Summary

Quantifier les arthropodes corticolous à l'aide de pièges collants

Published: January 19, 2020
doi:

Summary

Nous décrivons une approche semi-quantitative de mesurer des caractéristiques des communautés d’arthropodes de corticolous (écorce-habitant). Nous avons placé des pièges collants fabriqués commercialement sur des boulons d’arbres pour estimer l’abondance, la longueur totale (un substitut à la biomasse), la richesse et la diversité de Shannon pour la comparaison entre les espèces d’arbres.

Abstract

Les arthropodes terrestres jouent un rôle important dans notre environnement. La quantification des arthropodes d’une manière qui permet un indice précis ou une estimation de la densité nécessite une méthode avec une forte probabilité de détection et une zone d’échantillonnage cohérente. Nous avons utilisé des pièges collants manufacturés pour comparer l’abondance, la longueur totale (un substitut pour la biomasse), la richesse et la diversité Shannon des arthropodes corticolous parmi les boles de 5 espèces d’arbres. L’efficacité de cette méthode était suffisante pour détecter la variation des arthropodes de corticolous parmi les espèces d’arbres et fournir une erreur standard de la moyenne qui était de 20 % de la moyenne pour toutes les estimations avec des tailles d’échantillon de 7 à 15 arbres individuels de chaque espèce. Nos résultats indiquent, même avec ces tailles modérées d’échantillon, le niveau de précision des mesures de communauté d’arthropodes produites avec cette approche est proportionné pour adresser la plupart des questions écologiques concernant la variation temporelle et spatiale dans les arthropodes de corticolous. Les résultats de cette méthode diffèrent d’autres approches quantitatives telles que le renversement chimique, l’inspection visuelle et les pièges en entonnoir en ce qu’ils fournissent une indication de l’activité des arthropodes corticolous sur un relativement long terme, mieux y compris le boulon temporaire les résidents, les arthropodes volants qui atterrissent temporairement sur le boulon d’arbre et les arthropodes rampants qui emploient le boulon d’arbre comme itinéraire de voyage du sol au feuillage plus élevé de forêt. En outre, nous croyons que les pièges collants fabriqués commercialement fournissent des estimations plus précises et sont logistiquement plus simples que la méthode précédemment décrite d’appliquer directement un matériau collant à l’écorce des arbres ou d’appliquer un matériau collant sur du ruban adhésif ou d’autres type de support et de l’appliquer à l’écorce de l’arbre.

Introduction

Les arthropodes terrestres jouent un rôle important dans notre environnement. En plus d’être d’intérêt scientifique en leur propre chef, les arthropodes peuvent être à la fois nuisibles et bénéfiques pour d’autres niveaux trophiques (c.-à-d., les cultures, les plantes horticoles, la végétation indigène et la nourriture pour les organismes insectivores1,2,3,4). Ainsi, la compréhension des facteurs qui influencent le développement et l’abondance des communautés d’arthropodes est essentielle pour les agriculteurs5, les gestionnaires de lutte antiparasitaire6, les forestiers4, les biologistes des plantes7, les entomologistes8, et les écologistes de la faune et de la conservation qui étudient la dynamique communautaire et de gérer les organismes insectivores9. La composition et l’abondance des arthropodes varient dans la composition et l’abondance des espèces, tant dans le temps que dans l’espace, selon une variété de paysages écologiques, y compris les communautés végétales, les espèces végétales et entre diverses régions de plantes individuelles. Par exemple, des études ont démontré des différences significatives dans les mesures de la communauté des arthropodes entre les racines, les boles et les tiges, et le feuillage, au sein d’un même arbre individuel10,11. Ces résultats ne sont pas surprenants étant donné que différentes parties d’une même plante, par exemple, les feuilles par rapport aux écorces d’un arbre, fournissent différentes ressources pour lesquelles les arthropodes se sont adaptés pour exploiter. Ainsi, chaque partie de la plante peut soutenir une communauté d’arthropodes différente. Étant donné que les arthropodes d’habitation au feuillage peuvent avoir un impact socio-économique et environnemental aussi important, des efforts considérables ont été déployés pour mesurer les mesures communautaires à l’aide d’approches qualitatives et quantitatives12. Alternativement, beaucoup moins d’efforts ont été consacrés à l’élaboration d’approches de quantification des communautés d’arthropodes corticolous (habitant d’écorce).

À l’initiant des communautés d’arthropodes vivant au feuillage, les communautés d’arthropodes corticolous peuvent être importantes tant du point de vue socio-économique que environnemental. Certaines maladies forestières qui sont causées ou facilitées par les arthropodes corticolous peuvent nuire à la récolte de bois économiquement viable4. En outre, les arthropodes de corticolous peuvent être une composante importante de la chaîne alimentaire dans les communautés forestières13,14. Par exemple, les arthropodes des habitations forestières sont la principale source de nourriture pour de nombreux oiseaux insectivores chant glanage d’écorce15,16. Ainsi, la compréhension des facteurs qui influencent les communautés d’arthropodes corticolous est d’intérêt pour les forestiers et les écologistes de base et appliqués.

Comprendre les facteurs qui influencent la composition et l’abondance des communautés d’arthropodes exige souvent la capture d’individus. Les techniques de capture peuvent généralement être classées en techniques qualitatives qui ne détectent la présence d’une espèce que pour les estimations de l’aire de répartition, de la richesse et de la diversité des espèces17, ou des techniques semi-quantitatives et quantitatives qui permettent un indice ou une estimation de l’abondance et de la densité des individus au sein d’un groupe taxonomique18,19. Les techniques semi-quantitatives et quantitatives permettent aux chercheurs d’estimer ou du moins d’échantillonner de façon cohérente une zone d’échantillon spécifiée et d’estimer la probabilité de détection ou de supposer que la probabilité de détection est non directionnelle et adéquate pour ne pas masquer la capacité du chercheur à détecter les variations spatiales ou temporelles de l’abondance. Les techniques semi-quantitatives et quantitatives pour quantifier les arthropodes corticolous comprennent l’aspiration ou l’échantillonnage sous vide d’une zone spécifique20,21,22, comptage systématique des arthropodes visibles18,23, pièges collants24, divers pièges d’entonnoir ou de type pot8,25, et l’entrée ou les trous émergents26,27.

Un certain nombre de facteurs spatiaux et temporels sont pensés pour mener à la variation dans les communautés d’arthropodes de corticolous11,14,28,29. Par exemple, on pense que la texture de l’écorce d’arbre influence la structure communautaire des arthropodes arboricoles14. En raison de la surface plus diversifiée des troncs d’arbres avec plus d’écorce sillonnée, les arbres avec plus d’écorce sillonnée sont pensés pour soutenir une plus grande diversité et abondance d’arthropodes14.

Avec cet article, nous rapportons une nouvelle approche semi-quantitative d’énumérez les arthropodes de corticolous qui pourraient être employés pour décrire et tester des hypothèses concernant la variation dans les communautés d’arthropodes de corticolous à travers le temps et l’espace avec la précision proportionnelle pour détecter des différences parmi des espèces d’arbre. À l’aide de pièges collants attachés aux troncs d’arbres, nous avons comparé l’abondance, la longueur totale (un substitut pour la masse corporelle), la richesse et la diversité de la communauté des arthropodes sur le bole de chêne blanc (Quercus alba), hickory de noix de porc (Carya glabra), érable à sucre (Acer saccharum), hêtre américain (Fagus grandifolia), et le peuplier tulipe (Liriodendron tulipifera)

Cette étude a été menée dans les sections écologiques d’Ozark et de Shawnee Hills de la forêt nationale de Shawnee (SNF) dans le sud-ouest de l’Illinois. En juillet 2015, nous avons identifié 18 sites (9 dominés par le chêne/hickory et 9 dominés par le hêtre/érable) avec la carte de couverture du stand USFS pour le SNF (allveg2008.shp) dans ArcGIS 10.1.1. Dans les sites xériques, les espèces dominantes étaient le hickory de noyer et le chêne blanc et dans les sites mésiques, les espèces dominantes étaient le hêtre américain, l’érable à sucre et le peuplier tulipe. Pour comparer la communauté des arthropodes bole parmi les espèces d’arbres, à chaque site de collecte de données, nous avons identifié les trois des cinq arbres (chêne blanc, hickory de pigin, érable à sucre, hêtre américain et peuplier tulipe) d’une longueur de 17 cm de diamètre à la hauteur du sein (d.b.h.) le plus près du centre d’un cercle radial de 10 m. Si moins de trois arbres appropriés étaient présents, le cercle a été élargi et l’arbre le plus proche correspondant aux critères a été choisi. Pour chaque arbre choisi, nous avons installé quatre pièges collants à hauteur de poitrine, un face à chaque direction cardinale : nord, sud, est et ouest.

Nous avons recueilli des données sur les arthropodes dans les boles de 54 arbres individuels (12 hickories de noix de porc, 15 chênes blancs, 8 hêtres américains, 12 érables à sucre et 7 peupliers tulipes) parmi les 18 sites. Nous avons regroupé les arthropodes selon une classification simplifiée de guilde par des caractéristiques morphologiques diagnostiques indicatifs étroitement liés des enregistrements phylogénétiques actuels, semblables à ceux des « unités taxonomiques opérationnelles »30,31 (Annexe A). Sur la base de cette classification, nous avons capturé des représentants de 26 guildes dans nos pièges qui étaient chacun en place pendant 9 jours (Annexe A). Parce que notre étude s’est concentrée sur les interactions trophiques entre les espèces d’arbres, les arthropodes corticolous et les oiseaux qui glanent l’écorce, nous avons retiré tous les arthropodes de moins de 3 mm de l’analyse parce que leur importance en tant que ressource alimentaire est minime pour les oiseaux qui glanent l’écorce. Nous avons utilisé un modèle mixte qui comprenait soit la longueur des arthropodes (substitut à la masse corporelle), l’abondance, la diversité Shannon et, la richesse comme variable dépendante, les espèces d’arbres et l’effort (proportion d’arbres couverts de pièges) comme variables fixes, et le site comme une variable aléatoire. Étant donné que tous les pièges d’un seul arbre ont été combinés en un seul échantillon, les arbres individuels n’ont pas été inclus comme variable aléatoire.

Protocol

1. Placement d’un piège sur l’arbre Mesurer le diamètre d’un arbre à hauteur de poitrine. À hauteur de sein dans chaque direction cardinale, pour une zone de la taille du piège collant préfabriqué (planche de colle), utilisez un rasage d’écorce pour enlever l’écorce jusqu’à ce qu’une zone de la taille du piège collant soit assez lisse pour agrafer le piège collant sur l’arbre afin qu’il n’y ait pas d’espace pour les arthropodes de ramper sous le piège. Étiquetez le dos du piège à l’aide d’un mar…

Representative Results

D’après les résultats du modèle mixte, le modèle qui comprenait les espèces d’arbres expliquait le mieux la variation de la longueur totale des arthropodes, de l’abondance et de la diversité, ni l’une ni l’autre des variables indépendantes n’expliquaient une variation substantielle de la richesse, bien que les modèles qui incluaient les espèces d’arbres qui piégeaient l’effort étaient concurrentiels par rapport au modèle null (tableau 1). De plus, la proportio…

Discussion

Bien que des techniques alternatives telles que l’aspiration ou les filets de balayage aient été utilisées, la plupart des tentatives publiées précédemment pour quantifier les arthropodes sur les boulons d’arbres ont utilisé une certaine version de la quantification des arthropodes en inspectant visuellement les boulons d’arbres dans le champ, en utilisant des pesticides chimiques pour tuer les arthropodes dans une zone spécifiée, puis en quantifiant les arthropodes récupérés, ou en plaçant des pièges à en…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs aimeraient remercier le Service des forêts du ministère de l’Agriculture des États-Unis d’avoir financé ce projet par l’entremise de l’Accord 13-CS-11090800-022 de l’USFS. Le soutien à la ZCE a été fourni par NSF-DBI-1263050. ECZ a participé à l’élaboration du concept de recherche, recueilli toutes les données sur le terrain, effectué des analyses en laboratoire et produit le manuscrit original. MWE a participé à l’élaboration du concept de recherche et de la conception de l’étude, a aidé à diriger la collecte de données sur le terrain et l’analyse en laboratoire, et a fortement édité le manuscrit. KPS a participé à la conception de l’étude, dirigé le travail sur le terrain et en laboratoire, participé à l’analyse des données et examiné le manuscrit.

Materials

Straight Draw Bark Shaver, 8" Timber Tuff TMB-08DS
PRO SERIES Bulk Mouse & Insect Glue Boards Catchmaster #60m
Staple gun Stanley TR45D

References

  1. Vitousek, P. M., D’Antonio, C. M., Loope, L. L., Westbrooks, R. Biological invasions as global environmental change. American Scientist. 84, 468-478 (1996).
  2. Pimentel, D., Lach, L., Zuniga, R., Morrison, D. Environmental and Economic Costs of Nonindigenous Species in the United States. BioScience. 50 (1), 53-65 (2000).
  3. Boyd, I. L., Freer-Smith, P. H., Gilligan, C. A., Godfray, H. C. J. The consequence of tree pests and diseases for ecosystem services. Science. 342, 1235773 (2013).
  4. Mercader, R. J., McCullough, D. G., Bedford, J. M. A comparison of girdled ash detection trees and baited artificial traps for Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) detection. Environmental Entomology. 42, 1027-1039 (2013).
  5. Childers, C. C., Ueckermann, E. A. Non-phytoseiid Mesostigmata within citrus orchards in Florida: species distribution, relative and seasonal abundance within trees, associated vines and ground cover plants and additional collection records of mites in citrus orchards. Experimental and Applied Acarology. 65, 331-357 (2015).
  6. Miller, J. D., Lindsay, B. E. Influences on individual initiative to use gypsy moth control in New Hampshire, USA. Environmental Management. 17, 765-772 (1993).
  7. Eisenhauer, N., et al. Soil arthropods beneficially rather than detrimentally impact plant performance in experimental grassland systems of different diversity. Soil Biology & Biochemistry. 42, 1418-1424 (2010).
  8. Moeed, A., Meads, M. J. Invertebrate fauna for four tree species in Orongorongo Valley, New Zealand, as revealed by trunk traps. New Zealand Journal of Ecology. 6, 39-53 (1983).
  9. Sierzega, K., Eichholz, M. W. Understanding the potential biological impacts of modifying disturbance regimes in deciduous forests. Oecologia. 189, 267-277 (2019).
  10. Fritz, &. #. 2. 1. 4. ;. Vertical distribution of epiphytic bryophytes and lichens emphasizes the importance of old beeches in conservation. Biodiversity and Conservation. 18, 289-304 (2009).
  11. Ulyshen, M. D. Arthropod vertical stratification in temperate deciduous forests: Implications for conservation-oriented management. Forest Ecology and Management. 261, 1479-1489 (2011).
  12. Swart, R. C., Pryke, J. S., Roets, F. Optimising the sampling of foliage arthropods from scrubland vegetation for biodiversity studies. African Entomology. 25 (1), 164-174 (2017).
  13. Andre, H. M. Associations between corticolous microarthropod communities and epiphytic cover on bark. Holarctic Ecology. 8, 113-119 (1985).
  14. Nicolai, V. The bark of trees: thermal properties, microclimate and fauna. Oecologia. 69, 148-160 (1986).
  15. Beal, F. E. L. Food of the woodpeckers of the United States (No. 37). U.S. Department of Agriculture, Biological Survey. , (1911).
  16. Williams, J. B., Batzli, G. O. Winter Diet of a Bark-Foraging Guild of Birds. The Wilson Bulletin. 91, 126-131 (1979).
  17. Allison, J. D., Richard, A. R. The Impact of Trap Type and Design Features on Survey and Detection of Bark and Woodboring Beetles and Their Associates: A Review and Meta-Analysis. Annual Review of Entomology. 62, 127-146 (2017).
  18. Hooper, R. G. Arthropod biomass in winter and the age of longleaf pines. Forest Ecology and Management. 82, 115-131 (1996).
  19. Proctor, H. C., et al. Are tree trunks habitats or highways? A comparison of oribatid miteassemblages from hoop-pine bark and litter. Australian Journal of Entomology. 41, 294-299 (2002).
  20. Dietrick, E. J. An improved backpack motor fan for suction sampling of insect populations. Journal of Economic Entomology. 54, 394-395 (1961).
  21. Stewart, A. J. A., Wright, A. F. A new inexpensive suction apparatus for sampling arthropods in grasslands. Ecological Entomology. 20, 98-102 (1995).
  22. Jäntti, A., et al. Prey depletion by the foraging of the Eurasian treecreeper, Certhia familiaris, on tree-trunk arthropods. Oecologia. 128, 488-491 (2001).
  23. Prinzing, A. J. Use of Shifting Microclimatic Mosaics by Arthropods on Exposed Tree Trunks. Annals – Entomological Society of America. 94, 210-218 (2001).
  24. Hébert, C., St-Antoine, L. Oviposition trap to sample eggs of Operophtera bruceata (Lepidoptera: Geometridae) and other wingless geometrid species. Canadian Entomologist. 131 (4), 557-566 (1999).
  25. Hanula, J. L., New, K. C. P. A trap for capturing arthropods crawling up tree boles. Res. Note SRS-3, USDA Forest Service, Southern Research Station. , (1996).
  26. Lozano, C., Kidd, N. A. C., Jervis, M. A., Campos, M. Effects of parasitoid spatial heterogeneity, sex ratio and mutual interference on the interaction between the olive bark beetle Phloeotribus scarahaeoides (Col., Scolytidae) and the pteromalid parasitoid Cheiropachus quadrum (Hym., Pteromalidae). Journal of Applied Entomology. 121 (9/10), 521-528 (1997).
  27. Kelsey, R. G., Gladwin, J. Attraction of Scolytus unispinosus bark beetles to ethanol in water-stressed Douglas-fir branches. Forest Ecology and Management. 144, 229-238 (2001).
  28. Walter, D. E., Lowman, M., Rinker, H. B. Hidden in plain site: Mites in the Canopy. Forest Canopies. , 224-241 (2004).
  29. Pinzón, J., Spence, J. R. Bark-dwelling spider assemblages (Araneae) in the boreal forest: dominance, diversity, composition and life-histories. Journal of Insect Conservation. 14, 439-458 (2010).
  30. Futuyma, D. J., Gould, F. Associations of plants and insects in deciduous forest. Ecological Monographs. 49, 33-50 (1979).
  31. Marshall, S. . Insects: their natural history and diversity: with a photographic guide to insects of eastern North America. , (2006).
  32. Hódar, J. A. The use of regression equations for estimation of arthropod biomass in ecological studies. Acta Oecologia. 17, 421-433 (1996).
  33. Rogers, L. E., Hinds, W. T., Buschbom, R. A general weight vs. length relationship for insects. Annals – Entomological Society of America. 69, 387-389 (1976).
  34. Schoener, T. W. Length-weight regressions in tropical and temperate forest understory insects. Annals – Entomological Society of America. 73, 106-109 (1980).
  35. Hanula, J. L., Franzreb, K. Source, distribution and abundance of macroarthropods on the bark of longleaf pine: potential prey of the red-cockaded woodpecker. Forest Ecology and Management. 102, 89-102 (1998).
  36. Collins, C. S., Conner, R. N., Saenz, D. Influence of hardwood midstroy and pine species on pine bole arthropods. Forest Ecology and Management. 164, 211-220 (2002).
  37. Collins, C. W., Hood, C. E. Gypsy moth tree banding material: How to make, use, and apply it. Bulletin 899 of the United States Department of Agriculture. , (1920).
  38. King, R. S., Wrubleski, D. A. Spatial and diel availability of flying insects as potential duckling food in prairie wetlands. Wetlands. 18, 100-114 (1998).
  39. Atakan, E., Canhilal, R. Evaluation of Yellow Sticky Traps at Various Heights for Monitoring Cotton Insect Pests. Journal of Agricultural and Urban Entomology. 21, 15-24 (2004).
  40. Dial, R., Roughgarden, J. Experimental Removal of Insectivores from Rain Forest Canopy: Direct and Indirect Effects. Ecology. 76, 1821-1834 (1995).
  41. Speight, M. R., Leather, S. R., Lawton, J. H., Likens, G. E. Sampling insects from trees: shoots, stems, and trunks. Insect sampling for forest ecosystems. , 77-115 (2005).
  42. Southwood, T. R. E., Henderson, P. A. . Ecological methods. , (2009).
  43. Sierzega, K., Eichholz, M. W. Understanding the potential biological impacts of modifying disturbance regimes in deciduous forests. Oecologia. 189, 267-277 (2019).

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Eichholz, M. W., Zarri, E. C., Sierzega, K. P. Quantifying Corticolous Arthropods Using Sticky Traps. J. Vis. Exp. (155), e60320, doi:10.3791/60320 (2020).

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