie für Sekretariat und Herr Phil Auerbach für den technischen Support. Die Autoren danken auch DRS. Michael Ariel und Michael S. Jones (Saint Louis University School of Medicine) für die Einführung von uns, die in-vitro- isoliert Kopf Vorbereitung. Unterstützung dieser Zusammenarbeit wurde von der Fakultät für Biologie (Robert S. Chase Fund), Academic Research Committee und die Neurowissenschaften Programm am Lafayette College finanziert. Schließlich ist diese Arbeit Herr Phil Auerbach, gewidmet der 28. September 2016 verstorben; er ein Rasterelektronenmikroskop stillgelegt und erkannte den Nutzen seiner 5-Achs-Bühne für den Einsatz in diesem Protokoll. Seine Freundschaft und Einfallsreichtum werden sehr vermisst werden.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Red-eared slider turtles | Kons Scientific | Trachemys scripta elegans | Large size (carapace length 15-20 cm) |
| Sodium chloride | Sigma-Aldrich Co. LLC. | S5886 | |
| Potassium chloride | Sigma-Aldrich Co. LLC. | P5405 | |
| Magnesium choride | Sigma-Aldrich Co. LLC. | M7304 | |
| Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich Co. LLC. | S5761 | |
| Dextrose | Sigma-Aldrich Co. LLC. | C5767 | |
| Concentrated hydrochloric acid | Sigma-Aldrich Co. LLC. | H7020 | |
| Calcium chloride | Sigma-Aldrich Co. LLC. | C7902 | |
| pH meter | Oakton | pH 6+ | |
| Suction stimulation electrode | A-M Systems | 573000 | Bipolar suction electrode. Note that 573000 has been replaced with 573050. |
| Capillary glass | A-M systems | 626000 | Single-barrel borosilicate capillary glass without microfilament, length 10 cm, outside diameter 1.0 mm, inner diameter 0.50 mm |
| Alternative suction stimulation electrode | A-M Systems | 573050 | Bipolar suction electrode. Requires larger diameter capillary glass: 627000, outside diameter 1.2 mm, inner diameter 0.68 mm |
| Stereoscope | Lieca | GZ7 | Magnification range, 10x – 70x |
| Fiber optic light source | Amscope | HL250-A | 150W Fiber optical microscope illuminator light box |
| Rongeurs | Carolina Biological Supply Company | 625654 | stainless steel, straight spring, 5.25" |
| Blunt dissection probe | Carolina Biological Supply Company | 627405 | Huber mall probe, double-ended probe and seeker, 6" |
| Microscissors | Carolina Biological Supply Company | 623555 | Iris microdissecting scissors, stainless steel, 0.5" blades, 4.75" long |
| Fine forceps | Sigma-Aldrich Co. LLC. | F6521 | Jewelers forceps, dumont No. 5, inox alloy, 4.25" |
| Curved forceps | Sigma-Aldrich Co. LLC. | Z168696 | Medium tip, curved forceps, stainless steel, 4" |
| Scalpel handle | Sigma-Aldrich Co. LLC. | S2896 | Scalpel handles, No. 3, stainless steel |
| Scalpel blade | Sigma-Aldrich Co. LLC. | S2771 | Scalpel blades, No. 11, steel |
| Guillotine | Harvard Apparatus | 73-1918 | Kleine guillotine type 7575 |
| Spatula | Sigma | Z648299 | Micro spoon and spatula weighing set. Use small spatula: 5.9” long x 0.07” diameter handle with square end: 0.17” x 1.3” long, other end round: 0.17” x 1.27” long |
| Hook | Autozone | 98069 | SureBilt hook and pick set. Use grinder to dull sharp points of hook to prevent injury to animals mouth. |
| 95/5% O2/CO2 | Airgas, Inc. | X02OX95C2003102 | 5% Carbon dioxide balance oxygen certified standard gas mixture, size 200 Cylinder, CGA-296 |
| Regulator | Airgas, Inc. | Y11244D296-AG | Single stage brass 0-100 psi analytical cylinder regulator CGA-296 with needle outlet. Use brass adjustable airline pipe valve to go from 3/8", inner diameter, vinyl airline tubing connected to regulator to a 3/16", inner diameter, airline connection going to airstone or glass pasteur pipette. |
| Adjustable airline pipe valve | Doctors Foster and Smith | CD-12061 | Brass valve |
| Rigid table | Unknown | Unknown | Auto-clave door laid on top of a sturdy table. Nine 5" diameter tennis balls isolate vibrations from the top surface of the table. |
| 5" tennis ball | Petco Animal Supplies, Inc. | 712868 | Petco Jumbo Pet Tennis Ball: balls are unsliced and held within an integrated frame on the underside part of the autoclave door. |
| Alternative vibration isolation table | Newport Corporation | INT1-36-6-N | Rigid vibration control system, integrity 1: Surface dimensions, 3' x 6' |
| Gimbal | ISI, International Scientific Instruments, Inc. | Stage from SUPER III-A Scanning EM | 5-axis eucentric stage: X, Y, and Z linear movements, ±20 mm, 0.1 mm precision; Rotations, vertical, ±10°, and horizontal, ±12.5°, with 1.25° precision. Note: from decommission instrument. |
| Chuck for gimbal | Unknown | Unknown | Chuck from an old microtome of unknown manufacture was machined to fit the shaft of the specimen holder of the Scanning EM stage |
| Alternative gimbal | ThorLabs, Inc. | GN2/M with MBT602/M | Dual-axis goniometer (GN2/M) mounted on 3-axis microblock stage with thumbscrew adjusters (MBT602/M): design a chuck to hold turtle head with eye at 12.7 mm above top surface of goniometer (distance to point of rotation) |
| Video-based eye tracking system | Arrington Research, Inc. | ViewPoint EyeTracker, PC-60 | Tracking method: Infrared video by dark pupil; Black and white camera (Item BC02): 30 Hz, 640 x 480; System requirements: Windows 2000, XP, 7, 8, 8.1, 10; Visual range: Horizontal +/- 44°; vertical +/- 20°; Accuracy ~0.5°; Spatial resolution ~0.15°; Pupil size resolution ~0.03 mm; Eye data: X, Y position of gaze, pupil height and width, torsion, delta time, total time, and regions of interest (ROI); Real-time communication (Item 0022): 4-Channel AnalogOut with eight TTL input channels to mark codes into the data file |
| Multi-position magnetic base | Harbor Freight Tools | Pittsburg, item #5645 | Magnetic holder reaches up to 12" and produces 45 lbs. of magnetic pull. Use to position camera. Machine thread holes onto the end of the rod to mount cameras. |
| Micromanipulator | Kopf | 900 | 5 axis manipulation for mount of suction electrode: X, Y, Z linear travel, 2 axis of rotation |
| Dissection scope on boom | Lieca | GZ6 | Magnification range, 6.7x – 40x |
| Nerve/muscle stimulator | Astro-Med Grass Telefactor | Grass S88 | Dual pulse voltage stimulator: two output channels that can be operated independently or synchronized to generate non-isolated constant voltage pulses (10 mv to 150 V). Pulses can be single (10 μsec to 10 sec), repetitive (0.01 Hz to 1 KHz), and trains (1 ms to 10 s) and synchronized with TTL inputs and output. Send TTL outputs via the output channels of a DB25 connector to the TTL input channels of the ViewPoint EyeTracker. Note: Astro-Med Grass Telefactor is no longer in business. |
| Current isolation device | Astro-Med Grass Telefactor | PSIU6 | Current stimulus isolation unit: enables safe delivery of constant currents by the S88 to the preparation. The PSIU6 connects by a BNC cable to one of the output channels of the S88. Multiplier switches on the PSIU6 allow the S88 to generate a wide array of current amplitudes ranging from 0.1 µA to 15 mA. |
| Alternative nerve/muscle stimulator with isolation | A-M Systems | 2100 | Isolated Pulse Stimulator: Unit has built-in isolator to produce constant currents. |
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