Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Neuroscience
Click here for the English version

Neuroscience

אינדוקציה של פגיעה מלאה בחוט השדרה מסוג טרנס-פעולה בעכברים

Published: May 6, 2020 doi: 10.3791/61131
Automatic Translation
1,2,3, 2,3, 2,3, 2,3, 2,3, *1,2,3, *2,3
1Griffith Institute for Drug Discovery, Griffith University, 2Menzies Health Institute Queensland, Griffith University, 3Clem Jones Centre for Neurobiology and Stem Cell Research, Griffith University
* These authors contributed equally

Summary

פרוטוקול זה מתאר כיצד ליצור כריתת למינקטוע מדויקת עבור אינדוקציה של פגיעה יציבה בחוט השדרה מסוג transection במודל העכבר, עם נזק משני מינימלי למחקר פגיעה בחוט השדרה.

Abstract

פגיעה בחוט השדרה (SCI) מובילה במידה רבה לאובדן תפקוד בלתי הפיך וקבוע, הנפוץ ביותר כתוצאה מטראומה. מספר אפשרויות טיפול, כגון שיטות השתלת תאים, נחקרים כדי להתגבר על המוגבלויות מתישה הנובעות SCI. רוב הניסויים בבעלי חיים פרה-קליניים נערכים במודלים של מכרסמים של SCI. בעוד מודלים חולדה של SCI כבר בשימוש נרחב, מודלים עכבר קיבלו פחות תשומת לב, למרות מודלים עכבר יכול להיות יתרונות משמעותיים על מודלים חולדה. הגודל הקטן של עכברים משווה לעלויות תחזוקה נמוכות יותר של בעלי חיים מאשר לחולדות, והזמינות של דגמי עכבר טרנסגניים רבים היא יתרון עבור סוגים רבים של מחקרים. פגיעה חוזרת ומדויקת בבעלי החיים היא האתגר העיקרי למחקר SCI, אשר מכרסמים קטנים דורש ניתוח דיוק גבוה. מודל הפציעה מסוג transection היה מודל פציעה נפוץ בעשור האחרון למחקר טיפולי מבוסס השתלה, עם זאת שיטה מתוקמנת לזימת פציעה מלאה מסוג transection בעכברים אינה קיימת. פיתחנו פרוטוקול כירורגי לגרימת פציעה מלאה של סוג התרדמות בעכברים C57BL/6 ברמת בית החזה 10 (T10). ההליך משתמש במקדחת קצה קטנה במקום rongeurs כדי להסיר במדויק את ה למינה, לאחר מכן להב דק עם קצה חיתוך מעוגל משמש כדי לגרום לתנופה של חוט השדרה. שיטה זו מובילה לפציעה מסוג transection לשחזור מכרסמים קטנים עם נזק מינימלי לשרירים ולעצם, ולכן ממזערת גורמים מבלבלים, במיוחד כאשר ניתחו תוצאות תפקודיות התנהגותיות.

Introduction

פגיעה בחוט השדרה (SCI) היא בעיה רפואית מורכבת התוצאה היא שינויים דרסטיים בבריאות ואורח החיים. אין תרופה ל-SCI, והפתופיזיולוגיה של SCI אינה מובנת היטב. מודלים של בעלי חיים SCI, במיוחד דגמי מכרסמים, מציעים כלי יקר ערך לניסויים בטיפולים חדשים, והשתמשו בהם כדי לחקור SCI במשך עשרות שנים. עד כה, מעל 72% של מחקרים פרה-קליני SCI העסיקו מודלים חולדה, לעומת רק 16% שהשתמשו בעכברים1. למרות חולדות, בשל גודלם גדול יותר ונטייה ליצור חללים דומה SCIs אנושי, היו באופן מסורתי חיות המודל המועדף לחקר גישות טיפוליות חדשניות, עכברים (כולל מודלים רבים של עכבר טרנסגניים) נמצאים כעת בשימוש בתדירות גבוהה יותר כדי ללמוד מנגנונים תאיים ומולקולריים של SCI2. דגם העכבר מציע יתרונות נוספים במונחים של טיפול קל יותר, שיעורי רבייה מהירים יותר ועלויות נמוכות יותר מאשר חולדות; עכברים גם להפגין רמה גבוהה של דמיון גנומי עםבני אדם 1,2,3. החיסרון העיקרי של מודל העכבר זוהה כגודל קטן יותר באופן משמעותי היוצר אתגרים עבור התערבויות כירורגיות ליצירה ולטפל בפציעות בחוט השדרה4,5.

יש פער בספרות הקיימת המדגיש את הצורך בפרוטוקול כירורגי חזק ותו לא כדי לגרום ל-SCI יציב במודל העכבר. לכן, אנו מספקים גישה כירורגית חדשנית ומדויקת בפרוטוקול זה כדי להתגבר על מגבלות אלה. פרוטוקול זה מספק הנחיות מעמיקות כדי לגרום לפציעה מסוג transection בעכברים, כמו סוג פציעה זה הוכר להיות המתאים ביותר ללמוד שינויים רגנרטיביים ניווניות בעקבות פציעה 6 ,כמו גםneuroplasticity, מעגלים עצביים והנדסת רקמות גישות7. בחרנו לגרום לפציעה באזור בית החזה התחתון, מאז SCI רמת בית החזה משמש הנפוץ ביותר בספרות1.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

כל ההליכים בוצעו באישור הוועדה לאתיקה של בעלי חיים באוניברסיטת גריפית' (ESK/04/16 AEC ו-MSC/04/18 AEC) על פי ההנחיות של המועצה הלאומית לבריאות ומחקר רפואי של אוסטרליה.

1. הליך התעוות בעלי חיים לניתוח

  1. להנהים ולייצב את החיה.
    1. השתמש בעכברים בני 8-10 שבועות C57BL/6. השתמש 5% isoflurane ב 1 L/min חמצן עבור אינדוקציה של הרדמה. לצורך תחזוקה של הרדמה, יש להשתמש ב-1.5%-2% isoflurane ב-1 ל'/דקה חמצן. אשר הרדמה מתאימה על ידי ביסוס חוסר רפלקס כאב בזנב ובכפות האחוריים.
  2. לנהל buprenorphine (0.03 מ"ג/ ק"ג משקל גוף) עבור משכך כאבים ו enrofloxacin (10 מ"ג/ ק"ג משקל גוף) עבור כיסוי אנטיביוטיקה, תת עורית על פי משקל הגוף. מלוקסיאם (2 מ"ג/ק"ג משקל גוף) ניתן לתת עבור משכך כאבים לטווח ארוך במידת הצורך.
  3. שמור על טמפרטורת הגוף של החיה יציבה ב 37 °C עם כרית חימום
    1. לגלח את הפרווה האחורית כדי לחשוף את האזור הכירורגי מעל עמוד השדרה הגב. הסר את הפרווה המגולחת מהאזור הכירורגי לפני עיקור אתר החתך. לחטא את האזור המגולח עם ספוגיות כותנה סטריליות ספוגות בנוזל יוד povidone ורוח כירורגית.
  4. להדביק את כפות העכבר לאזור כירורגי כדי לייצב את החיה(איור 1A). מניח חלון סגלגל וילונות מעל העכבר (איור 1B).

2. כריתת למינקט

  1. בצע חתך אנכי בקו האמצע ברמת החוליות T10 באמצעות אזמל כירורגי.
    1. אתר את התהליך הספיני של חוליות T10 כדי לקבוע את האתר של כריתת למינקט. גוף החוליה טמון מעט גולגולתי עד קצה התהליך הספיני8 (ראה איור 2). הקצה מונח בערך בנקודת האמצע של חוליית T118.
    2. הפוך את החתך ~ 2.5 ס"מ ארוך, כך עמוד השדרה של חוליית T10 הוא בערך באמצע אורך החתך.
  2. לשקף את העור ולחזור עם מפשקים.
    1. השתמש במקצות ישרים כדי להרים את העור מהפשיה הבסיסית. פעולה זו תיצור מקום למיקום המפשקים; אלה ישאירו את השדה הכירורגי פתוח.
  3. לבצע ניתוח בוטה של רקמה תת עורית וfascia לחשוף את התהליכים ספינים.
    1. השתמש בקצה הקהה של האזמל כדי לבצע חתך קטן בקו האמצע ברקמה התת עורית וfascia הבסיסית כדי לחשוף את הקוצים של חוליות T9-T11. השתמש במקצות הקצה העדינים (לא חדים) כדי לבצע ניתוח בוטה ולשקף את הפשיה.
  4. לפצל ולהפריד את השרירים para-spinous לחשוף את ה למינציה.
    1. השתמש בקצה הקהה של האזמל כדי לפצל את שרירי תא המטען האחורי ושרירים para-spinous לאורך הקוצים של חוליות T9-T11. השתמש במקצות הקצה הבוטה כדי לבצע ניתוח קהה של השרירים בשכבות ולחשוף את ה למינציה של החוליות. זה אמור למזער כל דימום.
      הערה: אם יש דימום, השתמשו בתמיסת מלח חמה (37°C) השקיה וספוגיות כותנה כדי לשלוט בו ולנקות דם מהשדה הכירורגי.
    2. השתמש באותם מפסים כדי ליצור כיסים קטנים סביב התהליכים הרוחביים של חוליית T10. השתמש מלקחיים מעוקלים כדי לייצב את הגוף החוליות T10 על ידי חיבור הבליטות שלה מתחת לתהליכים הרוחביים, בכיסים שנוצרו(איור 1C).
    3. יש לשטוף היטב את הלמינה T10 בתמיסת מלח חמה ולנגב בעדינות עם ספוגיות כותנה כדי לדמיין בבירור את פני השטח הכנים. ודא כי אין קבצים מצורפים שריר / רצועה להישאר לאורך פני השטח דו-צדדי.
  5. השתמש במקדחה עם קצה דק (קוטר 0.55 מ"מ, 7 מ"מ אורך) כדי לשבור את הלמינה דו-צדדית.
    1. השתמש בקצה המקדחה כדי לעקוב אחר נתיב אנכי ממרחב בין-חוליות T9-T10 לחלל הבין-חוליות T10-T11 לאורך הלמינה T10, מבלי להדליק את המקדחה. זאת כדי להבטיח כי קצת המקדחה לא לתפוס כל רקמות(איור 1D).
    2. עכשיו מדליקים את המקדחה, לאט ובזהירות חופרים תעלה אנכית על ה למינה הימנית של חוליית T10. חלק זה של כריתת ה למינקטום אמור ליצור פגם כירורגי מדויק לאורך עובי העצם בקו אנכי ישר. שמור על האחיזה עם המגביות המעוקלות כדי לשמור על יציבות החוליה.
  6. ודא כי קצה המקדחה אינו חודר דרך העצם ולפגוע בחוט השדרה. חזור על אותו תהליך בצד שמאל של ה למינה, שמירה על החוליה יציבה עם מפסים מעוקלים. להשיקה עם תמיסת מלח חמה כדי לשטוף את כל שברי העצם הנותרים.
  7. הרם והסר את החלק האחורי של הקשת העצבית(איור 1F).
    1. השתמש במקצות הקצה העדינים הזוויתיים כדי לאחוז בתהליך הספיני ולהסיר את כל קטע הגב של הלמינה המופרד על-ידי הקידוח הדו-צדדי. להשכך ולהוות שוב אם יש דימום, כדי לדמיין בבירור את חוט השדרה החשוף מתחת לחלון כריתת ה למינציה(איור 1E).

3. טרנס-פעולה

  1. לגרום לפגיעה בחוט השדרה על ידי תפליטה של חבל החשוף עם פרוסה אחת של הלהב.
    1. השתמש בלהב הצר והעגול כדי לחתוך את הכבל במרכז חלון כריתת ה למינקט. ודא לטאטא את המעמקים לרוחב של עמוד השדרה כדי לגרום לפגיעה בהתמרה מלאה(איור 1G).
  2. אשר את השלמות של פציעת ההתמרמרות באמצעות מקצות הקצה העדינים הבוטים והסר את כל החיבורים הנותרים באתר הטרנס-שיח'.
  3. שלוט בדימום אם יש, לפני סגירת השכבות הכירורגיות.
  4. השתמש בתמיסת מלח חמה כדי להשיך ולנקה כל דימום המתרחש מגדמי חבל החוט הים החסומים. השתמש בספוגית כותנה כדי להפעיל לחץ עדין כדי להשיג המוסטאזיס במידת הצורך. תדחדל לא לדחוס את חוט השדרה.

4. סגר וטיפול מיידי לאחר הניתוח

  1. מאחדים את השרירים ותפרים בשכבה.
    1. לאחר ההמוסטאזיס מושגת באתר transection, לשחרר את האחיזה מפס מעוקל על חוליות T10. להביא את הקצוות של השרירים הנקטעים יחד לאורך קו האמצע כדי להשיג apposition טוב.
    2. תפר את השרירים בשכבה באמצעות 5-0 polyglactin 910 תפרים נספג. ודא כי העקמומיות הטבעית של עמוד השדרה אינה גורמת למתח בקו התפר או לפתוח את התפרים, חשיפת אתר כריתת למינקט.
  2. סגור רקמה תת עורית ועור.
    1. השתמש בתפרי משי 5-0 שאינם קליטים כדי לסגור את חתך העור. ודא כי אין דימום, קרישי דם או פסולת שנותרו מתחת לעור לפני הסגירה. השקיה סופית עם תמיסת מלח חמה עשויה להיות נחוצה בשלב זה.
  3. תפסיק את ההרדמה. יש לשמור על החיה במשך 10-30 דקות עד להחלמה. בעל החיים צריך להישאר על משטח החימום למשך זמן זה. לספק ג'ל מים ומזון לח בכלוב.
  4. לטיפול לאחר הניתוח, לכלול buprenorphine (פעמיים ביום), enrofloxacin (פעם ביום) עבור היומיים הראשונים מניעה. בנוסף, לרוקן ידנית את שלפוחית השתן לפחות פעמיים ביום, בהתאם להנחיות ועדת האתיקה של בעלי החיים.
    הערה: בעלי החיים בניסוי זה הוערכו פעמיים ביום עבור בריאותם הכללית ורווחתם, שכללה בדיקה לכאב מתמשך (כדי לתת מינונים נוספים של buprenorphine) או זיהום (enrofloxacin נוסף), מצב התזונה והלחות שלהם (לתת נוזלים להזרקה אם מיובש) וכל סימנים של כריתה אוטומטית (לספק טיפול בפצע אם כריתת אונה קלה). מומלץ מאוד כי היבטים אלה של טיפול לאחר הניתוח, לרבות החלטות המתת החסד, יקבעו בהנחיית הוועדה המוסדית לאתיקה של בעלי חיים.

5. הערכת מודל הפציעה

  1. ביסוס אובדן התפקוד המוטורי.
    1. להעריך את ההתנהגות המוטורית בעכברים הפצועים 2, 7, 14, 21 ו 28 ימים לאחר הפציעה בשדה פתוח באמצעות סולם עכבר באסו (BMS) כדי לקבוע את אובדןהפונקציה 9 (איור 3C-E).
  2. אישור היסטולוגי של פציעה
    1. לקצור את חוט השדרה הפצוע עם עמודי החוליות לאחר המתת חסד (נעשה עם פחמן דו חמצני בניסוי זה, כפי שאושר על ידי ועדת האתיקה של בעלי חיים).
    2. לתקן את הרקמה על ידי צוללת לילה ב 4% paraformaldehyde ולהטעות את העצמות על ידי טיפול עם 20% אתילן דיאמין חומצה טטראצטית (EDTA) על פני 3 שבועות, החלפת EDTA טרי כל 48 שעות.
    3. הכן את הקוצים המותאם לחיתוך קריו וחתוך אותם לחלקים בעובי 30 μm.
    4. הר את החלקים על מגלשות זכוכית מצופה ג'לטין עבור התכתמות חיסונית עם נוגדנים נגד GFAP ו Hoechst 33342.
    5. תדמינו את השקופיות במיקרוסקופפלורסנט (איור 3א) ובצעו מדידותשל גודל הפציעה באמצעות תוכנת ניתוח תמונה (לדוגמה, תוכנת ניתוח ניקון - NIS Elements [איור 3B]).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

השיטה המתובררת כפי שמתוארת באיור 1, כרוכה בייצוב הולם של העכבר(איור 1A) והדמיהטובה של עמוד השדרה ורקמותמצנחי דם (איור 1B). תהליך קוצני ולמינה ניתן לדמיין בבירור עם ניתוח שרירים מינימלי ואובדןדם (איור 1C,אזור מודגש). קידוח הקצה ים ים מבוצע כפי שמתואר איור 1D, כדי ליצור חלון כריתת למינקטה כפי שמתואר על ידי המלבן. חלון כריתת ה למינקטוברית שנוצרת ברור ומאפשר הדמיה ישירה וגישה לחוט השדרה(איור 1E, אזור מודגש). הרעיון השרטוטי של תהליך זה מוסבר באות 1F. להב התרדמה הצר יכול להתאים בקלות דרך חלון כריתת למינקטומת הנפרדת(איור 1G) ובתנועההחלקה חלקה, ניתן ליצור פגיעה מלאה בסוג התנועה(איור 1H–I). לכן, שיטה זו גורמת לנתח שריר מינימלי, נזק מינימלי לעצם משנית, וכתוצאה מכך פגיעה יציבה של סוג הרצועה מלאה עם איבוד דם מינימלי. למרות האינדוקציה של SCI חמור בבעלי החיים, ההליך הכירורגי וטיפול לאחר הניתוח הביא שיעורי הישרדות גבוהים של בעלי החיים. כל בעלי החיים שדווחו לכתב יד זה שרדו את ניתוח חוט השדרה; וניתוחים שלאחר מכן על ידי המעבדה שלנו גרמו שיעור הישרדות של >99%.

כדי להעריך אם שיטה זו לגרמת תירוק מסוג SCI בעכברים הייתה ניתנת לשחזור ועקבית, ניתחנו את חוט השדרה הפצוע באמצעות היסטולוגיה/אימונוהיסטוכימיה ובדיקות התנהגותיות (n = 8 בעלי חיים) (איור 2). Immunolabeling נגד סמן אסטרוציט גליית חלבון חומצי פרברי (GFAP) סימן את הגבול של חוט השדרה שלם, עם אתר הפגיעה להיות האזור בין גדמי חוט כאשר נצפה עם קטעים אורכי(איור 3A). פגם בגודל עקבי הושרה באתר הטרנס-פעולה, עם מרחק מינימלי ממוצע של 550.4 ± 17.3 μm(איור 3B). נתונים התנהגותיים הפורסים את סולם העכבר באסו (BMS)9 של בדיקת שדה פתוח הראו כי העכברים הפצועים אינם מפגינים תנועת גפיים אחוריות לאחרהפציעה (איור 3C). זה מיוצג על ידי ציון של 0 על BMS עד 28 ימים לאחר הפציעה. לפיכך, הפרוטוקול מייצר פגיעה מלאה ואמינה מסוג transection וכתוצאה מכך אובדן מוחלט של תפקוד מתחת לרמת הפציעה ואינו מוביל היפוך ספונטני של השיתוק (איור 3D,E).

Figure 1
איור 1: שלבי מפתח בפרוטוקול הפציעה בהתמרמרות. (א)בעלי חיים הוקמו והתייצבו לפני הניתוח. סכמטי ותמונה מהניתוח מוצגים שניהם. (ב)סכמטי ותצלום המציגים חתך, מיקום מפשק וקטוע קהה כדי לחשוף את שכבות השרירים העמוקות. ייצובעמוד השדרה עם מפלצות וחשיפת למינציה של חוליות T10. המלבן בתצלום מדגיש למינציה ותהליך קוצני של חוליית T10. (ד)מקדחה קצה פיין לבצע כריתת למינקט. המלבן בתצלום זה עוקב אחר חלון כריתת ה למינציה. (ה)חלון כריתת למינקטה מלאה המודגש על ידי המלבן, שבו חוט השדרה גלוי בבירור. (F)סדרה של ציורים סכמטיים המציגים את מושג הקידוח לביצוע כריתת למינקטה מלאה, בכיוון חוצה חתך. (ז)תצלום זה מתאר את השימוש בסכין חיתוך להב עדינה לביצוע הפציעה המלאה של סוג הטרנס-פעולה, ובתוך(ח)ניתן לראות את הפציעה המלאה בתוך המלבן, כקו רוחבי אדום כהה על פני חוט השדרה. (I)סכמטי המציג את התצוגה הכוללת של אתר כריתת ה למינקטו ופציעה. לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של נתון זה.

Figure 2
איור 2: תרשים המסביר את זיהוי ציון הדרך החוליות עבור T10. התהליך הקוני של חוליית T10 הוא אחד ציוני הדרך הבולטים ביותר שניתן לעבד על העקמומיות הטבעית של עמוד השדרה של בית החזה. בשלב זה התהליכים הספינים משנים את המורפולוגיה כך שהקצות של התהליכים הספיניים גולגולתיים מנקודת T10, ואת הקצוות של התהליכים הספינים caudal מ נקודת T10 גולגולתית. לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של נתון זה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

שיטה זו גורמת לפציעה מלאה של סוג ההתזזה ברמת החוליות T10 בעכברים, מה שגורם לשיתוק מוחלט של בעל החיים, מתחת לרמת הפציעה. בסך הכל, שיטה זו גורמת לדימום מינימלי, נזק משני זניח ופציעה יציבה, לשחזור. בהשוואה לשיטות שפורסמו בעבר של transection ללא כריתת למינקטוע10, שיטה זו מציעה את היתרונות במונחים של הדמיה ישירה מבלי לתמרן את העקמומיות של עמוד השדרה, שליטה טובה יותר על שלמות הפציעה, ויכולת משופרת לשלוט דימום ולהשיג hemostasis. היתרון של שיטה זו הוא כי הפרוטוקול ניתן לשנות לשימוש בכל רמות חוליות אחרות מלבד T10, כמו גם לבצע סוגי פציעה אחרים כגון hemi-מקטעים, תיבות גב חלקיות, עוויתות שורש גב, למחוץ וחבלות.

מרכיב מרכזי בפרוטוקול זה הוא שהיא משתמשת בתרגיל קצה ים. בעוד השימוש בתרגיל עשוי לדרוש רמת מיומנות גבוהה והכשרה נרחבת יותר, הוא משיג כריתת למינקטה נקייה ומשלמת. גורם מכריע נוסף הוא השימוש בסכין בעלת להב צר לתקעה, במקום מיקרו-מספריים. התוצאה היא נזק משני פחות לא רצוי בהשוואה לשימוש במספריים. לעומת זאת, אם מופעל יותר מדי לחץ לרוחב, הלהב יכול לגרום לפציעה מסוימת בגוף החוליות. הפרוטוקול המתואר עשוי לדרוש מהמנתח לבצע כמה פתרון בעיות. אם כריתת ה למינציה לא מבוצעת כראוי, ייתכן שנותרו דורבנות עצם, מה שיכול להגביל את הגישה לחלון כריתת ה למינקט. החדרת אחד משרתי הקצה העדינים יכולה לאפשר למנתח לתפוס ולשבור את כל דורבנות העצם הנותרות. עם זאת, יש לנקוט משנה מהי היתעוות כדי לא לפגוע בחוט השדרה החשוף בתהליך. אם כריתת ה למינקט גורמת לקצה עצם משונן, הקידוח יכול להתבצע שוב כדי ליישר את שולי כריתת ה למינקט. זה עשוי להיות לא מעשי אם חלון כריתת למינציה הוא כבר רחב מספיק, במקרה זה, transection צריך להתבצע מבלי להתעסק עם אתר כריתת למינציה.

מומלץ מאוד כי המשתמשים לתרגל את הליכי כריתת למינציה לפחות 8-10 פעמים ברמת עמוד השדרה הרלוונטית בניתוח cadaveric לפני ניסיון בניתוח הישרדות חי. למרות, החזקת מקדחה וטכניקות תמרון הן פשוטות, הם עשויים לדרוש מהמשתמשים להכיר את הציוד. כאן, אנו גם מספקים כמה עצות שימושיות כדי לעזור עם ייצוב עמוד השדרה ויד במהלך הליך הקידוח. אם המשתמש הוא יד ימין, עמוד השדרה צריך להיות מיוצב באמצעות מגרסות מעוקל עם היד השמאלית, כך המשוריים להתקרב לעמוד השדרה מההיבט הגולגולתי. זה שומר על ההיבט הקוודלי של עמוד השדרה ברור להתקרב עם המקדחה המוחזקת ביד ימין (או הדומיננטי). התרגיל צריך להיות מוחזק עם אחיזת מלקחיים בין האגודל, אינדקס ואצבעות אמצעיות. היד צריכה להיות נתמכת היטב לאורך הקצה המדל של פרק כף היד ואת האצבע החמישית המושטת. שמירה על היד מרוקנת לחלוטין כך שהמרפק נוגע בגוף עשוי לעזור להשיג שליטה טובה יותר על אחיזת המקדחה במהלך האימון. פעולת הקידוח צריכה לכלול תנועה רק באצבעות המחזיקות את המקדחה ולא בפרק כף היד, שלא כמו שימוש בעט לכתיבה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

לסופרים אין מה לחשוף.

Acknowledgments

עבודה זו נתמכה על ידי סטודנט בינלאומי באוניברסיטת גריפית '(PhD) קצבה RR, פרי קרוס קרן מענק JE ו JSJ, מענק קרן קלם ג'ונס JSJ ו JE, ומענק ועדת ביטוח תאונות דרכים של קווינסלנד JSJ ו JE.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Baytril injectable 50 mg/mL, 50 mL Provet BAYT I Post-operative care drug
Betadine 500 mL Provet BETA AS Consumable
Castroviejo needle holder, locking ProSciTech T149C Reusable
Ceramic zirconia blade, round with sharp sides, single edge, angled ProSciTech TXD101A-X Reusable
Cotton swabs (5pcs) Multigate 21-893 Consumable
Dremel Micro DREMEL 8050-N/18 Cordless rotary tool
Dressing forceps fine Multigate 06-306 Single use disposable
Drill bits Kemmer Präzision SM 32 M 0550 070 Reusable
Dumont #7b forceps Fine Science Tools 11270-20 Reusable
Dumont tweezers, style 5 ProSciTech T05-822 Reusable
Fur trimmer WAHL WA9884-312 Zero Overlap Hair Trimmer
Iris scissors, Ti, sharp tips, straight, 90mm ProSciTech TY-3032 Reusable
Isoflurane isothesia NXT 250 Provet ISOF 00 HS Anaesthetic agent
Colibri Retractor - 4cm Fine Science Tools 17000-04 Reusable
Scalpel handle ProSciTech T133 Reusable
Signature latex surgical gloves size 7.5 Medline MSG5475 Consumable
Sodium Chloride 0.9% STS PHA19042005 Consumable
Sterile Dressing Pack Multigate 08-709 Single use disposable
Sterile Fluid Impervious Drape 60x60 cm Multigate 29-220 Single use disposable
Surgical spirit 100 mL Provet # SURG SP Consumable
Suture Material - SILK BLK 45CM 5/0 FS-2 Johnson & Johnson Medical 682G Silk Suture
Suture Material - Vicryl 70CM 5-0 S/A FS-2 Johnson & Johnson Medical VCP421H Vicryl Suture
Temgesic 0.3 mg in 1 mL, x 5 ampoules (class S8 drug) Provet TEMG I Post-operative care drug

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Sharif-Alhoseini, M., et al. Animal models of spinal cord injury: a systematic review. Spinal Cord. 55 (8), 714-721 (2017).
  2. Lee, D. H., Lee, J. K. Animal models of axon regeneration after spinal cord injury. Neuroscience Bulletin. 29 (4), 436-444 (2013).
  3. Sharif-Alhoseini, M., Rahimi-Movaghar, V. Topics in Paraplegia. Dionyssiotis, Y. , IntechOpen. (2014).
  4. Talac, R., et al. Animal models of spinal cord injury for evaluation of tissue engineering treatment strategies. Biomaterials. 25 (9), 1505-1510 (2004).
  5. Nakae, A., et al. The animal model of spinal cord injury as an experimental pain model. Journal of Biomedicine & Biotechnology. 2011, 939023 (2011).
  6. Kwon, B., Oxland, T., Tetzlaff, W. Animal models used in spinal cord regeneration research. Spine. 27, 1504-1510 (2002).
  7. Kundi, S., Bicknell, R., Ahmed, Z. Spinal cord injury: current mammalian models. American Journal of Neuroscience. (4), 1-12 (2013).
  8. Harrison, M., et al. Vertebral landmarks for the identification of spinal cord segments in the mouse. Neuroimage. 68, 22-29 (2013).
  9. Basso, D. M., et al. Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains. Journal of Neurotrauma. 23 (5), 635-659 (2006).
  10. Seitz, A., Aglow, E., Heber-Katz, E. Recovery from spinal cord injury: a new transection model in the C57Bl/6 mouse. Journal of Neuroscience Research. 67 (3), 337-345 (2002).

Tags

החודש ב JoVE גיליון 159 פגיעה רוחבי פרוטוקול כריתת למינקט ניתוח C57BL/6 עכברים נוירוטראומה
אינדוקציה של פגיעה מלאה בחוט השדרה מסוג טרנס-פעולה בעכברים
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Reshamwala, R., Eindorf, T., Shah,… More

Reshamwala, R., Eindorf, T., Shah, M., Smyth, G., Shelper, T., St. John, J., Ekberg, J. Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice. J. Vis. Exp. (159), e61131, doi:10.3791/61131 (2020).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter