Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Cancer Research

Доклинические оценки отпорности противораковые кумарина OT48 сфероидов, колонии формирования анализов и ксенотрасплантатов данио рерио

Published: June 26, 2018 doi: 10.3791/57490
* These authors contributed equally

Summary

Здесь мы представляем доклинические скрининг противораковые кумарины, с использованием 3D культуры и данио рерио.

Abstract

В пробирке и в естественных условиях доклинические скрининга новых терапевтических агентов являются важным инструментом обнаружения рака наркотиков. Хотя линий человеческих раковых клеток реагировать на терапевтические соединений в 2D (мерной) монослоя клеточных культур, чтобы понять эффективность препаратов в более физиологически соответствующих моделей были разработаны системы 3D культуры. В последние годы было отмечено парадигмы в доклинических исследованиях для проверки потенции новых молекул в 3D культуры системах, более точно имитирует микроокружения опухоли. Эти системы характеризуют состояние болезни более физиологически соответствующим образом и помочь получить более механистических постижения и понимания фармакологических потенции данной молекулы. Кроме того с текущей тенденцией в улучшении в естественных условиях модели рака, данио рерио стала важным позвоночных модель для оценки в естественных условиях образования опухоли и изучить влияние терапевтических агентов. Здесь, мы исследовали Терапевтическая эффективность hydroxycoumarin OT48 отдельно или в сочетании с BH3 mimetics в линии клеток рака легких A549 с помощью трех различных 3D культуры систем, включая колонии формирования анализов (CFA), сфероиде формирования пробирного (SFA) и в естественных условиях ксенотрасплантатов данио рерио.

Introduction

Рак вызывается клеточных мутаций и как следствие биохимических сигнальные пути разрушаются, вызывая неконтролируемому делению клеток и устойчивость к смерти клетки. Опухоли мешают физиологических функций пищеварительной, нервной, сердечно-сосудистой систем и впоследствии соседних тканей1. Несмотря на обширные исследования усилия рак остается наиболее распространенных опасных для жизни заболеваний в мире2. Прецизионные медицины была признана как основа будущего рака терапии. Новых молекулярных структур регулярно тестируются в сочетании с существующих препаратов для улучшения клинических результатов.

Однако одним из значительных ограничений, связанных с развитием новой эффективной целевой терапии является неспособность часто используемых анализов для имитации итоги точные биологические воздействия наркотиков3. Обнаружение рака наркотиков по-прежнему главным образом опирается на тестирования эффективности терапевтических агентов в рак клеточных линий культивировали в 2D монослоя культур, которые трудно проверить в клинических испытаниях4. Таким образом существует растущий интерес для разработки лучше модели рака, которые лучше имитировать родной особенностей опухоли в vivo5. В последние годы растущий интерес к модели 3D культуры привело к разработке усовершенствованных методик производить 3D опухоли модели5.

Здесь мы представляем подход с тремя культуры различных 3D клеточные технологии, позволяющие улучшить понимание потенции hydroxycoumarin OT486 в сочетании с mimetics BH3 раньше больше в глубину в vivo анализов. Наш метод состоит из сочетания колонии и ОТВС с в vivo опухоли формирования тест, основанный на zebrafish модель для дальнейшей проверки эффективности комбинации OT48 и BH3 mimetics в клетках рака легких и мониторинга прогрессии рака в живых организм.

Колонии формирования анализов обычно используются для оценки эффективности противоопухолевых агентов, как твердых, так и кроветворная рака. Assay определяет способность клетки размножаться бесконечно и формируют колонии7. Эффект противоопухолевых агентов на колонии, формирование способности клеток определяется снижение числа и/или размер колоний.

Сфероидов представляют в vitro модели опухоли и служить в качестве платформы лоу кост скрининга для противоопухолевых агентов. Сфероидов агрегаты клеток, растущих в суспензии или встроенные в матрице 3D. Такой подход широко используется для скрининга наркотиков и исследований опухолевого роста, распространение и иммунной взаимодействия8.

Чтобы полностью понять свойства нового препарата, важно проводить эксперименты в естественных условиях на грызунов. Однако этот обычных метод является дорогостоящим и трудоемким. В последние годы данио рерио (Danio рерио) стала широко изучены Лаборатория организма, что дешевле и быстрее, чтобы поднять. Опухоли разработан в подходе культура клеток представляют 3D данио рерио, но в рамках сотрудничества в vivo позвоночных9.

В общей сложности мы используем здесь три различных 3D культуры подходов, включая лигнин, ОТВС и данио рерио в естественных условиях образования опухоли продемонстрировать противоопухолевой потенциал hydroxycoumarin OT48 в легких Рак A549 клеток модели в сочетании с BH3 mimetics.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. колонии формирования анализов

  1. Культура клетки A549 в концентрации 20 000 клеток/см2 в 15 мл RPMI1640 клетки питательной среды с 10% FBS (плода бычьим сывороточным) и 1% антибиотиков в колбе2 75 см в инкубатор CO2 при 37 ° C и 5% CO2.
  2. В день эксперимента определения концентрации клеток с помощью Горяева. Собрать 50000 клетки центрифугированием при 400 x g 7 мин в пробки microcentrifuge 1,5 мл и вновь приостановить клетки в 100 мкл стерильные ПБС (фосфат буфер солевой) в 1,5 мл пробирок.
  3. Отказаться от 1,1 мл полутвердых на основе метилцеллюлоза среды (MCBM) в 15 мл пробирок с multipipette. Подготовка одной трубки для каждого условия.
  4. 110 мкл FBS, до 1,1 мл MCBM, с помощью микропипеткой P200.
  5. Семена клетки на 1000 клеток/мл. Собирать 2.4 мкл суспензии клеток от Стоковый раствор (50 000 ячеек в 100 мкл ПБС) с использованием микропипеткой P2 и добавить в 1,1 мл MCBM, дополненный 10% FBS.
  6. После добавления клетки, вихревой трубы за 1 мин, держа их вертикально на высокой скорости, чтобы перемешать MCBM и клетки.
  7. Добавьте тест соединений (OT48 самостоятельно или в комбинации с A1210477). Подготовить отдельную трубу как элемент управления для использованного растворителя (здесь диметилсульфоксида (ДМСО)). В зависимости от концентрации соединений и объем, добавлены для каждого условия растворителей управления будет включать в себя самую высокую концентрацию растворителя используется для разбавления тест соединения, для оценки неблагоприятных последствий, вызванных растворителя.
  8. Вихревой трубы на 1 минуту.
  9. Для калибровочных добавьте 1 мл смеси с P1000 микропипеткой центр хорошо плиты культуры 12-ну клеток.
  10. Заполните пустой скважин с 1 мл стерильной воды или 1 x PBS для стабилизации влажности.
  11. Инкубируйте культуры пластин на 10 дней в инкубаторе при 37 ° C и 5% CO2.
  12. После 10 дней инкубации добавьте 200 мкл раствора MTT (methylthiazolyldiphenyl-tetrazolium бромид) штока (5 мг/мл) в каждой скважине до конечной концентрации 1 мг/мл.
  13. Инкубируйте 10 мин в инкубаторе при 37 ° C и 5% CO2. Жизнеспособных колоний превратит фиолетовый.
  14. Захват изображения с цифровой камеры с использованием белом фоне пластины (LAS белый dia лоток). Используйте следующие параметры: метод, оцифровки; Выдержка тип, точность; Время экспозиции, руководство, 1 секунда; Чувствительность/резолюции, высоким разрешением. Сохраните изображение в формате tiff.
  15. Количественно жизнеспособных колоний с помощью ImageJ программного обеспечения. Выберите меню «изображение | Тип | 8 bit». Выберите меню «настройки | Порог». Установить порог для контроля и поддержания постоянной для всех условий; Выберите меню «Анализ | Анализ частиц». Сохранить данные и анализировать с помощью статистики программного обеспечения для графического представления.

2. сфероида формирования Assay

  1. Культура клетки A549 в концентрации 20 000 клеток/см2 в 75 см2 фляги с 15 мл среды RPMI 1640 с 10% FBS и 1% антибиотиков.
  2. В день эксперимента, подготовить 96 хорошо U-днище.
  3. Пластина 10 000 ячеек в колодец, который уже содержит соединение интереса (здесь 50 мкм OT48) или 20 мкм A1210477. Окончательного громкость до 100 мкл клеток питательной среды. Количество ячеек, которые образуют единый сфероидов с нетронутыми внешняя граница считается достаточным для формы сфероидов.
  4. Инкубируйте 3 дней в инкубаторе при 37 ° C и на 5% CO2.
  5. После 3 дней инкубации захвата изображения с использованием световой микроскоп с увеличением 4 x сфероидов.

3. данио рерио ксенотрансплантата Assay

Примечание: Этот технический подход визуализируется как схема (рис. 1).

  1. Подготовка запасов реагентов
    1. Подготовка 1 Л 30 x Danieau в решение: 1740 мм NaCl, 21 мм KCl, 12 мм MgSO4∙7H2O, 18 мм Ca (№3)2и 150 мм HEPES. Приспособиться к pH буфера с помощью рН метр 7.6.
    2. Приготовляют раствор 1% (50 x) tricaine: растворяют 20 мг этиловый метансульфонат 3-аминобензоат (tricaine) в 2 мл дистиллированной воды.
    3. Подготовка 1% раствор фенола Красного PBS: добавить 2 мкл соли раствора фенола Красного натрия до 198 мкл стерилизованные PBS раствора в трубу 1,5 мкл.
    4. Подготовка 3% метилцеллюлоза: добавить 3 g метилцеллюлоза до 100 мл 1 x Danieau в раствор.
  2. Данио рерио производство яиц и инкубации
    1. Отдельные одна женщина и один мужчина данио рерио в раздел танк заполнены с УФ стерилизации и фильтрованной водопроводной водой в 28,5 ° C в темноте. После 24 ч разделения смесь рыбы обоих полов начать спаривания. Передавать оплодотворенные яйца от спаривания танк чашку Петри, содержащий 5 мл свежего Danieau раствора.
    2. Мыть яйца три раза с 5 мл раствора в Danieau. Для стирки, тщательно аспирационная яйца с пипеткой и передачи в 5 мл свежего раствора. Инкубируйте 8 h на 28,5 ° C.
      1. После 8 ч инкубации в Danieau и решение измените Danieau в раствор, содержащий 0,03% 1-фенил-2-тиомочевины (PTU) для подавления пигментации. Сортировать непрозрачный яйца (неоплодотворенные или содержащих неразвитой эмбрионов) для предотвращения загрязнения.
  3. Dechorionation эмбрионов
    1. 24 h пост оплодотворение (hpf), dechorionate zebrafish эмбриона, используя острые щипцы. Инкубировать штриховкой эмбрионов в Danieau в растворе с 0,03% ПТУ на 28,5 ° C до 48 hpf.
  4. Подготовка комплекса лечение клетки
    1. Семя A549 клеток на 20 000 клеток/см2 в 25 см2 культуры колбы. После 24 часов посева, добавить соединений (здесь OT48 на 50 мкм и или A1210477 на 20 мкм) для 24 h в инкубаторе при 37 ° C и 5% CO2. Настроить время лечения для каждого соединения для поддержания жизнеспособности клеток, но совершить их к смерти клетки. На этот раз точка должен быть индивидуально настроить основанные на жизнеспособность клеток, морфология и молекулярных маркеров.
    2. 2 ч до конца лечения, пятно клетки с 4 мкм люминесцентные клеток трекер красителя CM-Дил при 37 ° C и 5% CO2. После 2 ч инкубации trypsinize клетки с 0,05% трипсина ЭДТА и развести 106 клеток в 50 мкл раствора фенола Красного PBS до инъекции.
  5. Микро инъекции клеток рака для формирования ксенотрансплантата
    1. Анестезировать данио рерио в 0,02% раствора tricaine за 5 мин до тех пор, пока они располагаются на плите агар.
    2. Тянуть 1,0 мм (вне диаметра (OD) стеклянный капилляр) съемник микропипеткой (настройки программы: P: 300, жара: 260, тянуть: 60, VEL: 50 и время: 200). Вырежьте микрокапиллярной с помощью шприца для образоваться острые края. Загрузить microcapillaries с 20 мкл клеток/фенола Красного-PBS решения. Установить давление впрыска и время отказаться от 2 nL на инъекцию.
    3. Придать желточного мешка 100 – 200 клеток путем инъекций 6-10 nL через 3-5 инъекций. После инъекции позволяют рыбы для восстановления для 10-30 мин в 5 мл свежего Danieau раствора, содержащего решение ПТУ. Диспетчеризации рыбы в 24-ну пластины с 1 мл раствора Danieau в раствор, содержащий ПТУ решения являются и инкубировать в течение 72 часов при 28,5 ° C.
    4. После 72 ч инкубации анестезировать рыбы в tricaine раствор 0,02% и иммобилизации на слайде стекла с капелькой метилцеллюлоза 3%. Возьмите фотографии 5 x по микроскопии флуоресцирования на длине волны 620 до 750 Нм.
    5. Определить размер флуоресцентные опухоли ImageJ программного обеспечения. Выберите меню «Анализ | Мера». Сохраните значения, соответствующие флуоресцентного сигнала и анализировать с помощью статистики программного обеспечения для графического представления.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Рисунок 2рака легкого ячейки линия, которую A549 был посеян в MCBM форме колоний после лечения с OT48 отдельно или в сочетании с BH3 подражательный A1210477 в указанных концентрациях. Результаты показали, что сочетание значительно сократить число, размер и площадь поверхности колоний после 10 дней инкубации.

На рисунке 3A549 клетки лечили OT48 самостоятельно или в сочетании с BH3 подражательный A1210477 и было разрешено сфероидов формы методом U-нижней плиты. После 3 дней инкубации были взяты изображения сфероидов. Количественная оценка сфероидов было сделано с использованием изображений J и 3D изображения были созданы.

На рисунке 4A459 клетки были относиться с OT48 отдельно или в сочетании с BH3 подражательный A1210477 за 24 часа и вводят в zebrafish желточного мешка. После 72 ч количественная оценка флуоресцентные опухоли коррелирует ингибирующее потенциалу соединения.

Figure 1
Рисунок 1: схема общего процесса анализа ксенотрансплантата данио рерио. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 2
Рисунок 2: формирование колонии синергетический ингибитирование A549 hydroxycoumarin OT48 и BH-3 подражательный A1210477. (A) образы A549 колонии формирования assay относились с 50 мкм OT48 и/или 20 мкм A1210477. (B-D) Количественная оценка числа, средний размер и площадь поверхности колоний. Эксперименты были реализованы в трех экземплярах. Должность Специального анализы. Статистической значимости были оценены в p значения ниже 0,05 и представлена следующая легенда: * p ≤0.05, ** p ≤0.01, *** p ≤0.001, *** p ≤0.0001; должность Специального анализирует Дуннетт; Sidak). Все гистограммы представляют собой среднее ± SD по меньшей мере три независимых экспериментов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 3
Рисунок 3: эффект OT48 или A1210477 на способность A549 клетки к форме сфероидов. Изображения A549 опухоли сфероидов после 3 дней.

Figure 4
Рисунок 4: ингибирование A549 массового образования опухоли путем соединения. (A) фотографии показывают тормозящий эффект OT48 или A1210477 на формирование потенциала A549 см-Дил окрашенных клеток опухоли. (B) количественная оценка образования опухоли. Должность Специального анализы. Статистической значимости были оценены в p значения ниже 0,05 и представлена следующая легенда: * p ≤0.05, ** p ≤0.01, *** p ≤0.001, *** p ≤0.0001; должность Специального анализирует Дуннетт; Sidak). Все гистограммы представляют собой среднее ± SD по крайней мере десять независимых экспериментов. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Темпы формирования колонии, полученные с MCBM, зависит от типа ячейки. Обычно для non сторонник клеток, количество колоний гораздо выше по сравнению с адэрентных клеток. Мы наблюдали, что клетки A549 образуется 30-40 колоний после 10 дней. Ранее мы сообщили для различных лейкозных клеток, что количество колоний составляет от 200 до 2509. Наши результаты показали, что OT48 только не производят значительное уменьшение количества колоний только. Однако в сочетании с BH3 подражательный A1210477 колонии формирования способности клеток A549 синергетически сократилось. Ранее мы сообщали, что другой производной hydroxycoumarin OT52 также синергетической с BH3 mimetics подавлять образуя способность колонии клеток A549. Предлагаемые посева концентрации может варьироваться от 1 x 10-3 до 1,5 x 103. CFA, используя MethoCult ценную технику, обычно используются для измерения tumorigenesis в различных линий клетки рака, но она имеет некоторые ограничения. Часто восстановление жизнеспособных колоний после эксперимента неудобно, и клетки не растут хорошо раз изолированы от MCBM и семенами в RPMI1640 среде. Тем не менее это общепринятых доклинические технику, чтобы лучше понять механизм прогрессии рака в 3D-среде. Условия 3D роста точно представлять природной среды образования опухоли в обстановке в естественных условиях . Однако этот метод является медленным, труда интенсивной и не подходит для высокой пропускной способности, скрининг10.

ОТВС выполняются с адэрентных клеток и получил широкую популярность в рак лекарств, поскольку они демонстрируют физиологические черты как выживание рост клетки, морфологию опухоли и гипоксических ядро, которые являются более репрезентативными в vivo ситуации 11,12. Общий размер, текстуры и целостности сфероидов, полученные методом U-нижней плиты могут различаться между клеточных линий. Кроме того Начальная концентрация ячеек, используемых для формы сфероидов может также влиять ее общего развития. Наши результаты показали, что OT48 в сочетании с BH3 mimeticA1210477 тормозится сфероида целостности и снижение сфероида, формирование способности A549 клеток. Ранее мы сообщали ингибитирование A549 сфероидов другой производной hydroxycoumarin в сочетании с BH3 mimetics9. Основными преимуществами этого метода являются воспроизводимость и эффективности затрат. Другие методы, такие как жидкий оверлея техника также регулярно используются для разработки 3D сфероидов раковых клеток. В этой технике клетки растут на ячейки non сторонник культуры блюдо. Скопления клеток затем собраны и помещены в культуре подвеска в форме сфероидов. Однако одним из основных ограничений, связанных с этой техникой является передача скопления клеток подвеска культуры, который не хорошо переносится на различных клеточных линий. Для увеличения пропускной способности соединения, скрининг такую систему 3D культуры, некоторые компании разрабатывают конкретные субстраты, низким насадку пробирного плит и строительных лесов, улучшение формирования трехмерных структур13. С дальнейшего технического прогресса разработка более представительным модели 3D опухоли позволит лучше понять фармакологии Роман соединений для данного вида рака.

Данио рерио ксенотрасплантатов считаются наиболее экономически эффективных животных анализов, обычно используются для противораковый препарат развития9,14. Мы оптимизировали данио рерио в vivo система с различных типов твердых и гематологических рака, а также с пациента производные клеток. Есть целый ряд преимуществ использования данио рерио для скрининга наркотиков. В принципе препараты могут быть добавлены непосредственно в воду и не нужно быть вставлен. Кроме того этот подход также предоставляет информацию о свойствах наркотиков кандидата ADME (всасывание, распределение, метаболизм и экскрецию). Однако, один из основных недостатков этой техники является некоторые молекулы не растворяется в воде и поэтому не подходят немедленно расследоваться этим методом. Чтобы преодолеть это ограничение, раковые клетки обрабатывали соединений ex vivo вводят в zebrafish на этапе, когда совершаются клетки, тем не менее поддерживать жизнеспособность. Наши результаты показали, что клетки A549 относились с OT-48 или с BH3 подражательный A1210477 только не снижали сильно опухоли, формирование способности клеток A549, по сравнению с сочетанием OT48 и A1210477. Это замечание дополнительно подтверждена наша в vitro CFA, где сочетание показал значительное противораковое эффект по сравнению с индивидуального лечения. Вообще эта техника может внести для быстрого скрининга наркотиков в доклинических условиях.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы не имеют ничего сообщать.

Acknowledgments

Исследования в СНС поддерживается национальной исследовательский фонд (СРН) MEST Корея опухоли микроокружения глобальной основной исследовательский центр (GCRC) Грант, [номер гранта 2011-0030001]; Национальный исследовательский грант университет Сеула и мозг Кореи (BK21) плюс программы.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Materials required for colony formation assays
A549 ATCC CCL-185 37 C°
RPMI 1640 Lonza 30096 4 C°
FBS Biowest S1520-500 -20 C°
Penicillin-Streptomycin Lonza 17-602E -20 C°
Cell culture flask T75 SPL 70075 RT
PBS solution Hyclone SH30256.02 RT
1.5ml tube Extragene Tube-170-C RT
15 ml tube Hyundai Micro H20015 RT
12 well plate SPL 30012 RT
MethoCult StemCell technologies 4230 -20 C°
Thiazolyl Blue Tetrazolium Bromide (MTT powder) Sigma M5622 4 C°
LAS4000 GE Healthcare Technologies RT
Materials required for spheroid formation assay
A549 ATCC CCL-185 37 C°
RPMI 1640 Lonza 30096 4 C°
FBS Biowest S1520-500 -20 C°
Penicillin-streptomycin Lonza 17-602E -20 C°
Cell culture flask T75 SPL 70075 RT
PBS solution Hyclone SH30256.02 RT
Trypsin-EDTA Gibco 25-300-054 4 C°
Corning costar ultra low attachemnt 96 well plate Corning 3474 RT
Microscopy Nikon Eclipse TS100 RT
Materials required for zebrafish xenografts
A549 ATCC CCL-185 37 C°
RPMI 1640 Lonza 30096 4 C°
FBS Biowest S1520-500 -20 C°
Penicillin-streptomycin Lonza 17-602E -20 C°
Cell culture flask T25 SPL 70025 RT
Cell culture flask T75 SPL 70075 RT
Cell culture flask T175 SPL 71175 RT
1.5ml tube Extragene Tube-170-C RT
24 well plate SPL 30024 RT
Petridish SPL 10100 RT
PBS solution Hyclone SH30256.02 RT
Trypsin-EDTA Gibco 25-300-054 4 C°
Sodium Chloride Sigma-Aldrich 71382 RT
Potassium chloride (KCL) Sigma-Aldrich P9541 RT
Magnesium sulfate heptahydrate (MgSO4.7H2O) Sigma-Aldrich M2773 RT
Calcium nitrate tetrahydrate (Ca(NO3)2) Sigma-Aldrich C1396 RT
HEPES solution Sigma-Aldrich H0887 RT
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate (Tricaine) Sigma-Aldrich E10521 RT
Phenol Red solution Sigma-Aldrich P0290 RT
Methylcellulose Sigma-Aldrich M0512 RT
1-phenyl-2-thiourea (PTU) Sigma-Aldrich P7629 RT
CM-Dil dye Invitrogen C7001 -20 C°
Glass capillary World Precision Instruments TW 100F-4 RT
Micropipette puller Shutter instrument, USA P-97 RT
Micro injector World Precision Instruments PV820 RT
Syringe KOVAX 1ml RT
Micro loader Eppendorf 5242956003 RT
Glass slide Marienfeld HSU-1000612 RT
Fluorescence microscopy Leica DE/DM 5000B RT

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Giancotti, F. G. Deregulation of cell signaling in cancer. FEBS Letters. 588 (16), 2558-2570 (2014).
  2. Knowlton, S., Onal, S., Yu, C. H., Zhao, J. J., Tasoglu, S. Bioprinting for cancer research. Trends in Biotechnology. 33 (9), 504-513 (2015).
  3. Santo, V. E., et al. Drug screening in 3D in vitro tumor models: overcoming current pitfalls of efficacy read-outs. Biotechnology Journal. 12 (1), (2017).
  4. Tanner, K., Gottesman, M. M. Beyond 3D culture models of cancer. Science Translational Medicine. 7 (283), 283ps289 (2015).
  5. Haycock, J. W. 3D cell culture: a review of current approaches and techniques. Methods in Molecular Biology. 695, 1-15 (2011).
  6. Talhi, O., et al. Bis(4-hydroxy-2H-chromen-2-one): synthesis and effects on leukemic cell lines proliferation and NF-kappaB regulation. Bioorganic and Medicinal Chemistry. 22 (11), 3008-3015 (2014).
  7. Franken, N. A., Rodermond, H. M., Stap, J., Haveman, J., van Bree, C. Clonogenic assay of cells in vitro. Nature Protocols. 1 (5), 2315-2319 (2006).
  8. Katt, M. E., Placone, A. L., Wong, A. D., Xu, Z. S., Searson, P. C. In Vitro Tumor Models: Advantages, Disadvantages, Variables, and Selecting the Right Platform. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 4, 12 (2016).
  9. Lee, J. Y., et al. Cytostatic hydroxycoumarin OT52 induces ER/Golgi stress and STAT3 inhibition triggering non-canonical cell death and synergy with BH3 mimetics in lung cancer. Cancer Letters. 416, 94-108 (2018).
  10. Rotem, A., et al. Alternative to the soft-agar assay that permits high-throughput drug and genetic screens for cellular transformation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (18), 5708-5713 (2015).
  11. Spoerri, L., Beaumont, K. A., Anfosso, A., Haass, N. K. Real-Time Cell Cycle Imaging in a 3D Cell Culture Model of Melanoma. Methods in Molecular Biology. 1612, 401-416 (2017).
  12. Beaumont, K. A., Anfosso, A., Ahmed, F., Weninger, W., Haass, N. K. Imaging- and Flow Cytometry-based Analysis of Cell Position and the Cell Cycle in 3D Melanoma Spheroids. Journal of Visualized Experiments. (106), e53486 (2015).
  13. Lovitt, C. J., Shelper, T. B., Avery, V. M. Advanced cell culture techniques for cancer drug discovery. Biology (Basel). 3 (2), 345-367 (2014).
  14. Ji, S., et al. The dialkyl resorcinol stemphol disrupts calcium homeostasis to trigger programmed immunogenic necrosis in cancer. Cancer Letters. 416, 109-123 (2018).

Tags

Исследования рака выпуск 136 данио рерио опухоли ксенотрансплантата 3D культуры системы сфероидов формирования колонии клеток рака трекер окрашенных клеток инъекций
Доклинические оценки отпорности противораковые кумарина OT48 сфероидов, колонии формирования анализов и ксенотрасплантатов данио рерио
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Lee, J. Y., Mazumder, A., Diederich, More

Lee, J. Y., Mazumder, A., Diederich, M. Preclinical Assessment of the Bioactivity of the Anticancer Coumarin OT48 by Spheroids, Colony Formation Assays, and Zebrafish Xenografts. J. Vis. Exp. (136), e57490, doi:10.3791/57490 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter