Summary
En este protocolo, se describen la selección y preparación de células apropiadas para la micromanipulación y el uso de un micromanipulador piezoeléctrico para volver a colocar los cromosomas dentro de las células.
Abstract
Ha sido un método esencial para iluminar el mecanismo para cromosoma congression, el puesto de control de huso y los movimientos de cromosoma anafase la micromanipulación de los cromosomas y ha sido clave para entender lo que controla movimientos del cromosoma durante División de célula. Un biólogo experto puede utilizar un micromanipulador para separar los cromosomas del eje, para volver a colocar los cromosomas dentro de la célula y para aplicar fuerzas a los cromosomas con una aguja de pequeño de vidrio con una punta muy fina. Mientras que las perturbaciones se pueden hacer a los cromosomas utilizando otros métodos como las trampas ópticas y otros usos de un láser, hasta la fecha, ningún otro método permite la reposición de componentes celulares en la escala de decenas a cientos de micras con poco a ningún daño a la célula .
La selección y preparación de las células apropiadas para la micromanipulación de los cromosomas, específicamente describiendo la preparación de saltamontes y grillo espermatocito primario para el uso en proyección de imagen de células vivas y micromanipulación, son se describe aquí. Además, mostramos la construcción de una aguja para utilizarse para mover los cromosomas en la célula y el uso de un micromanipulador piezoeléctrico controlado por joystick con una aguja de vidrio para reposicionar los cromosomas dentro de las células divisorias. Un resultado de ejemplo muestra el uso de un micromanipulador para separar un cromosoma de un eje en un espermatocito primario y para volver a colocar ese cromosoma dentro de la célula.
Introduction
Micromanipulación ha revelado las partes del mecanismo para un cromosoma congression, puesto de control de eje y movimientos de cromosoma anafase. La primera publicación que describe los resultados de experimentos de micromanipulación era por Robert Chambers1. Cámaras utilizan un micromanipulador mecánica con una aguja de vidrio adjunta para sondear el citoplasma de un número de diferentes tipos de células. Por desgracia, métodos de contraste que permitieron la visualización de los cromosomas y de muchos otros componentes celulares en las células vivas no estaban disponibles en el momento, para que experimentos de cámaras no pueden mostrar los efectos de reubicar estos componentes celulares. Principios micromanipulations que alteración la posición del cromosoma el aparato de cámaras usado para barrer el midzone del huso en células de la anafase, mostrando que tales manipulaciones podrían alterar la posición de los brazos del cromosoma en neuroblastos de saltamontes de anafase2 . Nicklas y sus colaboradores fueron los primeros en realizar finos micromanipulations de cromosomas, estirando los cromosomas3, separarlas del husillo e induciendo una reorientación3,4, estabilizar una malorientation aplicación de tensión a los cromosomas5,6,7, y midiendo las fuerzas producidas por ejes en anafase8,9. Otro trabajo en el laboratorio de Nicklas demostró que los gránulos citoplásmicos también podrían ser manipulado10 y que los centrosomas podrían cambiarse por micromanipulación11. Micromanipulación no es sólo útil para mover los cromosomas y otros componentes celulares. Una aguja de micromanipulación puede cortar limpiamente a través de un huso mitótico en las células de demembranated12 o se puede utilizar para disolver el sobre nuclear13. Además, se pueden fusionar células adyacentes por micromanipulación14,15.
Con una amplia variedad de experimentos interesantes que pueden hacerse mediante micromanipulación, sorprende a primera vista que se han realizado experimentos de micromanipulación por muy pocos biólogos de cromosoma. Una de las razones para esta deficiencia es que las células cultivadas se dividen mitotically que se derivan de los tejidos vertebrados y se utilizan para estudiar los movimientos del cromosoma son extremadamente difíciles de micromanipulate. Estas células de cultivo de tejidos en general tienen un citoesqueleto cortical que "se pone en el camino" de la micromanipulación de la aguja y los cromosomas ya no se puede llegar por la aguja o muele la aguja a través de la célula, conduciendo a una ruptura de la célula y la muerte. Nos y otros experimentadores que usan micromanipulación, hemos encontrado células artrópodas para ser susceptibles de micromanipulación. Espermatocitos de artrópodos se extienden fácilmente bajo una capa de aceite de halocarburos y parecen tener un mucho menos robusto citoesqueleto cortical subyacente a la membrana de la célula durante la división celular. Así, los testículos artrópodos proporcionan una buena fuente de células dividirse meiotically (espermatocitos) y mitotically dividirse las células (espermatogonios) con cromosomas fácilmente accesibles para la micromanipulación. Un seccionamiento serial de un espermatocito de saltamontes fijado durante una manipulación reveló que la aguja no penetra la membrana de la célula; la membrana de la célula se deforma alrededor de la aguja (Nicklas R.B., comunicación personal). Espermatocitos de un número de taxones de insectos y arañas han estado micromanipulated con éxito, incluyendo saltamontes, orando Mantis, moscas de la fruta, moscas grúa, grillos, spittlebugs, polillas, arañas viuda negra, arañas del sótano y las arañas orbe-que teje 3,7,17,18,19,20,21,22. Las células cultivadas, mitotically dividirse de insectos pueden ser micromanipulated. Por ejemplo, los cromosomas en neuroblastos saltamontes en un cultivo primario tienen cromosomas que pueden ser fácilmente micromanipulated2,23. Sospechamos que el cultivado líneas derivadas de Drosophila y otros insectos también se micromanipulatable, aunque no hemos probado la técnica con estas células. Vamos a mostrar cómo dividir celdas de saltamontes y grillos se puede preparar para una micromanipulación. Grillos son fáciles de obtener de la mayoría de las tiendas para mascotas en cualquier momento del año. Saltamontes son fácilmente obtenibles en el verano a menos que el investigador tiene acceso a una colonia de laboratorio, pero la especie utilizada (Melanoplus sanguinipes) ha aplanado fácilmente las células y los cromosomas largos, fácil de manipular.
Otra razón por qué se han realizado experimentos de micromanipulación por un puñado de biólogos es que micromanipuladores que mueven los cromosomas bien están raramente disponibles en el mercado. Hemos encontrado que un micromanipulador piezoeléctrico controlado por joystick controla el movimiento de la aguja sin vibración, deriva o desfase entre el movimiento de la palanca de mando y el movimiento de la aguja, pero otros tipos de manipuladores con éxito pueden empujar los cromosomas alrededor de la célula. Los micromanipuladores diseñados por Ellis y Begg25,26 son ideales para la micromanipulación de los cromosomas, aunque utilizan tecnología más antigua. Micromanipuladores piezoeléctricos están actualmente disponibles y utilizados en electrofisiología; sin embargo, estos micromanipuladores no son normalmente controlado por joystick. Control de joystick es clave para los movimientos requeridos para un exitoso micromanipulación, y un joystick personalizado debe ser construido de tal manera para trabajar los micromanipuladores piezoeléctricos actualmente disponibles para una micromanipulación de cromosoma. Los micromanipuladores piezoeléctricos controlado por joystick que mejor funcionan tienen control directo de posición, en que el movimiento de la palanca de mando se traduce directamente en un movimiento de la aguja.
Un micromanipulador piezoeléctrico nuevo diseño puede construirse de piezas comercialmente disponibles que pueden ser reemplazados fácilmente y de algunos pequeños componentes impresos 3D, y funciona bien para cromosoma micromanipulación24. El micromanipulador sensibilidad ajustable, posicionamiento manual gruesa y no tiene vibración, deriva o retraso en el movimiento de la aguja y el control directo de la posición de la aguja. Los científicos pueden construir el instrumental quirúrgico con instrucciones disponibles en línea24. A continuación se presentan los métodos para la preparación de un cultivo celular de espermatocito primario y micromanipulating los cromosomas dentro de las células en esa cultura.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. preparación del cultivo celular de espermatocito primario de insectos para micromanipulación
- Preparación de portaobjetos
- Obtener un portaobjetos de vidrio 75 x 25 mm con un agujero circular de 20 mm de diámetro, en el centro de la diapositiva.
Nota: Estos fueron cortados de una sola hoja de vidrio de la ventana a ser del tamaño de un portaobjetos de vidrio con un orificio en el centro. - Ejecutar un cubreobjetos 25 x 25 mm #1.5 a través de una llama de mechero de Bunsen para 2 s.
- Aplique grasa de vacío alrededor del borde del orificio en el portaobjetos de cristal
- Coloque el cubreobjetos sobre el agujero como en la figura 1. Presiónelo y asegúrese de que formar un sello hermético.
- Voltear el portaobjetos de cristal y completar la disección con aceite de halocarburos.
- Obtener un portaobjetos de vidrio 75 x 25 mm con un agujero circular de 20 mm de diámetro, en el centro de la diapositiva.
- Preparación de cultura espermatocito para visualización en microscopio
Nota: Aquí, describimos el método de preparación de cultivo con células de saltamontes o grillo. Contenido de los testículos de otros artrópodos puede cultivarse utilizando un método similar.- Obtener grillos macho subadultos (o saltamontes). Colocar un insecto de vivir en el refrigerador por aproximadamente 2 min para frío-anestesiar. Usando las tijeras de disección, rápidamente cortar a través de la superficie dorsal paralela al eje largo del abdomen directamente detrás de los brotes de ala. Apriete manualmente el abdomen suavemente para empujar los testículos a través del corte en el exoesqueleto (figura 2).
- Utilizando pinzas, coloque los testículos aislados en una disección que también contiene aceite de halocarburos.
- Si es necesario, ver los testículos con un microscopio de disección. Dividirlos en partes más pequeñas con unas pinzas de punta fina, quitar cualquier grasa que cubre los testículos y pinzas de punta fina para romper los testículos (Figura 3A y 3B). Difundir el contenido de los testículos en el aceite, en la superficie del cubreobjetos (figura 3).
- Difundir el contenido de los testículos hasta la parte de propagación de los testículos es apenas perceptible a los ojos (figura 3). Usar pozos de disociación adicional cargado de aceite si es necesario.
2. micromanipulación
- Producción de la microneedle
- Coloque un extremo de un tubo de vidrio (0,85 mm de diámetro exterior, 0,65 mm de diámetro interno) en la llama de un mechero de Bunsen. Tire del extremo de los tubos de vidrio de tal manera que se forma un ángulo de 150°, y se crea un área extendida de tubería de cristal estrecho. Romper la tubería en la región delgada para que la región delgada que se extiende desde el ángulo es aproximadamente de 10 mm de largo (Figura 4A).
- Utilizando un microforge (por encargo según Powell27 o comercialmente disponible-véase Tabla de materiales), toque la punta de la aguja de vidrio para el alambre de platino caliente para derretir el vidrio en la punta. Forma un ángulo aproximado de 45° entre la aguja y el alambre de platino de la microforge (Figura 4B). Tirar el vidrio de alambre caliente, al mismo tiempo apagando el calor en el cable, formando una fina punta de ≤1. 5 mm en el extremo de la aguja de vidrio.
Nota: El diámetro de la punta será difícil de medir, pero una punta de esta longitud es probable producir una aguja firme pero flexible que será apropiada para la micromanipulación. Alternativamente, podría utilizarse un extractor de la micropipeta para crear tubos de vidrio con un diámetro de la punta apropiado (el experimentador tendrá que probar diferentes recetas tirando para producir un microneedle adecuadamente firme pero flexible para el trabajo). La aguja podría ser colocada en un soporte que se forma de manera similar a la aguja de manipulación creada según el método descrito anteriormente.
- Posicionamiento del instrumental quirúrgico
- Colocar el portaobjetos preparado en la etapa de un microscopio de contraste de fases invertido. Encontrar las células en división y en el centro en el campo de visión. Se centran en las células con el aumento más bajo posible.
Nota: Utilizamos un objetivo de contraste de fases de X 16. - Lugar el microneedle en el sostenedor de la aguja en el micromanipulador.
- Coloque manualmente el microneedle en la trayectoria de la luz del microscopio para que la punta de la aguja está iluminada por la luz (figura 5B).
- Enfocar el microscopio varios planos focales por encima del plano en el cual las células mienten.
- Vuelva a colocar el microneedle utilizando el controlador de joystick en una sensibilidad baja varias veces para encontrar la sombra de la aguja en los ejes X y y. Seguir reajustar la posición hasta que la posición de la punta sea visible. Ajuste la posición de la aguja a lo largo del eje z hasta que la punta de la aguja está en foco.
- Enfocar en las células, y luego enfocar el microscopio por encima del plano de la celda para que las células están fuera de foco y invisible. Reajuste la posición de la aguja de modo que su punta esté en foco en este plano focal.
- Ajuste la ampliación del microscopio como sea necesario.
Nota: Utiliza un objetivo de contraste de fases 100 X 1.4 apertura numérica (NA) para la micromanipulación. - Después de centrarse en las células con el objetivo de mayor aumento, otra vez enfocar el microscopio por encima del plano de la celda para que las células estén fuera de foco y invisible. Use una mayor sensibilidad, reajuste la posición de la aguja para que su punta está en foco y centrado en el plano focal por encima del plano en el cual las células mienten.
- Vuelva a enfocar en las células, ajuste de su posición de manera que permanezcan en el centro del campo de visión. La aguja está ahora lista para la micromanipulación.
- Colocar el portaobjetos preparado en la etapa de un microscopio de contraste de fases invertido. Encontrar las células en división y en el centro en el campo de visión. Se centran en las células con el aumento más bajo posible.
- Micromanipulación de los cromosomas
- Utilizando el mismo ajuste de sensibilidad en cuanto a la colocación fina en una alta ampliación, use el joystick para controlar el microneedle y empuje los cromosomas dentro de la célula. Mantenga la punta de la aguja por encima del plano de las células.
- Para tirar o mover un cromosoma, se centran en un cromosoma en la parte superior de la célula.
Nota: Estos cromosomas son fáciles de manipular-manipular cromosomas cerca que el cubreobjetos es probable que la aguja se muela en el cubreobjetos, estallando la célula y acabar con el experimento. - Ajustar el eje z en el joystick para llevar la punta de la aguja en foco y luego mover punta de la aguja con el joystick en X y Y. Coloque la punta de la aguja directamente en el cromosoma para manipular y empujar en la dirección deseada para permitir que el manipulador a repositi en el cromosoma.
- Dependiendo de cuánto se empuja el cromosoma, aplique tensión al cromosoma o aplicar suficiente tensión para separar un cromosoma desde el eje. Una vez que un cromosoma es eliminado de un eje, colocar en cualquier lugar dentro de la célula.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
La figura 6 muestra una micromanipulación de muestra de 2 espermatocitos primarios adyacentes saltamontes en varios ejemplos de los posibles usos de micromanipulación. Este experimento se realizó usando un microscopio de contraste de fases invertido,. El 0:00 (las horas se muestran en min:s) la imagen muestra las células antes de la manipulación. Un cromosoma en la célula de la parte inferior se muestra bajo tensión aplicada por la aguja de micromanipulación (0:05, negro flecha) y luego completamente separada del husillo (0:10; negro flecha). Un cromosoma en la célula de la parte inferior (6:25; flecha amarilla) es empujado hacia el polo del 1 huso de esa celda (7:05; flecha amarilla) y luego se trasladó fuera de la zona principal del huso (7:10; zona amarilla). Ambos cromosomas manipulados (flechas de color amarillas y negras) en este experimento se mantienen de volver al huso por ser empujado continuamente con la aguja de micromanipulación para evitar la formación de nuevos accesorios del huso. La sombra de la aguja de micromanipulación es visible en algunas imágenes, pero la punta de la aguja es raramente visible. Estas imágenes muestran que es posible reposicionar, aplique una tensión a y separar un cromosoma desde el eje mediante micromanipulación. Cromosomas pueden ser separados de un eje en la prometafase, metafase y anafase, aunque los cromosomas anafase son muy difíciles de separar.
Figura 1 : Vidrio portaobjetos con cubreobjetos Unido. 25 mm x 25 mm, tratados con llama cubreobjetos se une a un portaobjetos de vidrio de 75 x 25 mm de 20 mm en el agujero circular de diámetro cortado en el centro y sellado con grasa para vacío. Tenga en cuenta la falta de burbujas visibles o vacíos en la grasa para vacío bajo el cubreobjetos. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 2 : Extirpación de los testículos de grillo y saltamontes. Testículos (flecha) pueden extraerse un hombre grillo (Acheta domesticus-top) o un saltamontes (Melanoplus sanguinipes-inferior) después se hace una incisión en el abdomen del insecto, directamente detrás de los brotes de ala (flecha). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 3 : Preparación de la extensión de la célula. (A) la mayor parte de los testículos de un grillo es indicada por la flecha. El segmento de los testículos utilizado para una sola diapositiva se muestra por la punta de flecha. Barra de escala = 1 mm. (B) los testículos del saltamontes se componen de una serie de túbulos. Por lo general, se utilizaron 4 túbulos de un saltamontes macho juvenil para cada diapositiva, como se muestra en esta imagen. Barra de escala = 1 mm. (C) o especies, los testículos están rotas con unas pinzas, y el contenido de los segmentos de testículo se separan en aceite de halocarburos. Se muestran los contenidos de los testículos de propagación bajo aceite. Barra de escala = 10 mm. haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 4 : Una aguja de micromanipulación formada por tubos de vidrio. (A) la forma general de la aguja es un segmento largo, sin modificar de vidrio tubo (≥10 cm), con una curva de aproximadamente 150 ° aproximadamente 10 mm desde el extremo (formado, estirando y doblando el tubo de vidrio en la llama de un mechero de Bunsen). (B) el panel muestra la aguja en el microforge. Las formas de la aguja (flecha) un ángulo aproximado de 60° con el filamento de alambre de platino (flecha) antes de calentarlo. (C) la punta de la aguja (flecha) se forma después de que el tubo de vidrio doblado es tocado para el filamento de alambre de platino caliente (flecha) en la microforge y tiró lejos. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 5 : Colocación de aguja de paso de luz del microscopio. (A) este panel muestra una vista de las amalgamas dentales. (B) este panel muestra una vista cercana de la aguja de micromanipulación colocada en el soporte de la aguja de instrumental quirúrgico, que es una pieza de 3-d imprime plástico. (C) A punta de la aguja colocada en la trayectoria de la luz de un microscopio de contraste de fases invertido. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Figura 6 : Micromanipulación de los cromosomas en dos espermatocitos primarios adyacentes saltamontes. Los tiempos se muestran en la min:s. el 0:00 imagen muestra las células antes de la micromanipulación. Se aplica tensión en el cromosoma (indicado por la flecha negra) con la aguja de micromanipulación hacia el polo superior del eje de esa célula (0:05). El cromosoma se desprende el eje y empujó hacia la sección inferior del poste del huso (0:10) y eventualmente se movió fuera de la zona principal del huso (6:25, 7:05 y 7:10). Un cromosoma en la célula adyacente (6:25, flecha amarilla) es empujado hacia el polo superior del eje en esa celda (7:05, flecha amarilla) y luego se trasladó fuera de la masa principal del huso (7:10, flecha amarilla). Barra de escala = 10 μm. haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Con la práctica, moviendo los cromosomas en la célula puede convertirse en segunda naturaleza. Agujas que son lo suficientemente rígidos y suficientemente delgada con punta son difíciles "conseguir la habilidad de" fabricación, pero esta capacidad también viene con la práctica. Las agujas que son tan finas que se deforman cuando se movió en el aceite de halocarburos no será útiles para empujar los cromosomas en la célula. Las agujas que son tan embotan que sus consejos son visibles y tan grandes como 1/3 de la anchura de un cromosoma (o mayor) es muy probable que matar a la célula. La creación de una aguja lo suficientemente fina para empujar los cromosomas pero no tan contundente como para matar a la célula es el paso crucial del protocolo.
Éxito típicamente resulta cuando organismos sanos se utilizan para la fabricación de preparaciones de espermatocito, y los cromosomas cerca de la superficie de la célula son seleccionados por micromanipulación. Intentos de manipular cromosomas cerca de la superficie del cubreobjetos de la célula a menudo resultan en moler la aguja de la micromanipulación en el cubreobjetos y pinchar la célula, acabando así con el experimento. Si la célula no está pinchado u otra manera insalubre, la célula debe sobrevivir micromanipulación. Muerte de la célula se diagnostica fácilmente, como los cromosomas muy rápidamente agrupan. Las células micromanipulated suelen sobreviven a través de la anafase y citocinesis, y con éxito hemos realizado experimentos de micromanipulación largo 6 h.
Mientras que hay una curva de aprendizaje y un requisito para adquirir el equipo preparando para micromanipulate, hay una gran cantidad de valor en poder reposicionar manualmente componentes celulares de forma precisa. Como se mencionó anteriormente, no existe ningún otro método disponible que permite tal reposicionamiento preciso de grandes estructuras celulares. Hay una larga historia de uso de micromanipulación para mover estructuras en la célula. Ejemplos, con hermosas figuras del proceso de uso de micromanipulación para medir fuerzas ejercida en anafase I los cromosomas8 y aplique tensión a los cromosomas5 están disponibles en la literatura. Además, muchos ejemplos de cómo la micromanipulación también puede ser utilizado para alterar la posición de otras estructuras en los microtúbulos de la célula-como28,29, interrumpen otras estructuras en la célula como la envoltura nuclear13o fusible células adyacentes14,15 se ilustran en la literatura.
Experimentos de micromanipulación más se necesitan, como la capacidad para volver a colocar manualmente los cromosomas y otras estructuras, las fuerzas se aplican a las estructuras, y medir las fuerzas en los cromosomas en distintas etapas de la división de célula conducirá a un mejor comprensión de los procesos celulares y la creación de modelos matemáticos precisos, predictivos de procesos celulares. Futuras aplicaciones permitirá una fácil medición de las fuerzas en los cromosomas en todas las etapas de la división de célula.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Los autores no tienen nada que revelar.
Acknowledgments
Damos las gracias por su valiosa discusión Jessica Hall.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| VWR micro cover glass | VWR | 48366 249 | 25 mm x 25 mm, no 1.5 |
| Dow Corning High Vacuum Grease | VWR | AA44224-KT | |
| KEL-F Oil #10 | Ohio Valley Specialty Chemical | 10189 | |
| Microdissecting Scissors, Stainless Steel | Sigma-Aldrich | S3271-1EA | |
| Dumont #5 fine foreceps | Fine Science Tools | 11254-20 | |
| 0.85 mm outer diameter, 0.65 mm inner diameter Pyrex glass tube | Drummond Scientific | Custom order--call to request | |
| Inverted, Phase contrast microscope with 10X or 16X low magnification objective and 60X or 100X high magnification objective | Any brand | ||
| microforge | either custom built or Narashige | MF-900 | |
| micromanipulator | either custom built or Burleigh PCS-6000 with custom piezo-controlling joystick | PCS-6300 |
References
- Chambers, R. Microdissection studies II. The cell aster: a reversible gelation phenomenon. Journal of Experimental Zoology. 23 (3), 483-505 (1917).
- Carlson, J. G. Microdissection studies of the dividing neuroblast of the grasshopper, Chortophaga viridifasciata. Chromosoma. 5 (3), 199-220 (1952).
- Nicklas, R. B., Staehly, C. A. Chromosome micromanipulation. I. The mechanics of chromosome attachment to the spindle. Chromosoma. 21 (1), 1-16 (1967).
- Nicklas, R. B. Chromosome micromanipulation. II. Induced reorientation and the experimental control of segregation in meiosis. Chromosoma. 21 (1), 17-50 (1967).
- Nicklas, R. B., Koch, C. A. Chromosome micromanipulation. 3. Spindle fiber tension and the reorientation of mal-oriented chromosomes. Journal of Cell Biology. 43 (1), 40-50 (1969).
- Nicklas, R. B., Ward, S. C. Elements of error correction in mitosis: microtubule capture, release, and tension. Journal of Cell Biology. 126 (5), 1241-1253 (1994).
- Li, X., Nicklas, R. B. Mitotic forces control a cell-cycle checkpoint. Nature. 373 (6515), 630-632 (1995).
- Nicklas, R. B. Measurements of the force produced by the mitotic spindle in anaphase. Journal of Cell Biology. 97 (2), 542-548 (1983).
- Nicklas, R. B. The forces that move chromosomes in mitosis. Annual Review of Biophysics and Biophysical Chemistry. 17, 431-449 (1988).
- Nicklas, R. B., Koch, C. A. Chromosome micromanipulation. IV. Polarized motions within the spindle and models for mitosis. Chromosoma. 39 (1), 1026 (1972).
- Zhang, D., Nicklas, R. B. The impact of chromosomes and centrosomes on spindle assembly as observed in living cells. Journal of Cell Biology. 129 (5), 1287-1300 (1995).
- Nicklas, R. B., Lee, G. M., Rieder, C. L., Rupp, G. Mechanically cut mitotic spindles: clean cuts and stable microtubules. Journal of Cell Science. 94 (Pt 3), 415-423 (1989).
- Zhang, D., Nicklas, R. B. Chromosomes initiate spindle assembly upon experimental dissolution of the nuclear envelope in grasshopper spermatocytes. Journal of Cell Biology. 131 (5), 1125-1131 (1995).
- Nicklas, R. B. Chromosome distribution: experiments on cell hybrids and in vitro. Philosophical Transactions of the Royal Society of London B. 227 (955), 267-276 (1977).
- Paliulis, L. V., Nicklas, R. B. The reduction of chromosome number in meiosis is determined by properties built into the chromosomes. Journal of Cell Biology. 150 (6), 1223-1232 (2000).
- Church, K., Nicklas, R. B., Lin, H. P. Micromanipulated bivalents can trigger mini-spindle formation in Drosophilamelanogaster spermatocyte cytoplasm. Journal of Cell Biology. 103 (6), 2765-2773 (1986).
- Forer, A., Koch, C. Influence of autosome movements and of sex-chromosome movements on sex-chromosome segregation in crane fly spermatocytes. Chromosoma. 40 (4), 417-442 (1973).
- Camenzind, R., Nicklas, R. B. The non-random chromosome segregation in spermatocytes of Gryllotalpa hexadactyla. A micromanipulation analysis. Chromosoma. 24 (3), 324-335 (1968).
- Ault, J. G., Felt, K. D., Doan, R. N., Nedo, A. O., Ellison, C. A., Paliulis, L. V. Co-segregation of sex chromosomes in the male black widow spider Latrodectus mactans (Araneae, Theridiidae). Chromosoma. 126 (5), 645-654 (2017).
- Felt, K. D., Lagerman, M. B., Ravida, N. A., Qian, L., Powers, S. R., Paliulis, L. V. Segregation of the amphitelically attached univalent X chromosome in the spittlebug Philaenus spumarius. Protoplasma. 254 (6), 2263-2271 (2017).
- Golding, A. E., Paliulis, L. V. Karyotype, sex determination, and meiotic chromosome behavior in two pholcid (Araneomorphae, Pholcidae) spiders: implications for karyotype evolution. PLoS One. 6, e24748 (2011).
- Doan, R. N., Paliulis, L. V. Micromanipulation reveals an XO-XX sex determining system in the orb-weaving spider Neoscona arabesca (Walckenaer). Hereditas. 146 (4), 180-182 (2009).
- Paliulis, L. V., Nicklas, R. B. Micromanipulation of chromosomes reveals that cohesion release during cell division is gradual and does not require tension. Current Biology. 14 (23), 2124-2129 (2004).
- Biology Micromanipulator. DIY High Precision Micromanipulator. , http://micromanipulator.scholar.bucknell.edu (2018).
- Ellis, G. W.
- Ellis, G. W., Begg, D. A. Chromosome micromanipulation studies. Mitosis/Cytokinesis. Zimmerman , A. M., Forer, A. , Academic Press. 155-179 (1981).
- Powell, E. O. A microforge attachment for the biological microscope. Journal. Royal Microscopical Society. 72 (4), 214-217 (1953).
- Alsop, G. B., Zhang, D. Microtubules continuously dictate distribution of actin filaments and positioning of cell cleavage in grasshopper spermatocytes. Journal of Cell Science. 117 (Pt 8), 1591-1602 (2004).
- Zhang, D., Nicklas, R. B. Anaphase' and cytokinesis in the absence of chromosomes. Nature. 382, 466-468 (1996).
