Summary
Questo protocollo descrive diverse procedure per la preparazione di campioni di tessuto congelato di alta qualità al momento della necroscopia per l'uso nel saggio della cometa per valutare il danno al DNA: 1) tessuto macinato, 2) cellule epiteliali raschiate dal tratto gastrointestinale e 3) tessuto immatolato campioni, richiedendo l'omogeneizzazione utilizzando un dispositivo di mincing dei tessuti.
Abstract
L'analisi della cometa sta guadagnando popolarità come mezzo per valutare il danno del DNA nelle cellule e nei tessuti coltivati, in particolare dopo l'esposizione a sostanze chimiche o altri fattori di stress ambientali. L'uso del saggio della cometa nei test normativi per il potenziale genotossico nei roditori è stato guidato dall'adozione di una linea guida di prova dell'Organizzazione per la cooperazione e lo sviluppo economico (OCSE) nel 2014. Cometa sdolcino i vetrini sono tipicamente preparati da tessuto fresco al momento della necropsia; tuttavia, il congelamento dei campioni di tessuto può evitare le sfide logistiche associate alla preparazione simultanea di vetrini da più organi per animale e da molti animali per studio. Il congelamento consente inoltre la spedizione di campioni dall'impianto di esposizione a un altro laboratorio per l'analisi, e lo stoccaggio di tessuto congelato facilita il rinvio della decisione di generare dati sui danni al DNA per un determinato organo. Il saggio di cometa alcalina è utile per rilevare le rotture del DNA a doppio e singolo filamento correlate all'esposizione, le lesioni alcali-labile e le rotture del filamento associate alla riparazione incompleta dell'escissione del DNA. Tuttavia, il danno al DNA può anche derivare da una tosatura meccanica o da procedure di elaborazione del campione improprie, confondendo i risultati del test. La riproducibilità nella raccolta e nella lavorazione di campioni di tessuto durante le necroscopia può essere difficile da controllare a causa della fluttuazione del personale di laboratorio con diversi livelli di esperienza nella raccolta dei tessuti per il saggio della cometa. Migliorare la coerenza attraverso la formazione di aggiornamento o l'impiego di unità mobili con personale di laboratorio esperto è costoso e potrebbe non essere sempre fattibile. Per ottimizzare la generazione coerente di campioni di alta qualità per l'analisi del saggio della cometa, è stato valutato un metodo per omogeneizzare i cubi congelati flash di tessuto utilizzando un dispositivo di mincing dei tessuti personalizzato. I campioni preparati per il test della cometa con questo metodo sono stati confrontati favorevolmente in termini di qualità a campioni di tessuto fresco e congelato preparati dalla maciazione durante la necropsia. Inoltre, il basso danno del DNA di base è stato misurato in cellule da cubetti congelati di tessuto dopo un accumulo prolungato.
Introduction
Il test della cometa è sempre più usato come mezzo per valutare il danno del DNA nelle cellule coltivate e nei tessuti esposti a sostanze chimiche o altri fattori di stress ambientali1. L'analisi è in grado di rilevare rotture a doppio e singolo filamento del DNA, lesioni alcali-labili e rotture a singolo filamento associate alla riparazione incompleta del DNA. L'International Council for Harmonization of Technical Requirements for Pharmaceuticals for Human Use (ICH) guideline for Pharmaceutical testing raccomanda una rottura del filamento di DNA, come il saggio della cometa come secondo test per integrare il micronucleo eritrocite del roditore per la valutazione della genotossicità in vivo e come test di follow-up per valutare la modalità di azione degli organi nel bersaglio di induzione tumorale2. L'Autorità europea per la sicurezza alimentare (EFSA) raccomanda il test della cometa in vivo come test di follow-up adeguato per studiare la pertinenza di un risultato positivo in un test di genotossicità in vitro3. Nel 2014 è stata approvata una linea guida per i test dell'OCSE per il test della cometa sui roditori, aumentando così l'accettabilità del saggio da utilizzare nei test normativi del potenziale genotossico. Il saggio si basa sulla separazione elettroforetica di loop di DNA rilassati e frammenti che migrano dai nucleoidi delle cellule lisci. Fondamentalmente, singole cellule sono incorporate in agarose che è stato stratificato su vetrini al microscopio. I vetrini vengono poi immersi nel buffer di lisi seguita da una soluzione alcalina (pH > 13), che consente al DNA nucleare strettamente arrotolato di rilassarsi e rilassarsi. Le diapositive vengono poi collocate in un campo elettrico, che stimola la migrazione del DNA caricato negativamente verso l'anodo, creando immagini che assomigliano alle comete; la quantità relativa di DNA nella coda della cometa rispetto alla testa della cometa è direttamente proporzionale alla quantità di danno del DNA; Il contenuto di DNA nella coda viene in genere quantificato utilizzando un software di imaging digitale.
Poiché il saggio della cometa rileva il DNA frammentato, la quantificazione accurata del danno del DNA indotto dall'esposizione può essere confusa dalla frammentazione della cromatina associata alla necrosi o all'apoptosi derivante dalla citotossicità o dallo stress indotta dal trattamento. Inoltre, il danno al DNA può verificarsi a causa di tosatura meccanica o elaborazione impropria del campione4. L'importanza di mantenere il tessuto raccolto raffreddato prima della preparazione dello scivolo per ridurre al minimo il livello di base del danno al DNA è stata precedentemente dimostrata5,6. Molti laboratori preparano scivoli di assaggio cometa da tessuti freschi; tuttavia, questo può essere logisticamente impegnativo quando si preparano diapositive da più tipi di tessuto per animale in uno studio con un gran numero di animali. Inoltre, questo presenta un problema quando la preparazione e l'analisi delle diapositive devono avvenire in un laboratorio remoto, che richiede la spedizione di campioni. Ad esempio, il National Toxicology Program degli Stati Uniti include il saggio della cometa come componente del suo programma di test di tossicologia genetica (https://ntp.niehs.nih.gov/testing/types/genetic/index.html) e talvolta incorpora il saggio in studi di tossicità a dose ripetuta di 28 o 90 giorni; ciò richiede la raccolta di tessuti da parte del laboratorio in vita e il trasferimento di campioni in un altro laboratorio per l'analisi. Per raggiungere questo obiettivo, i pezzi di tessuto vengono macinati e/o le cellule epiteliali del tratto gastrointestinale vengono raschiate e le sospensioni cellulari vengono congelate flash e conservate in un congelatore per la successiva spedizione e conservazione da parte del laboratorio ricevente fino all'analisi7. Una corretta gestione dei campioni è fondamentale per ottenere dati di alta qualità utilizzando tessuti congelati; tuttavia, la manipolazione riproducibile di campioni di tessuto durante le necropsie eseguite da personale in continua evoluzione è difficile da controllare, soprattutto nei laboratori in vita che non raccolgono regolarmente tessuti per il saggio della cometa. La formazione di aggiornamento del personale necropy o l'uso di un'unità mobile composta da personale di laboratorio esperto per raccogliere campioni di tessuto freschi o congelati è spesso troppo costosa, non fattibile o semplicemente sottovalutata.
Per garantire una migliore generazione coerente di campioni di tessuto di alta qualità per il trasferimento in un sito remoto per l'analisi del test della cometa, è stata esplorata l'utilità di un metodo pubblicato6 di conservazione dei tessuti da cubi di tessuto congelati flash. In questo metodo, i cubetti di tessuto congelati vengono caricati in un dispositivo di mintura del tessuto in acciaio inossidabile (Figura 1) che viene collocato in un tubo di microcentrifuga contenente tampone freddo. Il cubo di tessuto viene quindi spinto attraverso una piccola rete di calibro alla fine del dispositivo. Forzando ripetutamente la sospensione del tessuto attraverso il setaccio di maglia in entrambe le direzioni più volte si traduce in una sospensione a cella singola relativamente uniforme. I campioni preparati con questo metodo confrontano favorevolmente la qualità acampioni di tessuto fresco e congelato preparati mediante la macidia. Come ulteriore vantaggio, a differenza dei campioni macinati, i cubi di tessuto possono essere conservati congelati per periodi prolungati di tempo e ancora producono risultati di alta qualità nel saggio della cometa.
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Protocol
I tessuti sono stati raccolti durante lo svolgimento di studi effettuati presso impianti accreditati Da AALAC presso i laboratori contrattuali NTP in conformità con le norme sulla buona pratica di laboratorio (21 CFR Part 58) e i protocolli di utilizzo degli animali approvati dall'Institutional Animal Comitato per la cura e l'uso (IACUC) in ogni laboratorio.
1. Raccolta e lavorazione dei tessuti
NOT: È utile preparare tubi campione duplicati (ad esempio, fegato) o trasferire circa la metà di un campione in un altro tubo di stoccaggio (ad esempio, duodenum, stomaco) per consentire la rianalisi, se necessario. Per ridurre al minimo la potenziale variabilità campione-campione per i tessuti del tratto intestinale, si raccomanda di prelevare la stessa regione di tessuto rispetto allo stomaco per ogni animale e di dividere un campione per generare campioni duplicati. I pinze plastiche sono raccomandati per il trasferimento di tessuti appiccicosi come il cervello. Come opzione, i preparati di tessuto macinati, raschiati o omogeneizzati possono essere filtrati per ottenere sospensioni omogenee a singola cellula utilizzando un colino a cellule da 40 m attaccato ad un tubo conico.
- Rimuovere qualsiasi tessuto di collegamento collegato, organi e detriti dagli organi di interesse. Immediatamente dopo la rimozione, swish l'organo vigorosamente in una barca di pesatura di medie dimensioni contenente 7 mL di fredda soluzione di macinazione appena preparata (Mg,Ca , e fenolo rosso-libero Hank's Up, 10% v / v DMSO, e 20 mM EDTA pH 7.5) per rimuovere il sangue residuo e detriti.
- Trasferire ogni organo in un'altra barca a pesatura pulita contenente una soluzione di mintura fredda sufficiente (7 mL) per mantenere il tessuto immerso, sul ghiaccio, fino a un'ulteriore elaborazione.
- Rimuovere una sezione di ogni organo di interesse e inserirla in una cassetta di incorporamento. Fissare il 10% di formalina, trim e paraffina neutra secondo le procedure standard del laboratorio per una possibile futura valutazione dell'istopatologia.
- Per il fegato, tagliare una sezione longitudinale di 5 mm del lobo sinistro e swish delicatamente in 7 mL di soluzione di mincing freddo. Posizionare la striscia di tessuto in una barca di pesatura di medie dimensioni pulita contenente 7 mL di soluzione di mincing freddo e mantenere sul ghiaccio fino a quando pronto per il processo ulteriormente (passaggio 1.8 o 1.11).
- Per il duodenum, tagliare una porzione di 10 mm del duodenum proximal allo stomaco. Utilizzando un ago 21–25 G, lavare per rimuovere detriti e batteri.
- Inserire l'ago in un'estremità del duodenum e sciacquare con 1 mL di soluzione di mincing freddo.
- Svuotare l'altra direzione capovolgendo il duodenum e ripetendo con un altro 1 mL di soluzione di mincing. Scartare l'ago.
- Affettare il duodenum aprire e risciacquarlo in soluzione di mincing di 7 ml prima di metterlo in un pescheresta di medie dimensioni contenente 7 mL di soluzione di mincing pulito; mantenere il ghiaccio fino a quando non è pronto per essere ulteriormente processato (passaggio 1.8 o 1.11).
- Per il cervello, può essere utile prima dividere il cervello in due emisferi; un emisfero può essere salvato per una possibile istopatologia (vedi passo 1.2).
- Dissezionare le regioni del cervello di interesse e delicatamente swish in 7 mL di soluzione di mincing freddo.
- Trasferire i tessuti a una barca di pesatura di medie dimensioni pulita contenente 7 mL di soluzione di macisatura fredda e mantenerla sul ghiaccio fino a quando non è pronta per essere ulteriormente lavorata (passaggio 1.8 o 1.11; si noti che piccole regioni come il cervelletto e l'ippocampo potrebbero non richiedere ulteriori tagli).
- Per lo stomaco
- Rimuovere e scartare la parte della prua. Tagliare lo stomaco ghiandolare e lavare senza cibo utilizzando 7 mL di tampone di mincing freddo in una barca di peso di medie dimensioni.
- Rimuovere una striscia di 5 mm di stomaco ghiandolare prossimale al duodenum per la fissazione per una possibile valutazione istopatologica (vedere il passaggio 1.2).
- Collocare lo stomaco rimanente in 7 mL di tampone di mintura fredda in una barca di pesatura di medie dimensioni e incubare sul ghiaccio per 15-30 minuti.
NOT: Questa fase di incubazione potrebbe non essere necessaria; questo passaggio è stato incluso nel protocollo di convalida JaCVAM, ma non è menzionato nelle linee guida del test dell'OCSE8,9. - Trasferire lo stomaco in un pezzo pulito di paraffina (o parabola Petri o pescherezza barca) e raschiare delicatamente l'epitelio superficiale due o più volte utilizzando una lama bisturi o un raschietto politetrafluoreee (PTFE) per rimuovere i detriti. Raccogliere la mucosa gastrica con pinze e risciacquare con 1 mL di tampone di mincing freddo utilizzando un pipet. Trasferire il tessuto dello stomaco su una superficie o un piatto pulito.
- Raschiare con cura l'epitelio dello stomaco 4-5 volte (più se necessario) in soluzione di macinocing (tipicamente 250 l/topi o 500-1.000 l/ratto) con la parte posteriore di una lama bisturio o raschietto PTFE per rilasciare le cellule. Facoltativamente, risciacquare il tessuto con un volume approssimativamente uguale di soluzione di mincing per recuperare più cellule. Raccogliere la soluzione di macisatura contenente le cellule rilasciate utilizzando un pipet e trasferire in un tubo di microcentrifuga sul ghiaccio.
- Per i campioni di tessuto di mincing, tagliare una sezione di 3-4 mm di tessuto epatico o cerebrale o 5 mm di duodenum e trasferirlo in un tubo di microcentrismo da 1,5 o 2,0 mL etichettato contenente 1 mL di soluzione di mincing freddo. Trita rapidamente (30 s) con forbici macistrate fino a disperdersi finemente, mantenendo il campione freddo. Il campione dovrebbe apparire leggermente torbida; tuttavia, è comune per alcuni pezzi di rimanere che si stabilirà sul fondo del tubo.
- Per utilizzare il tessuto fresco, mantenere tubi contenenti tessuto macinato o cellule epiteliali raschiate sul ghiaccio; utilizzare il tessuto per preparare i vetrini delle comete entro circa 1 h di raccolta (delineati nella sezione 2).
- Per il congelamento dei campioni di tessuto, subito dopo la mintura o la raccolta di cellule epiteliali raschiate
- Fissare il coperchio del tubo e far cadere il tubo in una fiaschetta Dewar contenente azoto liquido; i tubi possono essere mantenuti in azoto liquido per tutta la durata della necropsia (3 h).
- Recuperare i tubi utilizzando un mestolo e mettere sul ghiaccio secco per ordinare. Trasferire i tubi in una scatola congelante su ghiaccio secco e conservare in un congelatore -80 gradi centigradi.
- Per preparare cubetti di tessuto congelati, tagliare diversi piccoli pezzi di tessuto (4 mm di diametro e 6 mm di lunghezza; Figura 1).
- Li lasci direttamente su una barca di pesatura di medie dimensioni o in un altro recipiente adatto contenente azoto liquido.
- Attendere qualche secondo che i pezzi si congelino completamente e trasferiscano singoli cubetti di tessuto congelato in un tubo di microcentrifuga etichettato o criotubo mantenuto su ghiaccio secco; non permettere che i pezzi si aggregano durante il processo di congelamento.
- Trasferire i tubi in una scatola congelante su ghiaccio secco e conservare in un congelatore -80 gradi centigradi.
2. Preparazione del vetrino
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Per tessuto macinato/graffiato
- Mantenere i tubi contenenti tessuti freschi sul ghiaccio bagnato.
- Mettere i tubi di tessuto congelato in un bagno d'acqua a temperatura ambiente fino a quando i campioni sono completamente scongelati, garantendo al contempo che siano mantenuti freddi. Trasferire immediatamente i tubi sul ghiaccio.
- Immediatamente prima di ritirare le celle per il trasferimento in agarose (passaggio 2.3), mescolare ogni sospensione cellulare delicatamente; per i campioni non filtrati, lasciare che grandi pezzi si depositino sul fondo del tubo. Mantenere tutti i tubi sul ghiaccio fino a quando i vetrini sono stati preparati per tutti i campioni.
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Per tessuti a cubetti
- Recuperare i tubi contenenti cubetti di tessuto dal congelatore a 80 gradi e mantenerli sul ghiaccio secco fino alla preparazione del vetrino.
- Aliquota 1 mL del mezzo del commerciante (0,14 M NaCl, 1,47 mM KH2PO4, 2,7 mM KCl, 8,1 mM Na2HPO4, 10 mM NaEDTA, pH 7.4) o soluzione di macineria in un tubo di microcentrismo da 1,7 ml etichettato per ogni campione e mantenimento sul ghiaccio.
- Lavorando rapidamente per evitare lo scongelamento dei tessuti, inserire un cubo di tessutoFigure 1nell'estremità aperta di un dispositivo di maci; Possono essere utilizzati più pezzi di tessuto; se necessario, il tessuto congelato può essere tagliato o incrinato in pezzi più piccoli utilizzando un mortaio freddo e pestello per ridurre la dimensione del cubo per adattarsi al dispositivo.
- Inserire rapidamente uno stantuffo di siringa abbinato alle dimensioni nel dispositivo per spingere il tessuto verso l'estremità della rete che deve poi essere collocato nel tubo di microcentrifuga contenente soluzione di maciiniera fredda; evitare di forzare il liquido a traboccare il tubo. Immergere l'estremità della rete del dispositivo per circa 5-10 s nella soluzione di maciazione fredda per consentire al tessuto di scongelarsi completamente.
- Deprimere completamente lo stantuffo fino a quando le cellule non vengono viste estruso attraverso i pori della maglia. Quindi tirare lo stantuffo di circa 2,5 cm e premere di nuovo verso il basso completamente; ripetere il processo più volte fino a quando la soluzione di maciètura diventa torbida.
- Se necessario, il campione può essere concentrato per aumentare la densità cellulare mediante centrifugazione refrigerata per 5 min a 1100 giri/m e la rimozione di una porzione del supernatante.
- Ripetere il processo per tutti i campioni utilizzando un dispositivo di macino di tessuto pulito per ogni campione.
- Trasferire 50 - L di sospensione cellulare su un tubo contenente 450 gradi L dello 0,5% di aga roseo a 37 gradi centigradi.
NOT: I volumi possono essere rettificati, ma l'importo di agarose dovrebbe essere pari all'1%. - Preparare e segnare diapositive come descritto in precedenza10,11.
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Representative Results
Studio 1
Il fegato è stato raccolto da due coorti di ratti Maschi Sprague Dawley somministrato olio di mais per 4 giorni, sfalsati da una settimana. I vetrini sono stati preparati da tessuto appena macinato, tessuto macinato congelato e tessuto a cubetti congelato lavorato nella soluzione media o di maciazione del tessuto utilizzando il dispositivo di maci; I tessuti congelati ottenuti da animali della prima coorte sono stati valutati dopo lo stoccaggio del congelatore per 3,5 mesi. I tessuti congelati ottenuti da animali della seconda coorte sono stati valutati dopo lo stoccaggio per 6 mesi. Le comete che mostrano la caratteristica morfologia del riccio, indicativa di cellule fortemente danneggiate (di eziologia incerta che possono includere citotossicità o stress meccanico), non sono state incluse nel punteggio di % DNA della coda; la percentuale di ricci, identificata unicamente al momento dell'ispezione visiva della morfologia, è stata schedata separatamente come da OCSE TG 4899. I risultati medi del DNA della coda % per gli animali nelle due coorti (in base al punteggio di 100 cellule/animali) sono riassunti nella Figura 2A. Tutti i metodi che utilizzano tessuto congelato hanno prodotto valori superiori, anche se non sempre statisticamente diversi, rispetto al tessuto fresco. Considerando che il limite superiore raccomandato per il DNA della coda % nel fegato di ratto fresco è del 6%9, questi risultati dimostrano che uno di questi metodi può funzionare bene per la valutazione del tessuto congelato. Soluzione di mincing eseguito almeno ugualmente così come il mezzo di Merchant; poiché quest'ultimo richiede più tempo per la preparazione, è stata selezionata una soluzione di mincing per studi successivi. Non vi sono state differenze statisticamente significative nei danni nei tessuti della seconda coorte animale che erano state conservate congelate per 6 mesi prima della lavorazione rispetto ai tessuti della prima coorte trattata dopo 3,5 mesi di stoccaggio. Nel complesso, i ricci della percentuale erano paralleli al DNA della coda %, anche se il % ricci nei tessuti congelati rispetto al tessuto fresco era più variabile rispetto al DNA della coda % (Figura 2B). I valori di questi punti finali nel tessuto fresco forniscono una linea di base rispetto alla quale è possibile misurare il danno al DNA introdotto dai metodi di congelamento.
Studio 2
I topi B6C3F1 sono stati somministrati salina normale o il mutagen, metanonerofonato etilofato (EMS) a 200 mg/kg/giorno in normale salina per tre giorni. Il tessuto è stato raccolto 3 h dopo la somministrazione della dose finale e lavorato fresco nel saggio cometa. Tessuto aggiuntivo è stato congelato flash dopo essere stato macinato in soluzione di macinocing o raccolto come cubi. I campioni al cubo sono stati successivamente elaborati in soluzione di macinolo utilizzando il dispositivo setaccio immediatamente prima della preparazione dei vetrini di cometa. Sulla premessa che le cellule che mostrano la morfologia del riccio rappresentano cellule all'estremità superiore del continuum di danni al DNA indotti da sostanze chimiche, i ricci punteggiati dal software di imaging sono stati inclusi nel punteggio automatizzato di % DNA della coda. I risultati del DNA della coda % (basati sul punteggio di 150 cellule/animali) sono riassunti nella Figura 3. Il tessuto epatico congelato come cubetti e successivamente lavorato utilizzando il dispositivo di macinatura del tessuto ha prodotto risultati molto simili a quelli ottenuti per il tessuto appena macinato. I valori del DNA della coda % erano leggermente più elevati per il tessuto macinato congelato, ma i valori di base per il tessuto macinato congelato erano inferiori al 6%, come raccomandato per il fegato di ratto fresco nella linea guida del test dell'OCSE per il test della cometa9. Un aumento statisticamente significativo del danno al DNA indotto dallo SM è stato misurato in campioni di tessuto elaborati con tutti e tre i metodi.
Studio 3
Porzioni di tessuto epatico raccolte da topi B6C3F1 femminili in uno studio di tossicità di 90 giorni di una sostanza chimica di prova condotta da un laboratorio remoto sono state macinate o tagliate a cubetti, lampeggiano congelate e spedite durante la notte su ghiaccio secco a questo laboratorio per l'analisi. Il tessuto macinato è stato analizzato in seguito a 2 mesi di conservazione del congelatore (Figura 4). Le cellule che sono apparse al momento dell'ispezione visiva come ricci ma erano punteggiabili dal software di imaging sono state incluse nelle misurazioni del DNA della coda % (150 cellule con punteggio/animale). Il numero di ricci (sia punteggiabili che noncorabili) identificati esclusivamente al momento dell'ispezione visiva della morfologia in un totale di 150 cellule/animali è stato schedato separatamente per fornire informazioni sulla frequenza di queste cellule altamente danneggiate. Complessivamente, il danno al DNA (misurato come % DNA della coda) nel tessuto macinato congelato è stato elevato in tutti i gruppi di dosi con una notevole variabilità animale-animale, anche nel gruppo di controllo del veicolo. I risultati della percentuale di DNA della coda erano correlati alla percentuale di ricci (identificati esclusivamente sulla base della morfologia), indicando che i ricci contribuivano in modo sostanziale all'elevato livello di danno al DNA osservato in questi campioni. Sulla base dell'elevato livello di fondo del danno del DNA misurato nel tessuto macinato, il tessuto malato congelato è stato successivamente analizzato dopo 22 mesi di conservazione (Figura 4). Sia il danno al DNA che il % i ricci erano molto bassi nel tessuto cubo congelato flash che era stato preparato in parallelo con i campioni di tessuto macinato. Pertanto, le cellule altamente danneggiate riflesse dalla morfologia del riccio nei campioni di tessuto macinato non erano chiaramente il risultato di un processo biologico, ma erano probabilmente introdotte da interruzione meccanica e/o riscaldamento dei tessuti durante la procedura di macizolazione prima di essere congelate flash; questi dati sono stati considerati inaffidabili. Fortunatamente, l'analisi del tessuto cubo congelato ha fornito un chiaro risultato, vale a dire la mancanza di una risposta al danno del DNA nel fegato dei topi femminili dopo tre mesi di esposizione alla sostanza chimica di prova. I risultati forniti da questo caso di studio esemplificano il rischio associato alla preparazione di tessuti macinati da un laboratorio relativamente inesperto e dimostrano l'utilità del metodo dei tessuti convogliati a cubetti per aggirare questo problema.
Figura 1: Dispositivo di macissitura dei tessuti e stantuffo utilizzato per preparare una singola sospensione cellulare dal tessuto congelato. Il prototipo del dispositivo (4,5 mm di diametro interno, dimensione della rete di 0,4 mm) è stato gentilmente fornito dal Dr. Gunnar Brunborg (NorGenotech, Oslo, Norvegia). Il pannello a destra fornisce un esempio di un cubo di tessuto di dimensioni appropriate da utilizzare con il dispositivo. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 2: Confronto dei danni al DNA misurato in campioni di fegato di topo macinati e congelati freschi e congelati. Il fegato è stato raccolto da due coorti sfalsate (n / 5/gruppo/ coorte) di ratti Maschi Sprague Dawley somministrato olio di mais per 4 giorni. I vetrini sono stati preparati da tessuto appena macinato, tessuto macinato congelato e tessuto a cubetti congelato lavorato nella soluzione media o di maciazione del tessuto utilizzando il dispositivo di maci; I tessuti congelati sono stati analizzati 3,5 e 6 mesi seguendo la necropsia rispettivamente per le coorti 1 e 2. Le comete classificate come ricci a base di morfologia non sono state incluse nel punteggio di % DNA della coda. (A) Coorte media % risultati del DNA della coda. (B) Coorte significa % risultati riccio. Le barre di errore riflettono la deviazione standard. Sono state condotte analisi statistiche per confrontare i tessuti congelati con i tessuti freschi per ogni coorte e per confrontare i risultati tra le due coorti per ogni metodo di preparazione dei tessuti. Statisticamente diverso (p < 0,05) dal tessuto macinato fresco all'interno della stessa coorte utilizzando il test t di Student; #statistically diversi (p < 0,05) dal tessuto macinato fresco all'interno della stessa coorte utilizzando il test Mann-Whitney per dati distribuiti normalmente; Differenza statistica (p < 0,05) tra le coorti che utilizzano il test t di Student. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 3: Confronto dei danni al DNA indotti dall'EMS nel tessuto epatico elaborati con diverse procedure. % DNA della coda per topi B6C3F1 femminili somministrati veicolo o 200 mg/kg/giorno EMS per tre giorni (n . 5/gruppo). I fegati sono stati raccolti 3 h dopo la somministrazione di dose finale e trasformati freschi nel saggio cometa. Tessuto epatico aggiuntivo è stato congelato flash dopo essere stato macinato in soluzione di mincing o raccolto come cubi; campioni cubeti sono stati omogeneizzati utilizzando il dispositivo di macizolazione dei tessuti immediatamente prima della preparazione di vetrini di cometa. Per garantire che le cellule all'estremità superiore del continuum del danno del DNA indotto dallo SME non fossero escluse dall'analisi, sono state incluse comete che al momento dell'ispezione visiva sembravano soddisfare la descrizione morfologica dei ricci, ma che risultavano essere bruciabili dal software di imaging. Le barre di errore riflettono la deviazione standard. Il test t di Uno studente è stato utilizzato per confrontare la quantità di danni al DNA negli animali esposti a EMS rispetto a quello negli animali di controllo del veicolo per ogni metodo di preparazione del campione. - Aumento statisticamente significativo a p < 0,05. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
come illustrato nella Figura 4. Case study che dimostra l'utilità del metodo del cubo congelato e dei dati di alta qualità ottenuti dopo una conservazione prolungata. Porzioni di tessuto epatico raccolte da topi b6C3F1 femminili esposti a varie concentrazioni di una sostanza chimica di prova per 90 giorni (n 5/gruppo) sono stati macinati o tagliati a cubetti e flash congelati presso il laboratorio in vita e successivamente spediti in questo laboratorio per l'analisi. Il tessuto macinato è stato analizzato dopo 2 mesi di conservazione; a causa della scarsa qualità dei dati, il tessuto cubo congelato è stato successivamente analizzato dopo 22 mesi di conservazione. Per garantire che le cellule all'estremità alta del continuum dei danni al DNA causati da sostanze chimiche non siano stati esclusi dall'analisi, sono stati inclusi i dati provenienti da cellule suope che, al momento dell'ispezione visiva sembravano essere ricci. (A) Risultati del DNA della coda media del gruppo. Rispetto al tessuto macinato, sono stati ottenuti risultati di alta qualità da tessuto cubo congelato, anche dopo un accumulo prolungato. (B) I risultati del riccio medio del gruppo. La scarsa tecnica di mincing è evidente dall'ampio danno non biologico del DNA osservato come comete di riccio nei campioni di tessuto macinato. Le barre di errore riflettono la deviazione standard. Un ANOVA con il test di Dunnett è stato utilizzato per valutare una risposta positiva alla sostanza chimica di prova per ogni metodo di preparazione del campione. Per entrambi i metodi non sono stati rilevati gruppi di dose statisticamente significativi (p < 0,05). Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
Figura 5: Danno al DNA di base misurato nei tessuti cerebrali del ratto congelato. I risultati della testina di cometa sono forniti per i tessuti macinati o al cubo congelati che rappresentano diverse regioni del cervello dei ratti Sprague Dawley maschi e femmine. I dati (generati includendo comete a riccio setacciabile) sono stati raccolti nel corso di diversi studi; n - numero totale di tessuti cerebrali valutati per ogni metodo di preparazione del campione. Le barre di errore riflettono la deviazione standard. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
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Discussion
Come dimostrato in precedenza7,12,13, correttamente gestito flash tessuto macinato congelato fornisce buoni risultati nel test cometa. Infatti, i valori del DNA della coda % di base per il ratto macinato congelato e il fegato di topo preparati nel nostro laboratorio sono in genere ,6%, come raccomandato dalla guida del test dell'OCSE9 per campioni di fegato di ratto appena macinato. Buoni risultati sono stati ottenuti da più laboratori utilizzando una varietà di tipi di tessuto che sono stati macinati e conservati congelati; allo stesso modo, flash congelati cellule epiteliali raschiate da organi nel tratto gastrointestinale sono stati utilizzati con successo nel saggio cometa7,12,13,14. Il tessuto macinato/raschiato congelato sembra essere relativamente stabile per almeno diversi mesi. Il metodo che utilizza l'omogeneizzazione di cubi congelati flash di fegato utilizzando un dispositivo di maciificazione dei tessuti originariamente descritto da Jackson et al.6, produce risultati nel test della cometa almeno paragonabile e in genere migliore (cioè, livelli di base inferiori di danno al DNA) rispetto a quelli ottenuti per il fegato macinato congelato. Questa metodologia è applicabile anche ad altri tipi di tessuto6; nella nostra esperienza, risultati eccellenti sono stati ottenuti allo stesso modo utilizzando duodenum congelato cubo (dati non mostrati) e tessuto cerebrale (Figura 5). Tuttavia, il dispositivo setaccio potrebbe non essere suscettibile di omogeneizzazione di tutti i tipi di tessuto. In uno studio pilota, abbiamo scoperto che il tessuto muscolare del cuore non poteva essere facilmente forzato attraverso il dispositivo setaccio, con conseguente scarso recupero cellulare; invece, la riduzione del tessuto immediatamente al disgelo ha prodotto sospensioni cellulari con valori di DNA della coda % al basamento paragonabili a quelli macinati prima del congelamento del flash (dati non mostrati). In particolare, quando viene maneggiato correttamente durante la necroscopia (cioè, mantenuto freddo e umido; flash congelato come singoli pezzi e non consentito di scongelare parzialmente), il tessuto a cubetti congelato flash ha prodotto danni al DNA di base molto bassi anche dopo circa due anni di stoccaggio del congelatore (Figura 4).
L'uso di sospensioni cellulari congelate o di tessuto a cubetti nel test della cometa offre diversi vantaggi rispetto ai tessuti freschi, tra cui: 1) facilitazione della raccolta simultanea di più tipi di cometa per l'analisi della cometa; 2) facilitazione della raccolta dei tessuti presso un laboratorio in vita e trasferimento di campioni in un altro laboratorio per l'analisi; 3) convenienza per rinviare la decisione di analizzare un dato tessuto per mesi. Anche se l'omogeneizzazione del tessuto congelato al momento della preparazione dello scivolo è più ingombrante della maciacquatura del tessuto fresco al momento del raccolto, l'uso di tessuto cubo congelato offre diversi vantaggi aggiuntivi che includono: 1) nessun requisito per il personale addestrato nel saggio della cometa (ad esempio, unità mobile) o forniture/reagenti specializzati in necropri; 2) meno opportunità di errori tecnici (ad esempio, riscaldamento del campione; rilascio insufficiente delle cellule; dimensione del campione di tessuto sub-ottimale) durante la necropsia; 3) minima opportunità di introdurre danni al DNA meccanico durante la lavorazione del campione (ad esempio, taglio di maciazione); e 4) bassi danni al DNA di base, anche dopo un accumulo prolungato.
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Disclosures
Questo lavoro è stato sostenuto dal Programma di Ricerca Intramurale del NIH, National Institute of Environmental Health Sciences (NIEHS) sotto contratto HHSN273201300009C; tuttavia, le dichiarazioni, le opinioni o le conclusioni in esso contenute non rappresentano necessariamente le dichiarazioni, le opinioni o le conclusioni del NIEHS, della NIH o del governo degli Stati Uniti.
Acknowledgments
Gli autori sono in debito con Lincoln Martin e Kelley Owens per l'assistenza tecnica esperta nella preparazione e nel punteggio delle diapositive della cometa e della dott.ssa Carol Swartz per l'esecuzione di analisi statistiche. Gli autori riconoscono anche i contributi di supporto dei membri dei programmi di tossicologia genetica, tossicologia investigativa e necropsia presso ILS.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cryovials | Corning Costar | 430488 | |
| Dental Wax Sheets | Electron Microscopy Sciences | 72670 | |
| Dissecting (Mincing) Micro Scissors | Fisher Scientific | 08-953-1B | |
| DMSO | Sigma-Aldrich | D8418 | |
| Hank's Balanced Salt Solution | Gibco | 14175-079 | |
| KCl | Teknova | P0315-10 | |
| KH2PO4 | Sigma-Aldrich | P9791 | |
| Low Melting Point Agarose | Lonza | 50081 | |
| Microfuge Tubes (1.7 mL) | Corning | 3207 | |
| Na2EDTA | Sigma-Aldrich | E5134 | |
| Na2HPO4 | Sigma-Aldrich | S7907 | |
| NaCl | Sigma-Aldrich | S6191 | |
| Neutral Buffered Formalin | Leica | 600 | |
| Scalpel Blades | Miltex | 4-110 | |
| Syringe Plunger (1 mL) | Fisher Scientific or Vitality Medical | 14-826-88; 8881901014 | Becton Dickinson or Monoject tuberculin syringe |
| Tissue Mincing Device | NorGenoTech (Oslo, Norway) | None | Small variability in diameter observed which can affect snuggness of plunger. |
| Tweezers, plastic | Trade Winds Direct | DF8088N | Reinforced nylon, nonsterile, blunt tip, autoclavable; tradewindsdirect.com |
| Weigh Boats | Krackler Scientific/Heathrow Scientific | 6290-14251B |
References
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