Summary

Cultivo primario de neuronas aisladas del cerebelo del ratón embrionario

Published: October 26, 2019
doi:

Summary

Realizar experimentos in vitro para reflejar las condiciones in vivo lo más adecuadamente posible no es una tarea fácil. El uso de cultivos celulares primarios es un paso importante hacia la comprensión de la biología celular en todo un organismo. El protocolo proporcionado describe cómo crecer y cultivar con éxito las neuronas cerebelosas de ratón embrionarios.

Abstract

El uso de cultivos celulares primarios se ha convertido en una de las principales herramientas para estudiar el sistema nervioso in vitro. El objetivo final del uso de este sistema de modelos simplificado es proporcionar un microambiente controlado y mantener la alta tasa de supervivencia y las características naturales de las células neuronales y no neuronales disociadas tanto como sea posible en condiciones in vitro. En este artículo, demostramos un método de aislar las neuronas primarias del cerebelo del ratón en desarrollo, colocándolas en un entorno in vitro, estableciendo su crecimiento y monitoreando su viabilidad y diferenciación durante varias semanas. Este método es aplicable a las neuronas embrionarias disociadas del cerebelo entre los días embrionarios 12-18.

Introduction

Durante varias décadas, las líneas celulares se han utilizado ampliamente como una herramienta de alto rendimiento en estudios preclínicos e investigaciones biológicas. Coste-efectividad, crecimiento rápido, y la reducción del uso de animales vivos son algunos beneficios del uso de estas células. Sin embargo, las alteraciones genéticas y los cambios fenotípicos se acumulan después de varios pasajes in vitro1. La identificación errónea de las líneas celulares y la disparidad genética de las células primarias pueden dar lugar a experimentos irreproducibles y conclusiones falsas2,3,4,5. Por lo tanto, a pesar de algunas similitudes con las células diferenciadas como las neuronas (por ejemplo, neurotransmisores, canales iónicos, receptores y otras proteínas específicas de las neuronas), las líneas celulares neuronales no pueden replicar el fenotipo completo de las neuronas. El uso de neuronas maduras es otra opción; sin embargo, estas células son células postmitoticas no divisorias que son difíciles de propagar en el cultivo. Además, el reingreso en el ciclo celular puede precipitar la apoptosis6.

El cultivo celular tridimensional (3D), los cultivos de rebanadas organotípicas y los cultivos organoides se han desarrollado para proporcionar un entorno en el que las células pueden organizarse en una forma 3D que imita el entorno in vivo. Por lo tanto, la comunicación de célula a célula, la migración, la invasión de células tumorales en los tejidos circundantes, y la angiogénesis se pueden estudiar7. Sin embargo, los costos adicionales de usar proteínas de matriz celular adicional (ECM) o hidrogeles sintéticos como ropa de cama, dificultad en la toma de imágenes y compatibilidad con instrumentos de cribado de alto rendimiento son inconvenientes considerables del cultivo de células 3D. Una desventaja importante del cultivo de rebanadas de tejido organotípico es el uso de un gran número de animales y los efectos adversos de la axotomía, que conduce a la inaccesibilidad de las dianas y factores de crecimiento de los axones, y en consecuencia la muerte neuronal8.

Por lo tanto, un enfoque alternativo, que evita los problemas con las líneas celulares, la dificultad del crecimiento de las células maduras y la complejidad de los tejidos, es la maduración in vitro de células primarias inmaduras. Las células primarias se derivan directamente del tejido humano o animal y se disocian utilizando métodos enzimáticos y/o mecánicos9. Los principios principales de aislamiento, sembrado y mantenimiento en el medio de cultivo son similares independientemente de la fuente de tejido. Sin embargo, los factores tróficos necesarios para promover la proliferación y la maduración son altamente específicos de las células6.

Conocer la “fecha de nacimiento” de cada tipo de célula cerebelosa es un requisito previo para diseñar un experimento de cultivo primario. En general, las células purkinje (PC) y las neuronas de los núcleos cerebelosos (CN), nacen antes que las células más pequeñas, incluidas las interneuronas (por ejemplo, cesta, células estelares) y las células del gránulo. En ratones, los PC emergen entre el día embrionario (E)10–E13, mientras que las neuronas CN aproximadamente E9–E1210.

Otras neuronas cerebelosas nacen mucho más tarde. Por ejemplo, en ratones, la subpoblación Golgi de interneuronas se genera a partir de VZ a (E14-E18) y las interneuronas restantes (célulade cesta y células estelares) ubicadas en la capa molecular emergen de células progenitoras divisorias en la materia blanca entre los primeros postnatal (P)0–P711. Las células de gránulos se generan a partir de la zona germinal externa (EGZ), una zona germinal secundaria que se deriva del labio rombio rostral y pasa por la división terminal después del nacimiento. Pero antes de que sus precursores surjan del labio rombio de E13-E16, las células ya han migrado rostrally a lo largo de la superficie pia para hacer una capa delgada de células en la superficie dorsal del anlage de cerebelo. Las células macrogliales no neuronales como los astrocitos y los oligodendrocitos, que se originan en el neuroepitelio ventricular, nacen en E13.5-P0 y P0-P7 respectivamente11,12,13,14 ,15. Microglia se derivan de las células mieloides mieloides primitivas de yema-sac entre E8–E10 y después de la invasión en el sistema nervioso central se pueden detectar en el cerebro del ratón por E916.

El método presentado en este artículo se basa en el desarrollado originalmente por Furuya et al. y Tabata et al.17,18, que fue optimizado para el cultivo primario de células Purkinje derivadas de Wistar rat cerebella. Ahora hemos adaptado este método y lo hemos modificado cuidadosamente para estudiar el crecimiento de las neuronas cerebelosas de ratón19. A diferencia de nuestro nuevo protocolo, el medio de disección en frío es el principal tampón de lavado utilizado durante los pasos de disección y disociación antes de añadir el medio de sembrado en el protocolo17de Furuya. Este tampón carece de la nutrición, los factores de crecimiento y las hormonas (todo en el medio Eagle modificado de Dulbecco:mezcla de nutrientes F-12 [DMEM/F12]) que son necesarios para apoyar el crecimiento celular y la supervivencia durante los pasos antes mencionados. Además, sobre la base de nuestra amplia experiencia con cultivos cebelosos primarios murinos, hemos utilizado 500 s de medio de cultivo en cada pozo (en lugar de 1 mL) y aumentado la concentración de tri-yodotironina a 0,5 ng/ml, lo que mejora el crecimiento de las células neuronales, en particular aquellos con un fenotipo celular Purkinje, y promueve el crecimiento de las ramas dendríticas en el cultivo. El método principal que aparece en este artículo se puede aplicar ampliamente a otros pequeños roedores (por ejemplo, ardillas y hámsters) durante el desarrollo embrionario y puede utilizarse para estudiar la neurogénesis cerebelosa y la diferenciación en las diversas etapas embrionarias, que difieren entre especies.

Protocol

Todos los procedimientos de animales se realizaron de acuerdo con las regulaciones institucionales y la Guía para el Cuidado y Uso de Animales Experimentales del Consejo Canadiense para el Cuidado de Animales y ha sido aprobado por las autoridades locales (“el Bannatyne Campus Animal Care Comité”). Se hicieron todos los esfuerzos para minimizar el número y el sufrimiento de los animales utilizados. La profundidad adecuada de la anestesia se confirmó observando que no hubo ningún cambio en la frecuencia respiratoria …

Representative Results

Basados en las diferentes fechas de nacimiento de los subtipos neuronales en el cerebelo, los cultivos de embriones de ratón E12-E18 produjeron diferentes tipos de células. Las neuronas de proyección grandes, como las neuronas CN (E9-E12) y los PC (E10-E13), surgieron temprano durante el desarrollo cerebeloso. En ratones, las células de gránulos y Golgi surgieron entre el E13-E18 y se sometieron a divisiones terminales hasta la semana postnatal 4. La sustitución del medio viejo I por el …

Discussion

El uso de cultivos primarios es un método bien conocido aplicable a todos los tipos de neuronas17,18,19. En el protocolo presentado, explicamos cómo aislar las neuronas cerebelosas y mantener su viabilidad con una supervivencia óptima in vitro durante un máximo de 3 semanas. El cultivo primario de células cerebelosas, que fueron aisladas en E15-E18, confirma la recolección de tres clases de neuronas grandes: PCs, células …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Estos estudios fueron apoyados por subvenciones del Consejo de Investigación en Ciencias Naturales e Ingeniería (HM: NSERC Discovery Grant – RGPIN-2018-06040), y Children Hospital Research Institute of Manitoba (HM: Grant n.o 320035), y la ALS Canada-Brain Canada Arthur J. Hudson Translational Team Grant (JK, HM).

Materials

Adobe Photoshop CS5 Version 12 Adobe Inc
Anti-Sodium Channel (SCN)PN4 (Nav1.6) Sigma S0438 3 μg/mL
Bovine Serum Albumin Millipore Sigma A3608
CALB1 Swant Swiss Antibodies (Polyclonal) CB38 1/5000 dilution
CALB1 Swant Swiss Antibodies (Monoclonal) 300 1/1000 dilution
Cytosine β-D-arabinofuranoside or Cytosine Arabinoside (Ara-C) Millipore Sigma C1768
DNase I from bovine pancreas Roche 11284932001
Dressing Forceps Delasco DF-45
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM-F12) Lonza 12-719F
Fisherbrand Cover Glasses: Circles fisher scientific 12-545-81
Gentamicin Gibco 15710-064
Hanks’ Balanced Salt Solution (HBSS) Gibco 14185-052
Insulin from bovine pancreas Millipore sigma I5500, I6634, I1882, and I4011
Large Scissor Stoelting 52134-38
L-glutamine Gibco 25030-081
Metallized Hemacytometer Hausser Bright-Line 3100
Microdissection Forceps Merlan 624734
Pattern 5 Tweezer Dixon 291-9454
Phosphate Buffered Saline (PBS) Fisher BioReagents BP399-26
Poly-L-Ornithine Millipore Sigma P4638
Progesteron (P4) Millipore sigma P8783
PVALB Swant Swiss Antibodies 235 1/1500 dilution
Samll Scissor WPI Swiss Scissors, 9cm 504519
Sodium Selenite Millipore Sigma S9133
Transferrin Millipore Sigma T8158
Tri-iodothyronine (T3) Millipore Sigma T2877
Trypsin Gibco 15090-046
Zeiss Fluorescence microscope Zeiss Z2 Imager

References

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Shabanipour, S., Dalvand, A., Jiao, X., Rahimi Balaei, M., Chung, S. H., Kong, J., Del Bigio, M. R., Marzban, H. Primary Culture of Neurons Isolated from Embryonic Mouse Cerebellum. J. Vis. Exp. (152), e60168, doi:10.3791/60168 (2019).

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