Method Article

Préparation d’extraits cellulaires par cryogrinding dans un moulin à congélateur automatisé

DOI:

10.3791/61164

January 29th, 2021

In This Article

Summary

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Nous décrivons une méthode fiable pour la préparation d’extraits de cellules entières de levure ou d’autres cellules à l’aide d’un moulin cryogénique qui minimise la dégradation et la dénaturation des protéines. Les extraits cellulaires conviennent à la purification des complexes protéiques fonctionnels, aux analyses protéomiques, aux études de co-immunoprécipitation et à la détection des modifications des protéines labiles.

Abstract

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La facilité de la manipulation génétique et la forte conservation évolutive des machines cellulaires eucaryotes dans la levure naissante Saccharomyces cerevisiae en ont fait un organisme modèle génétique prééminent. Toutefois, comme l’isolement efficace des protéines dépend d’une perturbation optimale des cellules, l’utilisation de levure pour l’analyse biochimique des protéines cellulaires est entravée par sa paroi cellulaire qui est coûteuse à digérer enzymatiquement (à l’aide de lyticase ou de zymolyase), et difficile à perturber mécaniquement (à l’aide d’un batteur à perles traditionnel, d’une presse Français ou d’un moulin à café) sans provoquer de chauffage des échantillons, ce qui provoque à son tour la dénaturation et la dégradation des protéines. Bien que le broyage manuel des cellules de levure sous azote liquide (LN2)à l’aide d’un mortier et d’un pilon évite la surchauffe des échantillons, il est à forte intensité de main-d’œuvre et sujet à la variabilité de la lyse cellulaire entre les opérateurs. Pendant de nombreuses années, nous avons été avec succès la préparation d’extraits de levure de haute qualité en utilisant cryogrinding des cellules dans un moulin à congélateur automatisé. La température de -196 °C atteinte avec l’utilisation de LN2 protège le matériel biologique contre la dégradation par les protéases et les nucléases, permettant la récupération de protéines intactes, d’acides nucléiques et d’autres macromolécules. Ici, nous décrivons cette technique en détail pour les cellules de levure en herbe qui consiste d’abord à congeler une suspension des cellules dans un tampon de lyse par son ajout dropwise dans LN2 pour générer des gouttelettes congelées de cellules connues sous le nom de « pop-corn ». Ce maïs soufflé est ensuite pulvérisé sous LN2 dans un moulin à congélateur pour produire un extrait congelé « en poudre » qui est décongelé lentement et clarifié par centrifugation pour enlever les débris insolubles. Les extraits qui en résultent sont prêts pour des applications en aval, telles que la purification des protéines ou des acides nucléiques, les analyses protéomiques ou les études de co-immunoprécipitation. Cette technique est largement applicable pour la préparation de l’extrait cellulaire à partir d’une variété de micro-organismes, tissus végétaux et animaux, spécimens marins, y compris les coraux, ainsi que l’isolement de l’ADN / ARN à partir de spécimens fossiles médico-légaux et pergélisol.

Introduction

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La levure est un organisme modèle populaire pour les études protéiques, car il s’agit d’un organisme eucaryotique simple avec une abondance d’outils génétiques et biochimiques disponibles pour leschercheurs 1. En raison de leur paroi cellulaire robuste, un défi auquel les chercheurs sont confrontés est de lyser efficacement les cellules sans endommager le contenu cellulaire. Différentes méthodes sont disponibles pour obtenir des extraits de protéines par la perturbation des cellules de levure qui comprennent la lyse enzymatique (zymolyase)2,3, lysechimique 4, lys....

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Protocol

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1. Préparation de maïs soufflé à levures

  1. Cultiver des cellules de levure dans 0,5 L de médias YPD à une densité de 1 x 107 cellules /mL. Comptez les cellules à l’aide d’un compteur Coulter ou de tout autre moyen.
  2. Cellules centrifugeuses pendant 10 min à 2 400 g et 4 °C.
  3. Lavez chaque échantillon une fois avec 500 mL d’eau glacée déionisée de 18 méga Ohm Milli-Q.
  4. Resuspendez les granulés dans 15 mL de tampon de lyse glacée [20 mM HEPES-KOH pH 7,5, 110 mM KCl, 0,1% Tween, 10% glycérol, avec agent réducteur fraîchement ajouté 10 mM β-mercaptoethanol, cocktail inhibiteur de la protéase, inhibiteur du protéasome 10 μM MG-13....

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Results

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Nous avons comparé deux méthodes différentes pour la lyse cellulaire de levure, à savoir le mouture de perle de verre à 4 °C et une méthode automatisée de cryogrinding à -196 °C, pour évaluer les protéines relatives de récupération dans les extraits cellulaires préparés avec les deux méthodes. Pour cette étude, nous avons choisi d’utiliser une souche de levure en herbe YAG 1177 (MAT a lys2-810 leu2-3,-112 ura3-52 his3-Δ200 trp1-1[am] ubi1-Δ1::TRP1 ubi2-Δ2::ura3 ubi 3-Δub-2 ubi4-Δ2::LEU2 [.......

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Discussion

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Une limitation de l’étude des protéines indigènes de la levure est la lyse inefficace des cellules de levure en raison de leur paroi cellulaire dure. Bien que plusieurs méthodes aient été développées, la méthode la plus cohérente et efficace dans nos mains est le cryogrinding des cellules de levure flash congelés comme pop-corn. Cette méthode permet la préparation fiable d’extraits de cellules entières de haute qualité de levure en herbe par rapport à d’autres méthodes de lyse. Les résultats représentatifs ont démontré q.......

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Disclosures

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Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Acknowledgements

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La recherche dans le laboratoire Gunjan est soutenue par le financement des National Institutes of Health, de la National Science Foundation et du Florida Department of Health. Nous remercions John Parker, étudiant de premier cycle, pour son assistance technique.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Tubes en polycarbonate de 50 mL avec bouchons à visBeckman357002Tubes à centrifuger
BD Bacto PeptoneBD Biosiences211677Levure YPD Composant de milieu
BD Extrait de levure BactoBD Biosiences212750Levure YPD Composant de média
Beckman Avanti centrifugeuseBeckmanB38624Centrifugeuse à grande vitesse
Beckman JLA-9.1000Beckman366754Rotor
D-(+)-Dextrose AnhydreMP Biomedicals901521Levure Composant de milieu YPD
Eppendorf A-4-44Eppendorf22637461Rotor à godets oscillants
Centrifugeuse réfrigérée Eppendorf 5810 REppendorf22625101Centrifugeuse réfrigérée
GlycérolSIGMA-ALDRICHG5150-1GAExcluseur de volume et cryoprotecteur
HEPESFisherBiotechBP310-100Tampon
HIS6 AnticorpsNovagen70796Anticorps pour HIS
tag KClSIGMA-ALDRICHP9541-1KGSel pour le maintien de la force ionique
MG-132CALBIOCHEM474790Inhibiteur de protéasome
Cocktail inhibiteur de la phosphataseThermoFisher ScientificA32957Cocktail d’inhibiteurs de la phosphatase
Ponceau SSIGMAP7170-1LCocktail d’inhibiteurs
protéaseThermoFisher ScientificA32963Cocktail d’inhibiteurs de protéase
Rotor JLA 25.500BeckmanJLA 25.500Rotor
Butyrate de sodiumEM ScienceBX2165-1Inhibiteur de l’histone désacétylase
Fluorure de sodiumSigma-AldrichS6521Inhibiteur de phosphatase
Vanadate de sodiumMP Biomedicals159664Inhibiteur de la phosphatase
Sodium &beta ;-glycérophosphateAlfa Aesar13408-09-8Inhibiteur de phosphatase
Spex Certiprep 6850 CongélateurSPEX Sample Prep6850Congélateur
TALON Metal Affinity RésineBD Biosiences635502Pour abattre HIS Protéines étiquetées
Tween 20VWR InternationalVW1521-07Détergent non ionique
&beta ;-MercaptoethanolAMRESCOM131-250MLAgent réducteur
de

References

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  1. Botstein, D., Chervitz, S. A., Cherry, J. M. Yeast as a model organism. Science. 277 (5330), 1259-1260 (1997).
  2. Dunn, B., Wobbe, C. R. Preparation of protein extracts from yeast. Current Protocols in Molecular Biology. , Chapter 13, Unit 13 (2001).
  3. Holm, C., Meeks-Wagner, D. W., Fangman, W. L., Botstein, D.

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CryogrindingFreezer MillLiquid NitrogenYeast Cell LysisProtein ExtractionNucleic Acid IsolationCell DisruptionAutomated MillSample PreparationProtease Inhibition

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