Summary
우리는 기술적으로 쉽게, 저렴, 빠르고, 작은 마우스에서 저렴하고 저렴한 ECG 프로토콜을 제시하고, 향상된 감도로 수행 할 수 있습니다. 우리는 마우스에 있는 약리학 에이전트, 유전 수정 및 질병 모형을 공부하기 위한 검열 접근으로 이 방법을 건의합니다.
Abstract
심전도는 심장 전도 시스템을 평가하기위한 귀중한 도구입니다. 동물 연구는 심전도에 관한 새로운 유전 및 약리학적 정보를 생성하는 데 도움이되었습니다. 그러나, 마우스와 같은 생체 내의 작은 동물에서 심전도 측정을 하는 것은 도전적이고 있습니다. 이를 위해, 우리는 많은 장점을 가진 마취 마우스에서 심전도 기록 방법을 사용했습니다 : 그것은 기술적으로 간단한 절차이며, 저렴하고, 짧은 측정 시간을 가지고 있으며, 어린 쥐에서도 저렴합니다. 마취를 사용하는 한계에도 불구하고 제어 그룹과 실험 그룹 간의 비교는 향상된 감도로 수행 될 수 있습니다. 우리는 이 프로토콜의 타당성을 결정하기 위하여 자율 신경계의 작용제 그리고 길항제를 가진 마우스를 취급하고 이전 보고와 우리의 결과를 비교했습니다. 우리의 심전도 프로토콜은 atropine를 가진 처리에 증가한 심박수 및 QTC 간격을 검출했습니다, carbachol 처리 후에 심박수 및 QTC 간격을 감소시키고, 이소프레네랄린을 가진 더 높은 심박수 및 QTC 간격그러나 propranolol의 관리에 ECG 매개변수에 있는 어떤 변경도 주의하지 않았습니다. 이러한 결과는 이전 보고서에서 지원되며 이 심전도 프로토콜의 신뢰성을 확인합니다. 따라서, 이 방법은 높은 비용 및 기술적 어려움으로 인해 시도되지 않을 심전도 측정을 만들기 위한 스크리닝 접근법으로 사용될 수 있다.
Introduction
심장 박동의 전기 적 활성을 측정하는 심전도 (ECG)는 심장 전도 시스템을 평가하는 귀중한 도구입니다. 심전도에 의해 측정되는 매개 변수에는 심박수, PR 간격, QRS 지속 시간 및 QT 간격이 포함됩니다. 간단히 말해서, PR 간격은 심방 부비동 노드에서 대상동맥 노드를 통해 Purkinje 섬유로 이동하는 데 필요한 시간에 해당합니다. QRS 지속 시간은 Purkinje 시스템 및 심실 심근을 통해 심실 탈극화가 발생하는 시간입니다. 및 QT 간격은 심실 재양극화의 지속 시간입니다.
마우스의 심전도 기록은 연구원이 심장 기능을 검토하고 부정맥, 심방 세동 및 심부전과 같은 심장 표현형의 생리적 및 병리학적 메커니즘을 결정하는 데 도움이 되었습니다. 대부분의 심혈관 연구는 유전자 조작 마우스 모형에 있는 연구 결과를 관련시켰습니다. 유전적으로 조작된 작은 쥐로부터 심전도 기록에 대한 의미 있는 데이터를 얻는 것은 종종 어려운 일입니다.
마우스1에서ECG를 수행하기 위한 몇 가지 방법이 있다. 연구 결과에 따르면 마취가 심장 기능에 미치는 영향이 잘확립되었기때문에 의식이 있는 동물의 심전도 기록이 마취 동물보다 선호되는 것으로 2. 의식마우스에서 심전도를 기록하는 두 가지 프로토콜은 노트1이다. 심전도 방사능 시스템은 의식마우스1,3에서심전도의 지속적인 장기모니터링을위한 금본위제이다. 의식상태에서 기록되는 데 힘이 있음에도 불구하고, 방사선 망원경 결합 심전도 측정은 설치 및 임플란트에 대한 높은 비용, 고도로 숙련 된 연산자의 요구 사항, 1 주일 이상 안정화 기간, 대형 마우스 (> 20g) 및 ECG 기록1의단일 리드 만 획득하는 등 몇 가지 한계를 가지고 있습니다. 플랫폼에 내장된 발 크기의 전도성 전극을 사용하는 또 다른 시스템은 마취 나 임플란트1,,4없이의식이 있는 마우스에서 심전도 기록을 허용한다. 이 비침습적 시스템은 수술 치료 요구 사항, 마취 필요 없음, 마우스 당 저렴한 비용 (초기 설정만 비싸다), 측정 짧은 시간 및 신생아1,,4의경제성 등 많은 장점이 있기 때문에 방사선 원격 측정 시스템을 사용할 수없는 상황에서 대안 방법입니다. 이 시스템의 주요 단점은 지속적인 장기 모니터링1에적합하지 않다는 것입니다.
여기서 우리는 마취 된 마우스에서 또 다른 저렴하고 간단하며 빠른 심전도 기록 방법을 소개하고 심장 전도 시스템의 자율 봉쇄 / 자극 후 심전도를 수행함으로써 그 유효성과 감도를 입증합니다. 우리는 마우스에 있는 약리학 에이전트, 유전 수정 및 질병 모형의 효력을 검열하기 위한 이 ECG 방법을 건의합니다.
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Protocol
모든 동물 절차는 실험실 동물의 관리 및 사용에 대한 지역위원회에 의해 승인되었다, 경희대학 (라이센스 번호: KHUASP (SE)-18-108) 실험실 동물의 관리 및 사용에 대한 건강 가이드의 미국 국립 연구소에 부합.
1. 실험동물
- 실험실 동물의 치료 및 사용에 대한 지침에 따라 모든 마우스 (39 마우스, Balb /c, 남성, 7\u20129 주 이전)를 병원체없는 시설에 보관하십시오.
- 음식과 물에 무료로 액세스 할 수있는 일정한 온도에서 12 h 빛 / 어두운 주기에 마우스를 유지합니다.
2. 마취제 준비
참고: 트리브로모에탄올은 심박수의 안정성과 트리브로메탄올 마취 마우스1,5,6의 에코카르디그래피의 재현성을 기반으로 케타민 조합 및 이소플루란위에사용됩니다.,
- 1mL 고등 아밀 알코올 당 1 g의 농도에서 2,2,2-트리브로모에탄올의 재고 용액을 확인합니다. 40\u201245 °C에서 24 시간 동안 따뜻하게 합니다.
- 작업 용액의 경우 0.5mL의 재고 용액을 식염수(0.9% NaCl)에서 25 mg/mL로 희석하십시오. 40\u201245 °C에서 1 h. 1 개월 동안 4 ° C에서 저장하십시오.
3. 심전도 시스템 설정
- 마우스의 심전도 신호가 환경 소음 및 움직임에 민감하기 때문에 2m 이내에 소음이나 진동이 없도록 시스템을 설정해야 합니다.
- 데이터 수집 시스템, 바이오 증폭기 및 ECG 데이터 분석 소프트웨어와 함께 설치된 컴퓨터와 같은 하드웨어 설정을 준비합니다.
- 전원 케이블을 사용하여 데이터 수집 시스템을 AC(주)에 연결합니다.
- USB 케이블을 사용하여 데이터 수집 시스템을 컴퓨터에 연결합니다.
- 바이오 앰프의 후면 패널의 신호 출력을 케이블을 사용하여 데이터 수집 시스템의 전면 패널에 아날로그 입력에 연결합니다.
- I2C 케이블을 이용하여 바이오 앰프의 I2C 입력에 데이터 수집 시스템의 I2C 출력을 연결합니다.
- 3리드 바이오 앰프 케이블을 바이오 앰프의 전면 패널의 6핀 입력 소켓에 연결합니다.
- 후면 패널의 스위치를 사용하여 데이터 수집 시스템을 켭니다.
참고: 간단히 말해서, 신호는 바이오 증폭기와 다음 채널 설정과 함께 전산화된 데이터 수집 및 분석 시스템을 사용하여 기록됩니다: 2 k/s의 샘플링 속도, 20mV 범위 및 200Hz의 로우 패스 필터 설정.
- 분석 소프트웨어 프로그램을 열고 ECG 데이터 수집을 위해 설정합니다.
- 설정으로 이동 | 채널 설정. 샘플 속도를 2k/s로 설정합니다. Range 입력 증폭기를 로우 패스200Hz로 설정합니다.
- 심전도 분석으로 이동 | 심전도 설정. 검색 및 분석 설정 의 사전 설정에서 "마우스"를 선택합니다.
- 평균 패널에서 평균 보기 및 테이블 뷰에 대한 단일 평균 신호로 N(예: 4비트 또는 60s) 연속 심장 주기를 결합하도록 선택합니다.
- QTc 패널에서 QT 간격의 심박수 보정 값으로 정의된 "Bazett" 방법을 선택하십시오: QTc = QT/(RR/100)0.5,RR 간격 = 60/심박수7.
4. 심전도 측정
- 마우스를 정밀 척도에 놓고 무게를 기록합니다.
- 트리브로모에탄올(18mL당 작동 용액의 18mL)의 작업용액의 인트라보네알(i.p.) 주입에 의해 마우스내 마취를 유도한다(b.w.).
- 마취 된 마우스를 supine 위치에 놓습니다. 마우스가 완전히 마취되었는지(2분 미만)인지 확인합니다.
- 침술 바늘로 전극을 좌우 앞다리와 왼쪽 뒷다리에 피하로 삽입하고 리드 II ECG 계획에 따라 테이프로 고정하십시오(도1). 삽입된 전극의 깊이와 위치가 실험 전반에 걸쳐 일관되게 유지되도록 합니다.
- 3리드 바이오 앰프 케이블의 리드 와이어의 다른 쪽 끝에 있는 세 개의 스냅 커넥터에 클릭하여 전극의 다른 끝을 연결합니다.
- 약물 주입 (i.p.) 마취제가 전달 된 후 3 분(그림 2).
- 마취제를 주입한 후 10분 후에 심전도 기록을 시작하십시오. 기록이 완료되면 분석용 마취제를 주입한 후 12분에서 17분까지 심전도 데이터를 사용하십시오.
- 심전도 기록 세션이 끝나면 전극을 조심스럽게 제거합니다.
5. 심전도 데이터 분석
- 심전도 분석으로 이동 | 평균 보기 및 소프트웨어가 P 웨이브의 시작과 끝, QRS 복합체 및 T 웨이브를 개별 비트에서 올바르게 식별할 수 있도록 합니다. 필요한 경우 잘못 배치된 커서를 적절한 위치로 이동하여 이러한 파도 및 간격을 수동으로 수정할 수 있습니다.
참고: 도 3A에설명된 바와 같이, PR 간격은 P파의 발병을 QRS 컴플렉스(마우스 심전도에서 대부분 누락된 Q웨이브)에 걸쳐 있습니다. QRS 지속 시간은 Q 웨이브(주로 마우스 심전도의 R 웨이브)의 발병에서 S 파의 끝으로 확장됩니다. QT 간격은 T 파의 끝에 Q 웨이브(주로 마우스 심전도의 R 웨이브)의 발병을 포함한다. 인간 심전도8에비해 마우스 심전도에서 Q파 및 ST 세그먼트의 짧은 지속 시간 및 부재를 유의한다. - 심전도 분석으로 이동 | 평균 보기 창에서 개별 비트를 확인하여 올바르게 식별된 심전도 데이터를 선택하고 선택합니다.
참고: 그림 3에서는 실제 마우스 심전도 신호의 몇 가지 예를 보여 주어 있습니다. 도 3A는 P웨이브, QRS 복합체 및 T웨이브와 관련하여 올바르게 확인된 일반 야생형 신호를 나타낸다. PQRS 파의 전산화된 선택은 P 파의 발병을 잘못 배치하는 일반적인 야생형 신호인 도 3B와 같은 잘못된 오위를 초래할 수 있다. 그림 3C에서 QRS 컴플렉스의 끝을 잘못 배치하는 심전도 신호로 QRS 지속 시간의 과대 평가가 발생합니다. 도 3D에서 QRS 컴플렉스의 끝을 잘못 배치하는 심전도 신호로 인해 모호한 T 파및 도 3E에 의한 QRS 복합체의 과소평가가 식별 가능한 T 웨이브를 가진 심전도 신호를 과소평가하게 됩니다. 제외 또는 수동 수정 없이 PQRS 간격을 초과하거나 과소 평가할 수 있습니다. 올바르게 식별된 ECG 신호와 대상 피크를 놓치지 않는 신호를 선택해야 합니다. 따라서 B, C, D 및 E(그림3)를포함한 이러한 경우는 일반적으로 ECG 파라미터를 정확하게 추정하는 데 배제됩니다. - 테이블 뷰에서 관심 있는 ECG 데이터를 선택하고 스프레드시트 파일에 복사/붙여넣습니다.
6. 통계 분석
- 통계 프로그램을 사용하여 통계 분석을 수행합니다. 눈멀게 된 실험 조건으로 데이터를 분석합니다. 2그룹 비교를 위해 학생의 t-test및 Mann-Whitney U-테스트를 수행합니다. 각 그림의 숫자는 각 그룹에 사용되는 마우스 수를 나타냅니다. 결과를 평균 ± SEM으로 보고합니다.
- U-테스트에 의한 p&05와의 차이점을 통계적으로 유의하게 고려하십시오: *, p< 0.05; p **, p p&01; 및 ***, p & 0.005 대 각각의 컨트롤.
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Representative Results
약리학 실험
우리의 비침습적 심전도 측정이 심장 전도 시스템에 자율 변조의 영향을 반영하는지 여부를 결정하기 위해, 일반 Balb /c 마우스는 자율 신경계 (ANS)의 작용제 및 길항제와 도전했다. 아트로핀과 카르바콜은 각각 부교감 자율 봉쇄 및 자극을 위해 사용되었으며, 프로프라놀롤과 이소프레네랄린은 각각9개의동정적인 자율 봉쇄와 자극을 유도하도록 투여되었다.
심박수는 아트로핀-(p&0.05)와 이소프레네라인 처리마우스(p&0.05)에서 크게 증가하여 카바콜(p<; 0.005) 차량(차량, 391 ±13 bpm 대 아트로핀, 487 ±15 bpm 대 카르바콜, 158 ± 7 bpm; 차량, 382 ± 14 bpm 대 이솝레나라인, 548 ± 8 bpm; 차량, 404 ±25 bpm vs 프로프라노 롤, 303p bpm).p p Figure 4 또한, QTc 간격은 아트로핀-(p&0.05)와 이소프레네린 처리 마우스(p< 0.05) 카바솔 처리p 마우스(p&0.005) 및 차량 대 차량(차량, 46.5±0.6ms 대 아트로핀, 51.1±1.3ms 대 카르바콜, 29.4±1.0ms; 차량, 41.8 ±1.2 ms vs 이솝렌라인, 57.5)에서 감소하였다.p p Figure 4 그림 5에서는 아트로핀, 카바솔 및 차량 처리 마우스의 심전도 신호에 대한 대표적인 차트 뷰 및 평균 보기를 보여 주며 있습니다.
그림 1: 심전도 리드 배치.
침술 바늘 전극은 리드 II ECG 구성표 (오른쪽 및 왼쪽 앞다리및 왼쪽 뒷다리)에 따라 피하로 삽입되고 테이프로 고정됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: 마취 및 약물 치료 계획.
마취제(예를 들어, 트리브로모에탄올)를 주입한 후 3분 후, 약물 투여(예: 아트로핀, 카바콜, 이소프레날린 및 프로프라놀롤; i.p.p.). 마취가 전달된 후 10분 후에 심전도 기록을 시작하십시오. 마취제를 주입한 후 12\u201217분으로부터 심전도 데이터를 수집합니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3: 마우스 심전도 신호의 예입니다.
(A)P파, QRS 복합체 및 T웨이브와 관련하여 올바르게 식별되는 정상적인 야생형 신호. (B)P파의 발병을 잘못 배치하는 정상적인 야생형 신호. (C)QRS 컴플렉스의 끝을 잘못 배치하는 심전도 신호. (D)모호한 T파로 인해 QRS 복합체의 끝을 잘못 배치하는 심전도 신호. (E)식별할 수 없는 T 웨이브를 가진 심전도 신호. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 4: 자율 신경계의 작용제 및 길항제로 처리된 마우스의 심전도 측정.
(A)아트로핀(1 mg/kg)의 투여는 심박수와 QTc 간격을 증가시킨다. (B)카르바솔(0.5 mg/kg)은 심박수와 QTc 간격을 감소시다. (C)이소프레네린(1 mg/kg)은 심박수와 QTc 간격을 증가시킨다. (D)프로프라놀롤(1 mg/kg)은 심전도 파라미터를 변경하지 않습니다. *, p p&05; , p & 0.005. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 5: 부교감 신경계의 작용제 및 길항제로 치료된 마우스의 대표적인 심전도 신호.
(A)차트 뷰 및 평균 뷰(데이터 분석 프로그램)에서 획득한 차량 처리 마우스의 심전도 신호. (B)아트로핀 처리 마우스의 신호. (C)카르바폴 처리 마우스의 신호. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
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Discussion
프로토콜에는 몇 가지 중요한 단계가 있습니다. 주변 환경은 소음과 진동이 없어야 합니다. 심전도 전극은 연구원이 기술적으로 경험할 때까지 삽입 단계에 예비 실험이 필요한 피부 아래에 안정적으로 일관되게 삽입되어야 합니다. 또한, 마취제는 적절하게 준비및 저장하고 적절한 용량으로 사용되어야 한다. 마지막으로 PQRS 파동은 평균 보기 창의 개별 ECG 비트에 적절하게 위치해야 합니다.
우리의 연구는 약물의 테스트를 포함. 그러나 약리학 시험이 생략되면 마취제를 주입한 후 5분 동안 레코딩을 시작하여 4.7단계를 수정할 수 있으며, 심전도 데이터는 10 분에서 15분 이상 비교적 안정되어 있으며 첫 번째 측정후동일한 마우스 6h로 복제되었다.
약물에 의한 자율 봉쇄 및 자극은 심박수에 관한 차동 반응을 유도합니다. 여러 프로토콜은 심전도 연구에 사용되었습니다. 마우스의 텔레미터 ECG 기록을 기반으로, 아트로핀, 이소프레네랄린 및 프로프라놀롤은 심박수를 크게 바꾸지 않았지만 카바콜은 크게 감소했습니다(야생형, 739±33 bpm; 아트로핀, 726 ±5bpm; 카르바솔, 205 ±54 bpm; 이소페네랄린, 722 ±32 bpm; 프로노프라롤, 506±201.9 플랫폼에 내장된 발 크기의 전도성 전극을 사용하는 비침습적 시스템에 의한 심전도 기록을 기반으로, 아트로핀과 이소프레네랄린은 마우스(p&0.05)에서 심박수가 크게 증가한 반면, 프로프라놀롤은 이를10변경하지 않았다(p=NS) (야생형, 706 ± 13bpm; 아트로핀, 727 ±12 bpm; 이소프레네랄린, 12±2% 증가, 대조군, 프로프라노롤, 584 b3p.4,p p 이 비침습적 심전도 시스템으로, 이소프레네린 유도 ST 세그먼트 우울증4.
표면 심전도 신호(사지 전극을 통한 리드 II)는 초음파시스템(11)을가진 고해상도 경질 심방 초음파 검사(TTE) 동안 이소플루란 마취하에 획득된다. TTE에 의한 심전도 기록은 atropine11의투여 후에 심박수가 15 분 증가했다는 것을 건의했습니다. 당사의 프로토콜과 유사하게, 5바늘 전극을 이용한 트리브로모에탄올을 이용한 마취하에 6-납 심전도 기록(각 사지에 피하 실어 1개, 피기록 위치에 1개)을 증폭기로 데이터 수집 시스템에 연결한다12. 이 방법으로, 6-lead 심전도를 사용하여, carbachol크게 심장 박동(p&0.001) 및 증가 QT 간격(p&p; 0.001), 하지만 프로 프라놀롤크게 매개 변수 (야생 형, 395 ± 65 bpm; 카바솔, 177 ± 36 bpm; 프로 노 프라 롤, 프로 노 롤31. 트리브로모에탄올을 가진 마취하에 3리드 심전도 측정을 한 또 다른 보고는 야생형 마우스(p&0.01)(야생형, 422±17 bpm; 이소프레날린, 503 ±27 bpm)13에서이소프레날린이 심박수가 현저히 증가하는 것으로 나타났다.p 14 전반적으로, 심박수는 의식마우스에 있는 그보다는 마취의 밑에 심전도 측정에서 더 낮습니다. 대조군과 약물 처리군의 차이는 마취 하에 심전도 기록과 플랫폼에 내장된 발 크기의 전도성 전극을 사용하는 시스템에 의해 잘 반영되며, 의식적인 마우스에서, 심박수 및 QT 간격의 변화가 아트로핀, 카르바콜, 및 이소프레놀로 치료에서 검출되기 때문에10,,11,12, 13, 13.,13, 반면, 텔레미터ECG 레코딩은 카바폴9에의한 심박수 변화만 감지한다.
트리브로모에탄올이 있는 마취하에 있는 이 심전도 방법은 또한 인공로핀, 카르바콜 및 이소프레놀린을 가진 관리에 대한 심박수 및 QTC 간격의 차이를 주의하지만, 프로프라놀롤은 아니라 높은 감도를 암시합니다. 여기에 자율 장애와 함께, 우리는 심박수와 QTc 간격의 변화를 보여 주었다. 또한 PR 간격의 변화를 설명하는 심전도 방법과 QRS 지속 시간 및 QTc 간격의 변화를 해결하는 다른 설명서를 사용하여 모든 PQRS파15,,16의민감도를 부분적으로 지원합니다.
이 프로토콜은 플랫폼에 내장된 발 크기의 전극을 가진 의식있는 마우스에서 심전도 기록을 허용하는 비침습적 방법에 필적하는 많은 장점이 있습니다. 그러나, 우리의 프로토콜의 주요 한계는 트리브로모에탄올과 같은 마취제의 사용입니다. 트리브로모에탄올은 케타민 조합과 이소플루란을 통해 사용되며, 심박수의 안정성과 삼혈골마취마우스11,5,,6의 심전도 기록은 마취, 공감및 부교감의 변화, 상대적으로 높은 심박수로 인해 모든 에코를카드로 하는 모든 응용분야에 이상적이지 않은 의식적인 마우스에서 측정할 수6있습니다.
전반적으로, 그것의 한계에도 불구하고 (예를 들어, 마취의 사용), 우리의 심전도 방법은 많은 장점이 있습니다: (i) 피부 의 심전도 전극의 안정적인 삽입을 요구하는 기술적으로 간단한 절차입니다, (ii) 낮은 실험 비용을 가지고 - 지출은 주로 초기 하드웨어 설정에 대한; (iii) 마우스 당 20 분 미만의 짧은 측정 시간을 가지고 있으며, 젊은 마우스 (>15g 체중, 우리의 경험)에 실시 할 수 있습니다16 심지어 신생아 (산후 일 2\ u20124)17. 따라서, 약물 및 다양한 유형의 마우스(예를 들어, 유전자 변형, 질병 모델)에 대한 스크리닝 실험은 마우스당 많은 비용 없이 신속하고 신속하게 수행될 수 있으며, 신뢰할 수 있고 민감한 분석을 구성하고 텔레미터ECG 기록을 넘어서는 추가 지원 데이터로 사용될 수 있다.
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Disclosures
이해 상충, 재정적 또는 기타 충돌은 저자에 의해 선언되지 않습니다.
Acknowledgments
이 연구는 한국국립연구재단(NRF)(2015R1C1A2AA01052419 및 2018R1D1A1B7042484)이 관리하는 기초과학 연구 프로그램에 의해 지원되었다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 2,2,2-tribromoethanol | Sigma-Aldrich | T48402-25G | anesthetics, Avertin |
| Animal | Japan SLC, Inc., Shizuoka, Japan | Balb/c mice, male, aged 7-9 weeks | |
| Atropine | Sigma-Aldrich | A0123 | parasympathetic antagonist |
| BioAmp | AD Instruments, Bella Vista, Australia | ML132 | bio amplifier |
| Carbachol | Sigma-Aldrich | C4382 | parasympathetic agonist |
| Electrodes with acupuncture needles | DongBang Acupuncture Inc., Sungnam, Korea | DB106 | 0.20 x 15 mm |
| Isoprenaline | Sigma-Aldrich | I2760 | sympathetic agonist |
| LabChart 8 | AD Instruments, Bella Vista, Australia | data analysis software | |
| Mouse food | LabDiet, St. Louis, MO, USA | 5L79 | Mouse diet |
| PowerLab 2/28 | AD Instruments, Bella Vista, Australia | data acquisition system | |
| Propranolol | Sigma-Aldrich | P0884 | sympathetic antagonist |
| SPSS Statistics program | SPSS | SPSS 25.0 | statistics program |
References
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