Dette dokumentet presenterer en delvis heterotop osteomyokutan klafftransplantasjonsprotokoll hos rotter og dens potensielle utfall i midtperiodens oppfølging.
Vaskulære kompositt allotransplantasjoner (VCA) representerer det mest avanserte rekonstruksjonsalternativet for pasienter uten autologe kirurgiske muligheter etter en kompleks vevsfeil. Ansikts- og håndtransplantasjoner har endret misfigurerte pasienters liv, noe som gir dem et nytt estetisk og funksjonelt sosialt organ. Til tross for lovende utfall er VCA fortsatt underprestert på grunn av livslang immunsuppresjonskoratorbiditeter og smittsomme komplikasjoner. Rotten er en ideell dyremodell for in vivo-studier som undersøker immunologiske veier og transplantatavvisningsmekanismer. Rotter er også mye brukt i nye kompositt vev graft bevaring teknikker, inkludert perfusjon og kryopreservering studier. Modeller som brukes til VCA hos rotter må være reproduserbare, pålitelige og effektive med lav postoperativ sykelighet og dødelighet. Heterotope lemtransplantasjonsprosedyrer oppfyller disse kriteriene og er lettere å utføre enn ortotopiske lemtransplantasjoner. Mastering gnager mikrokirurgiske modeller krever solid erfaring i mikrokirurgi og dyrepleie. Herein er rapportert en pålitelig og reproduserbar modell av delvis heterotop osteomyokutan klafftransplantasjon hos rotter, postoperative resultater og midler til forebygging av potensielle komplikasjoner.
I løpet av de siste to tiårene har VCA utviklet seg som en revolusjonerende behandling for pasienter som lider av alvorlig disfigurement inkludert ansikt1, amputasjoner i øvre lemmer2, penile3og andre komplekse vevsfeil4,5. Konsekvensene av livslang immunsuppresjon hindrer imidlertid fortsatt en bredere anvendelse av disse komplekse rekonstruktive operasjonene. Grunnforskning er avgjørende for å forbedre anti-avvisningsstrategier. Økende bevaringstid for VCA er også avgjørende for å forbedre transplantasjonslogistikken og øke donorpoolen (ettersom VCA-givere må oppfylle flere kriterier enn solide organdonorer, inkludert hudtone, anatomisk størrelse, kjønn). I denne sammenhengen er rottelemtransplantasjoner mye brukt i studier på immunavvisning av allografter6,7 , nye toleranseinduksjonsprotokoller8, og bevaringsstudier9,10,11. Derfor er disse VCA-modellene et nøkkelelement å mestre for VCA-oversettelsesforskning.
Osteomyokutane klaffer har blitt beskrevet i litteraturen som pålitelige modeller for å studere VCA hos rotter8,12,13,14. Selv om ortotopiske transplantasjoner av hele lemmer tillater langsiktig evaluering av graftfunksjon, er det en tidkrevende prosedyre forbundet med høyere postoperativ sykelighet ogdødelighet 14. I motsetning er heterotopiske lemtransplantasjonsmodeller ikke-funksjonelle, men muliggjør reproduserbare studier på VCA. Postoperative resultater kan på en pålitelig måte forutses før starten av en rotte VCA-transplantasjonsstudie. Denne studien rapporterer en delvis heterotop osteomyokutan klafftransplantasjonsmodell hos rotten som inkluderer hyppige mulige utfall og komplikasjoner som kan oppstå intraoperativt og postoperativt i løpet av en oppfølgingsperiode på tre uker.
Ortotopiske lemtransplantasjonsmodeller hos gnagere har blitt beskrevet i litteraturen15,16,17; Imidlertid krever de en nervereparasjon, muskeloppmerksomhet og en perfekt osteosyntese av lårbenet, noe som kan være et svært vanskelig skritt. Disse modellene er også forbundet med høyere sykelighet og dødelighet hos gnagere14, spesielt i kortsiktig oppfølging som gjenoppretting av en normal funksjon a…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av Kontoret for assisterende forsvarsminister for helsesaker gjennom Kongressens regisserte medisinske forskningsprogram under prisnr. W81XWH-17-1-0680. Meninger, tolkninger, konklusjoner og anbefalinger er forfatternes og er ikke nødvendigvis godkjent av Forsvarsdepartementet.
24 GA angiocatheter | BD Insyte Autoguard | 381412 | |
4-0 suture Black monofilament non absorbable suture | Ethicon | 1667 | Used to suture the E-collar to the back of the neck |
4-0 suture Coated Vicryl Plus Antibacterial | Ethicon | VCP496 | |
Adson Tissue Forceps, 11 cm, 1 x 2 Teeth with Tying Platform | ASSI | ASSI.ATK26426 | |
Bipolar cords | ASSI | 228000C | |
Black Polyamide Monofilament USP 10-0, 4 mm 3/8c | AROSurgical | T04A10N07-13 | Used to perform the microvascular anastomoses |
Buprenorphine HCl | Pharmaceutical, Inc | 42023-179-01 | |
Dilating Forceps | Fine science tools (FST) | 18131-12 | |
Dissecting Scissors 15 cm, Round Handle 8 mm diameter, Straight Slender Tapered Blade 7 mm, Lipshultz Pattern | ASSI | ASSI.SAS15RVL | |
Double Micro Clamps 5.5 x 1.5 mm | Fine science tools (FST) | 18040-22 | |
Elizabethan collar | Braintree Scientific | EC-R1 | |
Forceps 13.5 cm long, Flat Handle, 9 mm wide Straight Tips 0.1 mm diameter (x2) | ASSI | ASSI.JFL31 | |
Halsey Micro Needle Holder | Fine science tools (FST) | 12500-12 | |
Heparin Lock Flush Solution, USP, 100 units/mL | BD PosiFlush | 306424 | |
Isoflurane | Patterson Veterinary | 14043-704-06 | |
Jewelers Bipolar Forceps Non Stick 11 cm, straight pointed tip, 0.25 mm tip diameter | ASSI | ASSI.BPNS11223 | |
Lone Star Elastic Stays | CooperSurgical | 3314-8G | Used to retract the inguinal ligament for femoral vessels dissection |
Lone Star Self-Retaining Retractors | CooperSurgical | 3301G | |
Micro-Mosquito Hemostats | Fine science tools (FST) | 13010-12 | Used to retract the inguinal fat pad distally |
Needle Holder, 15 cm Round Handle, 8 mm diameter, Superfine Curved Jaw 0.2 mm tip diameter, without lock | ASSI | ASSI.B1582 | |
Nylon Suture Black Monolfilament 8-0, 6.5 mm 3/8c | Ethilon | 2808G | Used to ligate collateral branches on the femoral vessels |
Offset Bone Nippers | Fine science tools (FST) | 16101-10 | |
S&T Vascular Clamps 5.5 x 1.5 mm | Fine science tools (FST) | 00398-02 | |
Walton scissors | Fine science tools (FST) | 14077-09 |