Summary
Очистки ионных каналов часто является сложной, но как только достигнуто, он потенциально может позволить в vitro исследования функций и структуры каналов. Здесь мы описываем ступенчатой процедуры для выражения и очистки белков млекопитающих bestrophin, семейство Ca2 +-активированный Cl– каналы.
Abstract
Человеческий геном кодирует четыре bestrophin паралоги, а именно: BEST1, BEST2, BEST3 и BEST4. BEST1, кодируемых геном BEST1 , является Ca2 +-активированный Cl– канал (CaCC) преимущественно выражена в пигментный эпителий сетчатки (ПЭС). Физиологические и патологические значение BEST1 выделяется тот факт, что более 200 различных мутаций в гене BEST1 были генетически связаны с спектр по меньшей мере пять сетчатки дегенеративных расстройств, таких как лучший Вителлиформная макулярная дистрофия (лучший болезнь). Таким образом понимание биофизики bestrophin каналов на уровне одного молекула имеет огромное значение. Однако получение очищенной млекопитающих ионные каналы часто является сложной задачей. Здесь мы приводим протокол для выражения млекопитающих bestrophin белков с системой передачи BacMam бакуловирусы генов и их очищение сродства и размер-гель-проникающей хроматографии. Очищенные протеины имеют потенциал, чтобы быть использованы в последующих функционального и структурного анализа, например электрофизиологических запись в липидных бислоев и кристаллография. Важно отметить, что этот трубопровод может быть адаптирована для изучения функций и структур других ионных каналов.
Introduction
Bestrophins — семейство ионных каналов сохраняется через видов, изменяясь от бактерий до человека1. В организме человека ген BEST1 , расположенный на хромосоме 11q12.3, кодирует мембранный белок Bestrophin-1 (BEST1), которая выражается главным образом в базолатеральной мембраны клеток сетчатки пигментного эпителия (ПЭС) глаза2,3 ,4. Состоит из 585 аминокислот, первый ~ 350 из которых сохраняются высоко среди видов и содержат трансмембранного регионе, BEST1 действует как CaCC людей1,5,6. Кроме того гомолог BEST1 в кур и Klebsiella pneumoniae функционировать в качестве homopentamers7,8, предлагая высокий уровень сохранения всей эволюции.
В организме человека свыше 200 мутаций в гене BEST1 были клинически связаны к группе заболеваний дегенерация сетчатки, под названием bestrophinopathies1,9. Были зарегистрированы пять конкретных bestrophinopathies, включая лучший болезни взрослого начала Вителлиформная дистрофия, аутосомно-доминирующим vitreoretinochoroidopathy, аутосомно-рецессивный bestrophinopathy и пигментный ретинит3,4 ,10,11,12,,1314. Эти заболевания, которые приводят к снижению зрения и даже слепоты, в настоящее время неизлечимыми. Для того, чтобы разработать терапевтические процедуры и потенциально персонализированной медицины, важно, чтобы понять, как эти болезнетворные мутации BEST1 влияние на функции и структура BEST1 канал15. Для этих целей исследователи должны получить очищенный bestrophin (дикого типа и мутантов) каналов и поведения в экстракорпорального анализы5,8.
Первым ключевым шагом является выражением bestrophin каналов из высших видов в mammalian клетках. Трансдукция бакуловирусы клеток HEK293-F (BacMam система) является мощным методом выразить участием мембранных белков16,17, этот протокол использует оптимизированные BacMam вектор (pEG BacMam) для надежной выражение целевых белков18, который в данном случае является млекопитающих bestrophin гомолога. Этот вектор был использован для выражения различных мембранных белков, в том числе G-белок-рецепторы, ядерные рецепторы и другие каналы иона18. Есть также доказательства того, что произведенные белки подходят для кристаллографии18. С высоким уровнем экспрессии в HEK293-F клеток белков могут затем быть очищены с помощью хроматографии; в частности в случае bestrophins, можно использовать как сходства, так и размер-гель-проникающей хроматографии.
После того, как этот протокол доработаны для канала bestrophin, очищенный протеин после этого могут быть проанализированы для его функции и структуры через плоские липидного бислоя и рентгеноструктурного анализа, соответственно5,8. Вообще эти методы предоставляют мощный трубопровода для функциональных и структурных исследований bestrophins и других ионных каналов.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. производство BacMam выражение Baculoviruses
- Вставьте кодирующая последовательность желаемого млекопитающих bestrophin белка в колышек, BacMam векторные18 с последовательностью признание протеазы вируса Etch табака (TEV), следуют GFP-10 x его тег в C-terminus белка.
- Временно transfect плазмиды выражение в клей HEK293 клетки19,20,21,22,23. Проверьте в выражении гена GFP-синтез белка под микроскопом люминесцентные с 10 X или 20 X увеличение, источник возбуждения 488 нм и фильтр выбросов 510 Нм (рис. 1A).
Примечание: На полимерной основе transfection обычно выполняется с 1 мкг плазмидной ДНК для 35 мм блюдо HEK293 клеток. - Производят baculoviruses в Sf9 клетках насекомых, как описано в16,17.
Примечание: Проход 3 (P3) вирус, который будет использоваться для заразить клетки HEK293-F для производства белка, может храниться при температуре 4 ° C на 1 месяц. - Определите титр (инфекционные единиц) P3 вируса, доска формирования пробирного16,17.
Примечание: Как протеин интереса отмеченных GFP, быстрый метод для проверки инфекционных единиц является заразить клетки Sf9 с серийных разведений вируса и подсчитать количество люминесцентные клеток после 48 ч.
2. белков
- Сохранить HEK293-F клетки в культуре подвеска с HEK293-F выражение средний в увлажненные инкубатора 37 ° C с 8% CO2. Используйте одноразовые культуры колбы, которые 2 - 2,5 раза больше, чем объем культуры и вращать культуры на орбитальной платформы на 135 об/мин.
Примечание: Рекомендуется, чтобы заразить клетки, когда они находятся между 5 и 30 ходов и выполнять эти действия под капотом культуры клеток. - 24 ч до вирусной инфекции, добавить 15 мкл Трипановый синий 15 мкл Алиготе культуры клеток и проверьте плотность клеток и жизнеспособности, используя Горяева под микроскопом. Разбавить клетки 0,6 х 106 клеток/мл в 2 x 2 Л флаконы, каждый, с 500 мл среды предварительно нагревают при 37 ° C.
Примечание: Мертвые клетки являются запятнана синий Трипановый синий. Жизнеспособность нужной ячейки > 95%. - В день инфекции проверьте плотность клеток и жизнеспособности (шаг 2.2).
Примечание: Высокая ячейка жизнеспособность > 95% имеет важное значение для эффективного выражения инфекции и белка. Плотность ожидаемый клеток является ~1.0 x 106 клеток/мл (выросли на ночь от 2 x 500 мл 0,6 x 106 клеток/мл клеточной культуры). Предполагаемое общее количество клеток является ~1.0 x 109. - Добавьте P3 baculoviruses клетки на разносторонности инфекции (МВД) 5. Чтобы определить количество вируса для прививок, используйте следующее уравнение:
- Встряхните клетки на орбитальной платформы на 135 rpm в увлажненные 37 ° C инкубатор с 8% CO2 на 24 часа.
- Добавить 10 мм натрия бутират в культуре клеток и продолжить инкубации в течение 48 часов.
Примечание: Для некоторых белков, снижение температуры культуры клеток до 30 ° C после натрия бутират сложения может улучшить выражение и стабильности. - Под микроскопом флуоресценции с 10 X или 20 X увеличение, источник возбуждения 488 нм и 510 нм фильтра выбросов проверьте процент и яркость зеленых клеток, которые непосредственно представляют урожайность белка (bestrophin-GFP-10xHis), (Рисунок 1B).
Примечание: Доля Зеленые ячейки вычисляется путем: 100 x (зеленые клетки/всего клетки). Хороший белок выражение уровень обозначается сильные зеленые флуоресценции под микроскопом. - Урожай клетки центрифугированием при 1000 x g в 4 ° C в течение 20 мин удалить супернатант и вновь приостановить клетки окатышей с фосфат амортизированное saline (PBS) для окончательного объема ~ 80 мл. Сплит суспензию клеток в 2 x 50 мл конические трубы и центрифуги на 1000 x g в 4 ° C на 20 мин хранить клетки окатышей на-80 ° C.
3. Очищение протеина
- Инкубируйте конические пробирки, содержащие ячейки гранулы перемешивания водяной бане при комнатной температуре за 10-15 мин, таким образом, чтобы они оттепель. Вновь приостановить клетки в 2 x (w/v) объем буфера (Таблица 1) (например, 10 г гранул клеток в 20 мл буфера) дополняют ингибиторы протеиназы (апротинин, Leupeptin, А Pepstatin и phenylmethylsulfonyl фтор) 0,1-1,0 мм. Накапайте вверх и вниз широко для получения однородных клеток подвеска.
- Лизируйте клетки с помощью высокого давления гомогенизатора. Запустить суспензию клеток через гомогенизатор на 7-10 МПа для в общей сложности 3 - 4 раза для достижения полной гомогенизации. Держите lysate клетки на льду на 2-3 минут между раундами.
- Добавьте моющее средство [например, 2% w/v соль класс н додецил β-D-Maltopyranoside (DDM)] lysate клетки. Проинкубируйте с агитации за 1 час при 20 ° C для извлечения мембранных белков.
Примечание: Тип моющего средства необходимо быть оптимизированы для каждого целевого белка18,24. - Центрифуга на 150 000 x g в ультрацентрифуга на 4 ° C на 1 час.
Примечание: Все следующие шаги выполняются при 4 ° C. - Собирайте Светлоклеточная lysate и потока через 5 мл его ловушку Ni2 +- НТА сродство столбец предварительно достижение равновесного уровня с буфером (Таблица 1).
Примечание: После центрифугирования, Светлоклеточная lysate будет зажата между Пелле внизу и облачный слой сверху. Использование пипетки передачи 10 мл тщательно собирать ясно lysate и затем переключиться на 1 мл накапайте за последние несколько миллилитров lysate. Избегайте Пелле, который может засорить Ni2 + колонка; Однако небольшое количество верхнего слоя тонкой или могут быть отфильтрованы с 1,5 мкм фильтром. - Промойте колонку с 25 мл буфера B и затем 40 мл буфера C (таблицы 2 и 3, соответственно).
Примечание: Это хорошее место, чтобы отдохнуть, как общая очистка может занять до 12 часов и белка может оставаться стабильным, в то время как вложенного к столбцу на ночь. - Прикрепите столбца к системе жидкостной хроматографии (ПСОК) быстро белка и элюировать с фракционирование белков из столбца с 13 мл буфера D (Таблица 3). Сбор фракций белка обогащенного согласно индикация поглощения УФ.
Примечание: ПСОК условия заключаются в следующем: 1,0 мл размер фракции, сигнал давления до столбца равным 0,3 МПа и скорость потока 0,5 мл/мин. - Измерьте концентрацию продукт eluted белка на microvolume спектрофотометром. Читайте поглощения в 280 Нм.
- (Необязательно) Чтобы удалить тег GFP-10xHis, добавьте ТэВ протеазы в соотношении 1:1 массовых и Инкубируйте на 4 ° C на 30 мин.
Примечание: Тег может или не может повлиять на функции или структуре очищенный канала. Рассчитайте сумму ТэВ от объема и концентрации собранных белка от шагов 3.7-3.8. Например если 10 мл продукта элюции собираются и измеряется в 0,1 мг/мл, общий белок масса 10 x 0,1 = 1 мг и 1 мг ТэВ будет использоваться для пищеварения. - Концентрат белка с 15 мл центробежные (50 или 100 кДа) фильтр на спиннинг на 4000 x g в 4 ° C до окончательный объем 400-500 мкл (для загрузки образца петли 2 мл на ПСОК).
Примечание: Время центрифугирования для концентрации варьируется в зависимости от концентрации и размер протеина. Во избежание чрезмерной концентрации, которые могут вызвать осадков белок, спина за 10 мин на первый взгляд, а затем наблюдать за оставшийся объем и оценить время для последующих спина (например, 2-5 мин), и так далее, чтобы получить окончательный объем. Накапайте между спинами разойтись белка, который вытянуло в нижней части фильтра. - Передача концентрированных белков новый 1,5 мл трубки и удалить любой преципитат или пузырьки из концентрированного продукта. Спина в > g 12000 x 5-10 мин при 4 ° C и собирать супернатант в новой 1,5 мл трубки.
- Загрузите конечный продукт с 1 мл шприц и круглым кончиком иглы на ПСОК систему для размер-гель-проникающей хроматографии со столбцом размер исключения, предварительно достижение равновесного уровня с буфером E (Таблица 5).
Примечание: ПСОК условия заключаются в следующем: размер фракции 0,5 мл, предварительно столбец давлению, равным 2,50 МПа, объем потока, равным 30 мл буфера E (Таблица 5), и скорость потока, равным 0,5 мл/мин. - Обратите внимание, что хорошо себя белки бежать как один пик (рисунок 2A) и собирать белка fraction(s), соответствующий этому пик (рисунок 2A).
- Концентрат белка с 4 мл или 0,5 мл центробежного фильтра единица (же молекулярной массой отсечения как шаг 3.10) и спина на 4000 x g при 4 ° C до конечной концентрации 5-10 мкг/мкл. Используйте спектрофотометра для проверки конечного продукта концентрация (шаг 3,8).
Примечание: Время центрифугирования варьируется, как объем конечного продукта могут отличаться между процессами очистки. Обычно центрифугирование занимает 10-20 мин. Рекомендуется для пипетки между спинами разойтись белка, который вытянуло в нижней части фильтра. - Передать новые трубки 1,5 мл концентрированных белков. Удалите любой преципитат центрифугированием в > g 12000 x 5-10 мин при 4 ° C. Супернатант передать новой 1,5 мл трубки. Сделать 10 мкл аликвоты для хранения при температуре-80 ° C и сохранить один 2-5 мкл малых Алиготе для запуска на градиент гель SDS-PAGE 4-15% на 9 V/см (рис. 2B).
- Подтвердите личность очищенный протеин, масс-спектрометрия8.
Примечание: В пробирке анализ функции и структура очищенный протеин может выполняться через плоские липидного бислоя и рентгеноструктурного анализа, соответственно5,8.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Интенсивность флуоресценции в клей временно transfected клеток в HEK293 (рис. 1A) является хорошим показателем для уровня выражения прогнозируемых белка в клетках подвеска HEK293-F (рис. 1B). Если целевой белок не является четко выраженной или неправильно локализуется в HEK293 клетках после переходных трансфекции, рекомендуется рассмотреть вопрос об изменении выражения конструкция (например., изменяя положение GFP-тега или делая мутации/усечения на целевого белка). Малые HEK293-F подвеска культур (например, 25 мл культуры) используются для оптимизации условий для выражения протеина, среди которых инфекции MOI и культивирования температуры были самым важным в предыдущем опыте.
Успешной очистки обозначается одной основной пик на объем ожидаемых элюции в размер-гель-проникающей хроматографии (рисунок 2A) и одной доминирующей группы на денатурированном геля SDS-PAGE (рис. 2B). Если несколько пиков в размер-гель-проникающей хроматографии, важно для сбора каждого пика и запустить родной гель для определения, какие пик содержит функциональные канала pentamers. Следует отметить, что между двумя белка конструкции, выражение уровня, указывается, по интенсивности флуоресценции в момент сбора урожая, вовсе не nesessarily коррелирует с окончательный выход, как каждой конструкции белка ведет себя по-разному во время очистки. Для белок хорошо себя bestrophin 200-500 мкг очищенного конечного продукта обычно могут быть получены 1 Л HEK293-F подвеска клеток.
Рисунок 1: выражение протеина млекопитающих bestrophin. Микроскопических изображений GFP-тегами млекопитающих bestrophin выраженные в клетках (A) клей HEK293 плазмиды трансфекции и (B) подвеска HEK293F клетки бакуловирусы инфекции. Left = зеленый флуоресценции; справа = ярко поле. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2: Очистка белка млекопитающих bestrophin. (A) очищенной сродство белков GFP-тегами побежал на размер исключения гель фильтрации столбца как один основной пик. Были собраны фракций между пунктирные линии. (B) окончательные белковый продукт побежал на геля SDS-PAGE с лестницы (левая колонка). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
| Реагент | МВТ | Сумма за 1 Л | Окончательное |
| HEPES | 238,3 | 11.9 g | 50 мм |
| NaCl | 58,44 | 17.529 g | 300 мм |
| Глицерин | 92.09 | 50 мл | 5% (v/v) |
| Имидазола | 68.1 | 1.3616 g | 20 мм |
| 2 MgCl | 203 | 0.20331 g | 1 мм |
| Tris(2-carboxyethyl) фосфин | 287 | 2,5 мл бульона 200 мм | 0,5 мм |
Таблица 1: Очищение протеина буфера (Buffer ресуспендирования)
| Реагент | МВТ | Сумма за 1 Л | Окончательное |
| HEPES | 238,3 | 11.9 g | 50 мм |
| NaCl | 58,44 | 17.529 g | 300 мм |
| Глицерин | 92.09 | 50 мл | 5% (v/v) |
| Имидазола | 68.1 | 2.7232 g | 40 мм |
| 2 MgCl | 203 | 1.01655 g | 5 мм |
| Tris(2-carboxyethyl) фосфин | 287 | 0,5 мл бульона 200 мм | 0,1 мм |
| DDM (anagrade) | 510.6 | 0.5 g | 0,05% (w/v) |
Таблица 2: Белка очистки буфера B (сначала вымойте буфера)
| Реагент | МВТ | Сумма за 1 Л | Окончательное |
| HEPES | 238,3 | 5.95 g | 25 мм |
| NaCl | 58,44 | 29.2 g | 500 мм |
| Глицерин | 92.09 | 50 мл | 5% (v/v) |
| Имидазола | 68.1 | 5.1 g | 75 мм |
| Tris(2-carboxyethyl) фосфин | 287 | 0,5 мл бульона 200 мм | 0,1 мм |
| DDM (anagrade) | 510.6 | 0.5 g | 0,05% (w/v) |
Таблица 3: Белка очистки буфера C (второй мыть буфера)
| Реагент | МВТ | Сумма за 1 Л | Окончательное |
| HEPES | 238,3 | 7.74 g | 32.5 мм |
| NaCl | 58,44 | 11.686 g | 200 мм |
| Глицерин | 92.09 | 25 мл | 2,5% (v/v) |
| Имидазола | 68.1 | 17,02 g | 250 мм |
| Tris(2-carboxyethyl) фосфин | 287 | 0,5 мл бульона 200 мм | 0,1 мм |
| DDM (anagrade) | 510.6 | 0.5 g | 0,05% (w/v) |
Таблица 4: Белка очистки буфера D (Элюирующий буфер)
| Реагент | МВТ | Сумма за 1 Л | Окончательное |
| HEPES | 238,3 | 9.53 g | 40 мм |
| NaCl | 58,44 | 11.686 g | 200 мм |
| Tris(2-carboxyethyl) фосфин | 287 | 0,5 мл бульона 200 мм | 0,1 мм |
| DDM (anagrade) | 510.6 | 0.5 g | 0,05% (w/v) |
Таблица 5: Белка очистки буфера E (гель фильтрации буфер)
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Этот протокол описывает полезным трубопровода для очистки каналов иона млекопитающих bestrophin использоваться для будущего в vitro анализов и выражения. Хотя ПСОК устройства требуется для размера-гель-проникающей хроматографии, шприцевый насос является достаточным для всех шагов аффинной хроматографии, включая привязки, мытье и элюирующие. При использовании шприцевый насос для push решения (в шприце) через колонку, важно для подложки в сторону весной, чтобы избежать толкания пузырьков воздуха в столбце. Если чистоту белка после хромотографию сродства уже достаточно для последующих экспериментов, размер-гель-проникающей хроматографии могут быть опущены, так что устройство ПСОК может не требоваться вообще.
Как он занимает около 2 недель, чтобы baculoviruses от pBacMam плазмид, для повышения эффективности, начальный экран для хорошо себя белка гомолог может осуществляться путем уборки временно transfected клеток HEK293 (например., от блюдо 60 мм) и тестирование как выражает протеин интереса (GFP-меткой) ведет себя в моющих средств (например, DDM) с флуоресцентным обнаружением размер-гель-проникающей хроматографии (FSEC)18,24. Это наиболее продуктивным сосредоточиться на конструкции белка, отображающие сильная флуоресценция transfected клеток HEK293 и хорошей монодисперсность и стабильности в FSEC.
Есть несколько рекомендаций для повышения урожайности очищение протеина. Во-первых условия для пищеварения ТэВ может потребоваться быть оптимизированы для каждого белка. Это может быть сделано путем тестирование ряда белков TEV массового соотношения (например, 10:1, 5:1, 2:1, 1:1, 1:2, 1:5 и 1:10) и инкубации раз (например, 0.5, 1 ч, 2 h, 5 h и на ночь). Затем предлагается запустить обработанные образцы в SDS-PAGE гель для проверки эффективности расщепления. Кроме того важно, чтобы не позволить любой центробежные супернатант или элюента утечки из соединения на ПСОК или шприцы. Аналогичным образом важно избежать пузырей при закупорить концентрированных белков.
Различных последующих в пробирке анализ процедур, которые используют белки из настоящего Протокола включают в себя липидный бислой, рентгеноструктурного анализа, крио электронная микроскопия, спектроскопии и высокая пропускная способность, скрининг8,25 , 26.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы не имеют ничего сообщать.
Acknowledgments
Этот проект финансировался NIH грантов EY025290, GM127652 и Университет Рочестер начального финансирования.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| HEPES | Fisher Scientific | AC327265000 | |
| NaCl | Fisher Scientific | AC446212500 | |
| Glycerol | Fisher Scientific | G33-500 | |
| Imidazole | Fisher Scientific | AC301870010 | |
| MgCl2 | Fisher Scientific | AC197530010 | |
| TCEP | Fisher Scientific | AA4058704 | |
| Aprotinin | Fisher Scientific | AAJ63039MA | |
| Leupeptin | Fisher Scientific | AAJ61188MB | |
| Pepstatin A | Fisher Scientific | AAJ20037MB | |
| Phenylmethylsulfonyl fluoride | Fisher Scientific | AC215740050 | |
| DDM sol-grade | Anatrace | D310S | |
| DDM anagrade | Anatrace | D310 | |
| Sf-900 II SFM | ThermoFisher | 10902179 | |
| FreeStyle medium | ThermoFisher | 12338018 | |
| NanoDrop spectrophotometer | ThermoFisher | ND-2000 | |
| High pressure homogenizer | Avestin | Emulsiflex-C5 | |
| HisTrap column | GE | 17-5248-01 | |
| Superdex-200 column | GE | 28990944 | |
| AKTA Pure | GE | 29018224 | |
| Ultra-15 centrifugal filter units | Millipore | UFC910024 | |
| Ultra-4 centrifugal filter units | Millipore | UFC810024 | |
| Ultra-0.5 centrifugal filter units | Millipore | UFC505024 | |
| Optima XE-90 Ultracentrifuge | Beckman Coulter | A94471 | |
| Mini-PROTEAN Tetra Cell | Bio-Rad | 1658004 | |
| Mini-PROTEAN precast gel | Bio-Rad | 4561084 | |
| T100 Thermal Cycler | Bio-Rad | 1861096 | |
| PolyJet transfection reagent | SignaGen | SL100688 | |
| pEG BacMam vector | Obtained from the Gouaux lab at Vollum Institute |
References
- Hartzell, H. C., Qu, Z., Yu, K., Xiao, Q., Chien, L. T. Molecular physiology of bestrophins: multifunctional membrane proteins linked to best disease and other retinopathies. Physiological Review. 88 (2), 639-672 (2008).
- Marmorstein, A. D., et al. Bestrophin, the product of the Best vitelliform macular dystrophy gene (VMD2), localizes to the basolateral plasma membrane of the retinal pigment epithelium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 97 (23), 12758-12763 (2000).
- Marquardt, A., et al. Mutations in a novel gene, VMD2, encoding a protein of unknown properties cause juvenile-onset vitelliform macular dystrophy (Best's disease). Human Molecular Genetics. 7 (9), 1517-1525 (1998).
- Petrukhin, K., et al. Identification of the gene responsible for Best macular dystrophy. Nature Genetics. 19 (3), 241-247 (1998).
- Li, Y., et al. Patient-specific mutations impair BESTROPHIN1's essential role in mediating Ca2+-dependent Cl- currents in human RPE. eLife. 6, (2017).
- Tsunenari, T., et al. Structure-function analysis of the bestrophin family of anion channels. Journal of Biological Chemistry. 278 (42), 41114-41125 (2003).
- Kane Dickson, V., Pedi, L., Long, S. B. Structure and insights into the function of a Ca(2+)-activated Cl(-) channel. Nature. 516 (7530), 213-218 (2014).
- Yang, T., et al. Structure and selectivity in bestrophin ion channels. Science. 346 (6207), 355-359 (2014).
- Johnson, A. A., et al. Bestrophin 1 and retinal disease. Progress in Retinal and Eye Research. , (2017).
- Allikmets, R., et al. Evaluation of the Best disease gene in patients with age-related macular degeneration and other maculopathies. Human Genetics. 104 (6), 449-453 (1999).
- Burgess, R., et al. Biallelic mutation of BEST1 causes a distinct retinopathy in humans. American Journal of Human Genetics. 82 (1), 19-31 (2008).
- Davidson, A. E., et al. Missense mutations in a retinal pigment epithelium protein, bestrophin-1, cause retinitis pigmentosa. American Journal of Human Genetics. 85 (5), 581-592 (2009).
- Kramer, F., et al. Mutations in the VMD2 gene are associated with juvenile-onset vitelliform macular dystrophy (Best disease) and adult vitelliform macular dystrophy but not age-related macular degeneration. European Journal of Human Genetics. 8 (4), 286-292 (2000).
- Yardley, J., et al. Mutations of VMD2 splicing regulators cause nanophthalmos and autosomal dominant vitreoretinochoroidopathy (ADVIRC). Investigative Ophthalmology & Visual Science. 45 (10), 3683-3689 (2004).
- Yang, T., Justus, S., Li, Y., Tsang, S. H. BEST1: the Best Target for Gene and Cell Therapies. Molecular Therapy. 23 (12), 1805-1809 (2015).
- Boyce, F. M., Bucher, N. L. Baculovirus-mediated gene transfer into mammalian cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 93 (6), 2348-2352 (1996).
- Kost, T. A., Condreay, J. P., Jarvis, D. L. Baculovirus as versatile vectors for protein expression in insect and mammalian cells. Nature Biotechnology. 23 (5), 567-575 (2005).
- Goehring, A., et al. Screening and large-scale expression of membrane proteins in mammalian cells for structural studies. Nature Protocols. 9 (11), 2574-2585 (2014).
- Yang, T., He, L. L., Chen, M., Fang, K., Colecraft, H. M. Bio-inspired voltage-dependent calcium channel blockers. Nature Communications. 4, 2540 (2013).
- Yang, T., Hendrickson, W. A., Colecraft, H. M. Preassociated apocalmodulin mediates Ca2+-dependent sensitization of activation and inactivation of TMEM16A/16B Ca2+-gated Cl- channels. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 111 (51), 18213-18218 (2014).
- Yang, T., Puckerin, A., Colecraft, H. M. Distinct RGK GTPases differentially use alpha1- and auxiliary beta-binding-dependent mechanisms to inhibit CaV1.2/CaV2.2 channels. Public Library of Science One. 7 (5), e37079 (2012).
- Yang, T., Suhail, Y., Dalton, S., Kernan, T. Genetically encoded molecules for inducibly inactivating CaV channels. Nature Chemical Biology. 3 (12), 795-804 (2007).
- Yang, T., Xu, X., Kernan, T., Wu, V. Rem, a member of the RGK GTPases, inhibits recombinant CaV1.2 channels using multiple mechanisms that require distinct conformations of the GTPase. Journal of Physiology. 588 (Pt 10), 1665-1681 (2010).
- Kawate, T., Gouaux, E. Fluorescence-detection size-exclusion chromatography for precrystallization screening of integral membrane proteins. Structure. 14 (4), 673-681 (2006).
- Schmidt, C., Urlaub, H. Combining cryo-electron microscopy (cryo-EM) and cross-linking mass spectrometry (CX-MS) for structural elucidation of large protein assemblies. Currents Opinions in Structural Biology. 46, 157-168 (2017).
- Sun, W., Zheng, W., Simeonov, A. Drug discovery and development for rare genetic disorders. American Journal of Medical Genetics Part A. 173 (9), 2307-2322 (2017).
