Summary

3D trykt porøse Cellulose Nanocomposite Hydrogel stillaser

Published: April 24, 2019
doi:

Summary

De tre viktige trinnene i denne protokollen i) utvikler høyre komposisjon og konsistensen av cellulose hydrogel håndskriften, ii) 3D utskrift av stillaser inn i ulike pore strukturer med god form gjengivelse og dimensjoner og iii) demonstrasjon av den mekaniske egenskaper i simulert kroppens tilstand for brusk gjenfødelse.

Abstract

Dette arbeidet demonstrerer bruken av tredimensjonale (3D) utskrift å produsere porøse kubikk stillaser bruker cellulose nanocomposite hydrogel blekk, med kontrollerte pore strukturen og mekaniske egenskaper. Cellulose nanokrystaller (CNCs, 69.62 wt %) basert hydrogel blekk med matrix (natrium alginate og gelatin) ble utviklet og 3D trykt i stillaser med uniform og gradient pore strukturen (110-1100 µm). Stillasene viste komprimering modulus mellom 0,20-0.45 MPa når testet i simulert i vivo forhold (i destillert vann på 37 ° C). Pore størrelsene og komprimering modulus av 3D stillasene samsvarer med kravene trengs for brusk gjenfødelse programmer. Dette arbeidet viser at konsistensen av blekket styres av konsentrasjonen av forløpere og porøsitet styres av 3D utskriftsprosessen og begge disse faktorene i retur definerer mekaniske egenskaper av 3D trykt porøse hydrogel stillaset. Denne prosessen metoden kan derfor brukes til å fabrikkere strukturelt og compositionally tilpasset stillaser i henhold til de spesifikke behovene pasienter.

Introduction

Cellulose er et polysakkarid består av lineær kjeder av β (1-4) koblede D-glukose enheter. Det er den mest tallrike naturlig polymer på jorden og er Hentet fra en rekke kilder, inkludert marine dyr (f.eks kappedyr), planter (f.eks tre, bomull, hvete strå) og bakteriell kilder, som alger (f.eks Vallonia), sopp og selv amoeba (protozoer )1,2. Cellulose nanofibers (CNF) og cellulose nanokrystaller (CNC) med minst én dimensjon på nanoskala er innhentet gjennom behandlinger og syre hydrolyse fra cellulose. De ikke bare har egenskapene til cellulose, som potensialet for kjemisk endring, lav toksisitet, biocompatibility, biologisk nedbrytbart og fornybar, men det har også nanoskala egenskaper som høy bestemt areal, høy mekaniske egenskaper , reologiske og optiske egenskaper. Disse attraktive egenskaper har gjort CNFs og CNCs egnet for biomedisinsk programmer, hovedsakelig i form av 3-dimensjonale (3D) hydrogel stillaser3. Disse stillaser krever tilpasset dimensjoner med kontrollert pore strukturen og sammenhengende porøsitet. Vår gruppe og andre har rapportert 3D porøse cellulose nanocomposites forberedt gjennom støping, electrospinning og Frysetørring4,5,6,7,8. Imidlertid kontroll på pore strukturen og fabrikasjon av sammensatt geometri er ikke oppnådd gjennom disse tradisjonelle teknikker.

3D-utskrift er en additiv produksjon teknikk, 3D objekter opprettes lagvis gjennom datastyrt avsetning av blekk9. Fordelene med 3D-utskrift over tradisjonelle teknikker inkluderer design frihet, kontrollert makro og mikro dimensjoner, fabrikasjon av komplekse arkitekturer, tilpasning og reproduserbarhet.  I tillegg tilbyr 3D-utskrift av CNFs og CNCs også skjær-indusert justeringer av nanopartikler, foretrakk retningen, gradient porøsitet og kan enkelt utvides til 3D bioprinting10,11,12, 13 , 14 , 15. nylig dynamikken i CNCs justering under 3D utskrift har vært rapportert16,17. Fremskritt innen bioprinting har aktiverer 3D trykt vev og organer tross involvert utfordringen som valg og konsentrasjonen av levende celler og vekstfaktorer, sammensetningen av transportør håndskriften, trykk og munnstykke diameter18 ,19,20.

Porøsitet og kompresjons styrken av brusk regenerativ stillasene er viktige egenskaper som bestemmer dens effektivitet og ytelse. Porestørrelse spiller en viktig rolle for vedheft, differensiering og spredning av celler så vel som for utveksling av næringsstoffer og metabolske avfall21. Men det er ingen bestemt porestørrelse som kan anses som en perfekt verdi, noen studier viste høyere bioactivity med mindre porer mens andre viste bedre brusk gjenfødelse med større porene. Macropores (< 500 µm) lette vev mineralisering, Nærings levering og fjerning mens micropores (150-250 µm) lette celle vedlegg og bedre mekaniske egenskaper22,23. Implantert stillaset må ha tilstrekkelig mekanisk integritet fra tidspunktet for håndtering, implantasjon til ferdigstillelse av det ønskede formålet. Samlet kompresjons modulus for naturlig articular brusk er rapportert å være i området 0,1-2 MPa avhengig av alder, kjønn og testet sted4,24,25,26,27 ,28,29.

I vår tidligere arbeid11, ble 3D-utskrift brukt til å fabrikkere porøse bioscaffolds av en dobbel krysskoblet interpenetrating polymer network (IPN) fra en hydrogel håndskrift med forsterket CNCs i en matrise av natrium alginate og gelatin. 3D utskrift veien var optimalisert for å oppnå 3D stillaser med uniform og gradient pore strukturer (80-2,125 µm) der nanokrystaller orient fortrinnsvis i utskriftsretningen (grad av retningen mellom 61-76%). Her vi presenterer videreføring av dette arbeid og demonstrerer effekten av porøsitet mekaniske egenskaper 3D trykt hydrogel stillaser simulert kroppen forhold. CNCs brukt her, ble tidligere rapportert av oss å være cytocompatible og ikke-giftig (dvs. cellevekst etter 15 dager med inkubering var bekreftet30). Videre stillaser forberedt via fryse-tørking benytter de samme CNCs, natrium alginate og gelatin viste høy porøsitet, høy opptak fosfat buffer saltvann og cytocompatibility mot mesenchymal stamceller5. Målet med dette arbeidet er å vise hydrogel blekk behandling, 3D utskrift av porøse stillaser og komprimering testing. Skjematisk av behandling ruten vises i figur 1.

Protocol

1. forberedelse av prekursorer Utarbeidelse av cellulose nanokrystaller suspensjonMerk: Isolering av cellulose nanokrystaller gjøres i henhold til prosedyren rapportert av Mathew, et al30. Fortynne 17 wt % suspensjon av cellulose nanokrystaller 2 wt % ved å legge til destillert vann for å lage et totalt volum på 2 L. blanding grundig med ultra sonication og bruke mindre bunker (250-300 mL) for effektiv blanding. Passere sonified suspensjon gjennom homogenizer 1…

Representative Results

CNCs basert nanocomposite hydrogel blekk viser en sterk ikke-newtonsk skjær tynning atferd (figur 2en). Den tilsynelatende viskositeten på 1.55 × 105 Pa.s til en lav skjær rate (0,001 s-1) faller av fem størrelsesordener verdien 22.60 Pa.s frekvensen skjær av 50 s-1 (≈50 s-1 er en typisk skjær rate i løpet av 3D-utskrift)31 . Hydrogel håndskriften har en viskoelastiske solid virkemåte, som lagrin…

Discussion

3D-utskrift krever egnet reologiske egenskaper av hydrogel blekk. Høy viskositet blekket vil kreve ekstreme press for sin ekstrudering mens lav viskositet blekk ikke vil opprettholde formen etter ekstrudering. Viskositet av hydrogel blekk kan styres gjennom konsentrasjonen av ingrediensene. I forhold til våre tidligere arbeid11, er solid innholdet av hydrogel blekk økt fra 5.4 9.9 wt % resulterer i konsentrert hydrogel blekk som bidrar til å forbedre oppløsningen på utskrevne stillaset. Det …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien er økonomisk støttet av Knut og Alice Wallenberg Foundation (Wallenberg tre Science Center), svensk Research Council, VR (Bioheal, DNR 2016-05709 og DNR 2017-04254).

Materials

60 mL syringe Structur3D Printing
Alginic acid sodium salt Sigma-Aldrich 9005-38-3
Anhydrous calcium chloride Sigma-Aldrich 10043-52-4
Clamps, three pronged, Talon VWR 241-0404 102 mm, Dual adjustment clamp, large, clamp extension 127 mm
Cura 2.4.0 Ultimaker Free slicing software
Discov3ry Complete Structur3D Printing Ultimaker 2+ 3D printer integrated with Discov3ry paste extruder
Gelatin from bovine skin Sigma-Aldrich 9000-70-8
Glutaraldehyde solution 50 wt. % in H2O Sigma-Aldrich 111-30-8
homogenizer SPX APV-2000
Instron 5960 Instron Instron 5960, Biopuls Bath, 100 N load cell, 37 °C,
Physica MCR 301 rheometer Anton Paar CP25-2-SN7617, gap height 0.05 mm, 25 °C
Sorvall Lynx 6000 centrifuge AB Ninolab s/n 41881692 F12-rotor (6×500 ml)
stainless steel nozzle Structur3D Printing 800, 600 and 400 µm
thingsinverse MakerBot's  sharing and downloading 3D printable things in form of stl files
ultra sonication Qsonica, LLC Q500
Unbarked wood chips Norway spruce(Picea abies) dry matter content of 50–55%

References

  1. Moon, R. J., Martini, A., Nairn, J., Simonsen, J., Youngblood, J. Cellulose nanomaterials review: structure, properties and nanocomposites. Chemical Society Reviews. 40 (7), 3941-3994 (2011).
  2. Dufresne, A. Nanocellulose: a new ageless bionanomaterial. Materials Today. 16 (6), 220-227 (2013).
  3. Chinga-Carrasco, G. Potential and limitations of nanocelluloses as components in biocomposite inks for three-dimensional bioprinting and for biomedical devices. Biomacromolecules. 19 (3), 701-711 (2018).
  4. Naseri, N., Poirier, J., Girandon, L., Fröhlich, M., Oksman, K., Mathew, A. P. 3-Dimensional porous nanocomposite scaffolds based on cellulose nanofibers for cartilage tissue engineering: tailoring of porosity and mechanical performance. Royal Society of Chemistry Advances. 6 (8), 5999-6007 (2016).
  5. Naseri, N., Deepa, B., Mathew, A. P., Oksman, K., Girandon, L. Nanocellulose-Based Interpenetrating Polymer Network (IPN) Hydrogels for Cartilage Applications. Biomacromolecules. 17 (11), 3714-3723 (2016).
  6. Naseri, N., Mathew, A. P., Girandon, L., Fröhlich, M., Oksman, K. Porous electrospun nanocomposite mats based on chitosan-cellulose nanocrystals for wound dressing: effect of surface characteristics of nanocrystals. Cellulose. 22 (1), 521-534 (2015).
  7. Xing, Q., Zhao, F., Chen, S., McNamara, J., DeCoster, M. A., Lvov, Y. M. Porous biocompatible three-dimensional scaffolds of cellulose microfiber/gelatin composites for cell culture. Acta Biomaterialia. 6 (6), 2132-2139 (2010).
  8. Nandgaonkar, A., Krause, W., Lucia, L. Fabrication of cellulosic composite scaffolds for cartilage tissue engineering. Nanocomposites for musculoskeletal tissue regeneration. , 187-212 (2016).
  9. Gross, B. C., Erkal, J. L., Lockwood, S. Y., Chen, C., Spence, D. M. Evaluation of 3D printing and its potential impact on biotechnology and the chemical sciences. Analytical Chemistry. 86 (7), 3240-3253 (2014).
  10. Markstedt, K., Mantas, A., Tournier, I., Martínez Ávila, H., Hägg, D., Gatenholm, P. 3D bioprinting human chondrocytes with nanocellulose-alginate bioink for cartilage tissue engineering applications. Biomacromolecules. 16 (5), 1489-1496 (2015).
  11. Sultan, S., Mathew, A. P. 3D printed scaffolds with gradient porosity based on a cellulose nanocrystal hydrogel. Nanoscale. 10, 4421-4431 (2018).
  12. Sultan, S., Siqueira, G., Zimmermann, T., Mathew, A. P. 3D printing of nano-cellulosic biomaterials for medical applications. Current Opinion in Biomedical Engineering. 2, 29-34 (2017).
  13. Sultan, S., Abdelhamid, H. N., Zou, X., Mathew, A. P. CelloMOF: Nanocellulose Enabled 3D Printing of Metal-Organic Frameworks. Advanced Functional Materials. , 1805372-1805384 (2018).
  14. Siqueira, G., et al. Cellulose Nanocrystal Inks for 3D Printing of Textured Cellular Architectures. Advanced Functional Materials. 27 (12), 1604619-1604629 (2017).
  15. Wang, J., et al. All-in-One Cellulose Nanocrystals for 3D Printing of Nanocomposite Hydrogels. Angewandte Chemie International Edition. 57 (9), 2353-2356 (2018).
  16. Hausmann, M. K., et al. Dynamics of Cellulose Nanocrystal Alignment during 3D Printing. ACS Nano. 12 (7), 6926-6937 (2018).
  17. Liu, Y., et al. Nanoscale assembly of cellulose nanocrystals during drying and redispersion. ACS Macro Letters. 7 (2), 172-177 (2018).
  18. Murphy, S. V., Atala, A. 3D bioprinting of tissues and organs. Nature Biotechnology. 32 (8), 773-785 (2014).
  19. Pati, F., et al. Printing three-dimensional tissue analogues with decellularized extracellular matrix bioink. Nature communications. 5, 3935 (2014).
  20. Xia, Z., Jin, S., Ye, K. Tissue and organ 3D bioprinting. SLAS TECHNOLOGY: Translating Life Sciences Innovation. 23 (4), 301-314 (2018).
  21. Zhang, Q., Lu, H., Kawazoe, N., Chen, G. Pore size effect of collagen scaffolds on cartilage regeneration. Acta Biomaterialia. 10 (5), 2005-2013 (2014).
  22. Loh, Q. L., Choong, C. Three-dimensional scaffolds for tissue engineering applications: role of porosity and pore size. Tissue Engineering, Part B: Reviews. 19 (6), 485-502 (2013).
  23. Bružauskaitė, I., Bironaitė, D., Bagdonas, E., Bernotienė, E. Scaffolds and cells for tissue regeneration: different scaffold pore sizes-different cell effects. Cytotechnology. 68 (3), 355-369 (2016).
  24. Zhang, L., Hu, J., Athanasiou, K. A. The role of tissue engineering in articular cartilage repair and regeneration. Critical Reviews™ in Biomedical Engineering. 37 (1-2), (2009).
  25. Athanasiou, K., Rosenwasser, M., Buckwalter, J., Malinin, T., Mow, V. Interspecies comparisons of in situ intrinsic mechanical properties of distal femoral cartilage. Journal of Orthopaedic Research. 9 (3), 330-340 (1991).
  26. Schinagl, R. M., Gurskis, D., Chen, A. C., Sah, R. L. Depth-dependent confined compression modulus of full-thickness bovine articular cartilage. Journal of Orthopaedic Research. 15 (4), 499-506 (1997).
  27. Athanasiou, K., Niederauer, G., Schenck, R. Biomechanical topography of human ankle cartilage. Annals Biomedical Engineering. 23 (5), 697-704 (1995).
  28. Athanasiou, K. A., Liu, G. T., Lavery, L. A., Lanctot, D. R., Schenck, R. C. Biomechanical topography of human articular cartilage in the first metatarsophalangeal joint. Clinical Orthopaedics and Related Research. 348, 269-281 (1998).
  29. Guilak, F., Jones, W. R., Ting-Beall, H. P., Lee, G. M. The deformation behavior and mechanical properties of chondrocytes in articular cartilage. Osteoarthritis and Cartilage. 7 (1), 59-70 (1999).
  30. Mathew, A. P., Oksman, K., Karim, Z., Liu, P., Khan, S. A., Naseri, N. Process scale up and characterization of wood cellulose nanocrystals hydrolysed using bioethanol pilot plant. Industrial Crops and Products. 58, 212-219 (2014).
  31. Compton, B. G., Lewis, J. A. 3D-printing of lightweight cellular composites. Advanced Materials. 26 (34), 5930-5935 (2014).
  32. Sarem, M., Moztarzadeh, F., Mozafari, M. How can genipin assist gelatin/carbohydrate chitosan scaffolds to act as replacements of load-bearing soft tissues. Carbohydrate Polymers. 93 (2), 635-643 (2013).
  33. Chia, H. N., Hull, M. Compressive moduli of the human medial meniscus in the axial and radial directions at equilibrium and at a physiological strain rate. Journal of orthopaedic research. 26 (7), 951-956 (2008).
  34. Zhang, K., Fan, Y., Dunne, N., Li, X. Effect of microporosity on scaffolds for bone tissue engineering. Regenerative biomaterials. 5 (2), 115-124 (2018).
  35. Lin, N., Dufresne, A. Nanocellulose in biomedicine: Current status and future prospect. European Polymer Journal. 59, 302-325 (2014).
  36. Domingues, R. M., Gomes, M. E., Reis, R. L. The potential of cellulose nanocrystals in tissue engineering strategies. Biomacromolecules. 15 (7), 2327-2346 (2014).

Play Video

Cite This Article
Sultan, S., Mathew, A. P. 3D Printed Porous Cellulose Nanocomposite Hydrogel Scaffolds. J. Vis. Exp. (146), e59401, doi:10.3791/59401 (2019).

View Video