Summary
Bu protokol, fare modelinde stabil traneksiyon tipi omurilik yaralanmasıinin indüksiyonu için hassas bir laminektominin nasıl oluşturulacak larını, omurilik yaralanması araştırmaları için en az ikincil hasarın nasıl yaratılabildiğini açıklamaktadır.
Abstract
Omurilik yaralanması (SCI) büyük ölçüde geri dönüşümsüz ve kalıcı fonksiyon kaybına yol açar, en sık travma sonucu. SCI'den kaynaklanan zayıflatıcı engellerin üstesinden gelmek için hücre nakli yöntemleri gibi çeşitli tedavi seçenekleri araştırılmaktadır. Klinik öncesi hayvan çalışmalarının çoğu SCI'nin kemirgen modellerinde yapılmaktadır. SCI'nin fare modelleri yaygın olarak kullanılırken, fare modelleri fare modelleri fare modellerine göre önemli avantajlara sahip olsa da, fare modelleri daha az dikkat çekilmiştir. Farelerin küçük boyutu sıçanlar için daha düşük hayvan bakım maliyetleri eşittir, ve çok sayıda transgenik fare modellerinin durumu çalışmaların birçok türü için avantajlıdır. Hayvanlarda tekrarlanabilir ve hassas yaralanma indükleyen SCI araştırma için birincil sorundur, hangi küçük kemirgenler yüksek hassasiyetli cerrahi gerektirir. Tradineksiyon tipi yaralanma modeli transplantasyon tabanlı terapötik araştırmalar için son on yılda yaygın olarak kullanılan bir yaralanma modeli olmuştur, ancak farelerde tam bir trasezaryen tipi yaralanma yayılımı için standart bir yöntem bulunmamaktadır. Torasik vertebral düzey 10 (T10) düzeyinde C57BL/6 farelerinde tam bir traneksiyon tipi yaralanmaya neden olmak için cerrahi protokol geliştirdik. Prosedür tam lamina kaldırmak için rongeurs yerine küçük bir ucu matkap kullanır, sonra yuvarlak kesme kenarı ile ince bir bıçak omurilik tradeksi neden kullanılır. Bu yöntem, küçük kemirgenlerde minimal kollateral kas ve kemik hasarı olan reprodüktöbl transection tipi yaralanmalara yol açar ve bu nedenle özellikle davranışsal fonksiyonel sonuçların analiz edildiği şaşırtıcı faktörleri en aza indirir.
Introduction
Omurilik yaralanması (SCI) sağlık ve yaşam tarzı köklü değişikliklere neden karmaşık bir tıbbi sorundur. SCI için bir tedavi yoktur ve SCI patofizyolojisi iyice anlaşılamamıştır. Hayvan SCI modelleri, özellikle kemirgen modelleri, yeni tedaviler deneme için paha biçilmez bir araç sunuyoruz, ve yıllardır SCI keşfetmek için kullanılmıştır. Bugüne kadar, pre-klinik SCI çalışmaların% 72 üzerinde fare modelleri istihdam var, fareler1kullanmış sadece% 16 ile karşılaştırıldığında. Sıçanlar, daha büyük boyutları ve insan SCI'lerine benzer boşluklar oluşturma eğilimleri nedeniyle, geleneksel olarak yeni tedavi yaklaşımlarını incelemek için tercih edilen model hayvanlar olmalarına rağmen, fareler (birçok transgenik fare modeli de dahil olmak üzere) sci2'ninhücresel ve moleküler mekanizmalarını incelemek için daha sık kullanılmaktadır. Fare modeli daha kolay kullanım, daha hızlı üreme oranları ve sıçanlara göre daha düşük maliyetler açısından ek faydalar sunar; fareler de insanlar ile genomik benzerlik yüksek derecedesergilemek 1,2,3. Fare modelinin en büyük dezavantajı, omurilik yaralanmalarının oluşturulması ve tedavisi için cerrahi müdahaleler için zorluklar yaratan önemli ölçüde daha küçük boyut olarak tanımlanmıştır4,5.
Mevcut literatürde fare modelinde kararlı SCI'yi tetiklemek için sağlam ve tekrarlanabilir bir cerrahi protokole duyulan ihtiyacı vurgulayan bir boşluk vardır. Bu nedenle bu sınırlamaların üstesinden gelmek için bu protokolde yeni ve kesin bir cerrahi yaklaşım salıyoruz. Bu protokol farelerde bir trazeksiyon tipi yaralanma neden derinlemesine kurallar sağlar, Bu yaralanma türü bir yaralanma aşağıdaki rejeneratif ve dejeneratif değişiklikleri incelemek için en uygun olarak kabul edilmiştir6, yanı sıra nöroplasti, nöral devre ve doku mühendisliği yaklaşımları7. Torasik düzey SCIliteratürdeen sık kullanıldığından, alt torasik bölgede yaralanmayı tetiklemeyi seçtik.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Tüm prosedürler Avustralya Ulusal Sağlık ve Tıbbi Araştırma Konseyi yönergeleri altında Griffith Üniversitesi Hayvan Etik Komitesi 'nin (ESK/04/16 AEC ve MSC/04/18 AEC) onayı ile gerçekleştirilmiştir.
1. Ameliyat için hayvan kurulum prosedürü
- Anestezi ve hayvan stabilize.
- 8-10 haftalık dişi C57BL/6 fare kullanın. Anestezi indüksiyonu için 1 L/dk oksijen %5 isofluran kullanın. Anestezinin bakımı için 1 L/dk oksijende %1,5-2 oranında isofluran kullanın. Kuyruk ve arka patilerde ağrı refleksi eksikliği oluşturarak uygun anesteziyi onaylayın.
- Vücut ağırlığına göre subkutan olarak antibiyotik kapağı için analjezi ve enrofloksasin (10 mg/kg vücut ağırlığı) için buprenorfin (0.03 mg/kg vücut ağırlığı) uygulayın. Meloksikam (2 mg/kg vücut ağırlığı) gerekirse uzun süreli analjezi için verilebilir.
- Bir ısıtma yastığı ile hayvanın vücut ısısını 37 °C'de sabit tutun
- Sırt omuru üzerinde cerrahi alanı ortaya çıkarmak için arka kürk tıraş. Kesi bölgesini sterilize etmeden önce tıraşlı kürkü cerrahi bölgeden çıkarın. Povidone iyot antiseptik sıvı ve cerrahi ruh batırılmış steril pamuk bezleri ile tıraş alanı sterilize.
- Hayvanı stabilize etmek için farenin patilerini cerrahi alana bantlayın(Şekil 1A). Farenin üzerine oval bir pencere örtüsü yerleştirin (Şekil 1B).
2. Laminektomi
- Cerrahi bir neşter kullanarak T10 vertebra düzeyinde dikey bir orta hat kesi yapın.
- Laminektomi yerini belirlemek için T10 vertebra spinous süreci bulun. Omur gövdesi spinous işleminin ucuna biraz kranial yatıyor8 (Bkz. Şekil 2). Ucu yaklaşık T11 vertebra8orta noktasında dinlenir.
- T10 omurunun omurgasının kesi uzunluğunun yaklaşık ortasında olması için yaklaşık 2,5 cm uzunluğunda bir kesi yapın.
- Cildi yansıtın ve retraktörlerle geri çekilin.
- Altta yatan fasya deri kaldırmak için düz forseps kullanın. Bu, retraktörlerin yerleştirilmesi için alan yaratacaktır; bunlar cerrahi alanı açık tutar.
- Spinous süreçleri ortaya çıkarmak için deri altı doku ve fasya künt diseksiyonu gerçekleştirin.
- T9-T11 omurlarının omurgalarını ortaya çıkarmak için deri altı doku ve altta yatan fasya küçük bir orta hat kesi yapmak için neşter künt kenar kullanın. Künt diseksiyonu gerçekleştirmek ve fasyayı yansıtmak için ince uçlu forceps (keskin olmayan) kullanın.
- Laminaları ortaya çıkarmak için para-spinous kasları ayırın ve ayırın.
- T9-T11 omurlarının omurgaları boyunca dorsal gövde kaslarını ve para-spinous kasları bölmek için neşterin künt ucunu kullanın. Tabakalar halinde kasların künt diseksiyon gerçekleştirmek ve vertebra laminae ortaya çıkarmak için künt ince uç forceps kullanın. Bu herhangi bir kanama yıkacaktır.
NOT: Kanama varsa, kontrol etmek ve cerrahi alandan kan temizlemek için ısıtılmış tuzlu (37 °C) sulama ve pamuk lu bezler kullanın. - T10 vertebra enine süreçleri etrafında küçük cepler yapmak için aynı terpler kullanın. Oluşturulan ceplerde, enine prosesler altında uçları kanca tarafından T10 vertebral vücut stabilize etmek için kavisli forceps kullanın (Şekil 1C).
- T10 laminasını sıcak tuzlu suyla iyice durulayın ve kemikyüzeyini net bir şekilde görselleştirmek için pamuklu bezlerle hafifçe silin. Hiçbir kas / ligament ekleri iki taraflı yüzey boyunca kalmasını sağlamak.
- T9-T11 omurlarının omurgaları boyunca dorsal gövde kaslarını ve para-spinous kasları bölmek için neşterin künt ucunu kullanın. Tabakalar halinde kasların künt diseksiyon gerçekleştirmek ve vertebra laminae ortaya çıkarmak için künt ince uç forceps kullanın. Bu herhangi bir kanama yıkacaktır.
- Laminayı iki taraflı olarak kırmak için ince uçlu (0,55 mm çapında, 7 mm uzunlukta) bir matkap kullanın.
- T9-T10 intervertebral uzaydan T10-T11 intervertebral uzaya kadar her iki T10 laminası boyunca, matkabı açmadan dikey bir yol izlemek için matkabın ucunu kullanın. Bu, matkap ucunun herhangi bir doku yakalamamasını sağlamak içindir(Şekil 1D).
- Şimdi matkap açma, yavaş yavaş ve dikkatle T10 vertebra sağ lamina üzerinde dikey bir siper kazmak. Laminektominin bu kısmı, kemiğin kalınlığı boyunca düz dikey bir çizgide hassas bir cerrahi defekt oluşturmalıdır. Omurları stabil tutmak için kavisli forceps ile kavrama koruyun.
- Matkabın ucunun kemiğe nüfuz etmediğinden ve omuriliğe zarar vermediğinden emin olun. Laminanın sol tarafında aynı işlemi tekrarlayın, eğri forceps ile omur kararlı tutarak. Kalan kemik parçalarını temizlemek için sıcak tuzlu su ile sulandırın.
- Nöral kemerin arka kısmını kaldırın ve çıkarın(Şekil 1F).
- Spinous süreci kavramak ve ikili delme ile ayrılmış laminatüm dorsal segmenti kaldırmak için açılı ince uç forceps kullanın. Herhangi bir kanama varsa tekrar sulamak ve bez, açıkça lamineektomi penceresi altında maruz omurilik görselleştirmek için(Şekil 1E).
3. Travesti
- Bıçağın tek bir dilimi ile maruz kalan kordonun kesiti ile omurilik yaralanmasına neden olur.
- Laminektomi penceresinin ortasında kordonu dilimlemek için dar, yuvarlak kesme kenarlı bıçağı kullanın. Tam bir tragile yaralanması(Şekil 1G)neden omurilik lateral girintileri süpürmek için emin olun.
- Künt ince uç forceps kullanarak trazeksiyon yaralanmasının tamlığını onaylayın ve transection sitesinde kalan bağlantıları çıkarın.
- Cerrahi tabakaları kapatmadan önce kanamayı kontrol edin.
- Transekted kordon kütüklerinden kaynaklanan kanamaları sulamak ve temizlemek için sıcak tuzlu eti kullanın. Gerekirse hemostaz elde etmek için hafif basınç uygulamak için bir pamuklu bez kullanın. Omuriliği sıkıştırmamaya dikkat edin.
4. Kapatma ve hemen ameliyat sonrası bakım
- Kasları bir araya getirin ve katman halinde dikiş.
- Hemostaz transection yerinde elde edildikten sonra, T10 vertebra üzerinde kavisli forceps kavrama bırakın. İyi bir adem elde etmek için orta hat boyunca parçalanmış kasların kenarlarını bir araya getirin.
- 5-0 poliglactin 910 emilebilir dikişler kullanarak bir tabaka kasları dikiş. Omurganın doğal eğriliği dikiş hattında herhangi bir gerginlik neden olmadığından emin olun veya dikişleri açmak, laminektomi site açığa.
- Subkutan dokuyu ve deriyi kapatın.
- Cilt kesisini kapatmak için 5-0 emilemez ipek dikişler kullanın. Kapanmadan önce derinin altında kanama, pıhtı veya enkaz kalmadığından emin olun. Bu adımda sıcak tuzlu son bir sulama gerekebilir.
- Anesteziyi durdurun. Kurtarma kadar 10-30 dakika hayvan gözlemleyin. Hayvan bu süre boyunca ısıtma yastığıüzerinde kalmalıdır. Kafeste su jeli ve sulu yiyecek sağlayın.
- Postoperatif bakım için, buprenorfin dahil (günde iki kez), enrofloksasin (günde bir kez) ilk iki gün profilaktik için. Ayrıca, elle en az iki kez günlük mesane boş, hayvan etik komitesi nin yönergelerine bağlı.
NOT: Bu deneydeki hayvanlar, kalıcı ağrı (ek dozlarda buprenorfin vermek için) veya enfeksiyon (ek enrofloksasin), beslenme ve hidrasyon durumları (susuz ise enjekte edilebilir sıvılar vermek) ve ototomi belirtileri (küçük ototomi varsa yara bakımı sağlamak) kontrol dahil genel sağlık ve refah için günde iki kez değerlendirildi. Ötanazi kararları da dahil olmak üzere ameliyat sonrası bakımın bu yönlerinin kurumsal hayvan etik komitesinin rehberliğinde belirlenmesi önemle tavsiye edilir.
5. Yaralanma modelinin değerlendirilmesi
- Motor fonksiyon kaybının belirlenmesi.
- Basso Mouse Scale (BMS) kullanarak açık bir alanda yaralanmadan 2, 7, 14, 21 ve 28 gün sonra oluşan yaralı farelerdeki motor davranışını değerlendirinve fonksiyon kaybını belirleyin(Şekil 3C–E).
- Yaralanmahistolojik onayı
- Ötanazi den sonra vertebral kolonları ile yaralı omurilik hasat (bu deneyde karbondioksit ile yapılır, hayvan etik komitesi tarafından onaylandığı gibi).
- % 4 paraformaldehit gecede daldırma doku düzeltmek ve 3 hafta boyunca% 20 etilen diamin tetraasetik asit (EDTA) ile tedavi ile kemikleri dekalsite, taze EDTA her 48 saat yerine.
- Kaliküle dikenleri kriyo kesitiçin hazırlayın ve 30 μm kalınlığında kesin.
- Anti-GFAP antikorları ve Hoechst 33342 ile immüno boyama için jelatin kaplı cam slaytlar üzerine bölümleri monte edin.
- Bir floresan mikroskop(Şekil 3A)üzerinde slaytlar görüntü ve görüntü analiz yazılımı (örneğin, Nikon analiz yazılımı - NIS Elements [Şekil 3B]) kullanarak yaralanma boyutu ölçümleri gerçekleştirmek.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Şekil 1'debetimlenen yöntem, farenin yeterli stabilizasyonu(Şekil 1A) ve omurga ve paraspinöz dokunun iyi görüntülenmesini(Şekil 1B)içerir. Spinöz proses ve lamina minimal kas diseksiyonu ve kan kaybı ile açıkça görüntülenebilir(Şekil 1C, vurgulanmış bölge). İnce uç delme, dikdörtgenin gösterdiği gibi bir laminektomi penceresi oluşturmak için Şekil 1D'degösterildiği gibi yapılır. Ortaya çıkan laminektomi penceresi açıktır ve doğrudan görselleştirme ve omurilik erişimi sağlar(Şekil 1E, vurgulanan bölge). Bu sürecin şematik kavramı Şekil 1F'deaçıklanmıştır. Dar traneksiyon bıçağı ayrık laminektomi penceresinden(Şekil 1G)kolayca sığabilir ve düzgün bir kaydırma hareketi içinde tam bir tranekse tipi yaralanma oluşturulabilir (Şekil 1H-I). Böylece, Bu yöntem minimal kas diseksiyonu neden olur, minimal kollateral kemik hasarı, ve minimal kan kaybı ile istikrarlı bir tam transection tipi yaralanma ile sonuçlanır. Hayvanlarda şiddetli SCI indüksiyonuna rağmen, cerrahi işlem ve postoperatif bakım hayvanların sağkalım oranlarının yüksek olduğu sonuçlandı. Bu el yazması için bildirilen tüm hayvanlar omurilik cerrahisi atlattı; ve laboratuarımız tarafından yapılan ameliyatlar %>99'luk bir sağkalım oranına yol açmıştır.
Farelerde trazeksiyon tipi SCI indükleme yönteminin tekrarlanabilir ve tutarlı olup olmadığını değerlendirmek için histoloji/immünhistokimya ve davranış salitasyonunu (n = 8 hayvan) kullanarak yaralı omuriliği analiz ettik (n = 8 hayvan)(Şekil 2). Astrosit belirteç glial fibrillary asidik protein (GFAP) karşı immünetiketleme bozulmamış omurilik sınırı nı çizdi, yaralanma yeri uzunlamasına kesitler ile bakıldığında kordon kütükleri arasındaki bölge olmak(Şekil 3A). Transection bölgesinde ortalama minimum mesafe 550,4 ± 17,3 μm(Şekil 3B)olan tutarlı büyüklükte bir defekt indüklenmiştir. Açık alan testinin Basso Mouse Scale (BMS)9'unu dağıtan davranışsal veriler, yaralı farelerin yaralanmadan sonra arka ekstremite hareketi sergilemediğini göstermiştir(Şekil 3C). Bu, BMS'de yaralanma sonrası 28 güne kadar 0 puan ile temsil edilir. Bu nedenle protokol tam ve güvenilir trazesel tipi yaralanmalar üretir ve bu da yaralanma seviyesinin altında fonksiyon kaybına neden olur ve felcin kendiliğinden geri dönmesine yol açmaz(Şekil 3D,E).
Şekil 1: Transection yaralanma protokolünde anahtar adımlar. (A) Ameliyat tan önce hayvan kurulumu ve stabilizasyonu. Her iki schematic ve ameliyat fotoğraf gösterilir. (B) Derin kas tabakalarını ortaya çıkarmak için kesi, retraktör yerleşimi ve künt diseksiyonu gösteren şematik ve fotoğraf. (C) Omurganın forceps ile stabilizasyonu ve T10 omurunun laminatını ortaya çıkarır. Fotoğraftaki dikdörtgen, T10 omurunun lamina ve spinous işlemini vurgular. (D) Laminektomi yapmak için ince uçlu matkap. Bu fotoğraftaki dikdörtgen laminektomi penceresini takip ediyor. (E) Tam laminektomi penceresi dikdörtgen tarafından vurgulanan, içinde omurilik açıkça görülebilir. (F) Tam bir laminektomi gerçekleştirmek için sondaj kavramını gösteren şematik çizimler serisi, kesitsel yönde. (G) Bu fotoğraf tam transeksiyon tipi yaralanma gerçekleştirmek için ince bir bıçak transeksiyon bıçak kullanımını gösterir, ve (H) tam yaralanma dikdörtgen içinde görülebilir, omurilik boyunca koyu kırmızı enine çizgi olarak. (I) Laminektomi ve yaralanma bölgesinin genel görünümünü gösteren şema. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 2: T10 için vertebral dönüm noktası tanımlamasını açıklayan bir şema. T10 omurunun spinous süreci torasik omurganın doğal eğriliği palpe edilebilir en önemli yerlerinden biridir. Bu noktada spinöz süreçler morfolojiyi değiştirir, böylece spinöz proseslerin uçları T10 noktasından caudally'den ve spinöz proseslerin uçları t10 noktasından kaudal olarak. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Şekil 3: C57BL/6 farelerinde indüklenen tranekstipi yaralanmanın temsilcisi sonuçlar. (A) Omuriliğin uzunlamasına bir bölümü tam transection tipi hasarı ortaya çıkarır. Doku ters bir mikroskopta görüntülendi. Anti-GFAP immünetiketleme etiketleri astrositler (kırmızı) ise çekirdekleri Hoechst 33342 (mavi) ile etiketlenir. En kısa noktanın doğrusal ölçümü kullanılarak yaralanma boşluğu 550 μm idi. Ölçek çubuğu = 200 μm. IS = yaralanma yeri, IVD = intervertebral disk, SC = omurilik, VB = vertebral cisim. (B) Yaralanma boyutu 8 hayvanda ölçüldü. Ortalama yaralanma boyutu 550,4 ± 17,3 μm ve maksimum 577,8 μm.(C) Motor davranışı Basso Mouse Ölçeği (BMS) üzerinde puanlandı, yaralanma dan önce tüm farelerde 9 idi ve yaralanma dan sonra 4 hafta boyunca 0'da kaldı, yaralanma bölgesinin altında motor fonksiyonunun tam bir kaybı nı gösteren (n = 8 fare). (D) Yaralanmadan önce sağlıklı bir farenin yürüyüşü. (E) Yaralanmadan sonra aynı farenin yürüyüşü. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Bu yöntem farelerde T10 vertebra düzeyinde tam bir trazeksiyon tipi yaralanmaya neden olur, bu da hayvanın tam paraplejiile sonuçlandığı yaralanma seviyesinin altında. Genel olarak, bu yöntem minimal kanama, ihmal edilebilir ikincil hasar ve stabil, tekrarlanabilir yaralanma ile sonuçlanır. Laminektomi10olmadan traneksiyon daha önce yayınlanmış yöntemlere göre, Bu yöntem omurga eğriliği manipüle etmeden doğrudan görüntüleme açısından yararları sunuyor, yaralanma bütünlüğü üzerinde daha iyi kontrol, ve kanama kontrol etmek ve hemostaz elde etmek için geliştirilmiş yeteneği. Bu yöntemin avantajı, protokolün T10 dışındaki herhangi bir vertebral düzeyde kullanılmak üzere değiştirilebilmekte ve hemi kesitler, kısmi dorsal tranzonlar, dorsal kök avulsiyonları, ezilme ve kontüzyonlar gibi diğer yaralanma tiplerini gerçekleştirebilmektir.
Bu protokolün önemli bir bileşeni, ince uçlu bir matkap kullanımı istihdam olmasıdır. Matkap kullanımı yüksek beceri düzeyi ve daha kapsamlı bir eğitim gerektirebilir iken, temiz ve tam bir laminektomi elde eder. Bir diğer önemli faktör de mikro makas yerine transection için dar bıçaklı bıçak kullanılmasıdır. Bu makas kullanarak karşılaştırıldığında daha az istenmeyen ikincil hasar alabı. Tersine, ancak, çok fazla yanal basınç uygulandığıtakdirde, bıçak vertebral vücut bazı yaralanmalara neden olabilir. Açıklanan protokol, cerrahın bazı sorun giderme işlemleri yapmasını gerektirebilir. Laminektomi düzgün yapılmazsa, laminektomi penceresine erişimi kısıtlayan kemik çıkıntıları kalabilir. İnce uçlu forceps'ün uçlarından birini takmak cerrahın kalan kemik mahmuzlarını kavramasını ve koparmasını sağlayabilir. Ancak, bu süreçte maruz kalan omuriliğe zarar vermemeye özen gerekir. Laminektomi pürüzlü bir kemik kenarı ile sonuçlanırsa, laminektomi marjını düzeltmek için delme tekrar yapılabilir. Laminektomi penceresi zaten yeterince genişse bu pratik olmayabilir, bu durumda, ranseksiyon laminektomi bölgesiile oynamadan yapılmalıdır.
Canlı sağkalım ameliyatı na teşebbüs edilmeden önce kullanıcıların ilgili spinal düzeyde en az 8-10 kez kadaverik diseksiyon lamineektomi prosedürlerini uygulamaları önemle tavsiye edilir. Matkap tutma ve manevra teknikleri basit olsa da, kullanıcıların ekipmanı tanımasını gerektirebilir. Burada, sondaj işlemi sırasında omurga ve el stabilizasyonu ile yardımcı olmak için bazı yararlı tavsiyeler de salıyoruz. Kullanıcı sağ el ise, omurga sol el ile kavisli forseps kullanılarak stabilize edilmelidir böylece forseps kranial açıdan omurga yaklaşım. Bu sağ (veya baskın) elinde düzenlenen matkap ile yaklaşmak için omurganın kaudal yönünü açık tutar. Matkap başparmak, indeks ve orta parmaklar arasında bir kıskaç kavrama ile tutulmalıdır. El iyi bilek medial kenarı ve uzanmış beşinci parmak boyunca desteklenmelidir. Dirseğin vücuda değdiği şekilde kol tamamen dinlenmiş tutmak, uygulama sırasında matkap kavrama üzerinde daha iyi kontrol elde edilmesine yardımcı olabilir. Delme eylemi, yazmak için kalem kullanmaktan farklı olarak, sadece matkabı tutan parmaklarda hareket içermelidir ve bilekte değil.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.
Acknowledgments
Bu çalışma, Griffith Üniversitesi Uluslararası Öğrencisi (PhD) tarafından RR'ye, Perry Cross Foundation Grant to JE ve JSJ'ye, Clem Jones Vakfı Hibesi jsj ve JE'ye ve Queensland'ın JSJ ve JE'ye verdiği Motor Kazası Sigorta Komisyonu'na destek lenmiştir.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Baytril injectable 50 mg/mL, 50 mL | Provet | BAYT I | Post-operative care drug |
| Betadine 500 mL | Provet | BETA AS | Consumable |
| Castroviejo needle holder, locking | ProSciTech | T149C | Reusable |
| Ceramic zirconia blade, round with sharp sides, single edge, angled | ProSciTech | TXD101A-X | Reusable |
| Cotton swabs (5pcs) | Multigate | 21-893 | Consumable |
| Dremel Micro | DREMEL | 8050-N/18 | Cordless rotary tool |
| Dressing forceps fine | Multigate | 06-306 | Single use disposable |
| Drill bits | Kemmer Präzision | SM 32 M 0550 070 | Reusable |
| Dumont #7b forceps | Fine Science Tools | 11270-20 | Reusable |
| Dumont tweezers, style 5 | ProSciTech | T05-822 | Reusable |
| Fur trimmer | WAHL | WA9884-312 | Zero Overlap Hair Trimmer |
| Iris scissors, Ti, sharp tips, straight, 90mm | ProSciTech | TY-3032 | Reusable |
| Isoflurane isothesia NXT 250 | Provet | ISOF 00 HS | Anaesthetic agent |
| Colibri Retractor - 4cm | Fine Science Tools | 17000-04 | Reusable |
| Scalpel handle | ProSciTech | T133 | Reusable |
| Signature latex surgical gloves size 7.5 | Medline | MSG5475 | Consumable |
| Sodium Chloride 0.9% | STS | PHA19042005 | Consumable |
| Sterile Dressing Pack | Multigate | 08-709 | Single use disposable |
| Sterile Fluid Impervious Drape 60x60 cm | Multigate | 29-220 | Single use disposable |
| Surgical spirit 100 mL | Provet | # SURG SP | Consumable |
| Suture Material - SILK BLK 45CM 5/0 FS-2 | Johnson & Johnson Medical | 682G | Silk Suture |
| Suture Material - Vicryl 70CM 5-0 S/A FS-2 | Johnson & Johnson Medical | VCP421H | Vicryl Suture |
| Temgesic 0.3 mg in 1 mL, x 5 ampoules (class S8 drug) | Provet | TEMG I | Post-operative care drug |
References
- Sharif-Alhoseini, M., et al. Animal models of spinal cord injury: a systematic review. Spinal Cord. 55 (8), 714-721 (2017).
- Lee, D. H., Lee, J. K. Animal models of axon regeneration after spinal cord injury. Neuroscience Bulletin. 29 (4), 436-444 (2013).
- Sharif-Alhoseini, M., Rahimi-Movaghar, V. Topics in Paraplegia. Dionyssiotis, Y. , IntechOpen. (2014).
- Talac, R., et al. Animal models of spinal cord injury for evaluation of tissue engineering treatment strategies. Biomaterials. 25 (9), 1505-1510 (2004).
- Nakae, A., et al. The animal model of spinal cord injury as an experimental pain model. Journal of Biomedicine & Biotechnology. 2011, 939023 (2011).
- Kwon, B., Oxland, T., Tetzlaff, W. Animal models used in spinal cord regeneration research. Spine. 27, 1504-1510 (2002).
- Kundi, S., Bicknell, R., Ahmed, Z. Spinal cord injury: current mammalian models. American Journal of Neuroscience. (4), 1-12 (2013).
- Harrison, M., et al. Vertebral landmarks for the identification of spinal cord segments in the mouse. Neuroimage. 68, 22-29 (2013).
- Basso, D. M., et al. Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains. Journal of Neurotrauma. 23 (5), 635-659 (2006).
- Seitz, A., Aglow, E., Heber-Katz, E. Recovery from spinal cord injury: a new transection model in the C57Bl/6 mouse. Journal of Neuroscience Research. 67 (3), 337-345 (2002).
