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Article de méthode

Préparation des propagations méiotiques de chromosome des spermatocytes de poisson-zèbre

7.9K vues

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DOI :

10.3791/60671

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3 mars 2020

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Dans cet article

Résumé

Les écarts de surface nucléaires sont un outil indispensable pour étudier les événements chromosomiques pendant la méiose. Ici nous démontrons une méthode pour préparer et visualiser des chromosomes méiotiques pendant la prophase I des spermatocytes de poisson zèbre.

Résumé

La méiose est le processus cellulaire clé nécessaire pour créer des gamètes haploïdes pour la reproduction sexuelle. Les organismes modèles ont joué un rôle déterminant dans la compréhension des événements chromosomiques qui ont lieu pendant la prophase méiotique, y compris les événements d’appariement, de synapse et de recombinaison qui assurent une ségrégation chromosomique appropriée. Bien que la souris ait été un modèle important pour comprendre les mécanismes moléculaires sous-jacents à ces processus, tous les événements méiotiques de ce système ne sont pas analogues à la méiose humaine. Nous avons récemment démontré le potentiel passionnant du poisson zèbre comme modèle de spermatogénèse humaine. Ici nous décrivons, en détail, nos méthodes pour visualiser les chromosomes méiotiques et les protéines associées dans les préparations de propagation de chromosome. Ces préparations ont l’avantage de permettre l’analyse à haute résolution des structures chromosomiques. Tout d’abord, nous décrivons la procédure pour disséquer des testicules du poisson zèbre adulte, suivi de la dissociation cellulaire, de la lyse, et de la diffusion des chromosomes. Ensuite, nous décrivons la procédure pour détecter la localisation des protéines méiotiques de chromosome, par détection d’immunofluorescence, et séquences d’acide nucléique, par hybridation in situ de fluorescence (FISH). Ces techniques constituent un ensemble utile d’outils pour l’analyse cytologique de l’architecture de la chromatine méiotique dans le système de poisson zèbre. Les chercheurs de la communauté des poissons zèbres devraient être en mesure de maîtriser rapidement ces techniques et de les intégrer dans leurs analyses standard de la fonction reproductrice.

Introduction

La reproduction sexuelle se poursuit par la combinaison de deux gamètes haploïdes, chacun portant la moitié du complément chromosomique d’une cellule somatique. La méiose est une division cellulaire spécialisée qui produit des gamètes haploïdes à travers une série de réplication de l’ADN et deux cycles successifs de ségrégation chromosomique. Dans la prophase I, les chromosomes homologues (homologs) doivent subir l’appariement, la recombinaison et la synapse, ce dernier étant caractérisé par la formation du complexe synaptonemal qui comprend deux axes homologués pontés par le filament transversal, Sycp1 (Figure 1A,B). Le défaut d’exécuter correctement....

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Protocole

Toutes les méthodes impliquant le poisson zèbre ont été effectuées en utilisant des normes éthiques approuvées par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux de l’UC Davis.

1. Procédure d’épandage de chromosome

REMARQUE : Le protocole suivant est conçu pour créer 4-6 diapositives, avec des centaines de noyaux méiotiques de propagation par diapositive. Le nombre de testicules utilisés dépendra de la taille du poisson. Attendez-vous à utiliser 20 animaux à 60 jours après la fécondation (dpf) et 15 animaux à 6 mois après la fécondation (mpf). Pour les gros poissons zèbres (p. ex., 12 mpf), 10 anima....

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Résultats

Nous avons décrit une méthode pour préparer et visualiser les préparations de propagation de spermatocyte salèbre. Lorsqu’elle est exécutée correctement, notre procédure donne des noyaux bien répartis et non superposés. Pour récupérer de tels noyaux, il est important d’avoir la quantité appropriée de matériel de démarrage (c.-à-d. les testicules), traiter les testicules pour une durée suffisante dans la trypsine et un nombre suffisant de traitements DNase I. Ces tartinades peuvent ensuite.......

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Discussion

Ici nous décrivons des méthodes pour sonder l’emplacement des télomères et des protéines chromosome-associées dans les écarts de surface nucléaire des spermatocytes isolés des testicules de poisson zèbre. Nous nous attendons à ce que ces méthodes soient applicables pour l’analyse des spermatozoïdes chez d’autres espèces de téléostéos avec ajustement à la taille du testicule.

Alors que seulement quelques anticorps ont été élevés aux protéines méiotiques de poisson zèbre, nous avons eu du succès.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à révéler.

Remerciements

Nous remercions Trent Newman et Masuda Sharifi pour leurs commentaires sur le manuscrit et An Nguyen pour avoir aidé à optimiser les méthodes de propagation et de coloration des chromosomes des méiocytes de poissons zèbres. Ce travail a été soutenu par NIH R01 GM079115 attribué à S.M.B.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Tubes à centrifuger de 1,5 mLPlusieurs marques commerciales disponibles
1,5 mLPlusieurs marques commerciales disponibles
16 % de formaldéhyde, sans méthanolThermoFisher Scientific28908
2 mLPlusieurs marques commerciales disponibles
Lamelles en verre de 24 x 50 mmCorning2980-245
24 x 60 mm verrelamellesVWR International16004-312
50 mL Tubes à centrifuger coniquesThermoFisher Scientific363696
Sac autoclavePlusieurs marques commerciales disponiblesUtilisé pour fabriquer des lamelles en plastique.
Albumine sérique bovine (BSA)Fisher ScientificBP1605-100Préparer une solution mère de 100 mg/ml dans de l’eau distillée stérile.
Crépine cellulaire, 100 & micro ; mFisher Scientific08-771-19
CF405M chèvre anti-poulet IgY (H+L), hautement adsorbécroisé Biotium203775-500uLUtilisation à 1:1000
Poulet anti-zfSycp1Généré par le laboratoire BurgessN/AUtilisation à 1:100
Collagénase de Clostridium histolyticumSigma-AldrichC0130-500MG
Coplin potPlusieurs marques commerciales disponibles
DNase I, grade II à partir du pancréas bovinRoche Diagnostics10104159001
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM)Fisher ScientificMT10014CV
Dumont No. 5 ForcepsFine Science Tools11252-30Deux sont nécessaires pour disséquer les testicules.
Tubes Eppendorf, 5 mLVWR International89429-308
FormamideFisher ScientificBP228-100
Anticorps secondaire IgY (H+L) anti-poulet pour chèvre, Alexa Fluor 488 ThermoFisherScientific A-11039Utilisation à 1:1000
Anticorps secondaire IgY (H+L) anti-poulet pour chèvre, Alexa Fluor 594ThermoFisher ScientificA-11042Utilisation à 1:1000
Chèvre anti-hDMC1Santa Cruz Biotechnologysc-8973Ne fonctionne pas entre nos mains
Anticorps secondaire anti-lapin IgG (H+L) à adsorption croisée de chèvre, Alexa Fluor 488ThermoFisher ScientificA-11008Utilisation à 1:1000
Anticorps secondaire à adsorption croisée (H+L) anti-lapin de chèvre, Alexa Fluor 594ThermoFisher ScientificA-11012à 1:1000
Sérumde chèvreSigma-AldrichG9023-10mL
Héparine sel sodiqueSigma-AldrichH3393-100KU
Chambre d’humiditéFisher Scientific50-112-3683
Four d’hybridationVWR International230401V (Modèle 5420)
Incubateur ShakerNew Brunswick ScientificModèle Classic C25
KClFisher ScientificP217-500
KimwipesKimerbly-Clark Professional34155Utilisé pour la chambre d’humidité
KH2PO4Fisher ScientificP285-500
MicroscopePlusieurs marques commerciales disponiblesTout microscope standard capable d’un grossissement d’au moins ~1,65X est suffisant.
Lames de microscopeFisher Scientific12-544-7
Souris anti-hamsterSCP3Abcamab97672Ne fonctionne pas dans nos mains
Souris anti-hMLH1BD Biosciences550838Ne fonctionne pas dans nos mains
Souris anti-hRPASigma-AlrichMABE285Ne fonctionne pas dans nos mains
Na2HPO4 · ; 7 H2OFisherScientific S373-500
NaClFisher ScientificS271-3
Solution Photo-Flo 200Microscopie électronique Sciences74257
Pipettes de transfert en plastiquePlusieurs marques commerciales disponibles
PNA TelC-Alexa647PNA Bio IncF1013Préparer selon le fabricant' .
PNA TelC-Cy3PNA Bio IncF1002Préparer selon les instructions du fabricant.
Couche de montage anti-effacement ProLong DiamondThermoFisher ScientificP36970
Couche anti-décoloration ProLong Diamond avec DAPIThermoFisher ScientificP36971
Lapin anti-hRPABethylA300-244AUtilisation à 1:300
Lapin anti-hSCP3Abcamab150292Utilisation à 1:200
Lapin anti-hRad51GeneTexGTX100469Utilisation à 1:300
Citrate de sodiumFisher ScientificS279-500
SaccharoseFisher ScientificS5-500
Ciseaux Supercut, angle 30° ;, 10 cmFisher Scientific50-822-353Peut également utiliser n’importe quelle paire de petits ciseaux.
Kit SylgardFisher ScientificNC9897184Préparez selon les instructions du fabricant.
Triton X-100Fisher ScientificBP151-100Diluer dans de l’eau distillée stérile pour obtenir une solution de travail à 20 %. Conserver à température ambiante. Le Triton X-100 forme un précipité lorsqu’il est dilué dans l’eau ; Le précipité se dissout pendant la nuit.
TrypsineWorthingtonBiochemical LS003708
Inhibiteur de trypsine à partir du blanc d’œuf de pouleSigma-AldrichT9253-500MG
Tween 20Bio-Rad170-6531Diluer dans de l’eau distillée stérile pour obtenir une solution de travail à 20 %. Conserver à température ambiante.
Ciseaux à ressort Vannas - 4 mm (micro ciseaux)Outils scientifiques fins15018-10
Support de tubes de microcentrifugation de Utilisation

Références

  1. Nagaoka, S. I., Hassold, T. J., Hunt, P. A. Human aneuploidy: mechanisms and new insights into an age-old problem. Nature Reviews Genetics. 13, 493-504 (2012).
  2. Zickler, D., Kleckner, N. Recombination, Pairing, and Synapsis of Homologs dur....

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Réimpressions et autorisations

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