Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove

Biology

Chick Tüm Dağı Antikor Boyama Yöntemi

doi: 10.3791/956 Published: February 2, 2009

Summary

Bu video tüm montaj immünhistokimya, bir antijen mekansal ve zamansal ifade desenini genç civciv embriyolarında görüntülendi edilebilecek bir yöntem gösteriyor. Bu yöntem başlangıçta Jane Dodd ve Tom Jessell tarafından piyasaya sürüldü.

Abstract

Civciv embriyo erken embriyonik gelişim çalışmaya değerli bir araçtır. Şeffaflık, erişilebilirlik ve manipülasyon kolaylığı, beyin, nöral tüp ve hücre gruplarının gelişmekte olan antikor ifade çalışmak için ideal bir araçtır. Bu video tüm antikor boyama HRP konjuge sekonder antikor kullanarak farklı adımları gösteriyor; İlk yumurta, embriyo disseke ve paraformaldehid sabit. İkincisi, endojen peroksidaz inaktive olur; embriyo sonra primer antikor maruz kalmaktadır. Birkaç yıkamadan sonra, embriyo HRP konjuge sekonder antikor ile inkübe edilir. Peroksidaz aktivitesi diaminobenzidin substrat reaksiyonu ile ortaya çıkar. Son olarak, embriyo, sabit ve fotoğraf ve kesit için işlenir. Kullanımı üzerinde floresan antikor Bu yöntemin avantajı, embriyolar bu nedenle, balmumu kesit kesit antijeni sitelerin çalışma sağlayan işlenebilir. Bu yöntem başlangıçta Jane Dodd ve Tom Jessell tanıtıldı.

Protocol

I. Şematik Bakış:

Bu video civciv embriyo tüm montaj immünohistokimya farklı adımları gösteriyor. İlk olarak, embriyo PFA sabittir [IHC1]. Sonra, endojen peroksidaz aktivitesini söndürülür [IHC2]. Embriyo daha sonra primer antikor [IHC3] inkübe edilir. Birkaç yıkamadan sonra, embriyo sekonder antikoru inkübe [IHC4] Renk reaksiyonu DAB [IHC5] kullanarak ortaya ve antikor boyama görünür turuncu [IHC6].

Şekil 1

Bölüm 1: embriyoların Tespit

  1. Civciv embriyolarının tüm montaj immünohistokimya gerçekleştirmek için, ilk önce bir yumurta, forseps ile kabuk dokunarak ve kabuk parçaları kaldırarak açın.
  2. Forseps ile kalın albümin çıkarın ve embriyo yukarı bakacak şekilde kaba forseps ile yumurta sarısı kesesi eğin.
  3. Ince makas kullanarak, yolk kesesi embriyo etrafında bir kare kesti. Bir kaşık ile yumurta sarısı embriyonun çıkarın ve PBS içeren bir yemek yer.
  4. Diseksiyon mikroskobu altında, membranlar ve sarısı ve embriyo transferi PBS içeren yeni bir çanak dikkatle çıkarın.
  5. Forseps ve böcek pimleri ile embriyo Pin, PBS aspire. PBS içinde% 4 PFA ile değiştirin ve embriyo RT 1s düzeltmek için izin.

Bölüm 2: antikor adım için hazırlık embriyolar

  1. Potansiyel mikrobik kontaminasyonu en aza indirmek için, aşağıdaki adımları GKD 2 O kullanın.
  2. Embriyo sabittir sonra fiksatif çözüm aspirat ve düzgün kimyasal atık olarak atmayın. PBS ile çanak doldurun.
  3. yanında, bir Mikrodiseksiyonla bıçak kullanarak extraembryonic membranlar kaldırmak için embriyo etrafında bir kare kesilir. Forseps ile böcek pimleri çıkarın.
  4. Pimleri çıkarıldıktan sonra, PBT (PBS, pH 7.4,% 0.5 Triton X) içeren bir sintilasyon flakon embriyo transferi künt sonunda Pasteur pipet kullanın.
  5. Her biri için 10 dakika ile 3 kez, PBT embriyo yıkayın.
  6. Sintilasyon şişeden PBT çıkarın ve PBTx potansiyel endojen peroksidaz inaktif hale getirmek için% 0.3 H 2 O 2 içeren değiştirin.
  7. Nutator 2 saat oda sıcaklığında inkübe.
  8. PBT, 3 kez her biri için 10 dakika, 30 dakika her biri için 3 kez embriyo yıkayın.

Bölüm 3: Antikor inkübasyon

  1. Antikor ile embriyo leke için, tampon engelleme veya% 1 BSA /% 1 NGS / PBT (ikincil antikor keçi büyüdü çünkü biz NGS) bir saat boyunca embriyo yıkayarak başlayın. RT az bir saat için nutator inkübe edin.
  2. 2 gün, 4 ° C nutator üzerinde bu çözüm engelleme tampon, ve inkübe embriyo birincil antikor 01:01 sulandırınız. Primer antikor seyreltme faktörü primer antikor seçimine bağlıdır. Burada, supernatent olarak verilmiştir Gelişim Çalışmaları Hibridoma Bankası, antikor kullanın. Biz tampon engelleme 01:01 sulandırmak.
  3. yanında, PBT (3) 1 saat yıkar takip PBT 3 10 dakika yıkar, gerçekleştirin.
  4. Yıkandıktan sonra, ikincil antikor 1:2500 engelleme tampon seyreltilmiş (Bu durumda peroksidaz konjuge keçi anti-fare IgG (H + L) ve bu çözüm inkübe embriyo 4 O / N ° C nutator.
  5. PBT (3) 1 saat yıkar takip PBT 3 10 dakikalık yıkama yapın.

Bölüm 3: Renk reaksiyonu

  1. Renk reaksiyonu lekeli embriyo geliştirmek için, öncelikle Tris tamponu (100 mM Tris HCl, pH 7.4) 2 20 dakika yıkar gerçekleştirin.
  2. DAB 500μg/ml Tris tampon substrat (3,3 'diaminobenzidin tetrahydrochloride) Bu arada davlumbaz altında çözülür; karanlıkta çözüm tutmak, buz üzerinde.
  3. Flakon içeren embriyo son Tris tampon yıkama çıkarın ve adım 3.2 5ml DAB çözüm ile değiştirin. 20 milyon nutator koyu tutun. DAB dekontamine için% 10 çamaşır suyu çözeltisi içeren kova Eppendorf ucu atın.
  4. Bu arada% 0.3 stok dH 2 O H 2 O 2 buz üzerinde hazırlayın.
  5. DAB embriyoların içeren flakon 50μl stok H 2 O 2 ekleyin. Karanlıkta saklayın. 1-2 dakika sonra, mikroskop altında tepki izlemek.

Bölüm 4: Embriyo işleme fotoğraf ve histoloji

  1. Renk reaksiyonu tamamlandığında, çamaşır suyu kova DAB atmayın. 5 ml musluk suyu ile değiştirin.
  2. PBS içinde 2 adet 10 dakikalık yıkama yapın.
  3. Fotoğraf ve balmumu kesit işlemek için, her biri için 10 dakika (% 25,% 50,% 75 ve% 100) bir etanol dizi kurutmak.
  4. 0.5 - 1 ml sedir ağacı yağı (embriyo saydam hale getirecek) etanol değiştirin. Sedir ağacı yağı fotoğrafçılığı için Süreci.
  5. Fotoğrafçılık sonra, şişe embriyo dönmek ve% 100 etanol ile sedir ağacı yağı değiştirin. Etanol adımı tekrarlayın.
  6. E değiştirin.% 100 etanol% 5 Fast yeşil FCF thanol ve 3 dakika (bu adım embriyolar histoloji için görünür kılmak) inkübe edin. Hızlı yeşil FCF çözümü için% 100 etanol ve histoloji süreci ile değiştirin.

Temsilcisi Sonuçlar:

Şekil 2

Aşağıda gösterilen örnekler, embriyoların aşamalarında HH 10 (A), 12 (B) ve 11 (C) disseke; Embriyolar PAX 7 gelişmekte olan sinir crestas ifade Somitlerin ve nöral tüp (A, B) yanı sıra; (C), notokord 15.3B9 (Not-1) (antikorlar Gelişim Çalışmaları Hibridoma Bankası tarafından sağlanan) ile etiketlenir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Bu video genç civciv embriyolarında tüm montaj antikor boyama işlemi farklı adımları gösteriyor. Bu protokol esas civciv 2,3 roman antikorların mekansal ve zamansal karakterizasyonu için kullanılan yanı sıra hakaret 4 embriyonik malformasyonlar belirlemek için bilinen antijenik belirteçlerinin kullanımı için.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Acknowledgments

Biyolojik bilimler Bölümü, Iowa Üniversitesi tarafından NICHD ve bakımı himayesinde geliştirilen Gelişimsel Çalışmalar Hibridoma Bankası (J. Dodd, TM Jessell ve A. Kawakami) tarafından geliştirilen monoklonal antikorlar (15.3B9, PAX7) elde edildi , Iowa. DP Uyuşturucu İstismarı Ulusal Enstitüsü Ruth Kirschstein Ödülü 1F32 DA021977-01A1 alıcı. Bu çalışma, Margaret M. RHF Alkek Vakfı tarafından desteklenmiştir.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Eggs Charles River Laboratories Premium Fertile Fertilized, HH4 (16 hr)
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar
Marsh Automatic Incubator Other Lyon RX
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C
Forceps (2) Tool Fine Science Tools 11002-13
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10
Plastic dishes Tool Falcon BD 353001
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Microdissecting knife Tool Fine Science Tools 10056-12 Use to cut embryo from surrounding membranes following fixation
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base Reagent Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
16% PFA Reagent Electron Microscopy Sciences 15710
30% H2O2 Reagent Sigma-Aldrich H1009
BSA Reagent Sigma-Aldrich A3803
NGS Reagent Jackson ImmunoResearch 005-000-121
Primary Antibodies Reagent Developmental Studies Hybridoma Bank 4G11, 15.3B9, PAX7 For these antibodies, investgators used mouse donnors
Peroxidase conjugated-Goat Anti-Mouse IgG (H+L) Reagent Jackson ImmunoResearch 115-035-003
3,3’-diaminobenzidine tetrahydrochloride Reagent Pierce, Thermo Scientific 34001 Store at -20; Allow bottle to warm to RT before use.
Cedar wood oil Reagent Sigma-Aldrich W522503
Fast green FCF Reagent Sigma-Aldrich F7252
Minuten pins 0.2mm diam Fine Science Tools 26002-20

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Yamada, T., Placzek, M., Tanaka, H., Dodd, J., Jessell, T. M. Control of cell pattern in the developing nervous system: Polarizing activity of the floor plate and notochord. Cell. 64, 635-647 (1991).
  2. Streit, A., Stern, C. D., Thery, C., Ireland, G. W., Aparicio, S., Sharpe, M. J., Gherardi, E. A role for HGF/SF in neural induction and its expression in Hensen's node during gastrulation. Development. 121, 813-824 (1995).
  3. Basch, M., Bronner-Fraser, M., Garcia-Castro, M. Specification of neural crest occurs during gastrulation and requires Pax7. Nature. 441, 218-222 (2006).
  4. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen's node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development. 122, 3263-3273 (1996).
Chick Tüm Dağı Antikor Boyama Yöntemi
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Whole Mount Antibody Staining in Chick. J. Vis. Exp. (24), e956, doi:10.3791/956 (2009).More

Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Whole Mount Antibody Staining in Chick. J. Vis. Exp. (24), e956, doi:10.3791/956 (2009).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter