Summary
يصف لنا طرق وضع العلامات الفلورية عرضية ترحيل الخلايا انهانسر، ولتصوير الوقت الفاصل بين حركة خلية مسماة في ثقافة مسطحة-جبل من أجل تصور ترحيل الخلية السلوك في تيكتوم الألياف الضوئية النامية في الفرخ .
Abstract
الوقت الفاصل بين التصوير وسيلة قوية لتحليل سلوك الخلية ترحيل. بعد خلية الفلورسنت وسم، يمكن أن تسجل حركة الخلايا المسماة في الثقافة تحت المجهر الفيديو. لتحليل الهجرة الخلية في الدماغ، ثقافة شريحة يستخدم عادة لمراقبة الهجرة الخلية موازية للمقطع شريحة، مثل الهجرة الخلية شعاعي. ومع ذلك، يمكن الحصول على معلومات محدودة من أسلوب ثقافة شريحة لتحليل الهجرة الخلية عمودي إلى قسم الشريحة، مثل الهجرة الخلية عرضية. نقدم هنا، البروتوكولات للوقت الفاصل بين التصوير لتصور الهجرة الخلية عرضية في تيكتوم الألياف الضوئية النامية في الفرخ. مزيج من وسم الخلية انهانسر في ovo وثقافة مسطحة-جبل لاحقة على إدراج الثقافة الخلية تمكن من كشف ترحيل حركة الخلية في الطائرة الأفقي. وعلاوة على ذلك، لدينا أسلوب يسهل الكشف عن سلوك الخلية الفردية والعمل الجماعي لمجموعة من الخلايا على المدى الطويل. يمكن تطبيق هذا الأسلوب يحتمل أن تكون للكشف عن تغيير متسلسلة المسمى فلوري-البنية الصغرى، بما في ذلك استطالة محواري في تشريد الأنسجة أو الخلايا العصبية في الأنسجة غير العصبية.
Introduction
دراسة الهجرة الخلية تحرز تقدما مع تقدم تقنية التصوير الحي. بعد خلية الفلورسنت وسم، يمكن أن تسجل حركة الزمانية للخلايا المسماة في صحن الثقافة أو في فيفو تحت المجهر الفيديو. في دراسة التنمية العصبية، تم تحليل التغيرات المورفولوجية لترحيل الخلايا أو التمطيط محاور عصبية استخدام الوقت الفاصل بين التصوير. للتصوير بفعالية، من الضروري لتطبيق أسلوب مناسب لإعداد وضع العلامات وأنسجة الخلية الفلورسنت، استناداً إلى الغرض من التجربة والتحليل. لتحليل الهجرة الخلية في الدماغ، ثقافة شريحة تستخدم عادة لمراقبة الهجرة الخلية موازية للمقطع شريحة، مثل خلية شعاعي الهجرة1،،من23. كما يستخدم النظام ثقافة شريحة للكشف عن خلية عرضية الهجرة4،5، ولكن أنها ليست مناسبة لتحليل الاتجاهات في الحالات حيث تفريق الخلايا عمودي إلى المقطع شريحة.
ويتألف من بنية متعددة الطبقات، التي شكلتها الهجرة الخلية شعاعي وعرضية أثناء التطور الجنيني تكتم الألياف البصرية. تشكيل طبقة تيكتال يعتمد أساسا على الهجرة شعاعي من الخلايا السليفة العصبية بوستميتوتيك في منطقة البطين، ووجهتهم النهائية في الطبقات التي ترتبط بتاريخ الولادة في منطقة البطين6. أما بالنسبة للهجرة عرضية، أبلغنا سابقا اثنان تيارات الهجرات في الطبقات المتوسطة وسطحية في تيكتوم بصرية فرخ النامي. في الطبقات المتوسطة خلال E6-E8، تهاجر الخلايا القطبية الثنائية مع عملية طويلة رائدة وعملية زائدة رقيقة دورسالي أو بطنيا على طول فاسسيكولوس إكسون لمحاور عصبية ناقل تيكتال التي يتم تشغيلها دورسو بطنيا7. بعد الهجرة أكسوفيليك، وهذا التفريق بين الخلايا في الخلايا العصبية متعدد الأقطاب الموجودة في الطبقات العميقة. في الطبقات السطحية خلال E7-E14، تفريق الخلايا المهاجرة أفقياً بإصلاح عملية الرائدة تشعبت ومبعثر في عدة اتجاهات8. بعد تفريق الهجرة، تفرق خلايا هذه الأخيرة في نهاية المطاف في الخلايا العصبية سطحية من مورفولوجيس مختلفة. وفي كلتا الحالتين، ثقافة مسطحة-جبل تتسم بالكفاءة لمراقبة حركة الخلية موازيا للسطح بيل.
نقدم هنا، بروتوكولا للوقت الفاصل بين التصوير لتصور الهجرة الخلية عرضية في تكتم الألياف البصرية الفرخ النامي7،8. مزيج من وسم الخلية انهانسر في ovo، وثقافة مسطحة-جبل لاحقة على إدراج الثقافة الخلية تمكن من كشف خلية ترحيل اتجاه حركة التنقل والهجرة. والهدف من هذا الأسلوب تيسير الكشف عن سلوك الخلية الفردية على حد سواء في الأجل الطويل والعمل الجماعي لمجموعة من الخلايا في الطائرة الأفقي.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. انهانسر في Ovo
- تحضير التعبير بلازميد الحمض النووي للعلامات الفلورية في تركيزات عالية. عزل الحمض النووي من 200 مل ثقافة البكتيرية بواسطة الأسلوب تحلل القلوية باستخدام أعمدة شاردة-الصرف وفقا للبروتوكول الخاص بالشركة المصنعة (جدول المواد). مزيج بكاجس-اجفب وبكاجس-متشيرينوك بتركيز 4 ميكروغرام/ميليلتر كل نهائي.
ملاحظة: قد تكون خالية من الذيفان تنقية الحمض النووي بلازميد المفضل انهانسر. - احتضان بيض الدجاج خصبة أفقياً في 38 درجة مئوية في الرطوبة النسبية 70%.
- بعد يومين، القضاء على 5 مل الزلال (البيض) من الجانب أشار البيض باستخدام محقنة 20 مل مع إبرة قياس 18 وختم ثقب الإبرة مع الشريط.
- قص الجزء العلوي من وعاء البيض مع مقص منحنى لفتح ثقب 2 سم في القطر وتحقق مرحلة النمو للجنين تحت ستيريوميكروسكوبي (المرحلة 17 من همبرغر وهاملتون9). ختم حفرة مرة أخرى مع الشريط.
ملاحظة: يمكن تنفيذ هذه الخطوة في أي وقت أثناء E2.5-E3.0. خطوات 1.3 و 1.4 أدنى مستوى للجنين في البيضة تجنب ارتباط ضيق الجنين المتنامي والأوعية الدموية بشل الأعلى. - تستمر الحضانة حتى E5.5.
- قبل انهانسر، إعداد 10 ميليلتر من المذكورة بلازميد الحمض النووي الملونة مع 0.5 ميليلتر سريعة الخضراء (25 ملغ/مل)، 10 مل فوسفات يعقم مخزنة المالحة (PBS) تحتوي على بنسلين (100 وحدة/مل) وستربتوميسين (100 ميكروغرام/مل)، وميكروبيبيتيس من أنابيب شعرية زجاجية باستخدام معالج ميكروبيبيتي. قص طرف القاصي ميكروبيبيتي جعل حجم مناسب من مسام اعتماداً على مقدار الحمض النووي للحقن.
- قص شل الأعلى مختومة بالمقص فتح حفرة قطرها 2.5 سم وتعيين البيض ستابلي تحت المجهر ستيريو. إضافة بضع قطرات من برنامج تلفزيوني في البيض. تقشر الغشاء الانتويك الذي يغطي الجنين دون نزيف استخدام الملقط غرامة اثنين. إزالة في amnion من رأس الجنين.
- حين تحول رأسه ميكروسباتولا، حقن 0.1-1 ميكروليتر من الحمض النووي الملونة في تجويف البطين tectum الألياف البصرية الأيسر استخدام ميكروبيبيتي متصل بأنبوب شفط.
ملاحظة: كمية الحمض النووي حقن يعتمد على غرض التجربة. ينبغي أن يتركز الحمض النووي الحل بالوعة ونعلق على طول الجدار البطين. - وضع زوج من أقطاب فورسيب من نوع (أقطاب 3 مم مربع بمسافة 7 مم) حيث وضعت المنطقة المستهدفة من تيكتوميس الألياف البصرية بين (الشكل 1، الخطوة 1).
ملاحظة: هو الحمض النووي اليكتروبوراتيد إلى جانب اﻷنود. - المسؤول عن نبض قبل 30 الخامس، 1 مللي ثانية مع فاصل زمني يبلغ 5 مللي ثانية والبقول اللاحقة أربعة من 6 الخامس، 5 مللي ثانية مع فاصل 10 مللي ثانية، استخدام مولد النبض.
ملاحظة: الشرط الإلكترونية يعتمد على الحجم والمسافة من أقطاب كهربائية. ينبغي أن تكون قوية بما يكفي لتحقيق كفاءة تعداء، ولكن يجب أن يكون متواضعا ما يكفي لضمان التطور الطبيعي للأنسجة المستهدفة. - ختم الحفرة مع الشريط وتستمر الحضانة. نقع الأقطاب في برنامج تلفزيوني لإزالة بياضه مع فرشاة انتردنتال في صحن بلاستيك. كرر 1.7 1.11 لكل بيضة.
2-جبل مسطحة الثقافة على إدراج خلية
- إعداد ثقافة مسطحة-جبل، قبل يوم واحد من إدراج الثقافة المغلفة الخلية. تعويم بعض إدراج ثقافة الخلية في الماء المقطر يعقم في طبق ثقافة خلية 10 سم. تحميل حل 8 ميكروغرام/مل laminin و 80 ميكروغرام/مل بولي-L-يسين لتغطية إدراج وترك إدراج مالها المطروح للاكتتاب في حاضنة الثقافة CO2 الخلية عند 37 درجة مئوية بين عشية وضحاها.
ملاحظة: اليوم التالي، إدراج المغلفة يمكن تخزينها في 4 درجات مئوية. - في يوم الثقافة في E7.0، إزالة الحل لامينين-بولي-L-يسين من الإدراج ووضع الإدراج في زجاج أسفل طبق (الشكل 1، والخطوة 2) مليئة 1.1 مل من الثقافة المتوسطة (المتوسطة المصل انخفاض نسبة 60%، 20% F12، 10% مصل بقرى الجنين، 10 % الفرخ المصل، 50 وحدة/مل البنسلين، 50 ميكروغرام/مل ستربتوميسين). يبقى الطبق في خلية ثقافة CO2 الحاضنة عند 37 درجة مئوية.
ملاحظة: يمكن استخدام المتوسط طوال فترة الثقافة لمدة ثلاثة أيام دون تغيير. - إعداد إعداد الثقافة. تعيين وحدة دائرة رطبة مجهر مقلوب [كنفوكل] مع تدفق غاز 40% س2 و 5% CO2 (المراقب المالي (الغاز) في 38 درجة مئوية (درجة الحرارة).
- قطع رأس الجنين بالمقص. قرصه يخرج مع الملقط إلى حل "متوازن الملح" هانكس المثلج (هبس) في صحن ثقافة خلية 6-سم.
- عزل تكتم الألياف البصرية اليكتروبوراتيد استخدام الملقط غرامة اثنين. نقل تيكتوم مع بقطاره بلاستيك إلى آخر طبق مليئة هبس المثلج. استخدام الطبق الزجاج concaved أساس مع سيليكون أسود كالصحن لعدة قطاعات.
- التحقق من وضع العلامات تحت المجهر مجسمة الأسفار. قطع الأنسجة تيكتال المحيطة بالمنطقة وضع العلامات بسكين ميكروسورجيكال. تأكد من اتجاه الأنسجة في تكتم (الأمامي الخلفي، الظهرية البطني).
- نقل الأنسجة المسمى مع قطارة بلاستيك للإدراج ذلك الجانب بيا ترتبط insert. وضع الأنسجة تيكتال في الاتجاه المطلوب وإزالة هبس الزائد (الشكل 1، والخطوة 2).
- كرر إدراج 2.4-2.7 بغية إعداد الأنسجة الأخرى على نفس. ضع الطبق في قاعة بريوارميد في المجهر المقلوب [كنفوكل] (الشكل 1، والخطوة 3).
3-الوقت الفاصل بين التصوير
- التحقق من العلامات الفلورية وتركز مجال المجهرية في المجهر المقلوب [كنفوكل]. بدء تشغيل الوحدات [كنفوكل] ليزر وحاول أخذ عينات الفحص [كنفوكل] لضبط اتجاه وموقف من الأنسجة على طول X والمحور y في الميدان. استخدام 10 X أو X 20 الهدف العدسة دون زيت الغمر.
- حدد حجم المسح (مثلاً 512 × 512 نقطة في البوصة). تحديد الفاصل الزمني ونطاق مجموع المسح [كنفوكل] على طول محور ع. تأخذ فاصل 5 أو 10 ميكرون لنطاق 100 ميكرومتر. تحديد الفاصل الزمني لتصوير [كنفوكل] ومجموعة التصوير المدة (مثلاً، 10 دقيقة فترات أكثر من 48 ساعة).
ملاحظة: لتجنب الليزر الضيائية، تمنع المسح الضوئي في حجم المسح الضوئي عالية مع z-فترات قصيرة لنطاق z طويلة أو فترات زمنية قصيرة خلال مدة طويلة من التصوير. على سبيل المثال، عند تطبيق حجم مسح عالية (مثل 1024 × 1024 نقطة في البوصة)، إنقاص عدد الأشعة على طول محور ع. - مجموعة المعلمات للتشغيل [كنفوكل] البرنامج المبين في 3.2 وبدء التصوير.
- وبعد التصوير، الجمع بين الصور [كنفوكل] في محور ع مختلفة لتوفير صور z-مكدس مع تعديل تنسيق غرامة عند كل نقطة في الوقت.
- إلحاق الصور z-مكدس نقطة الوقت مختلفة وبناء فيلم مرور الزمن في شكل AVI.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
ويبين الشكل 2 الهجرة عرضية سطحية تصور في ثقافة مسطحة يشن في وقت المنقضي (0، 9، 18، ح 27) بعد بداية التسجيل. فيلم 1 فيلم الوقت الفاصل بين 10 دقيقة--الفترات الزمنية خلال فترة 28 ساعة و 50 دقيقة. الإطار المحدد للتركيز على الخلايا المهاجرة من المسمى الزاوية السفلية اليسرى من الإطار إلى الفضاء غير مسمى (الشكل 3A). حركة كتلة من الخلايا المهاجرة (التجارة والنقل؛ واللوحة اليسرى العلوية، فيلم 1)، ويمكن ملاحظتها نوى (نشاط مشري؛ اللوحة اليمنى العلوية) مع الفيلم المدمجة (لوحة أقل, فيلم 1). يمكن فحص اتجاهية للهجرة الخلية بالتركيز على الخلايا تفريق من مركز المسمى في جميع الاتجاهات (فيلم 2، الشكل 3).
صور واضحة لحركة النووية (فيلم 2؛ متشيري-نشاط، اللوحة اليمنى) يسمح لنا بتتبع هجرة الخلية النووية بالتعقب التلقائي باستخدام البرنامج المساعد "المقتفي الجسيمات"10 صورة فيجي معالجة تطبيق إيماجيج11 (فيلم 3، الشكل 3). يمكن تصور التغيرات الزمنية لمسارات الهجرة عرضية لإثبات الهجرة تفريق في الاتجاهات المهيمنة.
يمكن أن تتجلى سلوك الخلية الفردية مع تغيير الخصائص المورفولوجية متسلسلة العملية الرائدة، زائدة العملية ونوى مع الصور التكبير أعلى من 5 دقيقة-فترات (فيلم 4، الشكل 3).
يمكن تصور نوع آخر من الهجرة عرضية في الطبقات المتوسطة7 باستخدام بروتوكول مماثل (فيلم 5، 3D الشكل). الهجرة ثنائي الاتجاه الخطي على طول فاسسيكولوس إكسون تشغيل الظهري إلى البطني (الأعلى إلى الأسفل) هو واضح7.
رقم 1. بروتوكول الرسم البياني. الخطوة 1: انهانسر في ovo. الخطوة 2: زرع الأنسجة تيكتال حيث أن الجانب بيا ترتبط insert. الخطوة 3: مجهر فلوري المقلوب مع وحدة ليزر [كنفوكل]. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
رقم 2. التصور للهجرة عرضية سطحية في ثقافة مسطحة-جبل. تظهر الخلايا المهاجرة عرضية (التجارة والنقل؛ واللوحة العلوية) والنواة (متشيري-نشاط؛ لوحة أقل) في الطبقات السطحية ل tectum الألياف البصرية في 0, 9, 18, 27 ح بعد ظهور ثقافة من E7.0. تتم تسمية الخلايا في الزاوية السفلية اليسرى من الإطار في ح 0 (انظر الشكل 3A). شريط الحجم: 100 ميكرومتر. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
الشكل 3. الشكل التخطيطي يوضح شروط جبل الوقت الفاصل بين التصوير. شكل العلامات الفلورية (الأخضر)، قد يتضح الاتجاه الأولى للهجرة الخلية (أرجواني)، وإطار الفيديو (مربع أسود) مع التكبير عدسة الهدف (obj) والتكبير الرقمي (تكبير) في الحقل العلوي، مع يوم انهانسر (الجيش الشعبي ) وبداية ثقافة (الثقافة) في الحقل السفلي. (أ) الفيلم 1، (ب) فيلم 2 و 3، (ج) فيلم 4، (د) فيلم 5. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-
فيلم 1. التصور للهجرة عرضية سطحية في ثقافة مسطحة-جبل- حركة الخلايا المهاجرة عرضية (التجارة والنقل؛ واللوحة اليسرى العلوية) ونوى بهم (متشيري-نشاط؛ اللوحة اليمنى العلوية) في الطبقات السطحية ل tectum الألياف البصرية بعد ظهور ثقافة من E7.0. يتم عرض الصورة المدمجة في اللوحة السفلي. تتم تسمية الخلايا في الزاوية السفلية اليسرى من الإطار في ح 0 (انظر الشكل 3 ألف)، والوقت الفاصل بين الصور تم القبض على ما يزيد على 28 ح و 50 دقيقة مقياس بار: 100 ميكرومتر. الرجاء انقر هنا لمشاهدة هذا الفيديو. انقر بالزر الأيمن التحميل.
فيلم 2. تشتيت حركة الخلايا المهاجرة عرضية (التجارة والنقل؛ وترك الفريق) ونوى بهم (نشاط مشري؛ اللوحة اليمنى) من مركز كلا الفريقين تظهر أكثر من 48 ح (انظر الشكل 3). شريط الحجم: 100 ميكرومتر. الرجاء انقر هنا لمشاهدة هذا الفيديو. انقر بالزر الأيمن التحميل.
فيلم 3. مسارات للهجرة عرضية. تم تعقب تشرد نواة الخلية (اللوحة اليمنى الفيلم 2) لتصور مسارات الهجرة عرضية. مقياس بار؛ 100 ميكرومتر. من فضلك انقر هنا لمشاهدة هذا الفيديو. انقر بالزر الأيمن التحميل.
فيلم 4. سلوك الخلايا الفردية في أعلى التكبير- وتظهر حركة الخلايا الفردية (التجارة والنقل؛ وترك الفريق) ونوى بهم (متشيري-نشاط؛ اللوحة اليمنى) في أعلى التكبير ما يزيد على 24 ساعة (انظر الشكل 3). يمكن التعرف على عملية التفريع العملية الرائدة. شريط الحجم: 100 ميكرومتر. الرجاء انقر هنا لمشاهدة هذا الفيديو. انقر بالزر الأيمن التحميل.
فيلم 5. الهجرة الطبقة الوسطى. تظهر حركة الخلايا المهاجرة عرضية (التجارة والنقل؛ وترك الفريق) وعلى نواة (متشيري-نشاط؛ اللوحة اليمنى) في الطبقات المتوسطة تيكتال أكثر من 24 ساعة بعد ظهور ثقافة من E6.0 (انظر الشكل 3D). ومن اللافت الهجرة خطي على طول المحور البطني دورسو (الأعلى إلى الأسفل). شريط الحجم: 100 ميكرومتر. الرجاء انقر هنا لمشاهدة هذا الفيديو. انقر بالزر الأيمن التحميل.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
البروتوكول هو موضح أعلاه هو الأمثل للكشف عن الهجرة الخلية في الطبقات السطحية6،8. كان قابلاً للكشف عن الطبقة الوسطى الهجرة تيارات (فيلم 5)6،7، فقط عن طريق تحويل توقيت انهانسر (E5.5 إلى E4.5) وظهور ثقافة والتصوير (E7.0 إلى E6.0).
الإجراء قدم تتكون من خلية وسم انهانسر في ovoوالثقافة جبل مسطحة والوقت الفاصل بين التصوير [كنفوكل] (الشكل 1). أولاً وقبل كل شيء، شرط أساسي أن شروط الثقافة ينبغي أن يكون الأمثل للحفاظ الأنسجة صحية والمتنامية عادة في فيفو. من المهم أيضا التأكد من أن اتجاه الأنسجة مناسبة للكشف عن الهجرة الخلية. لمثل هذه الأغراض، نقوم بتطبيق ثقافة مسطحة-جبل على إدراج الخلية، مما يسهل مراقبة تشتت الخلية الأفقية ولوازم المتوسطة الغنية بالأكسجين المرتفعة. بعد التأكد من حالة الثقافة والتوجيه، من الأهمية بمكان للتصور ضبط الشروط المتضاربة لوضع العلامات الفلورية أفضل مع الأقل الإلكترونية وصور عن الأضرار. لتسمية أفضل، يمكننا أن نختار متجه تعبير مع مروج كفاءة وتتركز اليكتروبوراتي الحمض النووي. لتحقيق أقل ضرر، من المهم أن المعتدلين شرط انهانسر الكهربائية وانخفاض تركيز الحمض النووي وتقليل إجمالي الوقت لإشعاع الليزر.
ميزة هذا البروتوكول باستخدام ثقافة مسطحة-جبل على إدراج خلية أنه يمكننا أن نلاحظ هجرة الخلية عرضية في الأجل الطويل. عموما، فإنه من الصعب تحديد متى الأنسجة في الثقافة تقيم الظروف الفسيولوجية بالمقارنة مع تلك في ovo. على الأقل، وتواصل الهجرة عرضية سطحية أكثر ح 72 بعد ظهور الثقافة في E7.0، مما يدل على تشتت الخلوية طبيعية مشابهة لتلك في ovo8. وبالإضافة إلى ذلك، أعد أنسجة جديدة بداية الثقافة وتصوير لمراقبة الهجرة في مراحل لاحقة. وأيضا مفيدة أن التشرد خلية يمكن اتباعها لفترة طويلة لأن الخلايا لا تزال تتحرك أفقياً في أوراق مسطحة سطحية تكتم، الذي يقع بالقرب من العدسة والهدف. استخدام النظام [كنفوكل] أيضا يسهل تتبع الخلية الحركة على طول محور ع. من ناحية أخرى، عيوب هذا الأسلوب أن ثقافة مسطحة-جبل قد لا تكون دائماً ذات الصلة بإيجاز أنواع أخرى من الهجرة مثل الهجرة شعاعي. عندما يتم تطبيق الأسلوب لمراقبة الهجرة شعاعي في شريحة تيكتال في الإدراج، لا زيادة سمك الأنسجة تيكتال بسرعة كتلك في ovo. قد يكون من الأفضل أن الخص هذه التنمية طبقة أسلوب ثقافة شريحة في جل الكولاجين.
إذ لدينا أسلوب يتيح مراقبة الحركة الأفقية الموازية لإدراج الثقافة، يحتمل أن يمكن أن تطبق للكشف عن تغيير متسلسلة للمسمى فلوري-البنية الصغرى، بما في ذلك استطالة محواري في الأنسجة العصبية أو خلية التشرد في الأنسجة غير العصبية. على سبيل المثال، بعد تسمية محاور عصبية كوميسورال في الأنبوب العصبي النامي انهانسر، يمكن تصور حركات من محاور عصبية ما قبل وما بعد عبور عبر لوحة الكلمة في ثقافة الكتاب المفتوح إينسيسينج لوحة السقف. شريطة أن الشرط الثقافة المناسبة على إدراج خلية متاح لاستنساخ في فيفو الظروف، يوفر لنا الأسلوب أسلوب فعال لتصور الحركات الأفقية لمختلف أنواع الخلايا والهياكل.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
الكتاب يعلن أن لديهم لا تضارب المصالح المالية.
Acknowledgments
هذا العمل وأيده عدد المنح كاكينهي JSPS 15 ك 06740 إلى Y.W.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Materials | |||
| NucleoBond Xtra Midi Plus EF | MACHEREY-NAGEL | 740422.5 | endotoxin-free plasmid DNA purification kit |
| 20 ml syringe | TERUMO | SS-20ESZ | |
| 18 gauge needle | TERUMO | NN-1838R | |
| Fast Green | Wako | 061-00031 | |
| 100x penicillin and streptomycin | Gibco | 15140-122 | |
| glass capillary tube | Narishige | G-1 | |
| cell culture insert | Millipore | Millicell CM-ORG | |
| Laminin | SIGMA | L2020 | coating of culture insert |
| poly-L-Lysine | Peptide Institute | 3075 | coating of culture insert |
| glass bottom dish | Matsunami | D11130H | |
| Opti-MEM | Gibco | 31985-070 | culture medium |
| F12 | Gibco | 11765-054 | culture medium |
| fetal bovine serum | Gibco | 12483 | culture medium |
| chick serum | Gibco | 16110082 | culture medium |
| 10xHBSS | Gibco | 14065-056 | |
| microsurgical knife | Surgical specialties cooperation | 72-1501 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Equipment | |||
| curved scissors | AS ONE | No.11 | |
| micropipette processor | SUTTER INSTRUMENT | P97/IVF | |
| forceps-type electrode | BEX | LF646P3x3 | |
| pulse generator | BEX | CUY21EX | electroporator |
| fluorescence stereoscopic microscope | Leica | MZ16F | |
| inverted fluorescence microscope | Olympus | IX81 | |
| gas controller | Tokken | MIGM/OL-2 | |
| temperature controller | Tokai Hit | MI-IBC | |
| laser confocal unit | Olympus | FV300 |
References
- Marín, O., Rubenstein, J. L. R. Cell migration in the forebrain. Annual Reviews of Neuroscience. 26, 441-483 (2003).
- Nadarajah, B., Alifragis, P., Wong, R. O. L., Parnavelas, J. G. Neuronal migration in the developing cerebral cortex: Observations based on real-time imaging. Cerebral Cortex. 13, 607-611 (2003).
- Tabata, H., Nakajima, K. Multipolar migration: the third mode of radial neuronal migration in the developing cerebral cortex. Journal of Neuroscience. 23, 9996-10001 (2003).
- Martini, F. J., et al. Biased selection of leading process branches mediates chemotaxis during tangential neuronal migration. Development. 136, 41-50 (2009).
- Polleux, F., Whitford, K. L., Dijkhuizen, P. A., Vitalis, T., Ghosh, A. Control of cortical interneuron migration by neurotrophins and PI3-kinase signaling. Development. 129, 3147-3160 (2002).
- Watanabe, Y., Yaginuma, H. Tangential cell migration during layer formation of chick optic tectum. Development, Growth and Differentiation. 57, 539-543 (2015).
- Watanabe, Y., Sakuma, C., Yaginuma, H. NRP1-mediated Sema3A signals coordinate laminar formation in the developing chick optic tectum. Development. 141, 3572-3582 (2014).
- Watanabe, Y., Sakuma, C., Yaginuma, H. Dispersing movement of neuronal tangential migration in superficial layers of the developing chick optic tectum. Developmental Biology. 437, 131-139 (2018).
- Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. Journal of Morphology. 88, 49-92 (1951).
- Cordelières, F. P., et al. Automated cell tracking and analysis in phase-contrast videos (iTrack4U): development of Java software based on combined mean-shift processes. PLOS One. 8, e81266 (2013).
- Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9, 676-682 (2012).
