Summary
Organotypische segment culturen zijn een krachtig hulpmiddel om neuroontwikkelingsof degeneratieve/regeneratieve processen te bestuderen. Hier beschrijven we een protocol dat de neuroontwikkelingsdood van Purkinje-cellen in muizen cerebellaire segment culturen modelheeft. Deze methode kan profiteren van onderzoek in neuroprotectieve Drug Discovery.
Abstract
Organotypic slice Culture is een krachtig in-vitro model dat in vivo condities nauwer bootst dan dissociatie van primaire celculturen. In de vroege postnatale ontwikkeling, cerebellaire Purkinje cellen zijn bekend om te gaan door middel van een kwetsbare periode, waarin ze ondergaan geprogrammeerde celdood. Hier bieden we een gedetailleerd protocol voor het uitvoeren van de organotypische cerebellaire segment cultuur van de muis tijdens deze kritieke tijd. De plakjes zijn verder gelabeld om de overleving van de Purkinje-cel en de werkzaamheid van neuroprotectieve behandelingen te beoordelen. Deze methode kan zeer waardevol zijn voor het scherm voor nieuwe neuroactieve moleculen.
Introduction
In vitro Modeling is een essentieel instrument in biomedisch onderzoek. Het stelt onderzoekers in staat om specifieke mechanismen in beperkte celtypen te bestuderen en nauw te beheersen, of in geïsoleerde systemen/organen. Organotypic slice Culture is een veel gebruikte in vitro techniek, vooral op het gebied van neurowetenschappen1. De methode werd voor het eerst vastgesteld door Gähwiler, die hersenen plakjes met behulp van de roller Tube techniek2, en later gewijzigd door Yamamoto et al., die introduceerde het gebruik van een microporeus membraan voor het uitvoeren van corticale segment culturen3. In vergelijking met primaire celculturen presenteren organotypische segment culturen het voordeel van het behoud van de cytoarchitectuur van het weefsel, evenals inheemse celcelverbindingen in het vlak van de weefsel sectie.
Organotypic plakjes zijn gekweekt uit vele delen van het centrale zenuwstelsel, zoals de Hippocampus4, cortex5, striatum6, cerebellum4,7, en ruggenmerg8,9, onder anderen. Ze zijn bewezen een krachtig instrument in de Drug Discovery studies10. De effecten van neuroactieve moleculen kunnen op vele manieren worden beoordeeld: overleving en neurodegeneratie met behulp van immunokleuring en biochemie testen, neuronale circuit vorming, of verstoring met behulp van elektrofysiologie en live-beeldvorming.
Het doel van dit werk is om een eenvoudige methode te beschrijven om organotypische cerebellaire segment cultuur uit te voeren, waarvan bekend is dat het een relevant model is om de Cerebellaire ontwikkeling in vitro na te bootsen. In het bijzonder richtten we ons op de studie van de Purkinje Cell-ontwikkelings dood. In vivo ondergaan de Purkinje-cellen apoptosis tijdens de eerste postnatale week, met een piek op postnatale dag 3 (P3)11. Hetzelfde patroon wordt waargenomen in cerebellaire segment cultuur, met Purkinje neuronen sterven door apoptosis wanneer cerebella worden genomen van dieren tussen P1 en P8, met een piek op P34,12. Het gebruik van de organotypische cerebellaire segment culturen heeft het toegestaan verschillende neuroprotectieve moleculen7,13te identificeren en een deel van de mechanismen te begrijpen die betrokken zijn bij deze geprogrammeerde celdood14,15,16. Hier beschrijven we een protocol op basis van de studie van Stoppini et al.17 in Hippocampus, en aangepast aan cerebellum door Dusart et al.4 het omvat snelle dissectie en hakken van postnatale cerebella; snijden cultuur op een celkweek invoegen met een microporeus membraan, met of zonder neuroprotectieve behandeling; en immunofluorescentie kleuring om neuronale overleving te beoordelen.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Alle experimenten met dieren werden uitgevoerd in overeenstemming met de noordwestelijke universitaire dierenstudies Commissie.
1. bereiding voorafgaand aan organotypische cerebellaire segment culturen
- In een celcultuurkap gespoten met 70% ethanol vooraf, bereid 200 mL kweekmedium in een 250 mL fles-top vacuüm filter aangesloten op een steriele fles ontvanger. Voeg 100 mL basale medium Eagle (BME) toe, 50 mL van de uitgebalanceerde zoutoplossing van Hanks (HBSS), 50 mL warmtegeïnactiveerd paarden serum, 1 mL 200 mM L-glutamine (eindconcentratie 1 mM) en 5 mL 200 g/L glucose (eindconcentratie 5 mg/mL). Vacuüm-filter het kweekmedium en bewaar het op + 4 °C gedurende maximaal een maand.
- In de gesteriliseerde bioveiligheid Cabinet Haal je een 6-well kweek plaat uit de verpakking. Vul elk goed met 1 mL kweekmedium. Als een behandeling wordt getest, voegt u de farmacologische stof toe aan de behandelde put en hetzelfde volume van de voertuig oplossing voor de controle goed. In de huidige studie hebben we 1 μL steriele 3 M KCl-oplossing toegevoegd aan de behandelde put (30 mM Final) en 1 μL steriel water aan de controle putten.
- Breng in de cel cultuur kap het benodigde aantal individueel verpakte celkweek inserts met hydrofiele polytetrafluorethyleen (PTFE) membraan (poriegrootte = 0,4 μm). Pak ze voorzichtig uit en verwijder de celkweek wisselplaten met steriele Tang. Laat ze een voor een in een put van een 6-put plaat, het vermijden van bubbels op de interface tussen het wisselplaat membraan en het celkweekmedium. Laat de inserts in het medium in een 37 ° c, 5% CO2 incubator voor ten minste 2 uur voor de cultuur.
Opmerking: de weefsel Chopper bevindt zich permanent in de celcultuurkap. - Bereid 2 200 mL Bekerglazen, een gevuld met 150 mL steriel water, en de andere gevuld met 150 mL 70% ethanol. Dompel de chirurgische gereedschappen in het 70% ethanol bad en vervolgens in water voordat u ze gebruikt.
Opmerking: gebruik geen chirurgische hulpmiddelen onmiddellijk na contact met ethanol. - Desinfecteer het dubbele snijmes in het 70% ethanol bekerglas. Plaats deze op de Meshouder met behulp van een steriele Tang en houd deze op zijn plaats met behulp van de messen klem sleutel. Laat het drogen tot het gebruik.
- Desinfecteer de met de weefsel Chopper meegeleverde plastic schijf in het 70% ethanol bekerglas. Spuit de snijtafel met 70% ethanol voordat u de schijf erop plaatst. Laat drogen tot het gebruik.
2. dissectie-en cerebellaire Organotypische segment culturen
- Breng de muis pup in de cel cultuur kap om de dissectie uit te voeren.
- Onthapitate de pup snel met behulp van rechte schaar (Figuur 1A).
- Terwijl je het hoofd van de pup door de neus vasthoudt met een rechte kaptang, open je de hoofdhuid met een rechte oogschaar, beginnend vanaf het achterste uiteinde, en dwars door de middenlijn.
- Ga identiek voor de schedel.
Opmerking: Zorg ervoor dat u schaar tips naar buiten wijst om beschadiging van het cerebellum tijdens dissectie te voorkomen. - Neem de hersenen en breng het over naar een 60-mm-schotel gevuld met koude HBSS + 5 mg/mL glucose.
- Voorzichtig ontleden het cerebellum met behulp van steriele rechte fijne Tang (Figuur 1B). Breng het op de plastic schijf die op de snijtafel van de weefsel Chopper wordt geplaatst met behulp van steriele gebogen fijne Tang.
- Oriënteer het weefsel door het draaien van de snijtafel om parasagitale secties uit te voeren.
- Beweeg de snijtafel door de tafel ontgrendelingsknop naar rechts te trekken, zodat het blad aan de rand van het weefsel wordt geplaatst.
- Stel de segment dikte in op 350 μm en de blad snelheid naar gemiddeld.
- Start de Chopper. Zodra het hele cerebellum is gesneden (Figuur 1C), zet u de Chopper uit.
- Verwijder de plastic schijf met steriele Tang.
- Breng de plastic schijf voorzichtig dicht bij een schaal van 60 mm met HBSS + 5 mg/mL glucose. Pipetteer koude HBSS + 5 mg/mL glucose op het weefsel met behulp van een steriele pipet om het oogsten van cerebellaire schijfjes in de buffer gevulde schaal mogelijk te maken.
- Scheid de cerebellaire segmenten van elkaar met behulp van een micro sonde. Neem goede kwaliteits secties met de Pipet (het wordt aanbevolen om weefsel secties te gebruiken die dicht bij de vermis liggen) en zet ze af in een pre-equilibrated celcultuurinsert (Figuur 1D).
- Plaats de cerebellaire schijfjes op het celkweek-wisselplaat met behulp van de microprobe en verwijder vervolgens voorzichtig de overtollige HBSS + 5 mg/mL glucoseoplossing met de pipet voor het overbrengen.
Opmerking: in dit stadium is het weefsel extreem mals en gevoelig voor lichamelijke schade. Het maximum aantal cerebellaire schijfjes per celcultuurinsert is afhankelijk van de leeftijd van het donordier. 6 – 8 sneetjes kunnen gekweekt worden voor een P0-P4-oud dier, en 4 – 6 sneetjes voor dieren ouder dan P5. - Plaats de kweek schaal in de incubator, waarbij het medium volledig om de 2 – 3 dagen wordt vervangen.
- Om de overleving van de Purkinje-cel te beoordelen, kunnen segmenten al 5 dagen in vitro worden verzameld. Voor andere doeleinden kunnen ze gedurende enkele weken in cultuur worden gehouden (Figuur 1F).
Opmerking: in het geval van overlevings experimenten met Purkinje-cellen is het niet nodig om de farmacologische behandeling te vernieuwen bij het veranderen van het celkweekmedium (Figuur 1F).
3. immunofluorescentie
- Haal de 6-put plaat uit de incubator. Verwijder celkweekmedium, was de celkweek insert met 1x PBS en bevestig de schijfjes met koude 4% Paraformaldehyde oplossing voor 1 uur, met 1 mL onder het celkweek inzetstuk en 500 μL bovenop het celkweek inzetstuk.
- Was de wisselplaten 4x 10 min met 1x PBS, met 1 mL onder en 500 μL bovenop de wisselplaat, op een rondschudapparaat.
- Breng met een borstel de cerebellaire schijfjes over van 1 celkweek insert naar 1 put van een 24-Well voorgevulde met 1x PBS, 0,25% Triton X-100 en 3% BSA (PBS-TB), 500 μL/well.
- Permeabilize en Blokkeer de plakjes door incubatie in PBS-TB voor 1 uur bij kamertemperatuur.
- Inincuberen met primaire antilichamen verdund in de PBS-TB-oplossing, 's nachts bij + 4 °C, op een rondschudapparaat, 200 μL/goed.
- Doe de volgende dag vier wasgoed van 10 min met 1x PBS, op een rondschudapparaat, 500 μL/Nou.
- Inincuberen met secundaire antilichamen verdund in de PBS-TB-oplossing, twee uur bij kamertemperatuur, op een rondschudapparaat en beschermd tegen licht, 200 μL/goed.
- Voer vier wasgoed van 10 min met 1x PBS, op een rondschudapparaat, 500 μL/put.
- De plakjes met behulp van Hoechst 33342, verdund in 1x PBS (2 μg/mL), gedurende 10 min bij kamertemperatuur, beschermd tegen licht, 500 μL/goed.
- Monteer de cerebellaire-segmenten op een microscopie dia met een pipet voor overdracht. Laat ze volledig lucht drogen, beschermd tegen licht. Bevochtigen ze met 1x PBS en breng een dekslip aan die bedekt is met enkele druppels afdekmedium (~ 80 μL). Vermijd het maken van bubbels.
- Zodra het afdekmedium is uitgehard, zijn cerebellaire-secties klaar om te worden gefotografeerd.
4. beeldvorming en kwantificering van de overleving van de cel
- Schakel de Microscoop en lasers in volgens de fabrikant en/of de instructies van de Imaging Core Facility.
- Start de acquisitie software.
- Gebruik een 10x doelstelling om niet-veranderde cerebellaire schijfjes te vinden die 9 – 10 door bevatten (meestal cerebellaire secties dicht bij de vermis).
- Z-stack-acquisitie activeren. Definieer het bereik van de z-stack om alle Purkinje-cellen in het cerebellaire segment op te nemen. Stel een stapgrootte van 2 μm in en start de overname. Sla de verkregen afbeelding op in de indeling van de fabrikant van de aanschaf software om de bijbehorende metagegevens te behouden.
- Open het verkregen bestand in ImageJ met behulp van de plug-in bio-formaten18.
- Ga naar afbeelding > stapels > Z-project... (Figuur 2A).
- Kies maximale intensiteit in het vervolgkeuzemenu projectietype en klik op OK (afbeelding 2B).
- Er wordt een afgevlakte 2-D-afbeelding gegenereerd. Dubbelklik op het gereedschap met meerdere punten om het venster punt te laten verschijnen. Schakel de optie Label punten uit om de visualisatie van getelde cellen te vereenvoudigen. Klik vervolgens direct op een Soma van een Purkinje-cel om te beginnen met tellen (Figuur 1E). Het totale aantal getelde cellen wordt aangegeven onder in het venster van het gereedschap punt (Figuur 3).
Opmerking: meestal kunnen ten minste 3 niet-beschadigde secties met 9 – 10 door per celcultuurinsert worden gekwantificeerd. Om het neuroprotectieve effect van een farmacologisch agens te beoordelen, moeten ten minste 3 onafhankelijke experimenten worden uitgevoerd.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Zoals weergegeven in Figuur 4, produceert dit protocol organotypische cerebellaire segment culturen waarin de overleving van de Purkinje-cel kan worden beoordeeld na de immunofluorescentie-en beeldverwervings stappen. Purkinje-cellen werden gelabeld met een combinatie van anti-Calbindin D-28K (verdunning 1/200) en Alexa594 anti-muis (verdunning 1/300) antilichamen. Beeld stiksels werd automatisch gedaan door de Microscoop acquisitie software (NIS-elementen) om een foto van de hele cerebellaire slice te verkrijgen. Purkinje-celaantallen per segment zijn ingevoerd in de Prism 8-software om de grafiek te genereren en statistische analyses uit te voeren. Bij P6 was de celoverleving van Purkinje laag in de controle, consistent met hun bekende Vulnerability Window4 (Figuur 4A, E). De overleving steeg naarmate het donordier ouder werd en deze kritieke periode werd verlaten (Figuur 4C, E). Cerebellaire schijfjes werden behandeld met een hoge KCl-concentratie om hun depolarisatie en overleving14 (Figuur 4B, D, E) succesvol te induceren.
Figuur 1: illustratie van het Protocol van dissectie naar Purkinje Cell overlevings kwantificering.
De muis pup is snel onthoofd (a). Na hersen dissectie wordt het cerebellum geïsoleerd (B) en vervolgens in sneden van 350 μm-breedte (C) gesneden. De cerebellaire profielen worden op een controle-of behandelde celkweek plaats (D) geplaatst en gedurende ten minste 5 dagen in vitro in de cultuur gehouden. Het weefsel wordt vervolgens vast in 4% Paraformaldehyde, immunokleuring wordt uitgevoerd, en foto's worden verworven met een confocale Microscoop. Ten slotte wordt het celnummer van Purkinje in elk segment gekwantificeerd met behulp van het gereedschap multipoint in ImageJ (E). F) Schematische weergave van het tijdsverloop van de KCl-behandeling tijdens de cultuur. Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.
Figuur 2: ImageJ-instellingen die worden gebruikt om de 3D-stack af te vlakken vóór de kwantificering. Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.
Afbeelding 3: instellingen die worden gebruikt om het celnummer Purkinje te tellen met behulp van het gereedschap multipoint in ImageJ met een voorbeeld van een cerebellaire-segment dat wordt gekwantificeerd. Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.
Figuur 4: de overleving van de Purkinje-cel in de organotypische cerebellaire segment cultuur na een hoge KCl-behandeling.
Representatief beeld van cerebellaire schijfjes genomen op postnatale dag 6 (a, B) of 8 (c, c ', d, d '), ofwel onbehandeld (a, c, c') of behandeld met 30 mm KCl (B, d, d '). (C ' en D ') Hogere vergrotingsweergave van de witte boxed regio's in C en D. Plakjes werden 5 dagen in vitro bewaard voorafgaand aan fixatie. Purkinje-cellen worden geëtiketteerd met Calbindin D-28K in rood. Schaal staaf = 500 μm (a–D) en 100 μm (C ' en d '). E) kwantificering van de overleving van Purkinje cellen uit P6 en P8 culturen, in controle of behandeld met 30 mm KCl, toont een hogere overleving met de behandeling (Mann-Whitney-test, n = 3 tot 5 schijfjes). De gegevens worden uitgedrukt als gemiddelde ± SEM. Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Cerebellaire segment cultuur is een krachtig hulpmiddel om geprogrammeerde Purkinje celdood te bestuderen tijdens de postnatale ontwikkeling. Deze techniek kan worden gebruikt om snel kandidaatmoleculen voor hun neuroprotectieve potentieel te scherm. Het belangrijkste voordeel is dat de installatie eenvoudig en zeer kosteneffectief is, en alleen een bescheiden investering in apparatuur vereist (een vibratome kan tot 3 keer meer kosten dan een weefsel Chopper). Bovendien kunnen 10 tot 15 gezonde schijfjes worden gegenereerd van een muis pup, waardoor verschillende assays parallel kunnen worden uitgevoerd met slechts één dier.
Om consistente en reproduceerbare resultaten te verkrijgen, is het van cruciaal belang om de cultuur zo efficiënt mogelijk uit te voeren en gezonde cerebellaire secties te kiezen om gekweekt te worden. Deze methode is ook geschikt voor lange termijn cultuur (tot enkele maanden). Het is dus essentieel om een goede aseptische techniek te gebruiken tijdens het dissectie-en snijproces om verontreiniging te voorkomen en de noodzaak om culturen met antibiotica aan te vullen.
Het cerebellaire slice-cultuur model bewaart bestaande celcelinteracties in het vlak van de weefsel sectie en in de regio gekweekt. Dit komt met een waarschuwing: verbindingen met doelen buiten de beschaafde regio kunnen worden verbroken. De toevoer van neurotrophic factoren door afferente vezels kan ook worden stopgezet en de neuronale overleving aantasten. Dit kan gedeeltelijk worden omzeild door organotypic slice co-culturen uit te voeren. Het is aangetoond dat klim vezels de postnatale cerebellaire segment culturen kunnen penetreren wanneer ze samen met minderwaardige olijfslice culturen14,19worden gekweekt. Meer interessant, Purkinje cellen gecontacteerd door klimmen vezels overleefde14.
Hier richtten we ons op het gebruik van organotypic slice Culture om te zoeken naar neuroprotectieve moleculen in de ontwikkelende cerebellum. Echter, deze methode is even geschikt voor andere aandoeningen zoals neurodegeneratie20, axonale regeneratie21, en monitoring van neuronale circuit activiteit22,23. De post-Culture toepassingen gaan verder dan immunofluorescentie. Slices kunnen worden gebruikt voor biochemische of genexpressie studies, om de biologische mechanismen die betrokken zijn bij het neuroprotectieve effect van een bepaalde stof te onderzoeken. In totaal kan dit model de basis leggen voor het vinden van nieuwe neuroactieve moleculen vóór in vivo testen en een effectieve en betrouwbare aanvulling zijn op in vivo mechanistische studies.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
De auteurs hebben niets te onthullen.
Acknowledgments
Imaging work werd uitgevoerd in het Northwestern University Center voor geavanceerde microscopie royaal ondersteund door NCI CCSG P30 CA060553 toegekend aan het Robert H Lurie uitgebreide Kankercentrum. We danken Sean McDermott voor zijn technische assistentie en ondersteuning, en Maya Epstein voor de hand getekende illustraties getoond in Figuur 1.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Alexa Fluor 594 Donkey anti-Mouse IgG secondary antibody | ThermoFisher scientific | A21203 | |
| Basal Medium Eagle (BME) | ThermoFisher scientific | 21010046 | |
| Biosafety cabinet Class II, Type A2 | NuAire | NU-540-400 | |
| Bovine serum albumin | Millipore Sigma | A2153 | |
| Brush | |||
| anti-Calbindin D-28K antibody (CB-955) | Abcam | ab82812 | |
| CO2 Incubator | NuAire | NU-5700 | |
| Corning Costar Flat Bottom 6-well Cell Culture Plates | Fisher Scientific | 07-200-83 | |
| Coverslips, 22 x 50 mm | Fisher Scientific | 12-545-E | |
| Dressing forceps, straight | Harvard Apparatus | 72-8949 | |
| Double edge blades | Fisher Scientific | 50949411 | |
| Ethanol 200 proof | Decon Labs, Inc | 2701 | |
| Eye Scissors, straight | Harvard Apparatus | 72-8428 | |
| Fine forceps | Fisher Scientific | 16-100-127 | |
| L-Glutamine 100X | ThermoFisher scientific | 25030149 | |
| Glucose solution | ThermoFisher scientific | A2494001 | |
| Hanks’ Balanced Salt Solution | ThermoFisher scientific | 14025092 | |
| Hoechst 33342, Trihydrochloride, Trihydrate | Fisher Scientific | H21492 | |
| Horse Serum, heat inactivated, New Zealand origin | ThermoFisher scientific | 26050088 | |
| ImageJ | |||
| McIlwain Tissue Chopper | Fisher Scientific | NC9914528 | |
| Microprobes | Fisher Scientific | 08-850 | |
| Millicell Cell Culture Inserts | Millipore Sigma | PICM0RG50 | |
| Nalgene Rapid-Flow Sterile Disposable Filter Units with PES Membrane, 250 mL | ThermoFisher scientific | 168-0045 | |
| Nikon A1R confocal laser microscope system | Nikon | ||
| NIS-Elements Imaging Software | Nikon | ||
| Paraformaldehyde | Acros Organics | 41678-0010 | |
| Pasteur pipets | Fisher Scientific | 13-678-20D | |
| Potassium Chloride | Fisher Scientific | BP366-500 | |
| ProLong Gold Antifade Mountant | ThermoFisher scientific | P10144 | |
| Operating Scissors, straight | Harvard Apparatus | 72-8403 | |
| Orbital shaker Belly Dancer | IBI Scientific | BDRLS0003 | |
| Prism 8 | GraphPad | ||
| Superfrost Plus Microscope Slides | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
| Tissue Culture Dish, 60 mm w/ grip ring | Fisher Scientific | FB012921 | |
| Tissue culture plate, 24 well | Falcon/Corning | 353047 | |
| Transfer pipettes, sterile | ThermoFisher scientific | 13-711-21 | |
| Triton X-100 | ThermoFisher scientific | BP151-500 |
References
- Humpel, C. Organotypic brain slice cultures: A review. Neuroscience. 305, 86-98 (2015).
- Gahwiler, B. H. Organotypic monolayer cultures of nervous tissue. Journal of Neuroscience Methods. 4 (4), 329-342 (1981).
- Yamamoto, N., Kurotani, T., Toyama, K. Neural connections between the lateral geniculate nucleus and visual cortex in vitro. Science. 245 (4914), 192-194 (1989).
- Dusart, I., Airaksinen, M. S., Sotelo, C. Purkinje cell survival and axonal regeneration are age dependent: an in vitro study. Journal of Neuroscience. 17 (10), 3710-3726 (1997).
- Wiegreffe, C., Feldmann, S., Gaessler, S., Britsch, S. Time-lapse Confocal Imaging of Migrating Neurons in Organotypic Slice Culture of Embryonic Mouse Brain Using In Utero Electroporation. Journal of Visualized Experiments. (125), e55886 (2017).
- Daviaud, N., et al. Modeling nigrostriatal degeneration in organotypic cultures, a new ex vivo model of Parkinson's disease. Neuroscience. 256, 10-22 (2014).
- Ghoumari, A. M., et al. Mifepristone (RU486) protects Purkinje cells from cell death in organotypic slice cultures of postnatal rat and mouse cerebellum. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (13), 7953-7958 (2003).
- Labombarda, F., et al. Neuroprotection by steroids after neurotrauma in organotypic spinal cord cultures: a key role for progesterone receptors and steroidal modulators of GABA(A) receptors. Neuropharmacology. 71, 46-55 (2013).
- Gao, P., et al. P2X7 receptor-sensitivity of astrocytes and neurons in the substantia gelatinosa of organotypic spinal cord slices of the mouse depends on the length of the culture period. Neuroscience. , 195-207 (2017).
- Sundstrom, L., Morrison, B., Bradley, M., Pringle, A. Organotypic cultures as tools for functional screening in the CNS. Drug Discovery Today. 10 (14), 993-1000 (2005).
- Jankowski, J., Miething, A., Schilling, K., Baader, S. L. Physiological purkinje cell death is spatiotemporally organized in the developing mouse cerebellum. Cerebellum. 8 (3), 277-290 (2009).
- Ghoumari, A. M., Wehrle, R., Bernard, O., Sotelo, C., Dusart, I. Implication of Bcl-2 and Caspase-3 in age-related Purkinje cell death in murine organotypic culture: an in vitro model to study apoptosis. European Journal of Neuroscience. 12 (8), 2935-2949 (2000).
- Ghoumari, A. M., Wehrle, R., De Zeeuw, C. I., Sotelo, C., Dusart, I. Inhibition of protein kinase C prevents Purkinje cell death but does not affect axonal regeneration. Journal of Neuroscience. 22 (9), 3531-3542 (2002).
- Ghoumari, A. M., et al. Neuroprotective effect of mifepristone involves neuron depolarization. FASEB Journal. 20 (9), 1377-1386 (2006).
- Repici, M., Wehrle, R., Antoniou, X., Borsello, T., Dusart, I. c-Jun N-terminal kinase (JNK) and p38 play different roles in age-related Purkinje cell death in murine organotypic culture. Cerebellum. 10 (2), 281-290 (2011).
- Rakotomamonjy, J., Ghoumari, A. M. Brain-Derived Neurotrophic Factor Is Required for the Neuroprotective Effect of Mifepristone on Immature Purkinje Cells in Cerebellar Slice Culture. International Journal of Molecular Sciences. 20 (2), (2019).
- Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. Journal of Neuroscience Methods. 37 (2), 173-182 (1991).
- Linkert, M., et al. Metadata matters: access to image data in the real world. Journal of Cell Biology. 189 (5), 777-782 (2010).
- Uesaka, N., et al. Organotypic coculture preparation for the study of developmental synapse elimination in mammalian brain. Journal of Neuroscience. 32 (34), 11657-11670 (2012).
- Falsig, J., et al. Prion pathogenesis is faithfully reproduced in cerebellar organotypic slice cultures. PLoS Pathogens. 8 (11), 1002985 (2012).
- Bouslama-Oueghlani, L., Wehrle, R., Sotelo, C., Dusart, I. The developmental loss of the ability of Purkinje cells to regenerate their axons occurs in the absence of myelin: an in vitro model to prevent myelination. Journal of Neuroscience. 23 (23), 8318-8329 (2003).
- Apuschkin, M., Ougaard, M., Rekling, J. C. Spontaneous calcium waves in granule cells in cerebellar slice cultures. Neuroscience Letters. 553, 78-83 (2013).
- Audinat, E., Knopfel, T., Gahwiler, B. H. Responses to excitatory amino acids of Purkinje cells' and neurones of the deep nuclei in cerebellar slice cultures. Journal of Physiology. 430, 297-313 (1990).
