Summary
Este artículo proporciona un protocolo detallado para la preparación y evaluación de anticuerpos monoclonales contra productos naturales para su uso en inmunoensayos diferentes. Este procedimiento incluye vacunación, fusión celular, indirecta ELISA competitivo para clon positiva proyección y preparación de hibridomas monoclonal. También se proporcionan las especificaciones para la caracterización de anticuerpos mediante MALDI-TOF-MS y los análisis de ELISA.
Abstract
El análisis de los componentes bioactivos presentes en los alimentos y productos naturales se ha convertido en una popular zona de estudio en muchos campos, incluyendo tradicional China medicina y alimentos seguridad/Toxicología. Muchas de las técnicas de análisis clásicas requieren equipo costoso o conocimientos. En particular, análisis enzima-ligado del inmunosorbente (ELISA) se han convertido en un método emergente para el análisis de alimentos y productos naturales. Este método se basa en la detección de anticuerpo-mediada de los componentes de destino. Sin embargo, como muchos de los componentes bioactivos en productos naturales son pequeños (< 1.000 Da) y no se debe inducir una respuesta inmune, creación de anticuerpos monoclonales (mAbs) contra ellos es a menudo difícil. En este protocolo, brindamos una explicación detallada de los pasos necesarios para generar mAbs contra moléculas Diana así como los necesarios para crear los asociados indirectos competitiva (ic) ELISA para el análisis rápido del compuesto en muestras múltiples. El procedimiento describe la síntesis del antígeno artificial (es decir, el conjugado hapteno-carrier), inmunización, fusión celular, preparación de hibridomas monoclonal, caracterización de la mAb y la aplicación basada en ELISA del mAb. El conjugado hapteno-carrier fue sintetizado por el sodio periodato método y evaluado por MALDI-TOF-MS. Después de la inmunización, esplenocitos fueron aislados de ratón inmunizado con el más alto título del anticuerpo y se fundió con la hipoxantina-aminopterina-timidina (sombrero) - línea de celular de mieloma de ratón sensible Sp2/0 - Ag14 con un polietilenglicol (PEG)-método basado en. Los hibridomas secretoras de mAbs reactivo para el antígeno de la blanco fueron defendidos por icELISA de especificidad y reactividad cruzada. Además, se aplicó el método de dilución limitante para preparar monoclonales hibridomas. Los mAbs finales se caracteriza por icELISA y entonces utilizados en una aplicación de ELISA para la detección rápida y conveniente de hapteno ejemplo (naringina (NAR)) en productos naturales.
Introduction
Anticuerpos monoclonales (mAbs), también conocido como mono específicos anticuerpos, producidos a partir de un solo clon de linfocitos b y se componen de anticuerpos monovalentes que se unen al mismo epitopo1. En los últimos años, muchos productos naturales derivados de plantas medicinales se han utilizado en el tratamiento de diversas enfermedades2. De hecho, muchos compuestos moleculares pequeños originalmente derivados de productos naturales se aplican ahora como medicamentos de primera línea, como la artemisinina contra la malaria y paciltaxel (taxol) para cáncer2,3. El estudio de productos naturales ha hecho progreso rápido, en gran parte debido al enorme desarrollo y optimización de técnicas convencionales de análisis, como cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) y espectrometría de masas (MS). Sin embargo, todavía existen algunas limitaciones asociadas con estos métodos, como sus protocolos de tratamiento complejos y costes asociados en tiempo, mano de obra/experiencia y requiere instrumentos4.
Recientemente, se han aplicado análisis de mAb-basado enzima-ligado del inmunosorbente (ELISA) cualitativa y cuantitativamente analizar alimentos y productos naturales. De hecho, este método se ha aplicado para el análisis de muestras biológicas y pruebas clínicas y se ha demostrado para ser precisos, sensibles y altamente eficiente, también evitando los tediosos pasos pretratamiento asociados con otros análisis5, 6.
Cuando se utiliza a Elisa mAb-basado para el estudio de productos naturales complejos, preparación de los anticuerpos monoclonales es uno de los pasos fundamentales. Por desgracia, los mAbs específicos de los pequeños componentes bioactivos presentes en estos tipos de sustancias6,7,8,9,10,11,12 ,13,14,15 a menudo son limitados en comparación con los antígenos de la proteína. Para evitar este problema, hemos desarrollado un protocolo para generar específicamente mAbs contra pequeños compuestos. El protocolo que presentamos incluye síntesis antígeno artificial, inmunización del ratón, fusión celular, ELISA competitiva indirecto y preparación de hibridomas monoclonal.
En particular, nuestro grupo de investigación ha sido estudiar la formación de mAbs contra pequeños compuestos bioactivos de la medicina tradicional China y sus aplicaciones durante años. En nuestros estudios en curso, hemos desarrollado mAbs contra Baicalina16, puerarin17, ácido glicirrícico18, paeoniflorin19, ginsenoside Re20, ginsenoside Rh121y muchas otras moléculas pequeñas. Nuestros protocolos de ELISA basadas en estos mAbs se han utilizado en varios estudios para evaluar la farmacocinética de estas pequeñas moléculas, así como sus interacciones con otros compuestos bioactivos. Por otra parte, utilizando estos mAbs, también hemos desarrollado métodos de cromatografía de inmunoafinidad para la separación de análogos estructurales, incluidos los epímeros. Recientemente, hemos preparado un inmunoensayo de flujo lateral utilizando nuestro mAb anti-puerarin que posteriormente fue utilizado para la detección rápida, en el sitio de este compuesto. Nuestros resultados indican que nuestros ensayos de mAb son herramientas indispensables y convenientes para el estudio de la biología y la calidad de los compuestos derivados de productos naturales, particularmente los utilizados en la medicina tradicional China.
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Protocol
Todos los procedimientos animales realizados en este estudio han sido aprobados por el Comité de revisión ética de la Universidad de Beijing de Medicina China (2016BZYYL00109 número de aprobación).
Nota: Ratones hembra BALB/c (8 semanas) fueron inmunizados con hapteno-portador proteína conjugados. Cuando se utiliza solo, una pequeña molécula (< 1.000 Da) puede provocar una respuesta inmune. Sin embargo, conjugando la molécula pequeña a un portador de la macromolécula los resultados en síntesis del antígeno. En este contexto, la molécula pequeña es etiquetado como un hapteno. Conjugación hapteno es una estrategia necesaria y eficaz para la producción del mAb. Para evitar la reactividad cruzada, dos portadores de diferentes proteínas, como albúmina sérica bovina (BSA) y ovoalbúmina (OVA) o hemocianina de Lapa ojo de la cerradura (KLH) y BSA, debe utilizarse como inmunógenos (para la inmunización animal) y antígenos de capa (para cubrir la placa de detección de suero). BSA y OVA se utiliza como ejemplo en este protocolo.
1. preparación del inmunógeno y antígeno de capa
Nota: Para la síntesis del antígeno artificial, utilice el grupo funcional apropiado (e.g., hidroxilo, carboxilo sulfhidrilo ácido y amino) como el brazo lateral de unión covalente con la proteína transportadora. La conjugación de los métodos incluyen periodato de oxidación, el método de carbodiimida, una reacción de anhídridos mixtos, una reacción del glutaraldehido y el método de succinato. Este protocolo utiliza la naringina (NAR), un glucósido flavanona bien conocido, como un ejemplo de compuesto. NAR es un compuesto pequeño (581 Da) presente en frutas cítricas, así como diversas medicinas tradicionales chinas.
- Utilice un procedimiento de oxidación periodate sintetizar conjugados NAR-BSA y OVA de NAR.
- Disolver 50 mg de NAR en agua a una concentración final de 1 mg/mL22.
- Añadir 100 μl de sodio recién preparada periodato de solución (0.1 M) a 5 mL de la solución NAR. Revolver la mezcla a temperatura ambiente durante 1 h.
- Disolver 4 mg de BSA y OVA en 2,0 mL de tampón de carbonato 50 mM (pH 9.6). Añadir esta proteína solución al NAR/sodio periodato de mezcla de reacción.
- Ajuste la mezcla a pH 9 con solución de 1 M Na2CO3 y agitar a temperatura ambiente durante 6-8 h.
- Dializan la mezcla de reacción en tampón fosfato salino (PBS) con una membrana de diálisis (MWCO 10 kDa) durante 3 días para el intercambio de la CBS.
- Analizar el conjugado hapteno-portador utilizando láser de matriz asistida desorción/ionización tiempo de vuelo (MALDI-TOF)-MS.
- 1 10 pmol del conjugado con un 10 la mezcla3-doblar el exceso molar de ácido sinapinic en una solución acuosa que contiene 0,15% de ácido trifluoroacético (TFA). Seque la mezcla sobre una placa de la muestra en aire.
- Realizar el análisis usando un MALDI-TOF espectrómetro total equipada con un láser de nitrógeno pulsado operado a 337 nm. Adquisición de espectros de masas de MALDI iones positivos en el modo lineal dentro del rango total (m/z) de 15.000-100.000 como se ha descrito22.
2. inmunización
Nota: Se utilizaron un total de 5 ratones hembra BALB/c (8 semanas): 4 para NAR conjugado inmunización y 1 para la inmunización de control (PBS).
- Para la primera vacunación, mezcle 50 μg de conjugado (diluido en 100 μl de PBS) con un volumen igual de adyuvante completo de Freund (CFA) y emulsione totalmente. Administrar 100 μl de esta mezcla a cada ratón vía dorsal subcutáneo inyección.
- Dos semanas más tarde, ofrecen a un refuerzo de vacunación (100 μL) vía inyección subcutánea con la misma cantidad de conjugado mezclado con adyuvante incompleto (IFA).
- Extracto de 200 μL de la sangre de la vena de la cola de cada ratón 7 días más tarde para obtener suero.
- Centrifugar la sangre a 3.000 x g durante 10 minutos transferir el suero sobrenadante a un tubo nuevo.
- Analizar el suero utilizando un ELISA como se describió anteriormente21. Elija el ratón con el más alto título del suero para la fusión de la célula.
- En preparación para la fusión de la célula, administrar una inmunización pulsada para el ratón solicitadas mediante inyección intraperitoneal de 50 μg del conjugado en 300 μL de PBS sin adyuvante 3 días antes de la fusión.
Nota: Este paso puede omitirse si el título es lo suficientemente alto.
3. preparación para la fusión de la célula
- Preparación medio de fusión celular
- Para el medio selectivo hipoxantina-aminopterina-timidina (sombrero): disolver 50 x suplemento de medios de comunicación de sombrero en 10 mL de RPMI-1640 y añadir esta mezcla a 500 mL de RPMI-1640 que contiene 20% FBS.
Nota: Cuando se diluyen 10 mL de concentrado 50 x en 500 mL de medio de cultivo, las concentraciones finales de hipoxantina, aminopterina y timidina son 0,4 μm y 100 μm y 16 μm, respectivamente. - Para los medios de comunicación de hipoxantina-timidina (HT): disolver 50 x suplemento de medios de comunicación de HT en 10 mL de RPMI-1640 y añadir esta mezcla a 500 mL de RPMI-1640 que contiene 20% FBS. Las concentraciones finales de hipoxantina y timidina son 100 μm y 16, respectivamente.
- Para el medio selectivo hipoxantina-aminopterina-timidina (sombrero): disolver 50 x suplemento de medios de comunicación de sombrero en 10 mL de RPMI-1640 y añadir esta mezcla a 500 mL de RPMI-1640 que contiene 20% FBS.
- Las células Sp2/0-Ag14 de la cultura.
- Al menos 7 días antes de la fusión, descongelar rápidamente un frasco de líquido congelado en nitrógeno SP2/0-Ag14 células del mieloma en agua tibia.
- Transferir la solución de células en 5 mL de medio de cultivo fresco (RPMI-1640) y centrifugar durante 10 min a 1000 x g.
- Después de la centrifugación, eliminar el medio de cultivo y resuspender las células en fresco RPMI-1640 suplementado con 10% suero bovino fetal (FBS).
- Transferencia de las células y el medio en un matraz de 25 cm2 e incubar a 37 ° C en una atmósfera de 5% CO2.
- Ampliar las celdas 3 o matraces de2 4 75 cm antes de la fusión.
- Preparación de células de la capa de alimentador abdominal
- Sacrificar un ratón ICR de 12 semanas de edad albino por dislocación cervical 1 día antes de la fusión celular y sumérjalo en el etanol del 75%.
- Después de quitar la piel del abdomen con pinzas hemostáticas, desinfectar la zona con etanol al 75%. Cortar la piel exterior para exponer la cavidad abdominal. Inyectar 3 mL de Medio RPMI-1640 estéril en el abdomen y masajear el abdomen para separar células adicionales en la solución. Aspirar la suspensión de células de alimentador en un tubo de centrífuga de 15 mL.
- Después de centrifugar la suspensión celular por 10 min a 1000 x g, deseche el sobrenadante y resuspender las células de alimentador en 20 mL de medio selectivo de sombrero.
- Transferencia de las células en placas de cultivo celular de 96 pozos (100 μL/pocillo). Incubar las placas durante la noche a 37 ° C, 5% CO2.
4. fusión de la célula
- Después de que el elegido inmunizados ratón ha preparado para la fusión de la célula (véase paso 2.4), administrar una inyección intraperitoneal de hidrato de cloral 10% (anestésico) y sacrificar el ratón inmunizado mediante dislocación cervical.
- Recoger la sangre adicional desde el corazón (1 mL) y preparar suero como se describe en el paso 2.3.1 para usar como un control positivo durante la selección de hibridomas.
- Eliminar el tejido de la piel y el músculo con unas tijeras para exponer el bazo.
- Aislar el bazo con las pinzas cuidadosamente y lavar el bazo con RPMI-1640. Trocear el bazo y libra lentamente el bazo a triturate. Preparar una suspensión de células de bazo presionando el tejido del bazo a través de un colador 800 de células en un tubo de centrífuga de 50 mL.
- Lavar la suspensión de células de bazo con Medio RPMI-1640. Cosechar las células de bazo por centrifugación (1000 x g y 10 min 4 ° C) y luego descartar el sobrenadante. Repetir este lavado tres veces.
- Eliminar las células de mieloma cultivado y amplificada de la incubadora y suavemente tap/agitar los matraces para obtener una suspensión. Lavar esta suspensión con Medio RPMI-1640 dos veces para quitar el FBS.
Nota: Este es un paso esencial que FBS pueden influir en la fusión celular. - Contar las células y ajustar la concentración antes de mezclar con las células del bazo. La relación final de las células del bazo para células del mieloma debe estar entre 1:5 y 1:10.
- Mezclar la célula de bazo células suspensión y mieloma. Centrifugar la mezcla de células (1000 x g y 10 min 4 ° C) y eliminar el sobrenadante.
- Añadir 1 mL de solución de 50% de polietilenglicol (PEG) a las células y revuelva suavemente a 37 ° C durante 1 minuto. Dejar reposar durante 30 s.
Nota: La solución de PEG utilizada en esta etapa debe contener un 50% (p/v) de Polietilenglicol 1500 y 10% (v/v) dimetil sulfóxido (DMSO) en PBS sin calcio (Ca2 +). - Añadir 2 mL de Medio RPMI-1640 por 2 min terminar la reacción. Añadir un adicional 2 mL de Medio RPMI-1640 para otro 1 minuto y luego añadir un adicional 10 mL de Medio RPMI-1640.
- Centrifugar las células a 800 x g por 10 min. Después de descartar el sobrenadante, Agregar solución de sombrero y seguir cultivando las células. Luego agregar 100 μl de la suspensión celular en cada pocillo de las placas de capa de alimentador e incubar las placas durante 7 días a 37 ° C, 5% CO2.
Nota: En estas condiciones, las células sin fundir del myeloma morirán mientras que las células de hibridoma seguirá creciendo en el medio de sombrero. Después de 7 días, hibridoma monoclonal formará como un único grupo de células en el pozo, mientras que pozos que contienen hibridoma policlonal tendrán múltiples racimos de células. - Aspirar el sobrenadante para el análisis y sustituir el medio por medio de HT.
Nota: Asegúrese de sustituir el medio de sombrero con HT es perjudicial para el hibridoma medio primero como cambiar directamente a medio sin suplemento.
5. indirecta ELISA competitivo (icELISA)
- Cubrir una placa de 96 pocillos con NAR-OVA (1 μg/mL, 100 μL/pocillo) e incubar 1 h a 37 ° C o durante la noche a 4 ° C.
- Bloquear la placa con 300 μL de GPBS (PBS con 1% de gelatina de m/v) por 1 h a 37 ° C para evitar la adsorción no específica.
- Lave la placa tres veces con TPBS (PBS que contenga 0.05% v/v Tween-20).
- Diluir NAR no conjugada en una serie de concentraciones con metanol al 10%. Añadir 50 μl de las diluciones para separar pozos. En los otros pocillos añadir 50 μl de suero o sobrenadante (que contiene mAbs) de hibridoma. Incubar la placa por 1 h a 37 ° C.
- Añada 100 μL de marcado con peroxidasa anti-ratón IgG en cada pocillo e incubar durante 1 h adicional.
- Después de lavar la placa tres veces con TPBS, añada 100 μl de solución sustrato (0,1 M citrato tampón (pH 4) que contiene 0,015% v/v H2O2 y 2 mg/mL de 3, 3', 5, 5'-tetrametil bencidina (TMB)) a cada uno bien e incubar durante 15 minutos.
- Detener la reacción agregando 50 μl de 1 M H2hasta4 en cada pocillo.
- Medir la absorbancia utilizando un lector de microplacas a 450 nm. Elegir los hibridomas que secretan las más altas concentraciones de anticuerpos NAR en su sobrenadante para más preparación.
6. preparación de hibridomas Monoclonal
- Utilizar el método de dilución limitante para preparar los hibridomas monoclonales.
- Después de quitar el medio HT de hibridomas seleccionados (es decir, los positivos para la secreción de anticuerpos NAR), suspender las células en RPMI-1640 y contarlos.
- Diluir las células a una concentración de 1 celda y 2 células 4 células por pocillo en 100 μl de RPMI-1640 en una placa de 96 pocillos. Incubar la placa a 37 ° C, 5% CO2.
- Después de 7-10 días, detectar los anticuerpos NAR en la cultura sobrenadante utilizando el protocolo de icELISA (paso 5). Transferencia de las células de las que son positivas para anticuerpos NAR para placas de 24 pocillos, 25 cm2 y 75 cm2 para el cultivo de hibridomas.
- Criopreservar los hibridomas monoclonales.
- Cosecha de las células y transferirlas a tubos de centrífuga.
- Después de centrifugar las células (800 x g, 10 minutos), retirar el sobrenadante y resuspender las células en medio (RPMI-1640, suero de ternera fetal 20% (FCS) y 10% DMSO) de congelación. Transferencia de las suspensiones celulares para criotubos.
- Almacenar los criotubos en una caja de refrigeración gradiente a-80 ° C durante 24 h. Luego se transfieren los criotubos en nitrógeno líquido para el almacenamiento a largo plazo.
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Representative Results
Generación de hibridomas monoclonales
El peso molecular de la conjugación hapteno-carrier fue confirmado por el análisis por MALDI-TOF-MS. Como se conoce el peso molecular de BSA y el NAR, podría calcularse el número de pequeñas moléculas conjugadas con BSA. La figura 1 muestra resultados representativos espectrales para NAR-BSA22, que muestra un amplio pico en m/z 77.058. Como el peso molecular promedio de BSA es 66.430, parece que por lo menos 18 moléculas NAR (581 MW) fueron conjugadas con la BSA (cociente molar del acoplamiento (NAR:BSA) = 18:1).
icELISAs se realizaron para determinar los títulos de suero después de la inmunización de ratón22. Parece que los títulos de anticuerpo del suero de los cuatro ratones inmunizados con el conjugado de NAR-BSA fueron significativamente mayores que la observada para el control del ratón (figura 2). El ratón con la concentración más alta (sobre 1:5, 000) fue utilizado para la fusión de la célula.
Después de que las células de bazo de este ratón fueron fundidas a las células de la capa de alimentador abdominal, los hibridomas se cultiva por medio de inselection de 7 días. Utilizando icELISAs, se probó el sobrenadante de cultivo celular, andthehybridomas positivos para NAR mAbs se recloned y ampliados. Las imágenes en la figura 3 ilustran los resultados convencionales de líneas celulares de hibridoma estable de anticuerpos monoclonales y policlonales.
Selección y aplicación de la mAb anti-NAR
El punto crítico de este experimento es la proyección de la especificidad de mAb. Los resultados en la tabla 1 demuestran que el mAb en este experimento reaccionaron con NAR, pero no el bloqueo almacenador intermediario o portador de proteínas22. Además, la especificidad del mAb fue evaluada más probando su reactividad con compuestos estructuralmente relacionados. La tabla 2 muestra las tasas de reactividad cruzada calculada. Como prueba de la tasa de reactividad cruzada para los otros flavonoides eran de todo menos del 2%, está claro que esta mAb es específico para NAR22.
Un icELISA fue desarrollada usando el mAb anti-NAR y destaca la aplicación de esta metodología. Utilizar soluciones que contengan concentraciones conocidas de NAR, fue trazada una curva estándar utilizando las absorbancias de estas soluciones y el rango lineal de la curva de modelo S se calculó (se muestra en el recuadro de la figura superior derecha). La ecuación de regresión lineal (y = 0.176 LN (x) + 1.1243, R2 = 0.9978) calculado para esta curva puede ser aplicada al análisis cuantitativo de muestras desconocidas.
Producción y caracterización de un mAb contra ácido glicirrícico
Utilizando este protocolo de fusión de células de splenocyte/mieloma, un monoclonal hibridoma secretor de mAb ácido glicirrícico anti, DF5, el nombre fue establecido18. El subtipo de este mAb DF5 fue identificado como IgG1 con una cadena ligera kappa (cuadro 3). Similar al análisis anterior, el mAb fue utilizado para revisión adicional y las aplicaciones, mientras que la específica de antígeno monoclonales hibridomas ampliado andcryopreserved en nitrógeno líquido para el almacenamiento a largo plazo.
| Sustancia de recubrimiento | Un valor de450 | Reactividad cruzada (%) |
| Nar-OVA | 0.97 | 100 |
| OVA | 0.056 | < 0,01 |
| BSA | 0.068 | < 0,01 |
| Gelatina | 0.053 | < 0,01 |
| Leche descremada | 0.05 | < 0,01 |
Tabla 1. Reactividad del mAb anti-NAR con NAR-OVA y proteínas.
| Clasificación | Compuesto | Reactividad cruzada (%) |
| Flavonoides | Naringina | 100% |
| Puerarin | 1.26% | |
| Neohesperidina | 18.80% | |
| Rutina | 1.95% | |
| Baicalein | < % 0.09 | |
| Hyperoside | < % 0.09 | |
| Terpenos | Ginsenoside Rg2 | < % 0.09 |
| Ginsenoside Rb1 | < % 0.09 | |
| Ginsenoside Re | < % 0.09 | |
| Notoginsenoside | < % 0.09 | |
| Ácido glicirrícico | < % 0.09 | |
| Ácido glicirrético | < % 0.09 | |
| Saikosaponin | < % 0.09 | |
| Paeoniflorin | < % 0.09 | |
| Genciopicrina | < % 0.09 | |
| Sterides | Ácido de Cholic | < % 0.09 |
| Ácido desoxicólico | < % 0.09 | |
| Antraquinonas | Rheumemodin | < % 0.09 |
| Ácido rheinic | < % 0.09 | |
| Otro | Ácido salvianólico | < % 0.09 |
| Curcumina | < % 0.09 | |
| Gastrodin | < % 0.09 | |
| Amigdalina | < % 0.09 |
Tabla 2. Reactividad cruzada (%) del mAb anti-NAR contra NAR y sus compuestos relacionados.
| isotipo de cadena pesada | isotipo de cadena ligera | ||||||||
| IgG1 | IgG2a | IgG2b | IgG3 | IgA | IgM | Kappa | Lambda | ||
| DF5 | ● | ○ | ○ | ○ | ○ | ○ | ● | ○ | |
Tabla 3. Análisis de isotipo de mAb DF5.
Figura 1: análisis de MALDI-TOF-MS del conjugado NAR-BSA. [M + H] + y [M + H 2]2 + indica las moléculas de simple y doble protonada de NAR-BSA, respectivamente. Esta figura ha sido modificada desde Qu et al., 201622
Figura 2 : Análisis de suero título por icELISA. 1 - 4 de ratones fueron inmunizados con NAR-BSA conjugado, mientras que el control fue inmunizado con vehículo (PBS). Los datos representan la media ± desviación estándar (SD) (n = 3). Esta figura ha sido modificada desde Qu et al., 201622. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3 : Imágenes representativas de estable de anticuerpos monoclonales (A) y policlonales b hibridomas. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 4 : Aplicación del mAb anti-NAR en un icELISA. Varias concentraciones de NAR se incubaron con mAb en pozos previamente cubierto con NAR-OVA (1 mg/mL). A es la absorbancia en presencia de NAR, mientras que un0 es la absorbancia en la ausencia de NAR. Los datos representan la media ± desviación estándar (SD) (n = 3). Esta figura ha sido modificada desde Qu et al., 201622.
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Discussion
Aquí, presentamos un protocolo para la producción exitosa de mAbs contra moléculas pequeñas derivadas de productos naturales. Los pasos esenciales en el procedimiento han sido descritos, y hemos demostrado la utilidad de este protocolo utilizando NAR como una molécula pequeña de ejemplo. Los espectros de ejemplo, análisis de reactividad y icELISA resultados muestran representante experimental y datos de control que se obtuvieron mediante este protocolo. Imágenes de ejemplo de los hibridomas proporcionan una representación visual de lo que el investigador debe estar buscando al diferenciar entre los anticuerpos monoclonales y policlonales hibridomas. Tomados en conjunto, hemos demostrado que la producción del mAb, caracterización y estrategia de aplicación presentaron resultados en la creación de un mAb eficaz contra una molécula pequeña como una novela que Elisa basado en el mAb particular que puede ser utilizado para probar la expresión de la molécula objetivo en otros productos naturales.
Trabajar con cualquier tipo de anticuerpo, el problema más común que pueda surgir durante este procedimiento se asocia con la sensibilidad del mAb. De hecho, hay un riesgo alto de que el mAb no funcionará como se esperaba debido a la baja sensibilidad, alta reactividad cruzada u otros factores. Como todo el procedimiento toma menos de 4 meses para llevar a cabo en su totalidad, es importante tener cuidado durante la investigación inicial de los mAbs segregada de los hibridomas. Un aspecto esencial para evitar la creación de un mAb ineficaz es el suero de pantalla por icELISA antes de la fusión celular confirmado reactiva con el hapteno pero no el transportista. Esto se realiza mediante el uso de dos compañías diferentes de proteínas (en este caso BSA y OVA) como inmunógeno y portadores del antígeno de la capa, respectivamente. Durante la inmunización con el conjugado hapteno-BSA, los animales producen anticuerpos contra ambos el hapteno (p. ej., NAR) y BSA. Por ello, para evitar la detección de falsos positivos de anticuerpos anti-BSA durante la proyección, hapteno-OVA debe utilizarse para detectar los anticuerpos anti-hapteno específicamente. La creación de estos portadores de dos proteínas, así como al utilizarlos se destaca explícitamente en el protocolo.
También es importante tener en cuenta que durante la preparación de los hibridomas monoclonales, el método de dilución limitante a menudo tiene que repetirse varias veces hasta que todos los pozos que contienen las células monoclonales son positivos. Esta repetición ayuda a confirmar que cada clon estable secretos el anticuerpo específico.
Las limitaciones de este método incluyen el complicado proceso de generación de hibridomas y el tiempo necesario para la selección de la deseada hibridoma productoras de anticuerpos. Sin embargo, una vez que el mAb se obtiene y se desarrolla la icELISA, la detección del objetivo compuesto de productos naturales puede realizarse rápida y eficientemente. En particular, este protocolo de evitar algunos de los costos asociados con otras técnicas de análisis y no requiere el uso de instrumentos costosos repetidamente para cada producto natural probado.
Una vez producido y exhibido, el mAb de hapteno puede ser ampliamente utilizado en una variedad de análisis. En este protocolo, nos enfocamos en el uso del mAb en un método de ELISA que se utilizó para estudiar la biología de la molécula pequeña, así como sus interacciones farmacocinéticas20,22. Otros mAbs creados con este protocolo también se han utilizado para establecer un método de cromatografía de inmunoafinidad mAb-basado para la separación de análogos estructurales18, epímeros21, así como un inmunoensayo de flujo lateral23 para la detección rápida e in situ de la molécula objetivo. Estos estudios ponen de relieve la amplia aplicación de mAbs producido usando el protocolo descrito aquí. Por lo tanto, este procedimiento, los mAbs creó y actos como una Fundación para el desarrollo de diversos inmunoensayos basados en mAb que pueden ser utilizados con eficacia como herramientas analíticas para la evaluación y control de calidad de productos de naturaleza de destino.
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Disclosures
Los autores no tienen nada que revelar.
Acknowledgments
Este trabajo fue apoyado por la Fundación Nacional de Ciencias naturales de China (números de concesión 81573573, 81473338 y 81503344) y la clásica receta básica equipo de investigación en la Universidad de Beijing de Medicina China.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 800 mesh (40 μm nylon) filter | FALCON | 352340 | |
| 24 well culture plate | NUNC | 119567 | |
| 25 cm2 Flask | Labserv | 310109016 | |
| 3,3’,5,5’-Tetramethylbenzidine(TMB) | Sigma Aldrich | 860336 1G | |
| 75 cm2 Flask | Corning | 430720 | |
| 96 well culture plate | NUNC | 117246 | |
| bovine serum albumin | AMRESCO | 332 | |
| cell strainer | FALCON | 352340 | |
| centrifuge tube 15 mL | Corning | 430645 | |
| centrifuge tube 50 mL | Corning | 430828 | |
| cryotubes, 1 mL | Sigma Aldrich | V7384-1CS | |
| cultivator | DRP-9082 | Samsung | |
| dialysis membrane (10kDa) | Heng Hui | 45-10000D | |
| dimethylsulfoxide | Sinopharm Chemical | DH105-10 | |
| electronic balance | BS124-S | Sartorius | |
| ELISA plates, 96 well | NUNC | 655101 | |
| ethanol, 96% | Sinopharm Chemical | ||
| Fetal bovine serum | Gibco | 16000-044 | |
| fetal calf serum | Invitrogen | 10270106 | |
| Freund´s adjuvant, complete | Sigma Aldrich | SLBM2183V | |
| Freund´s adjuvant, incomplete | Sigma Aldrich | SLBL0210V | |
| Gelatin | AMRESCO | 9764-500g | |
| Gradient cooler container | Nalgene | 5100-0001 | |
| HAT media supplement | Sigma Aldrich | H0262-10VL | |
| HRP-conjugated goat-anti-mouse IgG antibody | applygen | C1308 | |
| HT media supplement | Sigma Aldrich | H0137-10VL | |
| Inverted Microscope | IX73 | Olympus | |
| keyhole limpet hemocyanin | Sigma Aldrich | H8283 | |
| MALDI-TOF-MS | Axima-CFR plus | Axima | |
| Microplate Reader | BioTex | ELX-800 | |
| mouse | Vital River | BALB/c | |
| ovalbumin | Beijing BIODEE | 5008-25g | |
| PEG | Sigma Aldrich | RNBC6325 | |
| Penicillin&Streptomycin solution | Hyclone | SV30010 | |
| Pipette 10 mL | COSTAR | 4488 | |
| Pipette 25 mL | FALCON | 357525 | |
| RPMI 1640 | Corning | 10-040-CVR | |
| skim milk | applygen | P1622 | |
| sodium periodate | Sinopharm Chemical | BW-G0008 | |
| Sulfo-GMBS | Perbio Science Germany | 22324 | |
| TipOne Tips 1,000 µL | Starlab | S1111-2021 |
References
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