Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

エコHIV脳感染症のラットモデル

Published: January 21, 2021 doi: 10.3791/62137

Summary

ここでは、キメラHIV(EcoHIV)を用いた活性HIV感染の新しいラットモデルを確立するプロトコルを提示し、脳内のHIV-1ウイルス貯留層の理解を深め、HIV関連神経認知障害および関連する併存疾患(すなわち薬物乱用)を研究するシステムを提供するために重要である。

Abstract

EcoHIV感染マウスモデルは、HIV関連の神経学的合併症を調査する上で重要な有用性を有することがよく研究されている。薬物乱用および神経認知障害の研究のためのEcoHIV感染ラットモデルの確立は、神経HIVおよびHIV-1関連神経認知障害(HAND)の研究において有益であろう。本研究では、キメラHIV(EcoHIV)を用いた活動性HIV感染のラットモデルの作成に成功したことを実証する。まず、EcoHIVのレンチウイルス構築物を、培養293 FT細胞に48時間包装した。次いで、条件付き培地を濃縮し、力を入れた。次に、F344/Nラット脳組織へのEcoHIV-EGFPの両側立体態注射を行った。感染の1週間後、EGFP蛍光シグナルが感染した脳組織で検出され、EcoHIVがラットに活性HIV感染を誘導することに成功したことを示している。また、ミクログリア細胞マーカーに対する免疫染色を、Iba1、実施した。結果は、ミクログリアがEcoHIVを収容する主要な細胞型であることを示した。さらに、EcoHIVラットは、感染後8週間に、HANDの潜在的な神経行動メカニズムおよびシナプス機能障害である時間処理に変化を示した。全体として、本研究は、HIV-1感染のEcoHIVモデルをラットに拡張し、脳内のHIV-1ウイルス貯留層ならびにHANDおよび薬物乱用などの関連する併存疾患を研究するための貴重な生物学的システムを提供する。

Introduction

生物学的システムは、HIV-1関連神経認知障害(HAND)とその基礎となる神経機構2に関する我々の理解を高めている。特定の研究に最も適した生物学的システムを決定することは、しばしば関心の問題に依存する2.宿主動物モデルの範囲の限界は、HIV-1疾患の発症の研究に挑戦する。HIV-1ウイルス複製および病因を調べるため、Potash et3は、HIV表面エンベロープ糖タンパク質のコード領域を置換する活性HIV-1感染のマウスモデルを作成し、gp120を、エコトロピックMLVgp80に置き換え、マウス4におけるウイルス複製に成功した。キメラHIV(EcoHIV)マウスにおける尾静脈注射後、HIV-1血清陽性個体(例えば、感染したリンパ球およびマクロファージ)に似た多くの特徴が認められ、抗ウイルス免疫応答、および炎症3、5、6を標的とした。

マウスとラットはどちらもムリダエのメンバーですが、基本的な種の違いは、特定の実験問題に対するそれらの適合性に影響を与える可能性があります7.したがって、ラットへのEcoHIV感染モデルの拡張(一般的に薬物乱用および神経認知障害の研究で使用される)は、ニューロHIVの研究において有利であろう。例えば、その大きなサイズは、薬物自己投与手順のためのより実用的な8のための頸状カテーテル移植を行う。ラットにおける薬物自己投与技術は、HIV-19における動機づけに利用されている。さらに、多くの神経認知/行動タスクは、最初はラット10のために設計されました。ここでは、ラットにおけるEcoHIVの立体的注射の利用を報告し、EcoHIV感染モデルを拡張し、ニューロHIVおよびHANDに関連する新しい質問に対処する重要な機会を与える。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

すべての動物のプロトコルは、サウスカロライナ大学の動物ケアと使用委員会によって見直され、承認されました(連邦保証番号:D16-00028)。6人の成人男性F344/Nラットは、12/12光の下で制御された環境に収容されたペアでした:食物および水へのアドリビタムアクセスを伴う暗いサイクル。すべての動物は、実験動物のケアと使用のためのガイドで国立衛生研究所によって確立されたガイドラインを使用して世話をされました。

1. 293 FT細胞でのウイルス包装

  1. 293 FT細胞(5×105/mL)をゼラチンで75cm2フラスコをDMEMプラス10%FBS11で培養する。37°Cで細胞を成長させ、トランスフェクションで50%コンフルエントにする。
  2. 22.5 μLのトランスフェクション試薬(例えば、リポフェクタミン3000)を750μLの培地(例えばOpti-MEM)に1.5 mLのマイクロ遠心分離管および渦に3 s用に希釈する。
  3. 1.5 mLマイクロ遠心分離チューブで750μLの培地で20μgのEcoHIVプラスミドDNAを希釈し、よく混ぜます。
  4. 希釈したトランスフェクション試薬のチューブに希釈したDNAを加え、穏やかに混ぜます。室温で15分間インキュベートします。
  5. 75cm2 フラスコに10mLの温め込みDMEM培地を加えます。37°Cで2日間細胞をインキュベートする。
  6. 収穫し、パッケージレンチウイルスを含む2つのフラスコから条件付き培地の24 mLを組み合わせます。
  7. 遠心分離機は、条件培地の全24mLを500xgで4°Cで10分間10分間行う。 明確化した上清を滅菌50mLチューブに移します。
  8. レンティx濃縮器8mLと24mLの清澄上清(1:3比)を組み合わせます。優しい反転で混ぜます。4°Cで2日間インキュベートする。
  9. 遠心分離機混合物を1,500xgで4°Cで45分間混合した。 上清を慎重に取り除いてください。
  10. 100 mM PBS の 100 μL でペレットをゆっくり再中断します。
  11. P24 ELISAキットを用いるチターウイルス濃度。

2. エコHIV-EGFPウイルスステレオタキシック手術

  1. 3%セボフルランを使用してラットを麻酔します。ラットが有害な刺激に反応せず、反射神経が存在しない場合は、ステップ2.2に進みます。
  2. 脳領域から毛髪を剃り、70%エタノールとクロルヘキシジンベースのスクラブで皮膚を2回殺菌します。立体装置の中で、ラットを起こしやすい位置に固定します。
  3. 頭皮の中線に沿って皮膚を通して切開(5〜6cm)を作ります。
  4. 2つの掘削位置を0.8 mm横に、1.2 mmのロストラルをブレグマにマークします。各頭蓋骨の位置に穴(直径0.4mm)をドリルします。
  5. 10 μL 注射注射シリンジで、Titered EcoHIV レンチウイルス溶液 (1.04 × 106 TU/mL) を充填します。ステレオタキシック装置に注射器を固定します。
  6. 穴の穴の表面に近い針を下に移動します。測定し、深さ2.5ミリメートルを移動します。
  7. 0.2 μL/min の速度で 1 μL のウイルス溶液を注入します。注射領域の中に針を5分間置いておきます。針がラットの頭蓋骨の外になるまでゆっくりと上に移動します。
  8. 4-0シルク糸で皮膚を縫合します。
  9. 切開を70%エタノールで1回殺菌します。皮下にブトルフェノールを注入する(ドロレックス、0.1mg/kg体重)。
  10. ラットが目を覚ますまで加熱パッド付きの回収室に移します。

3. 脳の切り分けの可視化

注:EcoHIVウイルス注入後1~8週間お待ちください。

  1. 5%セボフルランでラットを麻酔します。ラットが有害な刺激に反応せず、反射神経が存在しない場合は、ステップ3.2に進みます。
  2. ヒュームフードの中の上の位置にネズミを固定します。
  3. 胸部中線に沿って皮膚を切開します。横隔膜を切り、胸腔を開きます。
  4. 20G×25mmの針を左心室に挿入します。
  5. すぐにはさみで右心房を開きます。
  6. 5mL/minの速度でプレチル100mMPBSの50mLをパーフューズします。
  7. 5 mL/min の割合で 100 mL の冷たいパラホルムアルデヒドをパーフューズします。
  8. ラットを切断し、頭皮を開き、脳を取り除きます。
  9. 4%パラホルムアルデヒドで一晩後置。
  10. 脳が底まで浮くまで脳を30mLチューブで100mM PBSで30%スクロースの40 mLに移します(約3日間)。
  11. スナップは、メチルブタノールで脳を2分間凍結します - 80°C。
  12. -20 °Cクライオスタット内の金属プラットフォーム上の脳組織を固定します。
  13. クライオスタットを使用して、厚さ50μmのコロナセクションをカットします。
  14. 細かいブラシでガラススライドに脳のスライスを転送します。
  15. 0.3 mLのアンチフェード媒体でセクションを取り付け、22 mm 50 mmカバーリップでカバーします。
  16. ガラスのスライドを室温で乾燥するまで暗闇の中に保管してください。
  17. 脳領域の境界とニューロンの形態学的特徴に基づいてZスタックを使用して、共焦点顕微鏡で標的ニューロンを画像化します。
    注意:使用される共焦点顕微鏡の設定は、60 X(A / 1.4、油)の倍率、および488nmの波長を使用して0.15 μm(ピンホールサイズ30 μm;バック投影ピンホール半径167nm)のZ平面間隔でした。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

このコンディション培地は、293FT細胞に感染したEcoHIV-EGFPのレンチウイルスから採取した。次に、濃縮し、力を合わせた後、F344/Nラットの脳(皮質領域)に立体的に注入した。注射後7日間、ラットを屠殺し、ブレグマ5.64mmからブレグマ-4.68mmまでのコロナ脳スライスから画像を撮影した。 図1Aでは、脳全体、特に皮質および海馬歯状の歯素回に有意なEcoHIV-EGFPシグナルがある。さらに、Iba1とEcoHIV-EGFPプローブによるデュアルラベリングは、ミクログリアが脳内のEcoHIV発現を有する主要な細胞型であるという強力な証拠を提供した(図1B)。特に、EcoHIV-EGFPの分布パターンは、ラット脳におけるミクログリアの相対的な局所濃度(すなわち、海馬の皮質およびデンテート回)と一致する。

その後の研究では、ラットにおけるEcoHIV感染の有用性を検証し、手のひらの主要な側面をモデル化した。上記のプロトコルを用いて、F344/NラットはEcoHIV-EGFPまたは生理食糸のいずれかを立体的に注射した。まず、感染後8週間、時間処理、HAND12の潜在的な元素次元を、視覚ギャッププレパルス阻害を用いて評価した(図2)。EcoHIV動物は、生理的制御と比較して比較的平坦なISI機能によって証明される、刺激間間隔(ISI)の操作に対して相対的に鈍感を示した。具体的には、ISI関数の傾きが50ms ISIから200msのISIまでの有意な差が認められた(セミログライン-XはLog、Yはリニア、R2は0.99≥。F(1,2)=642.9、p≤0.001)。第二に、弾道標識は、EcoHIV-EGFP注射が、元核(NAc)の中型脊椎(MSN)における樹状脊椎の形態に及ぼす影響を調べるため使用された。 図3);シナプス関数13に関する推論を描画するために利用することができるパラメータ.EcoHIVラットは、より短い樹状脊椎の相対的な頻度の増加によって証明される樹状脊椎形態の深い変化を示した(遺伝子型xビン相互作用、 F(16, 218) = 4.3, p ≤ 0.001) を有する(ジェノタイプxビン相互作用、F(12, 96) = 18.7, p ≤ 0.001)および首の直径の増加(ジェノタイプxビン相互作用、F(15,120) = 16.3, p ≤ 0.001) 相対制御.時間処理14 および弾道標識13 の評価のための詳細な方法論は、以前に報告されている。

Figure 1
図 1.ラット脳に分布するEcoHIV-EGFP感染細胞.(A)注射後7日目の海馬歯状ジウシまたは皮質領域におけるEcoHIV-EGFP発現の代表的な共焦点画像(20倍)(B)注射後7日目におけるEcoHIV-EGFP感染細胞とのIba1免疫染色の共局在化の代表的な共焦点像(60X)。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 2
図 2.EcoHIV感染は、時間処理において顕著な神経認知障害を引き起こした。 視差プレパルス阻害は、EcoHIVまたは生理的のいずれかの立体的注射の8週間後に行われた。EcoHIV感染は、コントロールラットに対する刺激間間隔の操作に対する相対的な鈍感さによって証明される時間処理における顕著な変化を誘発した。マクラウリンら13に記載された詳細な方法論. この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 3
図 3.EcoHIV-EGFPに対する感染性は樹状脊椎の形態学的パラメータを変化させ、深いシナプス機能不全を支えた。EcoHIVラットは樹状脊椎形態に深い変化を示し、頭部直径の増加(B)と首の直径の増加(C)を有する短い樹状脊椎の相対的頻度の増加によって証明された。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

このプロトコルでは、ラットにEcoHIV誘導HIV感染モデルを確立した。具体的には、注射後7日のラット脳における活性HIV感染を誘導することに成功した皮質へのEcoHIVの二国間立体態注入について述べた。Futhermore, 我々はラットのEcoHIV感染が手の重要な側面を研究するための良好な生物学的システムであり得ることを実証する。8週間後- EcoHIV感染, ラットは、重要な神経認知障害を示しました, NAcのMSNにおける時間処理およびシナプス機能不全の変化を含む.ニューロHIVとHAND2の研究のための動物モデルの重要性を考えると、新しい生物学的システムの開発は、分野内の新しい質問に対処するために有利である可能性があります。ポタッシュら3 は、マウスで活性HIV-1感染を誘導するためにEcoHIVの使用を最初に報告した。具体的には、マウスを尾静脈注射3を介してEcoHIVウイルスの0.1mLの溶液を接種した。感染から6週間後、脾臓細胞およびリンパ球でHIV-1ウイルスDNAが検出された。さらに、EcoHIV注射の1回の接種は、マウスの75%以上で感染を誘発するのに十分であった。二国間の立体態性注射の利用は、この研究と同様に、注射後7日間の脳におけるEcoHIV-EGFPの検出によって証明されたラットの100%(それぞれn= 6またはn=4)に正常に感染した。

これまでの研究では、脳ミクログリアがEcoHIVウイルス感染の影響を非常に受けやすいことをマウスにおけるEcoHIVによる感染が強く関係することが示されている。本研究では、Iba1(ミクログリア細胞マーカー)免疫染色と組み合わせることで、Iba1+細胞とのEGFPシグナルの有意な共局在化が観察され、マイクログリアがラット脳におけるEcoHIV感染の主要な細胞型であることを強く示唆した。ミクログリアにおける有意なEcoHIV感染の観察は、EcoHIV感染マウス6のデータと一致するとともに、HIV-1血清陽性個体15およびモデル化に一般的に利用される他の生物学的システム16、17。また、F344/NラットへのEcoHIV-EGFPのレトロ軌道注入を行い、データはわずか7日後に皮質および海馬系デンテート回の両方でEcoHIV-EGFPの高発現を示した(データは示されていない)。対照的に、F344/NラットにおけるEcoHIVのI.P.注射は、高用量のEcoHIVレンチウイルスにもかかわらず、ラット脳における検出不可能なウイルス発現につながった。

このプロトコルに関しては、研究者は、293 FT細胞のEcoHIVレンチウイルス包装を含むコンディション培地が集中し、ステレオタックス注射に使用する前に刺激されることを確認する必要があります。これらの手順は、実験全体で一貫性のある複製可能な結果を確保するために重要です。さらに、EcoHIV感染は、注射後8週間で脳内の立体的注射から脾臓組織に伝播したこともわかった。一方、経時的な処理の欠損は、早ければ14日にEcoHIV感染ラットで観察され、感染後8週間まで維持された(現在の実験末期時間、 図2)。マウスの一般化されたEcoHIV感染モデルと比較して、EcoHIVのより具体的な局所的な立体的注射は、脳領域で効率的なHIV感染を生じ、ラットの時間的処理障害を生み出し、HIV関連神経認知機能障害の研究の鍵となる。

現在のプロトコルのさらなる機会を提供する制限には、ニューロンやアストロサイトなどの他の細胞タイプの同定、感染後のEcoHIV-EGFP発現の変化に関する時間経過研究、HIV関連の認知障害の潜在的な影響に対処するための縦断研究、およびEcoHIVの立体的注射が免疫システムのさらなる拡散を回避するかどうかを評価するオディ。さらに、これはラットのEcoHIV感染の一般化を確認するために他のラット株でテストされるべきである。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

著者の誰も宣言する利害の対立を持っていません。

Acknowledgments

この研究は、NIH助成金HD043680、MH106392、DA013137、およびNS100624によって資金提供されました。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
293FT cells ThermoFisher Scientific R70007
Antibiotic-Antimycotic solution Cellgro 30004CI 100X
Corning BioCoatGelatin 75cm² Rectangular Canted Neck Cell Culture Flask with Vented Cap Life Technologies 354488
Corning DMEM with L-Glutamine, 4.5 g/L Glucose and Sodium Pyruvate Life Technologies 10013CV
Cover glass VWR 637-137
drill
Dumont #5 Forceps World Precision Instruments 14095
Dumont #7 Forceps World Precision Instruments 14097
Eppendorf Snap-Cap Microcentrifuge Biopur Safe-Lock Tubes Life Technologies 22600028
Ethicon Vicryl Plus Antibacterial, 4-0 Polyglactin 910 Suture, 27in. FS-2 Med Vet International VCP422H
Hamilton syringe Hamilton 1701
Invitrogen Lipofectamine 3000 Transfection Reagent Life Technologies L3000015
Iris Forceps World Precision Instruments 15914
Iris Scissors World Precision Instruments 500216
Lentivirus-Associated p24 ELISA Kit Cell Biolabs, inc. VPK-107-5
Lenti-X Concentrator Takara PT4421-2
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Life Technologies 11058021
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 158127-500G
Paraformaldehyde Sigma P6148
ProLong Gold Fisher Scientific P36930
Sevoflurane Merritt Veterinary Supply 347075
stereotaxic apparatus Kopf Instruments Model 900
SuperFrost Plus Slides Fisher Scientific 12-550-154%
Vannas Scissors World Precision Instruments 500086

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Illenberger, J. M., et al. HIV Infection and Neurocognitive Disorders in the Context of Chronic Drug Abuse: Evidence for Divergent Findings Dependent upon Prior Drug History. Journal of Neuroimmune Pharmacology. 15 (4), 715-728 (2020).
  2. Joseph, S. B., Swanstrom, R. The evolution of HIV-1 entry phenotypes as a guide to changing target cells. Journal of Leukocyte Biology. 103 (3), 421-431 (2018).
  3. Potash, M. J., et al. A mouse model for study of systemic HIV-1 infection, antiviral immune responses, and neuroinvasiveness. Proceedings of the National Academy of Sciences U S A. 102 (10), 3760-3765 (2005).
  4. Albritton, L. M., Tseng, L., Scadden, D., Cunningham, J. M. A putative murine ecotropic retrovirus receptor gene encodes a multiple membrane-spanning protein and confers susceptibility to virus infection. Cell. 57, 659-666 (1989).
  5. Geraghty, P., Hadas, E., Kim, B. H., Dabo, A. J., Volsky, D. J., Foronjy, R. HIV infection model of chronic obstructive pulmonary disease in mice. American Journal of Physiology - Lung Cellular and Molecular Physiology. 312 (4), 500-509 (2017).
  6. Gu, C. J., et al. EcoHIV infection of mice establishes latent viral reservoirs in T cells and active viral reservoirs in macrophages that are sufficient for induction of neurocognitive impairment. PLoS Pathogens. 14 (6), 1007061 (2018).
  7. Ellenbroek, B., Youn, J. Rodent models in neuroscience research: is it a rat race. Disease Models, Mechanisms. 9 (10), 1079-1087 (2016).
  8. Feduccia, A. A., Duvauchelle, C. L. Novel apparatus and method for drug reinforcement. Journal of Visualized Experiments. (42), e1998 (2010).
  9. Bertrand, S. J., Mactutus, C. F., Harrod, S. B., Moran, L. M., Booze, R. M. HIV-1 proteins dysregulate motivational processes and dopamine circuitry. Scientific Reports. 8 (1), 7869 (2018).
  10. McGaughy, J., Sarter, M. Behavioral vigilance in rats: task validation and effects of age, amphetamine, and benzodiazepine receptor ligands. Psychopharmacology. 117 (3), Berl. 340-357 (1995).
  11. Li, H., Aksenova, M., Bertrand, S., Mactutus, C. F., Booze, R. M. Quantification of filamentous actin (F-actin) puncta in rat cortical neurons. Journal of Visualized Experiments. (108), (2016).
  12. McLaurin, K. A., Li, H., Booze, R. M., Mactutus, C. F. Disruption of Timing: NeuroHIV Progression in the Post-cART Era. Scientific Reports. 9 (1), 827 (2019).
  13. McLaurin, K. A., Moran, L. M., Li, H., Booze, R. M., Mactutus, C. F. The Power of Interstimulus Interval for the Assessment of Temporal Processing in Rodents. Journal of Visualized Experiments. (146), e58659 (2019).
  14. Li, H., McLaurin, K. A., Mactutus, C. F., Booze, R. M. Ballistic Labeling of Pyramidal Neurons in Brain Slices and in Primary Cell Culture. Journal of Visualized Experiments. (158), (2020).
  15. Ko, A., et al. Macrophages but not Astrocytes Harbor HIV DNA in the Brains of HIV-1-Infected Aviremic Individuals on Suppressive Antiretroviral Therapy. Journal of Neuroimmune Pharmacology. 14 (1), 110-119 (2019).
  16. Sopper, S., et al. The effect of simian immunodeficiency virus infection in vitro and in vivo on the cytokine production of isolated microglia and peripheral macrophages from rhesus monkey. Virology. 220 (2), 320-329 (1996).
  17. Llewellyn, G. N., Alvarez-Carbonell, D., Chateau, M., Karn, J., Cannon, P. M. HIV-1 infection of microglial cells in a reconstituted humanized mouse model and identification of compounds that selectively reverse HIV latency. Journal of NeuroVirology. 24 (2), 192-203 (2018).

Tags

神経科学,問題 167 エコHIV HIV ミクログリア ラット
エコHIV脳感染症のラットモデル
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Li, H., McLaurin, K. A., Mactutus,More

Li, H., McLaurin, K. A., Mactutus, C. F., Booze, R. M. A Rat Model of EcoHIV Brain Infection. J. Vis. Exp. (167), e62137, doi:10.3791/62137 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter