Summary
ここでは、草本植物バイオマスにおけるリグニン含量の推定のための改変TGA法を提示する。この方法は、リグニンと特定のチオエーテル結合を形成することによってリグニン含有量を推定し、リグニン含有量推定のために比較的小さなサンプルを必要とするため、クラソン法よりも有利である。
Abstract
リグニンは、セルロースに次いで地球上で2番目に豊富なポリマーである天然ポリマーです。リグニンは、主に植物二次細胞壁に堆積し、主に重要な工業的重要性を有する3つのモノリニョールで構成される芳香族ヘテロポリマーである。リグニンは植物の成長と開発に重要な役割を果たし、生物および非生物的ストレスから保護し、動物飼料、木材、および工業用リグニン製品の品質において保護します。リグニン含量の正確な推定は、リグニン生合成の基本的な理解とバイオマスの産業応用の両方に不可欠です。チオグリコール酸(TGA)法は、植物バイオマス中のリグニン含有量の合計を推定する信頼性の高い方法です。この方法は、アルカリ性条件に可溶性であり酸性条件に不溶であるリグニンのベンジルアルコール基を有するチオエーテルを形成することによってリグニン含有量を推定する。総リグニン含有量は、市販の竹リグニンから生成された標準的な曲線を使用して推定される。
Introduction
リグニンは、植物細胞壁の重要な耐荷重成分の1つであり、地球上で2番目に豊富なポリマーである。化学的には、リグニンは、芳香族ポリマーの自然な再生可能な供給源を形成し、生体材料2、3の天然の再生可能な供給源を形成する高分子量の複合フェノール化合物で構成される架橋ヘテロポリマーである。この天然ポリマーは、植物の成長、発達、生存、機械的支持、細胞壁剛性、水輸送、鉱物輸送、宿泊抵抗、組織および臓器の開発、エネルギーの沈着、および生物および非生物的ストレス4、5、6、7からの保護において重要な役割を果たす。リグニンは主に3つの異なるモノリニョールで構成される:針葉ニル、シナピルおよびp-コマリルアルコールはフェニルプロパノイド経路8、9に由来する。リグニンの量とモノマーの組成は、植物種、組織/器官の種類、および植物の開発の異なる段階に基づいて異なります10.リグニンは、ソースとモノリグノール組成物に基づいて、針葉樹、広葉樹、および草リグニンに大別される。針葉樹は、主に4%p-コマリルと1%のシナピルアルコールと95%の針葉樹アルコールで構成されています。硬質木材は、同じ割合で針葉樹およびシナピルアルコールを有し、一方草リグニンは針葉樹、シナピルおよびp-コマリルアルコール11、12の様々な割合で構成されている。単量体の組成は、細胞壁のリグニン強度、分解、分解、分解、ならびに分子構造、分岐、および他の多糖類13,14との架橋を決定する際に極めて重要である。
リグニン研究は、採餌、繊維産業、製紙産業、バイオエタノール、バイオ燃料、バイオ製品の重要性を増しています。各種化学方法(例えば、臭化アセチル、酸洗剤、クラソン、過マンガン酸酸化)と共に、インストゥルメンタル法(例えば、近赤外(NIR)分光法、核磁気共鳴(NMR)分光法、および紫外線(UV)分光法)を用いた9,17。リグニンの分析方法は、一般に電磁放射、重力測定、および溶解度に基づいて分類される。電磁放射によるリグニン推定の原理は、特定の波長で光を吸収するリグニンの化学的性質に基づいていました。これらの結果は、リグニンが炭水化物よりも強いUV吸光度を有するという原理に基づいて推定された。1962年、ボルカーとサマヴィルは、塩化カリウムペレットを使用して、木18のリグニン含有量を推定しました。しかし、この方法は、非リグニンフェノール化合物の存在および適切な絶滅係数の欠如による草本サンプルからのリグニン含有量の推定に欠点がある。1970年、ファーガスとゴリングは、グアイアシルおよびシリンギル化合物吸収マキシマが280nmおよび270nmであることを発見し、ボルカーおよびサマヴィル法19の絶滅係数問題を修正した。その後、フェノールを特徴付けるための高感度技術である赤外線分光法が、少量の植物バイオマスサンプルによるリグニン推定にも用いられた。このような技術の一例は、拡散反射率フーリエ変換分光測定であった。しかし、この方法はUV法20と同様の適切な標準を欠いている。その後、リグニン含有量はNIRS(近赤外分光法)およびNMR(核磁気共鳴分光法)によって推定された。しかし、これらの方法には欠点があり、リグニンの化学構造を変えない、その純度20を保持する。
重量測定クラソン法は木質茎のリグニン推定のための直接かつ最も信頼できる分析方法である。重量測定リグニン推定の基礎は、非リグニン化合物の加水分解/可溶化と、重力測定21のための不溶性リグニンの収集である。この方法では、糖質は、濃縮H2SO4でバイオマスの加水分解により除去され、リグニン残基20,22を抽出する。この方法で推定されるリグニン含量は、酸不溶性リグニンまたはクラソンリグニンとして知られている。Klason法の適用は、植物種、組織タイプおよび細胞壁タイプに依存する。タンニン、多糖類、タンパク質などの非リグニン成分の可変量の存在は、酸不溶性/可溶性リグニン含量の推定における比例差をもたらす。したがって、クラソン法は、木質茎17、23などの高リグニン含量バイオマスのリグニン推定にのみ推奨される。臭化アセチル(AcBr)、酸不溶性リグニン、チオグリコール酸(TGA)などの溶解方法は、様々な植物バイオマス源からのリグニン含有量の推定に最も一般的に使用される方法である。Kim et al. は、可溶化によるリグニン抽出のための 2 つの方法を確立した。第1の方法は、セルロースとヘミセルロースを可溶化して不溶性残基としてリグニンを抽出し、第2の方法は、リグニンを可溶性画分で分離し、セルロースとヘミセルロースを不溶性残基として残す。
溶解度に基づくリグニン推定に用いられる類似の方法は、チオグリコール酸(TGA)および臭化アセチル(AcBr)法25である。TGAおよびアセチルブロマイド法はいずれも、280nmでの可溶化リグニンの吸光度を測定することによってリグニン含有量を推定する。しかしながら、AcBr法はリグニン可溶化の過程でキシランを分解し、リグニン含量26の誤った増加を示す。チオグリコレート(TGA)法は、TGAとリグニンのベンジルアルコール基のチオエーテル群との特異的結合に依存するので、より信頼性の高い方法である。TGA結合リグニンは、HClを用いて酸性条件下で沈殿し、リグニン含量は280nm27での吸光度を用いて推定される。TGA法は、構造修飾の少ない、リグニン推定の可溶性形態、非リグニン成分からの干渉が少なく、TGAとの特異的結合によるリグニンの正確な推定という付加的な利点を有する。
このTGA法はリグニン含量推定に用いられる植物バイオマス試料の種類に基づいて修飾される。ここでは、稲わらのTGA法を綿組織に変更 ・適応し、リグニン含有量を推定した。簡単に言えば、乾燥粉末植物試料を、タンパク質可溶化緩衝液及びメタノール抽出を行い、タンパク質およびアルコール可溶性画分を除去した。アルコール不溶性残基を、酸性条件下でTGAおよび沈殿したリグニンで処理した。市販の竹リグニンを用いてリグニン標準曲線を生成し、回帰直線(y =mx+c)を得た。「x」値はリグニンの平均吸光度値を280nmで使用し、回帰直線から「m」と「c」の値を入力して、綿花植物バイオマスサンプル中の未知のリグニン濃度を計算しました。この方法は5つの段階に分けられます: 1)植物サンプルの調製;2)水とメタノールでサンプルを洗浄;3)TGAと酸を用いてペレットを処理し、リグニンを沈殿させる。4)リグニンの沈殿;5)サンプルの標準的な曲線調製およびリグニン含有量推定。最初の2つの相は、主に、水、PSB(タンパク質可溶化バッファー)およびメタノール抽出が続く植物材料調製物に焦点を当て、アルコール不溶性物質を得る。次いで、TGA(チオグリコール酸)とHClで処理し、第3相においてリグニンと複合体を形成した。最後に、HClを使用してリグニンを沈殿させ、水酸化ナトリウムに溶解して280nm28で吸光度を測定した。
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Protocol
1. 植物サンプルの調製
- 温室から生後2ヶ月の綿花を集める(図1A)。
- 植物の周りの土を緩めることによって無傷の外側根で土と根を分離するために植物の鉢を穏やかに反転させる(図1B)。
- 収集した植物を水で満たされたトレイで十分に洗い、すべての汚れを取り除きます(図1C)。
- ペーパータオルを使用して、分離した根、茎、葉組織を乾燥させ、ラベルを付けます(図1D)。真菌汚染を防ぐために、室温で2日間空気乾燥します(図1E)。
- サンプル組織をラベル付き容器/アルミホイルに移し、温度制御インキュベーターで49°Cで7~10日間インキュベートする(図1F)。
注:温度が高いとリグニン構造が変になることがあります。あるいは、凍結乾燥機を使用して、植物バイオマスに化学変化を起こすことなく1〜2日間サンプルを乾燥させることができます。 - インキュベーター乾燥組織を5mmサイズに切断するか、あるいはバイオマスグラインダーを用いて植物組織を粉砕するために刃を使用する(図1G、図1H)。
注:各サンプルを切断/粉砕した後、バイオマスグラインダー/ブレードを洗浄する必要があります。 - 切断された組織/バイオマス接地された植物材料を粉砕バイアルに移し、液体N2を備えた冷凍工場または極低温粉砕機を使用して1mmサイズの細かい粉末に粉砕する。
- 10 CPS(各サイクルスパン2分)の割合で3サイクルのサンプルを均一な粉末に粉砕する(図1I、1J、1K)。
注: この時点で実験を一時停止することができ、サンプルは長期保存のために気密容器内の室温で保存することができます。
2. 水、PSB、メタノールでサンプルを洗浄
- リグニン含有量推定に使用されるすべての空の2 mLマイクロフュージチューブの重量を測定し、ラボノートブックに記録します。
- 20mgの粉砕サンプル粉末を予め計量したチューブに移します。組織およびティッシュの粉と管を量り、実験室のノートでこれらの重量を記録する。
- ヒートブロックまたはオーブンで20mgの組織粉末を1時間、20mgの組織粉末で2mLマイクロフュージチューブ(開いた蓋付き)をすべてインキュベートします。
- インキュベーション後、室温(RT)で10分間サンプルを冷却します。
- 各マイクロフュージチューブに1.8mLの水を加え、渦を混ぜて混ぜます。次いで、25,200xg(15,000 rpm)でRTで10分間遠心分離機を10分間、上清を捨て、(図2)。。
- 各保持ペレットにタンパク質可溶化バッファー (PSB) (表 1)の 1.8 mL を加え、ボルテックスで混合します。遠心分離機を25,200 x g(15,000 rpm)でRTで10分間、上清を捨てます。
- 各サンプルについて、ステップ 2.6 をもう一度繰り返します。
- 各ペレットに1.8mLの水を加え、渦を混ぜて、遠心分離機を25,200 x g(15,000 rpm)で10分間混ぜます。遠心後、ペレットを保存し、上清を捨てます。
- 保持されたペレットに、1.8 mLのメタノールを加え、60°Cのヒートブロックに20分間インキュベートします。次いで、25,200xg(15,000rpm)で遠心分離機を10分間RTで10分間行う。遠心分離後、上清を捨ててペレットを保持する(図2)。
- 各サンプルについて、ステップ 2.9 を再度繰り返します。
- 空気はRTでペレットを乾燥させるか、真空乾燥によって直ちに進行する。真空乾燥乾燥器を使用して30°Cで2〜3時間、またはペレットが完全に乾燥するまで乾燥した。
注:実験は、この時点で夜間の空気乾燥によって一時停止するか、真空乾燥によって継続することができます。 - 乾燥後、乾燥したペレットでサンプルチューブの重量を量り、ラボノートブックのそれぞれの空のチューブ重量の横に重量を記録します。2つの値を減算してペレットの重量を推定します。これらの重みは、リグニン抽出プロセスの終了時にリグニン推定に使用されます。
- リグニン抽出のこの時点で、リグニン標準曲線の生成のための市販の竹リグニンが含まれる。0.5 mg 単位で 0.5 mg から 5 mg までの範囲の別々のチューブに市販の竹リグニンを測定 (0.5 mg, 1 mg, 1.5 mg, 2 mg, 3 mg, 3.5 mg, 4 mg, 4.5 mg, 5.0 mg).3回の技術的複製のために各濃度を3回測定します。
注:ここから、上記のステップで測定された標準は、乾燥したサンプルと同じ方法で処理されました。
3. TGAと酸を用いてリグニンを沈殿させるペレットの処理
- 上記のステップから処理されたサンプルを、測定された標準と共に、TGA(チオグリコール酸)処理に供する。
- 各ペレットに3 N HCl(表1)と100μLのTGAを1mL加えます。
- 80°Cの予熱熱ブロック内で80°Cの加熱ブロックで3時間、発煙器での渦とインキュベート(図2)。
注:80°Cの加熱工程は監視する必要があります。高圧の蓄積は、蓋を開ける可能性があり、化学物質の流出につながる可能性があります。スクリューキャップチューブは推奨されていますが、このような流出を防ぐための代替として、このステップ中に2 mLチューブを緩くキャップすることができます。 - インキュベーション後、RTで10〜15分間冷却し、遠心分離機を25,200 x g(15,000 rpm)でRTで10分間冷却します。
注:酸と有機溶剤から発生する廃棄物は、換気キャップ付きのガラス容器に分離して保管する必要があります。TGA酸廃棄物と酸廃棄物の収集には、別々のガラス容器を使用してください。 - 遠心後、上清を捨ててペレットを保持します。水1mLを加え、渦を巻いて混ぜ、遠心分離機を25,200 x g(15,000 rpm)でRTで10分間混ぜます。
- 遠心分離後、上清を捨て、ペレットを37°Cシェーカー/サーマルミキサーで24時間24時間、ペレットを24時間混ぜます(図2)。
注:このインキュベーション時間は1時間7に短縮することができます。 - インキュベーション後、2mLマイクロフュージチューブを25,200 x g(15,000 rpm)でRTで10分間遠心します。
注:手順は、強い酸や自然界で腐食性である他の化学物質の使用を含みます。したがって、適切なPPEを着用することは、リグニン推定のプロセス全体を通じて推奨されます。TGAは、強い不快な臭いを持っており、自然の中で腐食性です。したがって、ヒュームフードでのみ使用することをお勧めします。
4. リグニンの沈殿
- 上清を新しい2 mLマイクロフュージチューブに移し、濃縮HClの200 μLを加え、4°Cで4時間または一晩インキュベートする(図2)。
注: この時点で、冷凍工程を夜間まで延長することで、抽出プロセスを一時停止できます。 - 遠心分離機を25,200 x g(15,000 rpm)でRTで10分間、1 mLの1 N NaOHに溶解させた。
- 10分間RTでシェーカーにインキュベートし、NaOHでペレットを完全に懸濁させる。
- 最後に、分光光度計を用いて280nmのサンプルの吸光度を測定し、標準リグニン曲線と比較します。
- キャリブレーション曲線回帰直線値、および抽出したサンプルの吸光度を280nmで使用して、リグニンの未知の濃度を測定します。
5. サンプル中の標準曲線の調製とリグニン推定
- TGA処理の実験サンプルと同じ方法でリグニン標準を処理します。
- 0.5 mg、1mg、1.5 mg、2mg、2.5mg、3.0mg、3.5mg、4.0mg、4.5mgおよび5mgから始まる0.5mg単位の商業竹リグニン標準を測定する。次いで、TGA、HCl、1 N NaOHに溶解し、続いて280nmで吸光度を測定して処理する(図3A)。
- リグニン濃度と吸光度の測定値を使用して、標準リグニン曲線の散乱プロットを生成する(図3B)。
- 散布図で生成された回帰直線y =mx+cを使用して、リグニン標準曲線回帰直線から280nmおよび「m」および「c」値で抽出されたサンプルの平均吸光度から「x」値を使用して調製したサンプルの未知のリグニン含有量の推定に使用する。
- mg(約15mg)でメタノール抽出後の真空/空気乾燥植物バイオマス試料の総重量で得られたy値のリグニン含有量を割り、mg当たりのリグニン濃度を得た。次に、この値に 100 を掛けて、mg 当たりのリグニンパーセントを計算します。
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Representative Results
2つの異なる綿の実験ラインを、異なる組織におけるリグニン含分の違いについて比較した。各試料の抽出リグニン含量を280nmで測定し、それぞれの吸光度値を記録した。各生物学的複製の平均吸光度値をリグニン標準曲線の回帰線と比較した(表2、図3C)。回帰直線 y = mx + c は、抽出された実験線の未知のリグニン含有量を計算するために使用されます, サンプル 1 とサンプル 2.平均OD値の結果は「x」に置換され、一方、「m」および「c」値はリグニン標準曲線の回帰線から差し込まれ、mgでリグニン濃度"y"を得た(表3、図3B)。次のステップでは、リグニン含量の1mg当たりを計算し、メタノール抽出後に「y」値をサンプルの重量(15mg)で割った。次のステップでは、グラム当たりの計算(= 1,000 mg)に対してy/15値に1,000を掛けた。リグニンの % を取得するには、y/15 値を 1,000 で除算し、100 を掛けます。3つの生物学的複製(各ライン、サンプル1およびサンプル2)のリグニン%の平均を、2つの実験ラインサンプル1(11.7%)の間で比較した。サンプル2(10.3%)を示します。リグニン値は、TGA法が信頼性の高い方法であり、リグニン含有量を測定するために非常に特異的であることを示唆する生物学的複製の間で一貫していた。比較研究は、綿の2つの実験ラインの異なる組織タイプ(根、茎および葉)間でも行われ、両方のラインは葉の比較的低いリグニン含有量を示した(3.4%)茎と比較して(9.4%から9.9%)根と根(9.4%から9.2%)(表4、図4)。
図1:植物バイオマスサンプルの調製 (A)緑の家から綿の植物材料を集めた。(B)鍋をそっと反転して根を分ける。(C)水洗を徹底して、汚れを全て除去する。(D) 根、茎、葉組織を分離した。(E)組織を分離した後2日間、空気乾燥した組織。(F)空気乾燥組織は、49°Cで10日間インキュベーターに移される。(G)バイオマス粉砕機を用いて植物バイオマスサンプルを粉砕した。(H)根、茎、葉の植物バイオマスサンプル。(I)グランドサンプルは、3サイクルの10 CPSの速度で冷凍工場に接地冷凍工場に置かれ、粉砕バイアルにロードされます。(J)冷凍工場で粉砕した後、微細に粉砕された組織粉末を示す粉砕されたバイアル。(K)粉砕のために冷凍工場を使用した後、根、茎および葉の組織粉末を細かく粉砕する。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図2:TGA媒介性リグニン抽出に関与する重要なステップ。TGA法を用いた植物バイオマスからリグニン含量推定へのリグニン抽出に関与する重要なステップのフローチャート:1.冷凍工場を使用して微細粉末に十分な乾燥と粉砕による植物サンプルの調製;2. 20 mgの組織粉末をPSB、メタノールおよび水の水の流し、乾燥し、抽出アルコール不溶性材料;3. TGAと酸を使用して、リグニンを沈殿させた。4. 市販の竹リグニンを用いたリグニン標準曲線の調製;5. リグニン含有量の推定この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
図3:試料中の標準的な曲線調製およびリグニン推定法.(A)280nmの吸光度測定値からリグニン標準曲線を生成するために用いられる市販の竹リグニンの異なる濃度を示す表。(B)表Aの値を用いてExcelプログラムで生成された散乱プロット(C)サンプル1およびサンプル2の推定根組織リグニン内容を表す棒グラフ。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
| 解決 | 必要な株式 | 準備 | ||
| タンパク質可溶化バッファー (PSB) | 1 M トリス HCl pH 8.8 および 0.5 M EDTA pH 8.0 | 50 mMトリス、0.5 mM EDTA、10%SDSの最終濃度でPSBの100 mLの作業溶液を調製するには、1 Mトリスの5 mL、EDTAの1 mL、80 mLの無菌水に10gのSDSを加え、混合し、溶解し、最終的な容積を100mLに分解し、無菌水で100mLにする。121°Cでオートクレーブ、15 psi圧力、30分間。 | ||
| 1 M トリス HCl | 1Mトリスの100mLを調製するには、トリスHCl(分子量= 121.14 g)を80mLの水に12.1g加えます。磁気攪拌機で攪拌してTris HClを混合し、NaOHでpHを8.8に調整し、121°C、15 psi圧力で無菌水とオートクレーブで体積を100 mLに30分間調整します。 | |||
| 0.5 M EDTA (エチレンアミンテトラ酢酸) | 0.5 M EDTAの100 mLを調製するために、70 mL水に18.6 gのEDTAを加える。水酸化ナトリウムペレットを使用してpHを8.0(EDTAはpH 8.0で完全に溶解)に調整し、体積を100 mLに調整します。121°C、15 psi圧で30分間、溶液をオートクレーブします。 | |||
| 3 N 塩酸 (HCL) | 3 N HClの100 mLを調製するには、74 mLの滅菌水に26mLの濃縮HCLを加える。 | |||
| 4% 水酸化ナトリウム (NaOH) | 1 N水酸化ナトリウム溶液を準備し、滅菌水の90mLに水酸化ナトリウム4gを加え、溶解し、121°Cで100mLとオートクレーブに体積を構成し、15 psi圧力、30分間。 | |||
表1:プロトコルで使用されるソリューションの準備プロトコルで使用されるさまざまなソリューションの準備を示す表。
表2:リグニン標準曲線は、0.5mgから3.5mgの工業用竹リグニンを調製した。 m と c の値を示す回帰線を含む散布図。 このテーブルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
表3:280 nm(x)のサンプルの吸光度測定値と標準曲線曲線からの標準曲線回帰線'm'および'c'値を使用して未知のリグニン含有量の計算に使用されるリグニンテンプレート。このテーブルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
表4:ポスト開花期の綿花の異なる組織(根、茎および葉)からのリグニン含有量。このテーブルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
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Discussion
リグニンは植物の成長と開発に重要な役割を果たし、最近バイオ燃料、バイオエネルギー、バイオ製品の用途について広く研究されています。リグニンは、全ての血管植物二次細胞壁に保存されている芳香族化合物が豊富である。それは、木材パネル製品、バイオ分散剤、凝集剤、ポリウレタンフォーム、回路基板29、30、31の樹脂などの産業用途を有する。紙やパルプ産業から生成されたリグニンのほとんどは、廃棄物として放出されるか、熱生産のために燃やされます。このように、効率的に処理すれば、リグニンは化石燃料ベースの製品32、33およびバイオ電気生産34の両方に代わるものとして利用することができる。したがって、リグニン含有量と組成の正確な推定は、植物種と植物器官の種類に応じて組成が異なるため、産業用途にとって重要です。リグニン推定の主な制限は、リグニン含有量35の推定のために選択された方法から生じる差である。異なる方法間の推定差は、主に他の非リグニン成分との汚染、溶解性の変動、リグニンへの新しい基の追加、キシラン分解/汚染、ネイティブ構造変化および他の成分の除去中のリグニン分画の損失によるものです。また、リグニンプロトコルの大部分は、もともと木化学27に基づいて開発されている。したがって、より多くの作物/植物種がバイオ燃料やバイオ製品を対象としているため、草本サンプルのリグニンプロトコルを確立する必要があります。TGA法は、TGAとの特異的結合に基づいて純粋なリグニン含有量を推定する。したがって、TGAによるリグニン推定は、クラソンおよびアセチル臭化物法35,36と比較した場合にリグニン含有量が低くなる。これは、リグニンとTGAの特異的な結合と、リグニン沈殿中のリグニン含有量の損失(不溶性部分)のためです。
TGA法を用いて推定されるリグニン含有量は、再現性と一貫性がある。この研究で得られた結果は、生物学的複製物の間で一貫しており、2つのライン間に有意な差を示し、リグニン推定のためのTGA法の信頼性を示唆した。データの再現性とリグニン含有量の正確な推定のためには、手順に従い、次の予防措置を講じる必要があります。3つの反復で0.5mgから5mgまでの異なる濃度に陽性制御を含め、TGAステップからのサンプルと一緒に処理することで、実験的な誤りを避け、リグニン含有量の正確な推定を行います。サンプルのセットごとに標準曲線を生成する必要があり、回帰線統計 R2は 97% から 99% の範囲に収まる必要があります。空の管および乾燥したメタノール抽出組織の正確な重量は、正確なリグニン含量推定に重要である。さらに、植物の特定の段階、成長条件、遺伝子型、組織の種類および植物の年齢などの様々な要因は、リグニン含有量30、37、38に影響を与える。したがって、同じ環境ですべての実験ラインを成長させ、同時に同じタイプの組織を収穫することが重要です。今回の研究の結果は、葉のリグニン含有量が低く、茎および根内のリグニン含有量が高く、この方法を種々の植物組織に適用可能に示した。さらに、生物学的複製の変動が少ない場合、TGAはすべての植物組織において再現性リグニン含量を推定できることが示唆された。
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Disclosures
著者らは、利益相反はないと宣言している。
Acknowledgments
私たちは、この研究の部分的なサポートのために植物土壌科学とコットン社の部門に感謝します。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| BioSpectrophotometer kinetic | Eppendorf kinetic | 6136000010 | For measuring absorbance at 280 nm |
| Centrifuge | Eppendorf | 5424 | For centrifuging samples |
| Commercial bamboo lignin | Aldrich | 1002171289 | Used in the preparation of the standard curve |
| Distilled water | Fischer Scientific | 16690382 | Used in the protocol |
| Falcon tubes | VWR | 734-0448 | Containers for solutions |
| Freezer mill | Spex Sample Prep | 68-701-15 | For fine grinding of plant tissue samples |
| Heat block/ Thermal mixer | Eppendorf | 13527550 | For temperature controlled steps during lignin extraction |
| Hotplate stirrer | Walter | WP1007-HS | Used for preparation of solutions |
| Hydrochloric acid (HCL) | Sigma | 221677 | Used in the protocol |
| Incubator | Fisherbrand | 150152633 | For thorough drying of plant tissue samples |
| Measuring scale | Mettler toledo | 30243386 | For measuring plant tissue weight, standards and microfuge tubes |
| Methanol (100 %) | Fischer Scientific | 67-56-1 | Used in the protocol |
| Microfuge tubes (2 mL) | Microcentrifuge | Z628034-500EA | Containers for extraction of lignin |
| Plant biomass gerinder | Hanchen | Amazon | Used for crushing dried samples |
| pH meter | Fisher Scientific | AE150 | Measuring pH for solutions prepared for lignin extraction |
| Temperature controlled incubator/oven | Fisher Scientific | 15-015-2633 | Used in the protocol |
| Thioglycolic acid (TGA) | Sigma Aldrich | 68-11-1 | Used in the protocol |
| Vacuum dryer | Eppendorf | 22820001 | Used for drying samples |
| Vortex mixer | Eppendorf | 3340001 | For proper mixing of samples |
References
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