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생체 외에서 고독한 꿀벌의 양육: 애벌레 위험 요소를 평가 하기 위한 도구

Published: July 16, 2018 doi: 10.3791/57876

Summary

꽃 식물에 균 스프레이 고독한 꿀벌 꽃가루 부담 균 잔류물의 높은 농도에 노출 될 수 있습니다. 실험실 기반 실험 체 외에관련 된을 사용 하 여-reared 꿀벌 애벌레,이 연구 균 처리 꽃가루 호스트와 호스트 비 식물에서 파생 된 소모의 대화형 효과 조사.

Abstract

고독한 꿀벌 와일드 하 고 관리 되는 작물에 대 한 중요 일 분의 서비스를 제공 하는 있지만이 종 부유한 그룹 크게 간과 되어 농약 규제 연구. 살 균 제 잔류물에 노출의 모험 경우 스프레이 또는 호스트 식물 근처에, 꿀벌은 그들의 둥지를 구축 하는 꽃가루를 수집 하는 동안 특히 높을 것입니다. 꽃가루 식물 (oligolecty)의 선택 그룹에서 사용 하는 Osmia 의 종, 비 호스트 식물에서 꽃가루를 사용 하는 무 능력 살 균 제 관련 독성에 대 한 그들의 위험 요소를 높일 수 있습니다. 이 원고는 성공적으로 oligolectic 메이슨 꿀벌, 표준화 된 실험실 조건에서 세포 배양 배지 내에서 prepupal 단계를 달걀에서 Osmia ribifloris sensu lato 후면에 사용 되는 프로토콜을 설명 합니다. 생체 외에서-reared 꿀벌 이후 벌 체력에 살 균 제 노출 및 꽃가루 소스의 효과 조사 하기 위해 사용 됩니다. 2 × 2 완전히 넘어 계승 디자인에 따라 실험 prepupal 바이오 매스, 애벌레 발달 시간 및 survivorship 계량 애벌레 피트 니스에 살 균 제 노출 및 꽃가루 근원의 주요 및 대화형 효과 검사 합니다. 이 기술의 주요 장점은 생체 외에서사용 하 여-reared 꿀벌 자연 배경 가변성을 감소 시킨다 고 여러 실험적인 매개 변수의 동시 조작 있습니다. 설명된 프로토콜 가설 꿀벌 건강에 영향을 미치는 요인의 제품군과 관련 된 테스트에 대 한 다양 한 도구를 제공 합니다. 중요 한, 지속적인 성공을 충족 되어야 보존 노력에 대 한 꿀벌 감소를 촉진 하는 생리와 환경 요인의 복잡 한 상호 작용으로 이러한 통찰력 중요할 증명할 것 이다.

Introduction

곤충 가루1의 지배적인 그룹으로 서의 역할을 감안할 때, 꿀벌 인구에 있는 글로벌 손실 위협이 식량 안보 및 생태계 안정성2,3,,45,6 ,7. 모두와 야생 꿀벌 인구에 있는 감소 추세 있다 서식 지 파편, 신흥 기생충 및 병원 균, 유전적 다양성의 손실 및 침입 종3의 도입을 포함 한 여러 공유 위험 요인에 기인 ,4,7,8,9,10,,1112. 특히, 증가 (예를 들어, neonicotinoids), 농약의 사용은 꿀벌13,,1415간의 해로운 효과에 직접 연결 되었다. 여러 연구 neonicotinoids 사이의 ergosterol 생 합성 억제 (비) 살 균 제 성분 여러 벌 종16,,1718 에서 높은 사망으로 이어질 수 있습니다. , 19 , 20 , 21 , 22. 그럼에도 불구 하 고, 살 균 제, 긴 ' 비 안전 '으로 간주 많은 감시23없이 꽃에서 작물에 살포 될 계속. 채집 자 벌 려 정기적으로 살 균 제 잔류물24,,2526으로 오염 하는 꽃가루 중 문서화 되었습니다. 같은 살 균 제 ladenpollen의 소비 애벌레 꿀벌27,,2829,30및 성인 꿀벌16 중 하위 치명적인 효과의 제품군 중 높은 사망을 일으킬 수 있습니다. , 31 , 32 , 33 , 34. 최근 연구 제안 fungicides 꿀벌 꽃가루 부담 미생물35사이 중요 한 공생을 방해 함으로써 하이브 저장 꽃가루 내 미생물 커뮤니티를 변경 하 여 비 손실을 발생할 수 있습니다.

고독한 꿀벌은 여러 야생 및 농업 식물36,37,의 수 분에 대 한 중요 한38, 가루의이 다양 한 그룹 연구를 모니터링 하는 농약에 훨씬 덜 관심을 받고 있다. 성인 고독한 여성의 둥지 5-10 봉인된 브루 드 챔버, 각 임산부 수집 꽃가루와 꿀, 그리고 단일 계란39의 유한 질량 갖춰져 있습니다. 후에 부 화, 애벌레 할당 된 꽃가루 규정 그리고 적절 한 영양40,41관련된 꽃가루 부담 microbiota에 의존 합니다. 사회 생활의 혜택, 부족 하기 때문에 고독한 꿀벌 농약 노출42에 더 취약 있을 수 있습니다. 예를 들어, 다음 스프레이 사회 꿀벌에 적자 동안 보상 수도를 일부 노동자에 의해 확장 하 고 새로 가만히 신흥, 단일 성인 고독한 여자의 죽음 끝 모든 생식 활동43. 민감성에 이러한 차이 ecotoxicological 연구와 야생 꿀벌 모두에 대 한 적절 한 보호를 보장 하기 위해 다양 한 비 taxa를 통합할 필요가 강조 표시 합니다. 그러나, 연구의 한 줌, 외 균 노출의 효과에 대 한 조사는 주로에 초점을 맞춘 사회적 꿀벌18,23,32,44,45 ,,4647,,4849.

고독한 꿀벌 속 Osmia (그림 1)에 속하는 몇 가지 중요 한 과일 및 견과 작물39,50,,5153, 의 효율적인 가루로 사용 되었습니다. 53. 다른 관리 pollinator 그룹24,54,,5556,,5758성인 Osmia 꿀벌은 정기적으로 44-꽃 작물 살포 하는 균에 노출. 최근 스프레이 작물에 식량 약탈을 배워 성인 여성 수집 하 고 재고 나중 발전 애벌레에 대 한 유일한 다이어트를 형성 하는 균 라덴 꽃가루와 그들의 브루 드 실 수 있습니다. 오염된 꽃가루 규정 사용 후 살 균 제 잔류물42애벌레를 노출할 수 있습니다. 노출의 위험 몇 가지 밀접 하 게 관련된 호스트 식물59,,6061에 사료 oligolectic 종 가운데 더 높은 수 있습니다. 예를 들어 특정 megachilid 꿀벌 우선적으로 기생62를 줄이는 수단으로 고품질 국화과 꽃가루에 대 한 마 초 나타납니다. 그러나,는 균 중 oligolectic 고독한 꿀벌 애벌레 피트 니스 영향 정도 하지 되었습니다 실험적으로 측정할. 이 연구의 목표 주요 테스트 프로토콜을 개발 하는 것 이며 생체 외에서 의 피트 니스에 살 균 제 노출 및 꽃가루 소스의 대화형 효과 reared 고독한 꿀벌. 조사, O. ribifloris sensu lato (s.l.)의 계란 얻어질 수 있다 상업적으로 (자료 테이블). 이 인구는 네이티브 pollinator는 지역53,63,64 내 과즙이 풍부한 Mahonia aquifolium (오 레 곤 포도)에 대 한 그것의 강한 취향이로 그것의 중요성 때문에 이상적인 (그림 2).

Figure 1
그림 1입니다. 성인 Osmia ribifloris의 고해상도 사진. 사진 박사 짐 지팡이, 연구 곤충학자, 미국 농 무부-ARS 신용 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 2
그림 2입니다. 중첩 중첩 여성 전경.Osmia ribifloris (s.l.) 의 갈 대 Phragmite 챔버 파티션 및 갈 대에 대 한 터미널 플러그 masticated 잎에서 건설 한다. 사진 제공 씨 킴 볼 클락, NativeBees.com 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

이 연구의 첫 번째 목적은 애벌레 피트 니스 (개발 시간 및 prepupal 생물 측정)에 살 균 제 처리 꽃가루를 사용의 효과 평가 하는 것입니다. 일반적인 적용된 살 균 제 propiconazole에 노출은 여러 종 23,,2432,44,45, 전체 성인 꿀벌 중 사망률 증가에 연결 되었다 하는 동안 54,55,56,,5758,65,66,67, 애벌레 꿀벌에 미치는 영향 알려진. 이 연구의 두 번째 목적은 비 호스트 꽃가루 애벌레 체력에 소모의 효과 평가 하는 것입니다. 이전 연구 oligolectic 꿀벌의 애벌레 아닌 호스트 꽃가루68소비 하도록 개발 실패를 나타냅니다. 이러한 결과 변화 비 생리학69, 꽃가루 생화학70, 그리고 자연 꽃가루 규정71와 관련 된 유익한 미생물에 표시 될 수 있습니다. 이 연구의 세 번째 목적은 애벌레 체력에 균 치료와 식이 꽃가루의 대화형 효과 평가 하는 것입니다.

모성 신체 크기를 포함 하 여 수많은 생물 학적 특성, 속도, 프로비저닝 구하고 전략과 꽃가루 수량72,,7374,75 알려져 있습니다 고독한 꿀벌 중 애벌레 적합성에 영향을 미칠. 이러한 요소는 애벌레 건강을 평가할 때 방어할 수 있는 실험적인 디자인을 개발에 도전 포즈 갈 대 사이 뜻깊은 가변성을 발생할 수 있습니다. 또한, 애벌레의 개발 된 중첩 갈 대 내부에서 발생, 그 자손에 이러한 가변성의 효과 시각화 하기가 어렵습니다과 계량 없이 치명적이 지 않은 기법 (그림 3). 이 문제를 해결 하려면 모든 가설이이 연구에서 그들의 중첩 갈 대 외부 reared 애벌레를 사용 하 여 테스트 합니다. 실험 설계는 완전히 교차 2 × 2 계승 설정, 각 인자 2 수준; 구성 된 대표 요인 1: 살 균 제 노출 (살 균 제; 아니 살 균 제); 팩터 2: 꽃가루 소스 (호스트 꽃가루, 비-호스트 꽃가루). 꿀벌 계란에서 통제 된 실험실 조건에서 살 균 multiwell 세포 배양 배지 내에서 prepupal 단계를 발생 합니다. 각 잘는 개별적으로 각종 꽃가루 제공 및 단일 계란 표준화 된 양의 있습니다. 해칭, 후 유 충 우물 내에서 할당 된 꽃가루에 피드를 애벌레의 개발을 완료 고 pupation 시작. 과거의 연구 원인 불명된 사망은 야생49,76에서 발생 보다이 인공 양육 환경 내에서 발생 하는 꿀벌 가운데 낮은 나타났습니다. 생체 외에서의 사용-reared 꿀벌 필드 기반 연구를 통해 몇 가지 이점이 있다: 1) 그것은 자연적인 가변성 및 필드 기반 연구;와 일반적으로 관련 된 통제 요인의 혼동 영향을 최소화 2) 그것은 조작 각 factor(s)에 대 한 관심을 동시에 치료 그룹; 테스트의 여러 레벨을 허용 한다 3) 복제의 수를 미리 결정 된, 수 및 각 복제에 대 한 실험적인 요소를 개별적으로 조작할 수 있습니다. 4) 애벌레 응답 변수를 쉽게 시각화 하 고 방해 인접 한 애벌레; 없이 독립적으로 기록 된 수 있다 5) 프로토콜 여러 요인과 반응 변수 관련 된 더 복잡 한 실험 설계에 맞게 수정할 수 있습니다.

Figure 3
그림 3입니다. 자연 중첩 리드의 내용을 Osmia ribifloris (s.l.). (A) 개별 챔버, 꽃가루 규정 및 파티션, 및 (B)를 갓 보여주는 해 부 리드 수확 꽃가루 규정과 관련 된 계란 (검은 원 표시) 닫습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

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Protocol

1. 살 균 제 노출 실험을 위한 Propiconazole 솔루션 준비

  1. 실험의 하루 살 균 물에 상업적으로 구입한 propiconazole 14.3%의 적절 한 볼륨을 용 해 하 여 균 솔루션 x 0.1을 준비 합니다. 모든 치료에 대 한 유일한 갓된 균 솔루션 사용은 확인 합니다.
  2. 꿀벌 수집 꽃가루24 (0.361 PPM 또는 꽃가루의 활성 성분 g-1 의 µ g)에서 이전에 보고 된 propiconazole의 최대 농도를 꽃가루의 그램 당 균 솔루션 x 0.1의 23 µ L를 추가 합니다.

2. 계란과 호스트 Osmia 갈 대에서 꽃가루 규정을 수확

  1. 멸 균된 메스를 사용 하 여, 갓 갈 대 Osmia의 중첩, 개별 실 노출 리드의 길이 따라 두 부분으로 분할 연결 해 부.
    참고: 각 둥지는 8 ~ 14 챔버와 챔버 내에서 단일 계란 사이 포함할 수 있습니다.
  2. 이전에 게시 지침77에 따라 남성 계란을 포함 하는 실을 식별 하는 시각적으로 갈 대를 검사 합니다. 중첩 리드에서 관련된 달걀 함께 각 꽃가루 규정을 제거 하 고 깨끗 한 장소 소독된 구부러진된 바늘을 사용 하 여 보트 무게.
  3. 부드럽게 깨끗 한 벌금 페인트 브러시를 사용 하 여 제공에서 계란을 분리 하 고 꽃가루 조항의 신선한 무게 기록 표준 실험실 균형을 사용 하 여 계란. 남성 꽃가루 규정의 평균 중량을 계산 합니다.
  4. 초과 온도 탈수에 노출에서 계란에 손상의 기회를 줄이기 위해 최소 지연으로 다음 단계를 수행 합니다.

3. 준비 호스트 식물 꽃가루 규정

  1. 없는 기생충 현재78되도록 중첩 챔버에서 발굴 임산부 수집된 호스트-식물 꽃가루를 않았는지 살펴보십시오. 어떤 잠재적인 모성 편견을 줄이기 위해 멸 균 페 트리 접시에 단일 대량으로 꽃가루 규정을 결합 하 고 멸 균된 바늘을 사용 하 여 잘 혼합 합니다.
  2. 새로운 꽃가루 규정, 각 재구성의 무게는 자연스럽 게 할당 된 남성 규정의 평균 무게에 거의 같은 보장에 결합 된 질량을 분할 (의미 ± SE, 0.35 ± 0.01 g, N = 42).
    참고: 때문에 Osmia sp. 작은 꽃가루 규정 남성 자손, 여성77에 비해 남성 애벌레의 낮은 몸 무게에이 결과에 할당 합니다. 어떤에 게 섹스의 차이점에서 발생 하는 이러한 바이어스를 방지 하려면 실험에서 남성 계란만 사용 합니다.

4. 비 호스트 식물 꽃가루 제공 준비

  1. 표준 실험실 볼 밀을 사용 하 여 정밀한 분말에 상업적으로 구입한 꿀 꿀벌 수집 꽃가루 격파
  2. 임산부 수집 호스트 꽃가루 규정 (~ 20%)의 함량에 따라 달라 집니다, 꽃가루 가루 반죽 같은 일관성을 형성 하기 위하여 철저 하 게 소독 40% 설탕 솔루션79 및 혼합의 적절 한 볼륨을 사용 하 여 하이드 레이트.
  3. 개별 꽃가루 질량으로 분할 자연스럽 게 할당 된 남성 규정의 평균 무게와 같은 무게 약 각.
    참고: 규정 30 무작위로 선택 된 남성 챔버80에서 꽃가루 규정의 신선 하 고 건조 중량을 비교 하 여 사전에 표준화 될 수 있다 임산부 수집된 호스트 꽃가루 수 분 콘텐츠입니다. 건조 중량을 얻으려면, 꽃가루 규정 한 lyophilizer에서 동결 해야 (1.5 72 h에 대 한 펜 실바 니 아).

5. 준비 Multiwell 세포 배양 배지

  1. 압력가 주석 컵 (5 × 9 cm)와 살 균 48-잘 문화 판의 개별 웰 스 라인. 꽃가루 조항을 수용할 수 있도록 살 균 겸 부드럽게 캡슐의 위쪽 테두리 밖으로 감각을 사용 합니다.
  2. 호스트 또는 호스트 비 꽃가루의 단일 대량 치료 그룹에 따라 살 균 도구를 사용 하 여 주석 컵 안에 배치 합니다.
    참고: 교차 오염을 피하기 위해, 치료 및 제어 그룹에 대 한 별도 접시를 사용 합니다.

6. Fungicides를 추가

  1. 메 마른 나무 막대기를 사용 하 여 꽃가루 질량 내의 중앙 배치 우울증을 확인 합니다. 새로운 막대기를 사용 하 여 각 꽃가루 조항에 대 한.
  2. 우울증에 (치료)에 대 한 살 균 제 솔루션 또는 살 균 물 (컨트롤)에 대 한 적절 한 볼륨을 추가 합니다. 핀치는 살 균 제 사이의 표면 접촉을 최소화 하기 위해 살 균 집게를 사용 하 여 우울증의 열기 / 살 균 물과 계란.
  3. 실험적인 디자인의 계승 설정 그 일치 해야 도식 표현 (그림 4)에 묘사 된.

Figure 4
그림 4입니다. 실험적인 체제의 도식 대표. 실험을 완전히 넘어 2 × 2 계승 설정을 나타냅니다. 1 살 균 제 노출 나타냅니다 비율과 2 레벨의 구성: (i) 균 (N = 10), 그리고 (ii) 균 (N = 10). 2 꽃가루 소스 나타냅니다 비율과 2 레벨의 구성: (i) 호스트 꽃가루 (N = 8), 그리고 (ii) 비-호스트 꽃가루 (N = 8). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

7. 후방 고 애벌레 관찰

  1. 장소 깨끗 한 벌금 페인트 브러시를 사용 하 여 꽃가루 규정의 위쪽 표면에 임의로 선택 된 남성 계란. 일단 계란 모든 규정에 배치 되었습니다, 그리고 라벨 모서리에 테이프와 보호 셀 문화 접시의 뚜껑을 대체.
  2. 깨끗 한 쟁반에 잘 접시를 놓고 직접 빛과의 접촉을 방해 어두운 천으로 커버. 장소 6 잘 플레이트의 건조를 방지 하기 위해 트레이 내의 살 균 물 포함 30 mL. 실 온에서 부 화 쟁반 인큐베이터 안에 그대로 둡니다.
  3. 잘 접시의 뚜껑을 제거 하지 않고 해 현미경 매일 잘 접시를 관찰 합니다. 애벌레는 살아 움직임을 확인 하 여 확인 합니다. 아무 움직임을 감지할 경우 죽은 애벌레와 나머지 꽃가루 규정을 포함 하는 주석 컵 폐기. 모든 살아남은 애벌레 prepupal 단계를 도달할 때까지 그대로 잘 플레이트 내에서 개발 하는 것을 허용 한다.
  4. Prepupal 단계41에 도달 하면 주석 컵에서 유 충을 제거 합니다. 어떤 청소 브러쉬를 사용 하 여 실크 누에고치에서 똥. 신중 하 게 해 현미경을 사용 하 여 실크 누에고치를 극복 하 고 고무 집게와는 prepupa를 추출 합니다.
  5. Prepupa 도구 소프트 바디 피어스 하지 할 수 있도록 부드럽게 처리 합니다. Prepupa (prepupal 바이오 매스)의 prepupal 단계 (애벌레 발달 시간)에 계란에서 개발 시간 신선한 무게를 기록 합니다.
    참고: 모든 죽은 유 충 시신에 남은 꽃가루 조항 원치 않는 미생물 성장을 방지 하기 위해 즉시 삭제 됩니다 해야 합니다. 이 나머지 건강 한 애벌레를 감염의 위험을 줄여줍니다.

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Representative Results

애벌레 피트 니스 3 통계 (i) 애벌레 발달 시간, (ii) prepupal 바이오 매스, 그리고 (iii) %survivorship 사용 하 여 정량 했다. 양방향 ANOVA 균 노출을 사용 하 여 실시 되었다 (2 레벨: 아니 살 균 제, 살 균 제) 및 꽃가루 소스 (2 레벨: 호스트 꽃가루, 비-호스트 꽃가루) 독립 변수와 종속 변수 애벌레 발달 시간으로. 살 균 제 노출에 대 한 주요 효과 (F1,28 = 1.24, P = 0.28)는 살 균 처리 (평균 ± SE) 사이 중요 한 비 (28.14 ±1.98 d, N = 14), 및 치료 (25.39 ± 1.65 d, N = 18) 그룹. 그러나 꽃가루 소스에 대 한 주요 효과, 애벌레 호스트 꽃가루에 대 한 개발 시간 사이 상당한 차이가 표시 (20.00 ± 0.50 d, N = 16) 및 비-호스트 꽃가루 (33.19 ±0.81 d, N = 16) (F1,28 179.83, = P < 0.001). 수정된 포스트 hoc 비교 표시 애벌레 발달 시간 사이 크게 변화 하지 않았다 Bonferroni 균 취급 하 고 호스트에서 발생 하는 그룹 치료 (P = 0.57) 및 비-호스트 (P = 0.32) 꽃가루. 그러나, 애벌레 발달 시간은 크게 균 처리 둘 다를 위해 비 호스트 꽃가루에 비해 호스트 꽃가루에 애벌레에 대 한 짧은 (P < 0.001) 및 치료 (P 0.001 <) 꽃가루. 상호 작용 효과 (살 균 제 노출 × 꽃가루 소스)는 중요 한 (F1,28 0.09, P = 0.77 =). 분석은 종속 변수와 prepupal 바이오 매스를 사용 하 여 반복 했다. 살 균 제 노출에 대 한 주요 효과 상당한 차이 표시 (F1,28 = 4.66, P = 0.04) 균 치료 사이 (0.123 ± 0.01 g, N = 14), 및 치료 (0.149 ± 0.01 g, N = 18) 그룹. 꽃가루 소스에 대 한 주요 효과 (F1,28 56.30, P = 0.001 <) 호스트 꽃가루에 애벌레 상당한 차이 표시 (0.170 ± 0.01 g, N = 16) 및 비-호스트 꽃가루 (0.105 0.01 g, N = 16) . 수정된 포스트 hoc 비교 표시는 prepupal 바이오 매스 사이 크게 달라 지지 않았다 Bonferroni 균 취급 하 고 호스트에서 발생 하는 그룹 치료 (P = 0.22) 및 비-호스트 (P = 0.08) 꽃가루. 그러나, 애벌레 모두 균 치료 비 호스트 꽃가루에 비해 호스트 꽃가루에 제기 중 prepupal 바이오 매스 크게 높았다 (P < 0.001) 및 치료 (P 0.001 <) 꽃가루. 상호 작용 효과 (살 균 제 노출 × 꽃가루 소스)는 중요 한 (F1,28 0.132, P = = 0.72). 그림 5그림 6 은 상기 분석에서 얻은 결과의 그래픽 표현입니다. 독립 샘플 t-테스트 표시 애벌레 survivorship에 꽃가루 근원의 중요 한 효과 (N = 18, t9 =-2.45, P =0.04).

Figure 5
그림 5입니다. 애벌레 발달 시간과 prepupal 바이오 매스를 기반으로 애벌레 피트 니스에 대 한 통계를 보여주는 막대 그래프. 애벌레 피트 니스 통계 (A)(B) 꽃가루 소스;에 따라 클러스터 그리고 (C)(D) 살 균 제 노출. (평균 ± 1 SE). P < 0.001 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 6
그림 6입니다. 상호 작용 애벌레 피트 니스 통계에 대 한 줄거리입니다. (A) 애벌레 발달, 그리고 (B) prepupal 바이오 매스에 살 균 제 노출 및 꽃가루 소스의 대화형 효과. (평균 ± 1 SE). 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Pearsons 상관 관계 애벌레 발달 시간과 prepupal 바이오 매스 (그림 7) 사이의 관계를 탐구 하 사용 되었다. 중요 한 부정적인 상관 관계 모든 치료 그룹에 걸쳐 지적 했다 (r =-0.83, P < 0.001, N = 32), 그리고 균 치료에 걸쳐 (아무 균: r =-0.76, P < 0.001, N = 18; 살 균 제: r =-0.92, P < 0.001, N = 14). 동안 비 호스트 꽃가루에 애벌레에 대 한 중요 한 부정적인 상관 관계 (r =-0.64, P < 0.01, N = 16), 이러한 관계는 애벌레 호스트-꽃가루에 대 한 관찰 되었다 (r -0.01, P = = 0.98, N = 16).

Figure 7
그림 7입니다. 애벌레 발달 시간 및 prepupal 생물 사이의 관계. 피어슨 상관 관계 개발 시간 및 (A) 에 걸쳐 prepupal 생물 사이의 모든 치료 그룹 (P < 0.001) (B) 꽃가루 소스 (꽃가루를 호스트: P = 0.98, 비-호스트 꽃가루: P < 0.01); (C) 살 균 제 노출 (아무 균: P < 0.001, 살 균 제: P < 0.001). 패널 (B) (C), 추세선 그림 범례에 기호 색상 일치 됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Video 1
애니메이션 그림 1. 다섯 번째 무대 애벌레 탈피 O. ribifloris 의 단일 multiwell 격판덮개의 우물에서. 유 충은 pupation 준비에서 명주 고치 회전 시작 지적 했다. 이 비디오를 보려면 여기 클릭 하십시오 (다운로드 오른쪽 클릭.)

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Discussion

그들의 자연적인 중첩 갈 대, 실험실 조건 하에서 외부 꿀벌을 양육 애벌레 피트 니스에 관한 여러 가설의 테스트 수 있습니다. 수 정체 불명된 요인 계속 비 사망 원인, 위험 평가 연구 생체 외에서 사용 하 여 실험 수 잠재적인 위협을 식별 하 고 야생 가루 12의이 종 부유한 그룹에 대 한 관리 사례를 알려 ,38,49,76,,8182.

일반적으로 짧은 개발 시간 및 높은 prepupal 바이오 매스 높은 애벌레 피트 니스와 연결 됩니다. 모든 치료에서 애벌레의 개발의 기간 부정적인 prepupal 바이오 매스와 상관 했다. 그러나, 4 개의 그룹 애벌레의 개발 기간 및 prepupal 생물 사이 큰 차이가 있었다. 어떤 균에는 영향을 받지 않은 호스트 꽃가루를 소비 하는 것이 허용 되었다 애벌레 애벌레 발달 조업 단축, 그리고 가장 높은 prepupal 바이오 매스를 했다. 반면, 균 치료 비 호스트 꽃가루, 소비 그 애벌레 긴 했다 완전 한 애벌레의 개발, 그리고 낮은 prepupal 바이오 매스를 했다. 그러나, 애벌레 survivorship 동향 호스트 꽃가루에 발생 하는 균 치료 그룹에 대해서만 언급 되 고 사망률과 보다 적게 명확 했다. 밝혀 deconstructing 균 노출 및 꽃가루 소스의 메인 및 상호 작용 효과: (i) 살 균 처리 꽃가루를 사용의 주요 효과 prepupal 바이오 매스 뿐만 아니라 애벌레 발달 기간에 상당한 부정적인 영향을 미쳤다. 이전 연구는 성인 Osmia , 높은 농도에서 급성 경구 독성 설명 했다 하는 동안 이러한 결과 훨씬 낮은 농도에서 propiconazole에 경구 노출 영향을 미칠 수 피트 니스 prepupal 바이오 매스23 줄임으로써 제안 . (ii) 소모 비 호스트 꽃가루의 주요 효과 애벌레 체력에 불리 한 효과가 있다. 이러한 결과 꽃가루 품질 (즉, 독 소, 보호 화합물, 필수 영양소의 부족의 존재), 제안 이전에 게시 연구와 일치 하 고 꿀벌 생리학에 차이가 아닌 호스트 꽃가루68 활용에서 꿀벌을 제한할 수 있습니다. . 그것은 또한 일반적으로 호스트 화분 및 꿀벌 작물에서 얻은 유익한 microbiota의 부재가이 효과 악화 수 있습니다 가능성이입니다. (3) 살 균 제 노출 및 애벌레 체력에 꽃가루 소스 사이 아무 중요 한 상호 작용이 했다. 균 치료 및 치료 그룹, 비 호스트 꽃가루를 소모 하는 애벌레 상당히 낮은 prepupal 바이오 매스와 애벌레 호스트 꽃가루에 비해 더 이상 애벌레 발달 시간 했다. 꽃가루 소스에 살 균 제 처리 규정을 소모 하는 애벌레 애벌레 치료 꽃가루에 제기에 비해 상당히 낮은 prepupal 바이오 매스를 했다. 중요 한 주요 효과 이외에도 두 요인의 대화형 효과 왔고 가산적 모델 즉, 애벌레 피트 니스에 살 균 제 노출 및 꽃가루 종류의 부정적 시너지 하지. (자세한 여기에)로 꿀벌 건강의 다양 한 결정 요인의 상호 작용에서 발생 하는 불확실성 pollinator 관리 전략의 효과 제한 합니다. 여러 위험 요인의 대화형 효과 예측 함으로써, 비슷한 실험실 기반 실험 결과 비 절약 노력에이 오랜 과제를 회피 도울 수 있다.

실험의 결과 영향을 미칠 수 있습니다이 프로토콜 내에서 몇 가지 중요 한 단계가 있습니다. 가능 하다 면, 그것은 농약 잔류물의 무료 유기 꽃가루를 사용 하는 것이 좋습니다. 알 수 없는 소스에서 꽃가루를 사용 하 여 실험 결과 혼동 수 있습니다 다양 한 농약으로 오염 위험을 증가 합니다. 그것은 갓 연결된 Osmia 깐된 계란 또는 아주 젊은 애벌레는 연구에 사용 되는 갈 대를 중첩을 얻을 해야 합니다. 이렇게 하면 애벌레 의도 꽃가루 치료 종류에 거의 전적으로 올려진다. 중첩 리드 해야 수 해 부는 실패 하는 얕은 절 개를 사용 하 여 꽃가루 규정 하 고 계란 수확 하는 동안 손상 될 수 있습니다. 계란 제거 되었습니다 일단 그들은 손상을 방지 하기 위해 부드럽게 처리이 고 그들은 전송까지 멋진 어두운 위생 환경 (예를 들어, biosafety 내각)에서 무게 보트 유지 있습니다. 이 처리 시간 최소한 (< 30 분) 계란의 품질 손상 되지 보장 하기 위해 유지 되어야 한다. 모든 절차는 biosafety 깨끗 한 되도록 캐비닛에서 수행 되어야 합니다 작업 환경 및 오염의 가능성을 감소. 그들의 효 험, 갓 사용만을 치료에 대 한 살 균 제 솔루션을 준비. 꽃가루는 소수 성, 살 균 제 솔루션 / 살 균 물 꽃가루 규정 내에서 우울증으로 소개 한다. 이 제공을 통해 침투 하는 액체의 볼륨을 극대화 합니다. 그러나, 그것은 중요 하다 우울증 조항의 전체 깊이 관통 하지 않습니다 그것 캡슐 바닥에 준수 하는 솔루션에서 볼륨의 손실 귀 착될 것입니다. 개별 치료 및 컨트롤 휘발성 화합물 또는 꽃가루 부담 microbiota 교차 오염의 가능성을 줄이기 위해 별도 잘 접시에 실시 한다. 접힌된 테이프의 조각 일단 뚜껑 장소에 충분 한 공기 갭 수 있도록 접시의 가장자리에 첨부 되어야 한다. 매일 관찰 하는 동안 판 애벌레에 방해를 최소화 하기 위해 부드럽게 처리 되어야 합니다. 관찰 하 여야 한다 현미경 최소 빛 강도 및 뚜껑 분리 해서는 안 하지 않으면 죽은 애벌레를 삭제할. 예기치 않은 광범위 한 사망률의 경우 애벌레와 그들의 꽃가루 규정 해야 합니다 시각적으로 검열 되어야 감염 및 감염의 흔적을 확인 하. 손상 된 복제를 포함 하는 잘 플레이트 즉시 작업 공간 소독, 폐기, 및 감염의 확산을 방지 하기 위해 도구 소독 해야 합니다.

그것의 광범위 한 배열 응용 프로그램에도 불구 하 고이 방법에 특정 제한 사항이 있습니다. 예를 들어, 그것은 유기 꽃가루 때마다 사용할 수를 사용 하 여 좋습니다, 물류 금지은 충분 한 양의 순수한 uncontaminated 꽃가루를 온실 설정 내에서 식물을 제기. 이러한 경우, 야생 수집 꽃가루 사용할 수 있습니다, 농약 잔류물의 존재에 대 한 검사는 하. 야생 수집 꽃가루를 사용 하 여 오염의 위험을 줄이기 위해 또 다른 전략 스프레이 (예를 들어, 원시 그대로 지역 농업 농장에서 멀리 위치한) 되었을 가능성이 소스에서 꽃가루를 얻을 것입니다. 이 연구에 사용 된 호스트 꽃가루는 자연 숲과 초원 Wasatch 범위 Kaysville, 유타 근처의 산기슭 주변에 배치 했다 중첩 갈 대에서 얻은 했다. 이 지역의 모든 상업 농업 지역, 멀리 야생, 관리 되지 않는 자연 숲에 의해 지배 되 고 이러한 꿀벌 비행 하지까지 꿀벌83,,8485를 구하고 하는 때, 그것은 매우 가능성이 주어진 그들은 수집 꽃가루 살포 된 것 이다 그. 따라서, 여기에 수집 된 꽃가루 내에서 살충제 잔류물 사소한 될 가능성이 있습니다. 이러한 야생 풍경에서 구하고, 성인 여성 덜 것입니다 오염된 꽃가루 발생 애벌레 중 노출의 위험을 감소. 이 연구에 사용 된 상업적으로 구입한 꿀벌 꽃가루 자연 숲된 지역 북부 위스콘신 및 미시간에서에서 수집 됩니다. 인간의 소비에 대 한 판매, 공개 정보 및 공급 업체와 개인 통신 나타냅니다 두 드러 기는 화학적으로 처리 되지 않습니다, 꽃가루86어떤 수정 없이 자연, 원시 형태로 판매 된다. 따라서, 그것은 상업적으로 구입한 꿀벌 꽃가루에서 오염 부하 최소화 될 것 이라고 가정 하는 합리적입니다. 야생 자연 식물 관리 되지 않는 분야에서 꽃가루를 얻을 하지 않는 연구, 그것은 꽃가루 꽃가루 위험 분석에 사용 된 무료 오염 물질을 화학 분석에서 직접 경험적 증거를가지고 하는 것이 좋습니다. 또 다른 한계 인공 양육 환경에 의해 소개 하는 계략을 포함 한다. 최선의 노력에도 불구 하 고 그것은 물류 자연 중첩 리드 내 정확한 microenvironment 복제 가능 (., 수 분, 산소 농도, 개별 챔버의 3 차원 구조)는 애벌레 영향을 줄 수 알 수 없는도 휘트니스입니다. Defensibly는 자연적인 규정식의 특성 시뮬레이션, 예비 데이터를 중첩 하는 갈 대에서 다이어트 조작 연구 생체 외에서 이전 가져와야 합니다. 이 연구에 사용 된 비 호스트 꽃가루 오 레 곤 포도 결 석 또는 드문87지역에서 얻은 것입니다, 비록 상업적으로 구입한 화분, 잠재적으로 결과 영향을 미치는 내 혼합 호스트 꽃가루의 흔적이 있을 수 있습니다. 이 기술의 또 다른 단점은 실험 기간 동안 스트레스를 처리 꿀벌에 부작용을 일으킬 수 있습니다. 마지막으로, 그것은 일반적인 자연63에 깐된 계란을 발생, 실험실 조건 하에서 어렵다 해치 실패 때문에 스트레스, 실험적인 치료, 또는 자연적인 원인의 결과 처리 했는지 확인. 이후 이러한 요인 연구에 바이어스의 알 수 없는 발생할 수 있습니다, 하나는 얻은 결과 해석 하는 동안 주의 사용 해야 합니다.

실험 결과 (예: 모성 채집 효율75, 섹스 관련 유사77, 그리고 식이 꽃가루68,72), 바이어스 잊 혀 수 있습니다 요소에 대 한 설명된 프로토콜을 제어 하 여 제공 상당한 개선 이상 이전 출판 기술76, 그리고 가설 테스트에 대 한 더 엄격한 프레임 워크를 제공 합니다. 예를 들어, 사용 하 여 생체 외에서-reared 꿀벌 수 구멍 중첩 꿀벌49,88의 야생 인구 가운데 공부 하 그렇지 않으면 어려울 것 xenobiotic 치료 섹스 특정 응답에 대 한 조사. 조작 하 고 테스트 (예:다이어트 품질 및 수량, 다이어트 관련 microbiota, 시너지 농약에 노출), 여러 개의 상호 작용 요인에 대 한 잠재적인 비 적합성의 주요 결정 요인에 대 한 귀중 한 통찰력을 제공할 수 있습니다. 프로토콜의 유연성은 쉽게 수정 허용 (예: 사용 하 여 다른 크기의 다양 한 크기, 종류와 다이어트의 금액 변경의 애벌레에 맞게 잘 접시), 고독한 꿀벌과 말 벌의 다른 여러 종으로 사용 하기 위해 의무가 만들기 76.이 연구 평가 피트 니스 수 유 단계에서 개발 및 survivorship을 기반, 동안 곤충 출현 속도, 음식-바디 변환 및 포스트 출현 장 수 에 추가 데이터를 얻기 위해 출현까지 incubated 수 49.이 정보는 사용자에 게 도움이 될 하위 치명적인 독성 분석 실험에서 치료 효과 평가할 수 있습니다. 꽃가루-미생물의 기능에 대 한 관심 증가, 실험실 기반 연구 그들의 꽃가루 microbiota71에 따라 저항 비 종 대 민감한 확인할 수 있습니다. 벌 그룹 간에 균 민감도에 차이가 꽃가루 하이브 저장 내 microbiota 시퀀싱 탐험 수 있습니다. 이 부여 xenobiotic 스트레스에 저항의 다양 한 각도에서 꽃가루 미생물의 역할을 확인할 수 있습니다. 미래 연구 또한 기본 요소 선택 비 종 내 oligolectic 행동을 운전 될 수 있습니다 호스트 및 비 호스트 꽃가루의 자연 microbiota 사이의 차이점을 식별 도움이 됩니다.

생체 외에서 양육 애벌레 고독한 꿀벌의 자연 변화에 비 적합성에 영향을 미치는 개인 및 상호 작용 요인의 역할을 묘사 함으로써 야생에서 경험에 대 한 제어를 도울 수 있다. 이 접근 가능 하 고 저렴 한 기술 주소 특정 연구 목표를 쉽게 수정할 수 있는 여러 매개 변수를 조작 함으로써 entomologists' 도구 키트를 확장 합니다. 생체 외에서 실험에서 증거 위험 인구를 식별할 수 있습니다, 비 보존 전략에 미치는 영향 상당한 있을 것입니다.

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Disclosures

저자는 공개 없다.

Acknowledgments

저자 감사 실험실 박사 카 메 론 커리, 크리스텔 Guédot, 테리 Griswold, 마이클 Branstetter,에 대 한 3 명의 익명 검토자에 몰리 Bidwell, 디스 네 스 빗 및 Osmia 중첩 갈 대를 제공 하기 위한 팀 Krogh, Kimball 클락 원고를 개선 하는 그들의 유용한 의견. 이 작품은 미국 농 무부 농업 연구 서비스 충당 자금 (현재 연구 정보 시스템 #3655-21220-001), 위스콘신 농업의, 무역 및 소비자 보호 (#197199), 국립 과학 재단 (에 의해 지원 되었다 부여 번호 DEB-1442148), 미상 그레이트 호수 Bioenergy 연구 센터 (과학 BER 드-FC02-07ER64494의 암컷 사무실).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
eggs of O. ribifloris sensu lato (s.l.) Kaysville, Davis County, Utah, USA
Osmia reeds Nativebees.com NA Freshly plugged reeds
Dissection set VWR 89259-964 Sterilize before use
Long Nose Pliers Husky 1006
6 well culture plates VWR 10062-892 Sterile sealed
48 well culture plates VWR 10062-898 Sterile sealed
Petri dishes VWR 25373100 Sterile sealed
Square Weighing Boats VWR 10770-448
Camel Hair Brush Bioquip 1153A
Tin capsules EA Consumables D1021 Sterilize before use
Sucrose VWR 470302-808
Propiconazole 14.3 Quali-Ppro 60207-90-1 Propiconazole 14.3%
Honey bee pollen Bee energised 897098001244 Untreated, natural, raw pollen
Microbalance VWR 10204-990
Pulverisette LAB SYNERGY INC. 30334913
Wooden sticks VWR 470146908 Sterilize before use
Sealing tape VWR 89097-912
Microscope VWR 89403-384
Planting tray VWR 470150-632
Ethanol VWR BDH1158-4LP
Centrifuge tube VWR 21008936
Microsyringe Cole-Palmer UX-07940-07
Rubber tweezer Amazon B0135HWPN4
Syringe needles VWR 89219-334
Freeze drier Labcono LFZ-1L
Statistical software SPSS Version 21.0

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References

  1. Klein, A. -M., et al. Importance of pollinators in changing landscapes for world crops. P Roy Soc Lond B Bio. 274 (1608), 303-313 (2007).
  2. Biesmeijer, J. C. J., et al. Parallel declines in pollinators and insect-pollinated plants in Britain and the Netherlands. Science. 313 (5785), 351-354 (2006).
  3. Potts, S. G., Biesmeijer, J. C., Kremen, C., Neumann, P., Schweiger, O., Kunin, W. E. Global pollinator declines: Trends, impacts and drivers. Trends Ecol Evol. 25 (6), 345-353 (2010).
  4. Cameron, S. A., et al. Patterns of widespread decline in North American bumble bees. P Natl Acad Sci USA. 108 (2), 662-667 (2011).
  5. Gallai, N., Salles, J. M., Settele, J., Vaissière, B. E. Economic valuation of the vunerability of world agriculture confronted with pollinator decline. Ecol Econ. 68 (3), 810-821 (2009).
  6. Fontaine, C., Dajoz, I., Meriguet, J., Loreau, M. Functional diversity of plant-pollinator interaction webs enhances the persistence of plant communities. Plos Biol. 4 (1), 0129-0135 (2006).
  7. Kluser, S., Peduzzi, P. Global pollinator decline: a literature review. , UNEP/GRID Europe. (2007).
  8. Brown, M. J. F., Paxton, R. J. The conservation of bees: a global perspective. Apidologie. 40 (3), (2009).
  9. Lebuhn, G., et al. Detecting insect pollinator declines on regional and global scales. Conserv Biol. 27 (1), (2013).
  10. Vanengelsdorp, D., Meixner, M. D. A historical review of managed honey bee populations in Europe and the United States and the factors that may affect them. J Invertebr Pathol. , Suppl 103. S80-S95 (2010).
  11. Pettis, J. S., Delaplane, K. S. Coordinated responses to honey bee decline in the USA. Apidologie. 41 (3), 256-263 (2010).
  12. Sandrock, C., Tanadini, L. G., Pettis, J. S., Biesmeijer, J. C., Potts, S. G., Neumann, P. Sublethal neonicotinoid insecticide exposure reduces solitary bee reproductive success. Agr Forest Entomol. 16 (2), (2014).
  13. Van der Sluijs, J. P., Simon-Delso, N., Goulson, D., Maxim, L., Bonmatin, J. M., Belzunces, L. P. Neonicotinoids, bee disorders and the sustainability of pollinator services. Curr Opin Env Sust. 5 (3), (2013).
  14. Goulson, D., Nicholls, E., Botías, C., Rotheray, E. L. Bee declines driven by combined stress from parasites, pesticides, and lack of flowers. Science. 347 (6229), (2015).
  15. Johnson, R. M., Ellis, M. D., Mullin, C. A., Frazier, M. Pesticides and honey bee toxicity - USA. Apidologie. 41 (3), (2010).
  16. Iwasa, T., Motoyama, N., Ambrose, J. T., Roe, R. M. Mechanism for the differential toxicity of neonicotinoid insecticides in the honey bee, Apis mellifera. Crop Protection. 23 (5), 371-378 (2004).
  17. Glavan, G., Bozic, J. The synergy of xenobiotics in honey bee Apis mellifera: mechanisms and effects. Acta Biol. Slov. 56, 11-27 (2013).
  18. Biddinger, D. J., et al. Comparative toxicities and synergism of apple orchard pesticides to Apis mellifera (L.) and Osmia cornifrons (Radoszkowski). PLoS ONE. 8 (9), e72587 (2013).
  19. Thompson, H. M., Fryday, S. L., Harkin, S., Milner, S. Potential impacts of synergism in honeybees (Apis mellifera) of exposure to neonicotinoids and sprayed fungicides in crops. Apidologie. 45 (5), 545-553 (2014).
  20. Jansen, J. -P., Lauvaux, S., Gruntowy, J., Denayer, J. Possible synergistic effects of fungicide-insecticide mixtures on beneficial arthropods. IOBC-WPRS Bulletin. 125, 28-35 (2017).
  21. Robinson, A., Hesketh, H., et al. Comparing bee species responses to chemical mixtures: Common response patterns? PLoS ONE. 12 (6), (2017).
  22. Sgolastra, F., Medrzycki, P., et al. Synergistic mortality between a neonicotinoid insecticide and an ergosterol-biosynthesis-inhibiting fungicide in three bee species. Pest Management Science. 73 (6), 1236-1243 (2017).
  23. Ladurner, E., Bosch, J., Kemp, W. P., Maini, S. Assessing delayed and acute toxicity of five formulated fungicides to Osmia lignaria and Apis mellifera. Apidologie. 36 (3), 449-460 (2005).
  24. Mullin, C. A., et al. High levels of miticides and agrochemicals in North American apiaries: implications for honey bee health. PloS one. 5 (3), e9754 (2010).
  25. Pettis, J. S., Lichtenberg, E. M., Andree, M., Stitzinger, J., Rose, R., Vanengelsdorp, D. Crop pollination exposes honey bees to pesticides which alters their susceptibility to the gut pathogen Nosema ceranae. PloS one. 8 (7), e70182 (2013).
  26. David, A., et al. Widespread contamination of wildflower and bee-collected pollen with complex mixtures of neonicotinoids and fungicides commonly applied to crops. Environ Int. 88, 169-178 (2016).
  27. Zhu, W., Schmehl, D. R., Mullin, C. A., Frazier, J. L. Four common pesticides, their mixtures and a formulation solvent in the hive environment have high oral toxicity to honey bee larvae. PloS one. 9 (1), e77547 (2014).
  28. Simon-Delso, N., Martin, G. S., Bruneau, E., Minsart, L. A., Mouret, C., Hautier, L. Honeybee colony disorder in crop areas: The role of pesticides and viruses. PLoS ONE. 9 (7), (2014).
  29. Park, M. G., Blitzer, E. J., Gibbs, J., Losey, J. E., Danforth, B. N. Negative effects of pesticides on wild bee communities can be buffered by landscape context. P Roy Soc B-Biol Sci. 282 (1809), 20150299-20150299 (2015).
  30. Bernauer, O. M., Gaines-Day, H. R., Steffan, S. A. Colonies of bumble bees (Bombus impatiens) produce fewer workers, less bee biomass, and have smaller mother queens following fungicide exposure. Insects. 6 (2), 478-488 (2015).
  31. Williamson, S. M., Wright, G. A. Exposure to multiple cholinergic pesticides impairs olfactory learning and memory in honeybees. J Exp Biol. 216 (10), 1799-1807 (2013).
  32. Artz, D. R., Pitts-Singer, T. L. Effects of fungicide and adjuvant sprays on nesting behavior in two managed solitary bees, Osmia lignaria and Megachile rotundata. PLoS ONE. 10 (8), e0135688 (2015).
  33. Pilling, E. D., Bromleychallenor, K. A. C., Walker, C. H., Jepson, P. C. Mechanism of synergism between the pyrethroid insecticide lambda-cyhalothrin and the imidazole fungicide prochloraz, in the honeybee (Apis mellifera L). Pestic Biochem Phys. 51 (1), 1-11 (1995).
  34. Johnson, R. M., Wen, Z., Schuler, M. A., Berenbaum, M. R. Mediation of pyrethroid insecticide toxicity to honey bees (Hymenoptera: Apidae) by cytochrome P450 monooxygenases. J. Econ. Entomol. 99 (4), 1046-1050 (2006).
  35. Steffan, S. A., Dharampal, P. S., Diaz-Garcia, L. A., Currie, C. R., Zalapa, J. E., Hittinger, C. T. Empirical, metagenomic, and computational techniques illuminate the mechanisms by which fungicides compromise bee health. JoVE. (128), e54631 (2017).
  36. Batra, S. W. T. Solitary bees. Sci Am. 250 (2), 120-127 (1984).
  37. Linsley, E. G. The ecology of solitary bees. Hilgardia. 27 (19), 543-599 (1958).
  38. Garibaldi, L. A., et al. Wild Pollinators Enhance Fruit Set of Crops Regardless of Honey Bee Abundance. Science. 339 (6127), 1608-1611 (2013).
  39. Bosch, J., Kemp, W. P. How to manage the blue orchard bee. , Sustainable Agriculture Network. Washington, DC. (2001).
  40. Keller, A., Grimmer, G., Steffan-Dewenter, I. Diverse microbiota identified in whole intact nest chambers of the red mason bee Osmia bicornis (Linnaeus 1758). PLoS ONE. 8 (10), e78296 (2013).
  41. Bosch, J., Kemp, W. P. Development and Emergence of the Orchard Pollinator Osmia lignaria (Hymenoptera: Megachilidae). Environmental Entomology. 29 (1), 8-13 (2000).
  42. Brittain, C., Potts, S. G. The potential impacts of insecticides on the life-history traits of bees and the consequences for pollination. Basic and Applied Ecology. 12 (4), 321-331 (2011).
  43. Arena, M., Sgolastra, F. A meta-analysis comparing the sensitivity of bees to pesticides. Ecotoxicology. 23 (3), 324-334 (2014).
  44. Ladurner, E., Bosch, J., Kemp, W. P., Maini, S. Foraging and nesting behavior of Osmia lignaria (Hymenoptera: Megachilidae) in the presence of fungicides: cage studies. J Econ Entomol. 101 (3), 647-653 (2008).
  45. Huntzinger, A. C. I., James, R. R., Bosch, J., Kemp, W. P. Fungicide tests on adult alfalfa leafcutting bees (Hymenoptera: Megachilidae). J Econ Entomol. 101 (4), 1088-1094 (2008).
  46. Tsvetkov, N., et al. Chronic exposure to neonicotinoids reduces honey bee health near corn crops. Science. 356 (6345), 1395-1397 (2017).
  47. Mao, W., Schuler, M. A., Berenbaum, M. R. Disruption of quercetin metabolism by fungicide affects energy production in honey bees (Apis mellifera). P Natl Acad Sci. 114 (10), 2538-2543 (2017).
  48. Blacquière, T., Smagghe, G., Van Gestel, C. A. M., Mommaerts, V. Neonicotinoids in bees: A review on concentrations, side-effects and risk assessment. Ecotoxicology. 21 (4), 973-992 (2012).
  49. Sgolastra, F., Tosi, S., Medrzycki, P., Porrini, C., Burgio, G. Toxicity of spirotetramat on solitary bee larvae, Osmia cornuta (Hymenoptera: Megachilidae), in laboratory conditions. Journal of Apicultural Science. 59 (2), 73-83 (2015).
  50. Mader, E., Spivak, M., Evans, E. Managing Alternative Pollinators. , Sustainable Agriculture Research and Education (SARE), US Dept. of Agriculture. (2010).
  51. Bosch, J., Kemp, W. P. Developing and establishing bee species as crop pollinators: the example of Osmia spp.(Hymenoptera: Megachilidae) and fruit trees. B Entomol Res. 92 (1), 3-16 (2002).
  52. Sampson, B. J., Rinehart, T. A., Kirker, G. T., Stringer, S. J., Werle, C. T. Phenotypic variation in fitness traits of a managed solitary bee, Osmia ribifloris (Hymenoptera: Megachilidae). J Econ Entomol. 108 (6), 2589-2598 (2015).
  53. Sampson, B. J., Cane, J. H., Kirker, G. T., Stringer, S. J., Spiers, J. M. Biology and management potential for three orchard bee species (Hymenoptera: Megachilidae): Osmia ribifloris Cockerell, O. lignaria (Say) and O.chalybea Smith with emphasis on the former. Acta Hort. 810, 549-555 (2009).
  54. Hladik, M. L., Vandever, M., Smalling, K. L. Exposure of native bees foraging in an agricultural landscape to current-use pesticides. Sci Total Environ. 542, 469-477 (2016).
  55. Long, E. Y., Krupke, C. H. Non-cultivated plants present a season-long route of pesticide exposure for honey bees. Nat Commun. 7, (2016).
  56. Krupke, C. H., Hunt, G. J., Eitzer, B. D., Andino, G., Given, K. Multiple routes of pesticide exposure for honey bees living near agricultural fields. PLoS ONE. 7 (1), e29268 (2012).
  57. Stoner, K. A., Eitzer, B. D. Using a hazard quotient to evaluate pesticide residues detected in pollen trapped from honey bees (Apis mellifera) in Connecticut. PLoS ONE. 8 (10), e77550 (2013).
  58. Sánchez-Bayo, F., Goulson, D., Pennacchio, F., Nazzi, F., Goka, K., Desneux, N. Are bee diseases linked to pesticides? - A brief review. Environ Int. 89, 7-11 (2016).
  59. Steffan-Dewenter, I., Klein, A. -M., Gaebele, V., Alfert, T., Tscharntke, T. Bee diversity and plant-pollinator interactions in fragmented landscapes. Specialization and generalization in plant-pollinator interactions. , 387-410 (2006).
  60. Kremen, C., Ricketts, T. Global perspectives on pollination disruptions. Conserv Biol. 14 (5), 1226-1228 (2000).
  61. Memmott, J., Waser, N. M., Price, M. V. Tolerance of pollination networks to species extinctions. P Roy Soc B-Biol Sci. 271 (1557), 2605-2611 (2004).
  62. Spear, D. M., Silverman, S., Forrest, J. R. K. Asteraceae pollen provisions protect Osmia mason bees (Hymenoptera: Megachilidae) from brood parasitism. The American Naturalist. 187 (6), 797-803 (2016).
  63. Rust, R. W. Biology of Osmia (Osmia) ribifloris Cockerell (Hymenoptera: Megachilidae). J Kansas Entomol Soc. 59, 89-94 (1986).
  64. Torchio, P. F. Osmia ribifloris, a native bee species developed as a commercially managed pollinator of highbush blueberry (Hymenoptera: Megachilidae). J Kansas Entomol Soc. 63 (633), 427-436 (1990).
  65. Sanchez-Bayo, F., Goka, K. Pesticide residues and bees - A risk assessment. PLoS ONE. 9 (4), e94482 (2014).
  66. Kasiotis, K. M., Anagnostopoulos, C., Anastasiadou, P., Machera, K. Pesticide residues in honeybees, honey and bee pollen by LC-MS/MS screening: Reported death incidents in honeybees. Sci Total Environ. 485 (1), 633-642 (2014).
  67. Stanley, J., Sah, K., Jain, S. K., Bhatt, J. C., Sushil, S. N. Evaluation of pesticide toxicity at their field recommended doses to honeybees, Apis cerana and A. mellifera through laboratory, semi-field and field studies. Chemosphere. 119, 668-674 (2015).
  68. Praz, C. J., Müller, A., Dorn, S. Specialized bees fail to develop on non-host pollen: Do plants chemically protect their pollen? Ecology. 89 (3), 795-804 (2008).
  69. Sedivy, C., Müller, A., Dorn, S. Closely related pollen generalist bees differ in their ability to develop on the same pollen diet: Evidence for physiological adaptations to digest pollen. Funct Ecol. 25 (3), 718-725 (2011).
  70. Williams, N. M. Use of novel pollen species by specialist and generalist solitary bees (Hymenoptera: Megachilidae). Oecologia. 134, (2003).
  71. Graystock, P., Rehan, S. M., McFrederick, Q. S. Hunting for healthy microbiomes: determining the core microbiomes of Ceratina, Megalopta, and Apis bees and how they associate with microbes in bee collected pollen. Conserv Genet. 18 (3), 1-11 (2017).
  72. Bosch, J., Vicens, N. Relationship between body size, provisioning rate, longevity and reproductive success in females of the solitary bee Osmia cornuta. Behav Ecol Sociobiol. 60 (1), 26-33 (2006).
  73. Bosch, J., Vicens, N. Body size as an estimator of production costs in a solitary bee. Ecol Entomol. 27 (2), 129-137 (2002).
  74. Radmacher, S., Strohm, E. Factors affecting offspring body size in the solitary bee Osmia bicornis (Hymenoptera, Megachilidae). Apidologie. 41 (2), 169-177 (2010).
  75. Seidelmann, K. Open-cell parasitism shapes maternal investment patterns in the Red Mason bee Osmia rufa. Behav Ecol. 17 (5), (2006).
  76. Becker, M. C., Keller, A. Laboratory rearing of solitary bees and wasps. Insect Science. 23 (6), 918-923 (2016).
  77. Bosch, J. The nesting behaviour of the mason bee Osmia cornuta (Latr) with special reference to its pollinating potential (Hymenoptera, Megachilidae). Apidologie. 25, 84-93 (1994).
  78. Krunić, M., Stanisavljević, L., Pinzauti, M., Felicioli, A. The accompanying fauna of Osmia cornuta and Osmia rufa and effective measures of protection. B Insectol. 58 (2), 141-152 (2005).
  79. Elliott, S. E., Irwin, R. E., Adler, L. S., Williams, N. M. The nectar alkaloid, gelsemine, does not affect offspring performance of a native solitary bee, Osmia lignaria (Megachilidae). Ecol Entomol. 33 (2), 298-304 (2008).
  80. Toby Mordkoff, J. The Assumption(s) of Normality. , Available from: http://www2.psychology.uiowa.edu/faculty/mordkoff/GradStats/part 1/I.07 normal.pdf (2016).
  81. Hendriksma, H. P., Härtel, S., Steffan-Dewenter, I. Honey bee risk assessment: New approaches for in vitro larvae rearing and data analyses. Methods Ecol and Evol. 2 (5), 509-517 (2011).
  82. Aupinel, P., et al. Improvement of artificial feeding in a standard in vitro method for rearing Apis mellifera larvae. B Insectol. 58 (2), 107-111 (2005).
  83. Beekman, M., Ratnieks, F. L. W. Long-range foraging by the honey-bee, Apis mellifera L. Funct Ecol. 14 (4), 490-496 (2000).
  84. Gathmann, A., Tscharntke, T. Foraging ranges of solitary bees. J Anim Ecol. 71 (5), 757-764 (2002).
  85. Greenleaf, S. S., Williams, N. M., Winfree, R., Kremen, C. Bee foraging ranges and their relationship to body size. Oecologia. 153 (3), 589-596 (2007).
  86. Bee Pollen Supplement - Bee Rescued. , Available from: https://beerescued.com/product/bee-rescued-bee-pollen-supplement/ (2018).
  87. Holly-Leaf Oregon-Grape (Mahonia aquifolium) Species Details and Allergy Info, Teton county, Wyoming. , Available from: http://www.pollenlibrary.com/Local/Specie/Mahonia+aquifolium/in/Teton County/WY/ (2018).
  88. Cane, J. H., Griswold, T., Parker, F. D. Substrates and Materials Used for Nesting by North American Osmia Bees (Hymenoptera: Apiformes: Megachilidae). Annals of the Entomological Society of America. 100 (3), 350-358 (2007).

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Dharampal, P. S., Carlson, C. M.,More

Dharampal, P. S., Carlson, C. M., Diaz-Garcia, L., Steffan, S. A. In Vitro Rearing of Solitary Bees: A Tool for Assessing Larval Risk Factors. J. Vis. Exp. (137), e57876, doi:10.3791/57876 (2018).

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