Name: Yüksek Verim Micro-encapsulation Tek hücreli ve Çoklu-hücre (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-15T12:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 19 s
Description: Öğrenin mikroakışkanlarla tek ve çok hücreli yüksek verimli mikroenkapsülasyon yöntemini. Akış odaklı nozul kullanarak kilohertz frekanslarında damlacık oluşturma ve hücre sıralama tekniklerini keşfedin.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz bu çalışmada kullanılan doldurulmuş vaziyette sevk-PEG yüzey örnek için Raindance Teknolojileri teşekkür ederim, ve biz PDMS kanal çoğaltmalarını oluşturmak için kullanılan silikon kalıp için BioMEMS Kaynak Merkezi (Mehmet Toner, yönetmen) teşekkür ederim.

Bu bölümde protokolleri, deney sonuçları elde etmek için özel olarak kullanılan malzemeler ve ekipman açıklanmaktadır. Kimyasallar ve ekipmanlar için alternatif tedarikçiler kullanılabilir unutmayın. 1. Cihaz İmalat ve Yumuşak Litografi Standard, yumuşak litografi teknikleri, 21 bir önceki Jove makaleler özellikli edilmiş olan bir dizi, 22 cam yüzeye bağlı polidimetilsiloksan (PDMS) mikrokanal ağlar oluşturmak için kullanılmıştır. Kenara SU-8 fotolitografi ile ana kopya kalıp imalatını, süreçlerin bir temiz oda veya temiz davlumbaz dışında yapılabilir ancak, toz ve partiküller hala tutarlı sonuçlar elde etmek için en aza indirilmelidir. <ol><li> AutoCAD (AutoDesk Inc) Şekil 1 &#39;de gösterildiği gibi bir mikro-kanallı desen tasarımı. Yüksek çözünürlüklü (50.000 dpi) trans yazdırmak için üçüncü taraf üreticinin (Fineline Imaging Inc) istihdamkanal karanlık bir arka plan üzerinde şeffaf Mylar film veya kuvars parency maskesi. </li><li> Çoğaltma kalıplama için silikon ve SU-8 fotorezist ana oluşturun. Kısaca, dönmeye SU-8 2050 temiz bir 7.5 cm veya 10 cm silikon üzerinde 52 mikron kalınlığında bir katman yaratmak için bir spin-lak bir üreticinin tavsiye rpm (MicroChem) negatif fotorezist. Sonra yumuşak bir fırında, kenar boncuk kaldırılması, bir kişi maske, maruziyet sonrası fırında, geliştirme, ve sel maruz kalma, bir Dektak profilometre (Veeco) kullanarak SU-8 katmanlı gerçek kalınlığı ölçümü ile UV ışınlarına maruz kalma. Teyp 4 &quot;veya 5&quot; Petri kabının alt üzerine master kalıp PDMS çoğaltma kalıp hazırlamak için. </li><li> Sertleştirici bir 10:1 oranını w / w baz elastomer sertleştirici (Dow Corning) ile karıştırın PDMS elastomer tabanı. 2-3 mm kalınlığında son katman yaratmak için silikon ana üzerine iyi karıştırılmış PDMS habercisi dökün. 2 g sertleştirme maddesi ile 20 g elastomer baz ile bir karışımı, bir 4 &quot;çapı yüzeyini kaplayan için yeterlidir. </li><li> Maste yerleştirinde-gaz sertleşmemiş PDMS vakum desikatörde r kalıp ve PDMS (Jencons). Bir basınç regülatörü (Cole Parmer) kullanarak, yavaş yavaş aşırı köpük önlemek için 20 dakika içinde Hg &quot;-27 için Hg&quot; 0 odası Gage basıncı azaltmak. Hava kabarcıkları kayboluncaya kadar yaklaşık 30 dakika -27 &quot;Hg&#39;de vakum odasında cihazı bırakın. </li><li> Vakum bırakın ve bir 65 ° dört saat en az C fırında (Thermo Scientific). Için ana kalıp ve PDMS hareket Cihaz kür iyileştirmek için bir gece boyunca fırın içinde kalabilir. </li><li> Fırından çıkarın ve cihazın soğumasını bekleyin. Dikkatle PDMS dışarı hassas bir bıçak ve kabuğu kullanarak dairesel gofret etrafında PDMS kesti. Bir neşter ile Şekil 1&#39;de gösterildiği gibi cihaz anahat kesin. </li><li> Bir punch biyopsi ile Şekil 1&#39;de gösterildiği gibi üç turda bölgelerinde Punch akışkan bağlantı noktası (cihaz başına üç). Bu cihaz için, bir 0.75 mm dış çaplı delme (Harris) kullanın. </li><li> Herhangi kaldırmak için PDMS ve kabuğu desenli tarafına seloteyip uyuntoz. Geleneksel oksijen plazma cihazları için bir maliyet tasarrufu sağlayan, ancak alternatif olarak, 21,22 plazma elde tutulan bir laboratuar korona işlemcinize (Elektro-Teknik Ürünler A.Ş. kullanarak PDMS ve temiz bir 3 &quot;x 1&quot; cam mikroskop slayt desenli yan tedavi .). 23 Bu cihaz çeker ocak veya ozon akıntı nedeniyle iyi havalandırılan bir alanda kullanılması gerektiğini unutmayın ve tüm saatler ve cep telefonları en az on metre uzakta tutulmalıdır. Minimal kıvılcım ile istikrarlı bir korona ulaşmak için korona boşalma ayarlayın. Yavaşça yaklaşık 20 saniye boyunca her yüzey üzerinde &quot;yaklaşık 1/4 elektrot dalgalandıracak ve sonra hemen PDMS yüzeyler doğdukları duruma dönmek önce güçlü bir bağ oluşturmak için temas yüzeyleri muamele getirebilir. </li><li> Metal bir plaka üzerine cihazı yerleştirin, serin bir fırın yer, 120 ° C fırında ayarlayın ve yapıştırma tamamlamak ve bu yüksek sıcaklıkta pişirme, t sırasında orijinal hidrofobik devlet. 24 PDMS dönmek için gece boyunca fırındaO kanalın cam yüzeye de cam üzerine ince bir tabaka hidrofobik birikimi nedeniyle hidrofobik işlenecek. Alternatif olarak, bu tür Aquapel (PPG Industries) gibi hidrofobik kaplama 12 dikkatlice. Bir 1 mL şırınga ve şırınga iğne kullanılarak akışkan portu içine enjekte edilebilir, ancak sıkıca cam bağa ​​PDMS bozmadan akışkan portu içine hava püskürtme tarafından takip Aquapel enjekte . Kuruma bağlı kanallar tıkayabilir herhangi birikmeleri önlemek için herhangi bir aşırı Aquapel silmeye ise agresif, tüm giriş ve çıkış delikleri üzerinde pürjörü tekrarlayın. </li></ol> 2. Numune Hazırlama <ol><li> Seçtiğiniz hücre tipi için prosedürlere göre bir hücre kültürü hazırlayın. Bu çalışmada kullanılan özel cihaz için, 8-15 mikron partiküller veya hücrelerin yeterince encapsulation için sipariş etmeniz gerekir. Daha küçük veya daha büyük bir hücre tipleri yeterli Re p elde etmek için odaklanarak kanalının boyutları değişen gerektirebilir. Me içinThOD gösteri sonuçlar bu yazıda görüldüğü gibi, 9.9 mikron polystyrene küreler (G1000, Thermo Scientific) hücre vekilleri olarak kullanılmaktadır. </li><li> Nazik karıştırma yoluyla sulu parçacık veya hücre süspansiyonu hazırlayın. Hücreleri veya polistiren partiküller kullanırken, konsantrasyon kontrolü ideal bir sipariş kapsülleme ulaşmak için (bkz. Şekil 4) esastır. Önceki verileri 12 bir kılavuz olarak kullanarak, sipariş tren aralığı ve mikro-kanal boyutuna göre istenen hücre veya partikül konsantrasyonu hesaplamak gibi: bir hücre ya da beklenen boyuna tren boşluğu kez odaklama kanal kesit alanı başına parçacık. Stok konsantrasyonları (% 1 w / w) yetersiz olduğu durumda, hafifçe bir karıştırma veya yumuşak bir vorteks ile parçacıklar, stok Örnek santrifüj süpernatan sıvıyı, ve yeniden süspanse ederek ve süspansiyonu (burada% 1.5 w / w) konsantrasyonunu arttırmak hücreleri kullanırken. İstenen toplama hacmi ve fl ile ilişkili çalışma süresi hesabı için yeterli hacmi hazırlayınow ayarlama. </li><li> Hücreleri ve polistiren parçacıkların her ikisi birden büyük bir özgül ağırlığa sahiptir. Bu protokolde gösterilmiştir olmamakla birlikte, saat için pek çok dakika için kalıcı uzun süreli deneyler için, yüzdürme hücreleri için partiküller ya OptiPrep (Sigma-Aldrich) için bu tür CaCI2 olarak çözünen ekleyerek çözeltisi eşleşir. </li><li> Bir 15 ml&#39;lik bir santrifüj tüpüne flüorokarbon yağı FC-40 (3M) ve doldurulmuş vaziyette sevk-PEG blok kopolimeri sürfaktan 25 (% 2.5 w / w) (Raindance Technologies) karıştırılması ile sürekli bir flüorokarbon yağ fazı bir 10 ml numunesinin hazırlanması. Alternatif olarak, ışık mineral yağ (PTI Proses Chemicals) Abil-EM 90 yüzey aktif madde (% 2.5 w / w) (Evonik Goldschmidt Corporation) ile birlikte kullanılabilir. </li></ol> 3. Deney Düzeneği <ol><li> Ters optik mikroskop (Axio Observer, Zeiss) ve yüksek hızlı kamera (Phantom V310, Vision Research) açın. Veya elle cihazı hareket ettirerek takunyalar ve enkaz kanalları Odak ve teftişmotorlu bir mikroskop sahne kullanarak. Sıvı akar Bazı küçük birikimler itilmiş olabilir. Odaklanan kanalda enkaz kaliteyi önemli ölçüde sipariş düşürebilir gibi büyük enkaz veya bariz takunya için, cihaz başka bir kanalı seçin. Takunyalar genellikle künt cımbızla etkilenen bölgenin üstüne PDMS yüzeye sıkıca basarak akışı altında çıkarılabilir unutmayın. </li><li> Üç sulu giriş için PVC boru uzunluğu (0.01 &quot;ID/0.03&quot; OD, Tygon), yağ giriş ve çıkış emülsiyon kesin. Ölü hacmi en aza indirmek için yeterli boru şırınga pompaları ile mikroskop aşamaya ulaşmak için kesti. Akışkan liman içine yerleştirilmesi kolaylaştırmak için 45 ° açıyla boru uçlarını kesin. </li><li> Tüp Adım 1 yumrukladı akışkan portlarına biter sığacak basın ve ardından ilgili sulu ve yağ giriş tüpleri (Yapışkan gerekli) serbest biter içine iki adet 30 ayar künt uçlu paslanmaz çelik şırınga iğneleri (SmallParts) sığacak basın cımbız kullanın . Bir atık r içine çıkış boruları yerleştirineservoir. Bu tüp daha sonra toplama haznesi içerisine taşınacaktır. </li><li> , Mikroskop sahneye cihazı ve bağlı boru taşıma hizalayın ve kullanılabilir bir nesnel (20x Bu deney için kullanılan) kullanan cihaz meme odaklanın. Optimal kayıt için gerekli K hler aydınlatma ve diğer mikroskop ayarları için ayarlayın. </li><li> Adım 2 &#39;de hazırlanan yağ fazı çözeltisi ile iyi karıştırılmış, sulu faz ve bir 3 mL şırınganın (BD) ile 1 mL şırınganın (BD) doldurur. Herhangi bir ses herhangi bir şırınga kullanılabilir ve dikkatle istenilen çalışma sürelerini ve herhangi bir pulsatilite azaltılması bağlı olarak seçilmesi gerektiğini unutmayın. Dikey bir şırınga yatırın ve enjektör çıkışına hava kabarcıkları taşımak için hafifçe vurun. Yavaş yavaş şırınga ucu için hava itmek için yeterli piston basınız. Şırınga tutarak dikey olarak, zaten Basamak 3.3 &#39;de cihazına bağlanmış ilgili şırınga iğneye şırınga bağlanabilir. Sıvı p kadar şırınga iğnesinin ölü hacim ile hava zorlamak için piston sıkıpneredeyse cihaza borular yoluyla ushed. Güvenli bir şırınga pompası (Nexus 3000, Chemyx) için şırınga monte ve pistonu blok meşgul. İkinci şırınga bağlantıları tekrarlayın ve ikinci bir şırınga pompası için monte edin. </li><li> Her bir şırınga pompası ve pompa üreticinin protokolleri kullanarak programı açın. Q yağa başlangıç ​​akış oranı ayarlamak = 50 ul / dak ve Q aq = 5 ul / sırasıyla yağ fazında ve sulu faz için dak. Pompalar başlatın. </li><li> Kalan ölü havayı dışarı iterek, cihaz girin ve kanalları doldurmak için her bir akışkan için bekleyin. Bu işlem birkaç dakika sürebilir. Giriş hortumu bir hava büyük miktarda olması durumunda havanın dışarı atılır kadar, geçici bir süre için her bir akış hızını artırmaktadır. Potansiyel PDMS-to-cam bağı yetmezliğine yol, kanal büyük basınçlar meydana böylece yüksek debi artışı yok. </li><li> İlk akım hızları kullanarak, ağzında damla oluşumu gözlemlemek (sonuçları burada gösterilmiştir: 20x magnification, kare hızı 21005 fps, pozlama 3 μs). Çerçeve hızı en üst düzeye çıkarmak ve mümkünse bellek gereksinimlerini azaltmak için sadece memeye kameranın görüş alanını azaltın. Örnek videoları yakalayın ve örnekleme oranı aliasing önlemek için yeterli olduğunu onaylayın. </li><li> (Bkz. Şekil 2) jeti önlemek için, düşük sulu akış oranları ile başlar. Yavaşça akış hızı arttıkça, uzun sulu çözeltisi kanalda parçacıkların sipariş gözlemlemek için sulu bir akış hızını artırmaktadır. </li><li> Partikül konsantrasyonu nispeten az &quot;eksik&quot; parçacıklar ve örnek yüzdürme perçinlenememesiydi trenleri sağlamak için çok düşük ise, fiziksel şırınga çıkışına doğru parçacıkların çökelme kademeli sağlamak için şırınga çıkışına doğru şırınga pompası eğin. Bu yöntem, video protokolü gösterilmiştir. Periyodik olarak kendi ekseni boyunca şırınga dönen da istenmeyen çöktürme azaltabilir. </li><li> Yeterli sipariş kez, nesil frekansı ayarlamak için yağ akış hızı ayarlamak vedamla büyüklüğü. Ortalama düşüş hacim olarak video yakalama tarafından ölçülen damla nesil frekans bölünür sulu debi kullanılarak hesaplanabilir. Iteratif istenilen kapsülleme oranları ve damla hacmi elde etmek için akış oranları hem ayarlayın. </li><li> Bir kez kararlı sipariş kapsülleme teyit, bir toplama haznesine atık hazneden çıkış boruları taşımak veya sonraki testleri için başka bir cihazın içine beslenir. </li><li> Damlacıklarının istenen sayıda ve hesaplanan oluşum frekansı dayalı toplama zamanı belirler. </li><li> Veya denetimi için toplanmıştır emülsiyon bir numune pipet ile damla nesil video sonuçlar kullanılarak verim ölçmek için 0, 1, 2, ..., N parçacıklar içeren damla kısmını kaydeder. </li></ol> 4. Temsilcisi Sonuçlar Sonuçlar hem kontrollü tek-parçacık ve kontrollü çift parçacık kapsülleme (Şekil 3) elde hangi sunulmaktadır. Keserekyarısında FC-40 yağ akış hızı, tek-parçacık kapsülleme iki tane encapsulation olur. Tersine, biz daha çabuk memeye parçacıklar sunmak için sulu akış hızını arttırmış olabilir, ama biz de sulu dere jeti riski artacaktır. Şekil 3 içinde histogram Poisson verilerine karşılaştırmaları ile birlikte, iki durumda için damla ortalama parçacık fraksiyonel numarası sunulmuştur. Sıfır parçacıkları ile zaman zaman damlalar öncelikle sipariş trenlerde &quot;eksik&quot; parçacıklar nedeniyle vardır, yerel yüksek partikül konsantrasyonu ve bazen iki dikey odaklanarak pozisyon birine doğru göç parçacıklar istenen sonucu daha kapsüllü parçacıklar vardır durumlarda ise. Bölüm 2&#39;de açıklandığı üzere, eşleştirme bir yüzdürme kullanılmaz edildi not edin. Bunun yerine, şırınga pompası fiziksel çalışması sırasında parçacıklar yüksek bir konsantrasyonda yol açan, şırınganın çıkışına doğru parçacık çökeltme izin verecek şekilde hareket ettirildiğinde edildi. <psınıfı = &quot;jove_content&quot;&gt; düzgün partikül ve hücre konsantrasyonları için ihtiyaç gösteren deneysel bir çalıştırma Şekil 4 &#39;de gösterilmiştir. Tam sıralama olmadan, lokalize parçacıklar düzenin gruplar ve kapsüllü olan, ancak birçok damla partikül içermeyen vardır. Histogram istenen iki tane encapsulation için azalmış kapsülleme verimliliğini gösterir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/4096/4096fig1.jpg" /> 1. Encapsulation cihazı Şekil. girişleri, çıkış ve uzun sipariş kanal a) Genel cihazı. Cihaz yüksekliği 52 mikron ve sipariş kanal genişliği 27 mikron olduğunu. b) sulu ve yağ girişleri Hem petrol girişinin büyütülmüş görünümü için sipariş kanal genişliği sırasına boşluklar ile büyük enkaz filtreleri var. c) büyütülmüş bir görünümünü memesi 22 um ve 61 um, daha geniş bir kanala ani bir genişleme memesi kasılması, ardından sulu ve yağ kanalları için, 27 mikron arasında eşit genişlikte kanalı gösterir.Burada gösterilen cihazın boyutları mikroimalat sonra bir profilometre kullanılarak teyit edilmiştir unutmayın ve maske anma boyutlarını biraz farklı. Sipariş kanal ve meme gerçek bir görüntü olarak online olarak mevcuttur <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4096/4096fig1supplement.jpg" target="_blank">Ek Şekil 1</a> . <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4096/4096_mask.dwg" target="_blank">AutoCAD maskesi dosyası</a> da bu yazıya ek olarak çevrimiçi dahil edilmiştir. <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/4096/4096fig2.jpg" /> Şekil 2. Bir daha geniş bir cihaz (80 mikron genişliğinde x 22 mikron yüksek) kullanarak jeti geçiş için damlama Histeresis. a) sabit FC-40 debisi (Q yağ = 45 uL / dk), sabit damla oluşumu sulu debisi Q aq = 8 uL / dak ile 10 kHz oluşur. Sulu akış oranı yavaş yavaş 10 ve m arttıkçau; sulu sıvı akışı jeti L / dk, tetiklenir. b) akış hızı 8 ul / dk &#39;ya kadar devam eder jeti döndürülür. Istikrarlı bir damla oluşumu kısaca sulu akış pompası (1 saniyelik bir bekleme tipik) duraklatarak yeniden kurulabilir unutmayın. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/4096/4096fig3.jpg" /> Şekil 3. Tek ve çift parçacık kapsülleme. Damla başına bir hücre (a) Damla oluşumu Q yağ = 60 uL / dk, Q aq = 6.1 kHz bir damla nesil oranı, ortalama damla boyutu ile 9 uL / dk) 24.4 pL ve tek hücreli yakalama verimliliği iki hücre ile D k =% 79.5 ve P k = n bir örnek boyutu için% 83.7 (λ = 0.95) d = 517 damla ve n p = 491 parçacıklar. b) Damla oluşumu damla başına 30 μ için FC-40 debisi Q yağı azaltarak sadece elde edilirL / dk. Daha büyük (39.8 pL) damla iki hücreli yakalama verimliliği ile 3.8 kHz oranında oluşur D k =% 71.5 ve P k =% 79.5 (λ = 1.80) n bir örneklem büyüklüğü için d = 383 damla ve n p = 689 parçacıklar. cd) İki histogramlar damla kapsülleme tane verimleri Poisson istatistikleri (rastgele kapsülleme) ile sipariş tek ve çift-parçacık kapsülleme D k karşılaştırın. Her iki durum için, akış yönünde parçacık boşluk tam olarak sipariş, değişen parçacıklar için yaklaşık 17-18 mikron olduğunu unutmayın. Hem de tek ve çift-parçacık kapsülleme gösteren Ek videolar online olarak mevcuttur. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4096/4096movie3a.avi" target="_blank">Ek Film 3a görmek için buraya tıklayın</a> . <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4096/4096movie3b.avi" target="_blank">Ek Film 3b görmek için buraya tıklayın</a> . Şekil 4. Konsantrasyon büyük ölçüde konsantrasyonu azaldıkça a), tam sipariş oluşmaz. Kapsülleme verimliliği etkiler ve trenlerde böylece &quot;delik&quot; beklenen parçacıklar daha az olan bazı damla bırakarak ortaya. B) histogram azaltması (gösterir D k = çift parçacık damla vardır yaklaşık olarak çok tek-parçacık vardır = 1.57 düşer λ daha düşük bir değer nedeniyle iki parçacık encapsulation için% 55.9, p k =% 70.9). Q yağından Bu sonuçlar Şekil = 30 ul / dak ve Q aq = 9 ul / dak, Şekil 3b için aynı akım şartları. Bir temsilci tamamlayıcı Video online olarak kullanılabilir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4096/4096movie4.avi" target="_blank">Ek Film 4 görmek için buraya tıklayın</a> .

<ol><li>Zagnoni, M., Lain, G. L. e, Cooper, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrocoalescence+mechanisms+of+microdroplets+using+localized+electric+fields+in+microfluidic+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir+%3A+the+ACS+journal+of+surfaces+and+colloids%22%5BJournal%5D)">Electrocoalescence mechanisms of microdroplets using localized electric fields in microfluidic channels.</a> Langmuir : the ACS journal of surfaces and colloids. 26, 14443-14449 (2010).</li>
<li>Niu, X. Z., Gielen, F., Edel, J. B., deMello, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microdroplet+dilutor+for+high-throughput+screening%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Chem%22%5BJournal%5D)">A microdroplet dilutor for high-throughput screening.</a> Nat. Chem. 3, 437-442 (2011).</li>
<li>Vincent, M. E., Liu, W., Haney, E. B., Ismagilov, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+stochastic+confinement+enhances+analysis+of+rare+cells+by+isolating+cells+and+creating+high+density+environments+for+control+of+diffusible+signals%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+Society+reviews%22%5BJournal%5D)">Microfluidic stochastic confinement enhances analysis of rare cells by isolating cells and creating high density environments for control of diffusible signals.</a> Chemical Society reviews. 39, 974-984 (2010).</li>
<li>Huebner, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+detection+of+protein+expression+in+single+cells+using+droplet+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+communications%22%5BJournal%5D)">Quantitative detection of protein expression in single cells using droplet microfluidics.</a> Chemical communications. , 1218-1220 (2007).</li>
<li>Love, J. C., Ronan, J. L., Grotenbreg, G. M., van der Veen, A. G., Ploegh, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microengraving+method+for+rapid+selection+of+single+cells+producing+antigen-specific+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+biotechnology%22%5BJournal%5D)">A microengraving method for rapid selection of single cells producing antigen-specific antibodies.</a> Nature biotechnology. 24, 703-707 (2006).</li>
<li>Bradshaw, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concurrent+detection+of+secreted+products+from+human+lymphocytes+by+microengraving%3A+Cytokines+and+antigen-reactive+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Concurrent detection of secreted products from human lymphocytes by microengraving: Cytokines and antigen-reactive antibodies.</a> Clin. Immunol. 129, 10-18 (2008).</li>
<li>Liu, W. S., Kim, H. J., Lucchetta, E. M., Du, W. B., Ismagilov, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation%2C+incubation%2C+and+parallel+functional+testing+and+identification+by+FISH+of+rare+microbial+single-copy+cells+from+multi-species+mixtures+using+the+combination+of+chemistrode+and+stochastic+confinement%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Isolation, incubation, and parallel functional testing and identification by FISH of rare microbial single-copy cells from multi-species mixtures using the combination of chemistrode and stochastic confinement.</a> Lab on a chip. 9, 2153-2162 (2009).</li>
<li>Boedicker, J. Q., Li, L., Kline, T. R., Ismagilov, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detecting+bacteria+and+determining+their+susceptibility+to+antibiotics+by+stochastic+confinement+in+nanoliter+droplets+using+plug-based+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Detecting bacteria and determining their susceptibility to antibiotics by stochastic confinement in nanoliter droplets using plug-based microfluidics.</a> Lab on a chip. 8, 1265-1272 (2008).</li>
<li>Koster, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drop-based+microfluidic+devices+for+encapsulation+of+single+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Drop-based microfluidic devices for encapsulation of single cells.</a> Lab on a chip. 8, 1110-1115 (2008).</li>
<li>Kelly, R. T., Page, J. S., Marginean, I., Tang, K., Smith, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dilution-free+analysis+from+picoliter+droplets+by+nano-electrospray+ionization+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Angew+Chem.+Int.+Ed.+Engl%22%5BJournal%5D)">Dilution-free analysis from picoliter droplets by nano-electrospray ionization mass spectrometry.</a> Angew Chem. Int. Ed. Engl. 48, 6832-6835 (2009).</li>
<li>Hong, J., deMello, A. J., Jayasinghe, S. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bio-electrospraying+and+droplet-based+microfluidics%3A+control+of+cell+numbers+within+living+residues%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+materials%22%5BJournal%5D)">Bio-electrospraying and droplet-based microfluidics: control of cell numbers within living residues.</a> Biomedical materials. 5, 21001(2010).</li>
<li>Edd, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlled+encapsulation+of+single-cells+into+monodisperse+picolitre+drops%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Controlled encapsulation of single-cells into monodisperse picolitre drops.</a> Lab on a chip. 8, 1262-1264 (2008).</li>
<li>Anna, S. L., Bontoux, N., Stone, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+of+dispersions+using+%22flow+focusing%22+in+microchannels%5BTitle%5D)+AND+%22Applied+Physics+Letters%22%5BJournal%5D)">Formation of dispersions using "flow focusing" in microchannels.</a> Applied Physics Letters. 82, 364(2003).</li>
<li>Utada, A., Fernandez-Nieves, A., Stone, H., Weitz, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dripping+to+Jetting+Transitions+in+Coflowing+Liquid+Streams%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Review+Letters%22%5BJournal%5D)">Dripping to Jetting Transitions in Coflowing Liquid Streams.</a> Physical Review Letters. 99, (2007).</li>
<li>Chabert, M., Viovy, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+high-throughput+encapsulation+and+hydrodynamic+self-sorting+of+single+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Microfluidic high-throughput encapsulation and hydrodynamic self-sorting of single cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105, 3191-3196 (2008).</li>
<li>Segrí, G., Silberberg, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Radial+Particle+Displacements+in+Poiseuille+Flow+of+Suspensions%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Radial Particle Displacements in Poiseuille Flow of Suspensions.</a> Nature. 189, 209-210 (1961).</li>
<li>Carlo, D. D. i <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inertial+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Inertial microfluidics.</a> Lab on a chip. 9, 3038-3046 (2009).</li>
<li>Carlo, D. D. i, Edd, J., Humphry, K., Stone, H., Toner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Particle+Segregation+and+Dynamics+in+Confined+Flows%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Review+Letters%22%5BJournal%5D)">Particle Segregation and Dynamics in Confined Flows.</a> Physical Review Letters. 102, (2009).</li>
<li>Humphry, K. J., Kulkarni, P. M., Weitz, D. A., Morris, J. F., Stone, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axial+and+lateral+particle+ordering+in+finite+Reynolds+number+channel+flows%5BTitle%5D)+AND+%22Physics+of+Fluids%22%5BJournal%5D)">Axial and lateral particle ordering in finite Reynolds number channel flows.</a> Physics of Fluids. 22, 081703(2010).</li>
<li>Lee, W., Amini, H., Stone, H. A., Carlo, D. D. i <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+self-assembly+and+control+of+microfluidic+particle+crystals%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Dynamic self-assembly and control of microfluidic particle crystals.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107, 22413(2010).</li>
<li>Duffy, D. C., McDonald, J. C., Schueller, O. J. A., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+prototyping+of+microfluidic+systems+in+poly%28dimethylsiloxane%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Rapid prototyping of microfluidic systems in poly(dimethylsiloxane.</a> Anal. Chem. 70, 4974-4984 (1998).</li>
<li>Kotz, K., Cheng, X., Toner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PDMS+Device+Fabrication+and+Surface+Modification%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">PDMS Device Fabrication and Surface Modification.</a> J. Vis. Exp. (8), e319(2007).</li>
<li>Haubert, K., Drier, T., Beebe, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PDMS+bonding+by+means+of+a+portable%2C+low-cost+corona+system%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">PDMS bonding by means of a portable, low-cost corona system.</a> Lab on a chip. 6, 1548-1549 (2006).</li>
<li>Hatch, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((1-Million+droplet+array+with+wide-field+fluorescence+imaging+for+digital+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">1-Million droplet array with wide-field fluorescence imaging for digital PCR.</a> Lab on a chip. , 3838-3845 (2011).</li>
<li>Holtze, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biocompatible+surfactants+for+water-in-fluorocarbon+emulsions%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Biocompatible surfactants for water-in-fluorocarbon emulsions.</a> Lab on a chip. 8, 1632-1639 (2008).</li>
<li>Garstecki, P., Stone, H., Whitesides, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanism+for+Flow-Rate+Controlled+Breakup+in+Confined+Geometries%3A+A+Route+to+Monodisperse+Emulsions%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Review+Letters%22%5BJournal%5D)">Mechanism for Flow-Rate Controlled Breakup in Confined Geometries: A Route to Monodisperse Emulsions.</a> Physical Review Letters. 94, (2005).</li>
<li>Garstecki, P., Fuerstman, M. J., Stone, H. A., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+of+droplets+and+bubbles+in+a+microfluidic+T-junction-scaling+and+mechanism+of+break-up%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Formation of droplets and bubbles in a microfluidic T-junction-scaling and mechanism of break-up.</a> Lab on a chip. 6, 437-446 (2006).</li>
<li>Nie, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emulsification+in+a+microfluidic+flow-focusing+device%3A+effect+of+the+viscosities+of+the+liquids%5BTitle%5D)+AND+%22Microfluidics+and+Nanofluidics%22%5BJournal%5D)">Emulsification in a microfluidic flow-focusing device: effect of the viscosities of the liquids.</a> Microfluidics and Nanofluidics. , (2008).</li>
<li>Holt, D. J., Payne, R. J., Chow, W. Y., Abell, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorosurfactants+for+microdroplets%3A+interfacial+tension+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+colloid+and+interface+science%22%5BJournal%5D)">Fluorosurfactants for microdroplets: interfacial tension analysis.</a> Journal of colloid and interface science. 350, 205-211 (2010).</li>
<li>Holt, D. J., Payne, R. J., Abell, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+of+novel+fluorous+surfactants+for+microdroplet+stabilisation+in+fluorous+oil+streams%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Fluorine+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Synthesis of novel fluorous surfactants for microdroplet stabilisation in fluorous oil streams.</a> Journal of Fluorine Chemistry. 131, 398-407 (2010).</li>
<li>Hatch, A. C., Fisher, J. S., Pentoney, S. L., Yang, D. L., Lee, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tunable+3D+droplet+self-assembly+for+ultra-high-density+digital+micro-reactor+arrays%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Tunable 3D droplet self-assembly for ultra-high-density digital micro-reactor arrays.</a> Lab on a chip. 11, 2509-2517 (2011).</li>
<li>Baret, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surfactants+in+droplet-based+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Surfactants in droplet-based microfluidics.</a> Lab on a chip. 12, 422-433 (2012).</li>
</ol>

JE Bu yazıda kullanılan teknolojiye dayalı bir patent bir mucididir.

Sipariş nispeten yüksek derecede rağmen, tüm parçacıkları damla veya hücre uygun sayıda içerecektir. Encapsulation verimliliği hücreleri veya bunların toplam sayısına bölünerek istenilen doluluk ile damla kapsüllenmiş olur parçacıkların sayısı olarak hesaplanabilir. Bu ham veriler elde emülsiyon bir numune otomatik bir yüksek hızlı video algoritması ya da görüntü ile elde edilebilir. Bu parçacıklar k ve k parçacıklar içerir damla D k fraksiyonu içeren bir damla kapsüllü parçacıkların P k</su...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> AutoCAD </td><td> AutoDesk </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Şeffaflık Maskesi </td><td> Fineline Imaging Inc </td><td></td><td></td></tr><tr><td> SU-8 rezist </td><td> MicroChem </td><td> 2050 </td><td></td></tr><tr><td> Dektak Profilometre </td><td> Veeco </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Petri Dish </td><td> BD Falcon </td><td> 351058 </td><td></td></tr><tr><td> PDMS Silikon Elastomer Kiti </td><td> Dow Corning Corp </td><td> Sylgard 184, Malzeme Numarası (240) 4019862 </td><td></td></tr><tr><td> Vakum Desikatör </td><td> Jencons </td><td> 250-030 </td><td></td></tr><tr><td> Vakum Pompası </td><td> Alcatel Vakum Teknolojisi </td><td> 2010 C2 </td><td></td></tr><tr><td> Vakum Regülatörü </td><td> Cole-Parmer </td><td> EW-00.910-10 </td><td></td></tr><tr><td> Fırın </td><td> Thermo Scientific </td><td> Lindberg Mavi M, OV800F </td><td></td></tr><tr><td> Biyopsi Punch, 0,75 mm </td><td> Harris </td><td> Uni-Core 15.072 </td><td></td></tr><tr><td> Laboratuvar Corona treater </td><td> Elektro-Teknik Ürünler A.Ş. </td><td> BD-20AC, SKU 12051A </td><td></td></tr><tr><td> Cam Slaytlar </td><td> Altın Mühür </td><td> 3010 </td><td></td></tr><tr><td> Aquapel </td><td> PPG Industries </td><td></td><td> Alternatif Strateji </td></tr><tr><td> Polistiren Mikroküreler, 9.9 mikron </td><td> Thermo </td><td> G1000 </td><td></td></tr> &lt;tr&gt; <td> OptiPrep </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> D1556 </td><td> Kanıtlanmış değil </td></tr><tr><td> Luer-Lok Şırınga </td><td> BD </td><td> 1 mL: 309.628 3 ml: 309.585 </td><td></td></tr><tr><td> FC-40 Florokarbon Yağ </td><td> 3M A.Ş. </td><td> Sigma Aldrich, F9755 </td><td></td></tr><tr><td> Doldurulmuş vaziyette sevk-PEG Fluorosurfactant </td><td> Raindance Teknolojileri </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Işık Madeni Yağ </td><td> PTI Proses Kimyasalları </td><td> 08042-47-5 </td><td> Alternatif Strateji </td></tr><tr><td> Madeni Yağ Yüzey </td><td> Evonik Goldschmidt Şirketi </td><td> Abil EM 90 </td><td> Alternatif Strateji </td></tr><tr><td> Tygon PVC Boru </td><td> SmallParts </td><td> TGY-010 </td><td></td></tr><tr><td> 30 Gauge Luer-Lok Şırınga İğne, 1/2 &quot; </td><td> SmallParts </td><td> ND-301PL-C </td><td></td></tr><tr><td> Ters Mikroskop </td><td> Carl Zeiss Görüntüleme </td><td> Axio Observer.Z1 </td><td></td></tr><tr><td> Yüksek Hızlı Kamera </td><td> Vizyon Araştırma </td><td> Phantom V310 </td><td></td></tr><tr><td> Şırınga Pompaları (2) </td><td> Chemyx A.Ş. </td><td> Nexus 3000 </td><td></td></tr><tr><td> Silikon Yağı </td><td> Dow Corning </td><td> 200 sıvısı, 10 cSt </td><td> Emülsiyon Depolama için opsiyonel </td></tr></tbody></table>

yüksek verim micro-encapsulation tek hücreli ve Çoklu-hücre

High Throughput Single-cell and Multiple-cell Micro-encapsulation

Mikroakışkan enkapsülasyon yöntemleri, hücreleri pikolitre ölçekli sulu, monodispers damlacıklar içinde hapsetmek için önceden kullanılmış olup; yüksek kapasiteli tarama, sitometri ve kütle spektrometrisi uygulamalarında, hücreleri dökme sıvı ortamından izole ederek sınırlama sağlamaktadır. Bu çalışmada, sadece tekil hücreleri enkapsüle etmekle kalmayıp, aynı zamanda kontrol edilen boyutlardaki gruplar halinde hem izolasyonu hem de hücreler arası etkileşimleri incelemek amacıyla belirli sayıda hücreyi (burada tek ve çift hücre enkapsülasyonu gösterilmiştir) tekrar eden şekilde hapsetme yöntemini açıklıyoruz. Damlacık oluşturma tekniklerini hücre ve partikül sıralama ile birleştirerek, verimli ve sürekli enkapsülasyon için hücre boyutundaki partiküllerin kontrollü enkapsülasyonunu gösteriyoruz. Sulu bir partikül süspansiyonu ve karışmayan florokarbon yağı kullanarak, bir akış odaklama nozulu ile yağ içinde sulu damlacıklar oluşturuyoruz. Sulu akış hızı, damlacık oluşturma frekansının tam sayı katı frekanslarda nozula ulaşan partiküllerin sıralanmasını sağlayacak kadar yüksektir ve böylece her damlacıkta kontrollü sayıda hücre enkapsüle edilir. Temsili sonuçlar için, hücre sürrogatları olarak 9,9 μm polistiren partiküller kullanılmıştır. Bu çalışma, tek partikül enkapsülasyon veriminin Pk=1 %83,7 ve çift partikül enkapsülasyon veriminin Pk=2 %79,5 olduğunu; bunların sırasıyla %39,3 ve %33,3 olan ilgili Poisson verimlerine kıyasla daha yüksek olduğunu göstermektedir. Tutarlı hücre ve partikül konsantrasyonunun etkisinin verimli enkapsülasyon için büyük önem taşıdığı gösterilmiş ve damlamadan püskürmeye geçişler de ele alınmıştır.
Giriş
Sürekli ortamdaki sulu hücre süspansiyonları, hücrelerin paralel olarak etkileşime girmesine olanak tanıyan ve ortamdan alınan ölçümlerde belirli hücrelerin etkilerini homojenleştiren ortak bir sıvı ortama sahiptir. Hücrelerin piko litre ölçeğindeki damlacıklara yüksek verimli enkapsülasyonu, örnekleri sınırlandırarak damlacıkları çapraz kontaminasyondan korur, örnekler içindeki hücresel çeşitliliğin ölçülmesini sağlar, reaktiflerin ve eksprese edilen biyobelirteçlerin seyreltilmesini önler ve biyoreaktör ürünlerinden gelen sinyalleri amplifiye eder. Damlacıklar ayrıca, hücreler arası sinyalizasyon çalışmaları için damlacıkların daha büyük sulu örneklere veya diğer damlacıklarla yeniden birleştirilmesi imkanını sağlar.1,2 Seyreltmenin azalması, daha yüksek doğrulukta ölçümler için daha güçlü tespit sinyallerinin yanı sıra, potansiyel olarak maliyetli olan örnek ve reaktif hacimlerinin azaltılabilmesi anlamına gelir.3 Hücrelerin damlacıklarda enkapsülasyonu; protein ekspresyonu,4 antikorlar,5,6 enzimler7 ve metabolik aktivitenin8 yüksek verimli tarama için tespitini iyileştirmek amacıyla kullanılmıştır ve yüksek verimli sitometriyi geliştirmek için kullanılabilir.9 Ek çalışmalar, kütle spektrometrisi10 ve hedefli yüzey hücre kaplamaları11 için hücre içeren damlacıkların biyo-elektrospraying uygulamalarını sunmaktadır. Ancak bazı uygulamalar, damlacıklarda enkapsüle edilen hücre sayısını kontrol etme yeteneğinin eksikliği nedeniyle sınırlı kalmıştır. Burada, tek ve iki hücre için kanıtlanmış enkapsülasyon verimliliklerini artıran ve daha fazla sayıda hücrenin enkapsülasyonu için ekstrapole edilebilecek sıralı enkapsülasyon12 yöntemini sunuyoruz.
Monodisper damlacık üretimi sağlamak için, mikroakışkan "akış odaklama" (flow focusing), akımların birleştiği bir nozul kullanarak bir akışkanın (sulu hücre karışımı) başka bir akışkan (sürekli yağ fazı) içerisinde kontrol edilebilir boyutlarda damlacıklar şeklinde oluşturulmasına olanak tanır.13 Belirli bir nozul geometrisi için, damlacık üretim frekansı f ve damlacık boyutu, yağ ve sulu faz akış hızları Qoil ve Qaq ayarlanarak değiştirilebilir. Akış hızları arttıkça, akışlar damlacık üretiminden, sulu fazın nozuldan kararsız bir jet şeklinde çıkışına geçiş yapabilir.14 
Sulu çözelti süspansiyon halindeki partiküller içerdiğinde, partiküller nozulda kapsüllenir ve birbirinden izole olur. Rastgele dağılmış bir sulu hücre süspansiyonu kullanılarak damla üretimi için, k hücre içeren damlaların ortalama fraksiyonu Dk, Poisson istatistikleri tarafından belirlenir; burada Dk = λk exp(-λ)/(k!) şeklindedir ve λ damla başına düşen ortalama hücre sayısıdır. "Doğru" şekilde kapsüllenen damlalarda son bulan hücrelerin fraksiyonu Pk = (k x Dk)/Σ(k' x Dk') formülü kullanılarak hesaplanır. İki metrik arasındaki ince fark şudur: Dk, sulu sıvının kullanımı ve kapsülleme sonrası tamamlanması gereken damla ayıklama miktarı ile ilgiliyken, Pk hücre örneğinin kullanımı ile ilgilidir. Örnek olarak, hücre içeren çoğu damlanın sadece tek bir hücre içereceği damlaları kapsüllemek için seyreltik bir hücre süspansiyonu (düşük λ) kullanılabilir. Verimlilik metriği Pk yüksek olsa da damlaların çoğunluğu boş olacaktır (düşük Dk), bu durum boş damlaları uzaklaştırmak için bir ayıklama mekanizması gerektirerek işlem hacmini de düşürecektir.15
Damla oluşturmanın inertiyel sıralama ile birleştirilmesi, rastgele enkapsülasyona kıyasla damla başına daha öngörülebilir hücre sayılarıyla damlaların enkapsüle edilmesi ve daha yüksek verimlilik sağlama imkanı sunar. İnertiyel odaklama ilk kez Segre ve Silberberg tarafından keşfedilmiş olup16 sonlu boyutlu parçacıkların kanal akışında yan denge konumlarına göç etme eğilimini ifade eder. İnertiyel sıralama ise parçacıkların ve hücrelerin pasif olarak eşit aralıklı, şaşırtmalı ve sabit hızlı diziler halinde organize olma eğilimini ifade eder. Hem odaklama hem de sıralama, yeterince yüksek akış hızları (yüksek Reynolds sayısı) ve parçacık boyutları (yüksek Parçacık Reynolds sayısı) gerektirir.17,18 Burada, Reynolds sayısı Re =uDh/ν ve parçacık Reynolds sayısı Rep =Re(a/Dh)2 olarak tanımlanır; burada u karakteristik akış hızı, Dh [=2wh/(w+h)] hidrolik çap, ν kinematik viskozite, a parçacık çapı, w kanal genişliği ve h kanal yüksekliğidir. Ampirik olarak, tamamen sıralanmış diziler elde etmek için gereken uzunluk, Re ve Rep arttıkça azalır. Yüksek Re ve Rep gereksinimlerinin (bu çalışma için sırasıyla yaklaşık 5 ve 0,5 mertebesinde), damla oluşturma nozulunda jetlenmeyi önlemek amacıyla sulu akış hızlarının düşük tutulması gerekliliğiyle çelişebileceği unutulmamalıdır. Ek olarak, yüksek akış hızları hücreler üzerinde daha yüksek kayma gerilmelerine yol açar ve bu durum bu protokolde ele alınmamıştır. Önceki sıralı enkapsülasyon çalışması, bu çalışmadaki akış koşullarına benzer koşullar altında tekli enkapsüle edilmiş HL60 hücrelerinin %90'ından fazlasının hücre membranı bütünlüğünü koruduğunu göstermiştir.12 Bununla birlikte, farklı hücre tiplerine ve akış parametrelerine ekstrapolasyon yapılırken kayma gerilmelerinin büyüklüğü ve zaman ölçeklerinin etkisi dikkatle değerlendirilmelidir. Hücre sıralama, damla oluşturma ve hücre canlılığına ilişkin sulu akış hızı kısıtlarının örtüşmesi, tekli ve çoklu hücrelerin kontrollü enkapsülasyonu için ideal bir operasyonel rejim sağlar.
Parçacıklar arası tren aralıklarını ele alan çok az çalışma olduğu için,19,20 bu aralığın belirlenmesi en kolay şekilde ampirik olarak yapılır ve kanal geometrisine, akış hızına, parçacık boyutuna ve parçacık konsantrasyonuna bağlıdır. Bununla birlikte, trenler arasındaki eşit yan açıklık, hücrelerin öngörülebilir ve tutarlı zaman aralıklarıyla ulaştığı anlamına gelir. Damlacık oluşumu, sıralı hücrelerin nozula ulaştığı hızla aynı oranda gerçekleştiğinde, hücreler damlacık içine kontrollü bir şekilde enkapsüle edilir. Bu teknik, önceki çalışmalarda rapor edilen 60-160 Hz4,15 civarındaki enkapsülasyon hızlarına kıyasla önemli bir gelişme olan 15 kHz12 mertebesindeki verimlerle tekil hücreleri enkapsüle etmek için kullanılmıştır. Kontrollü enkapsülasyon çalışmasında, damlacıkların %80'inden fazlası yalnızca bir hücre içermiş olup, bu durum ortalama %40'tan daha az verim öngören Poisson (rastgele) istatistiklerine göre anlamlı bir verimlilik artışıdır.12
Önceki kontrollü enkapsülasyon çalışmasında,12 damla başına ortalama partikül sayısı λ, tek hücreli enkapsülasyon sağlamak üzere ayarlanmıştı. Akış hızlarının ayarlanması yoluyla, λ değeri damla başına istenen hücre sayısına eşit veya yakın olduğunda, damla başına herhangi bir sayıda hücrenin verimli bir şekilde enkapsüle edilebileceğini varsayıyoruz. Tek hücreli enkapsülasyon, uyaranlara karşı bireysel hücre yanıtlarının belirlenmesinde değerliyken; çoklu hücre enkapsülasyonu, kontrollü sayı ve türdeki hücrelerin etkileşimiyle ilgili bilgiler sağlar. Burada, pasif bir atalet sıralama kanalı ve damla üretim nozulu kullanarak çoklu hücrelerin kontrollü enkapsülasyonu için bir protokol, polistiren mikroküreler kullanılarak elde edilen temsili sonuçlar ve tartışma sunuyoruz.

Hücre ve parçacıkların eylemsizlik sıralamayı kümil potasyum başlatıcısı varlığında damla nesil birleştirerek, biz kHz fiyatlara tek bir damla hücre veya parçacıkların İstediğiniz bir numarayı kapsüllemek için bir yöntem tarif. Biz iki kez tek ve çift-parçacık damla sırasız encapsulation geçecek verimlilik göstermektedir.

Yüksek Verim Micro-encapsulation Tek hücreli ve Çoklu-hücre

Mikroakışkan enkapsülasyon yöntemleri, hücreleri pikolitre ölçekli sulu, monodispers damlacıklar içinde yakalayarak hapsolma sağlamak amacıyla daha önce kullanılmıştır...

Küçük piko-litre boyutundaki damlacıklar içine kapsüllenmiş hücrelerin kullanıldığı uygulamalar, genellikle damlacık başına düşen hücre sayısının kontrol edilememesi nedeniyle kısıtlanmıştır. Bu protokol, akışkanlar dinamiğiyle hücre düzenleme ve akış odaklama mikro nozülünde damlacık üretimi şeklinde iki farklı mikroakışkan olguyu birleştirerek hücre kapsülasyonunu kontrol etme yöntemini göstermektedir. Bir üst akış kanalında, hücre veya partiküller içeren sulu çözeltinin yeterince yüksek bir akış hızıyla sağlanmasıyla, akış yönünde eşit aralıklı diziler oluşması sağlanır.Sürfaktan ile stabilize edilmiş kabul edilebilir bir yağ taşıyıcı akışkan içerisinde, kilohertz hızlarda sulu damlacıklar oluşturmak için bir akış odaklamalı damla üretim nozulu kullanılır. Ardından, hücrelerin veya parçacıkların damla üretim nozuluna boylamsal olarak sıralı varışlarıyla senkronize damla üretim hızleri sağlamak amacıyla sulu ve yağ akış hızleri ayarlanarak, sıralı hücre parçacık dizileri damla üretimiyle birleştirilir; bu süreçte parçacıklar hücre vekilleri olarak kullanılır. Bu protokolü göstermek için akış hızleri, akışkanı sınırlayacak kadar küçük olmalıdır.Biyolojik hücreler üzerindeki kayma gerilmeleri, hücre düzenleme damlacık üretiminin çakışması ve hücre canlılığı. Sulu akış hızı kısıtlamaları, tekil ve çoklu hücrelerin kontrollü enkapsülasyonu için ideal bir operasyonel rejim sağlar. Video mikroskopi verilerinin analizi, hem tekli hem de çiftli hücre veya partikül enkapsülasyon verimliliklerinin, rastgele enkapsülasyon verimliliklerinden daha yüksek olduğunu ve istenen sayıda hücre veya partikül içermeyen damlacık sayısını önemli ölçüde azalttığını göstermektedir.Hücrelerin ve damlaların hapsedilmesi, hücre salgılarının seyreltilmesini sınırlar, hücre heterojenliğini belirginleştirir ve dökme süspansiyona kıyasla hücreler arası sinyalleri kontrol eder. Bu hücrelerin damlacıklar içine kapsüllenmesi için kullanılan etkili yöntemler, biyolojik araştırmacılar için değerli bir araç sağlar. Bu prosedüre başlamak için, AutoCAD yazılımında bu şekilde gösterilen bir mikrokanal deseni tasarlayın.Uzun kanal bölümü, 27 mikron genişliğindeki sulu akış düzenleme kanalını temsil etmektedir. Büyütülmüş nozul şeması, sulu düzenleme kanalı ve yağ kanalı için 27 mikronluk eşit kanal genişliklerini, ardından 22 mikronluk nozul daralmasını ve daha geniş olan 61 mikronluk bir kanala ani genişlemeyi göstermektedir. Cihaz yüksekliği 52 mikrondur.Yağ girişinin bu büyütülmüş şemasında gösterildiği gibi, hem sulu hem de yağ girişlerinde, siparişleme kanal genişliğiyle aynı mertebede boşluklara sahip büyük kalıntı filtreleri bulunur. Burada, boya ile enjekte edilmiş siparişleme kanalının ve nozulun gerçek bir görüntüsü yer almaktadır. Kanalların koyu bir arka plan üzerinde şeffaf olduğu yüksek çözünürlüklü bir şeffaf maskeyi Mylar film veya kuvars üzerine yazdırmak için üçüncü taraf bir üretici ile çalışın.Ardından, replika kalıplama için bir silikon ve SU-8 fotoresist master oluşturun. PDMS replika kalıplama işlemi için master kalıbı bir Petri kabının tabanına bantlayın. Replika kalıplama tamamlanıp cihaz hattı kesildikten sonra, bu şekildeki üç yuvarlak bölgeye akışkan portları açmak için 0,75 milimetre dış çaplı bir biyopsi punch'ı kullanın; plazma bonding işleminden sonra tozu temizlemek için PDMS'in desenli tarafına şeffaf bant yapıştırıp çekin.PDMS'i temiz bir cam mikroskop lamı üzerine yerleştirin. Tüm düzeneği bir fırına yerleştirin ve fırını kademeli olarak 120 °C'ye ısıtın. Bağlanmanın tamamlanması ve PDMS'in orijinal hidrofobik durumuna dönmesi için düzeneği 120 °C'deki fırında gece boyunca bırakın.Kanalın cam yüzeyini hidrofobik hale getirmek için alternatif bir yöntem, akış portlarına aquae gibi bir kaplama maddesi enjekte etmek ve ardından havayla temizlemektir. Bir mililitrelik bir şırınga ve şırınga iğnesi kullanarak birkaç yüz mikrolitre hava ve ardından yalnızca metal şırınga ucunu dolduracak kadar küçük bir miktar aquil çekin. Aquayı ve ardından temizleyici havayı akış portlarına dikkatli ancak kararlı bir şekilde enjekte edin. PDMS ile cam arasındaki bağı agresif bir şekilde koparmamaya dikkat edin.Kuruma sonrası kanalları tıkayabilecek çökmelerin oluşmasını önlemek için, fazla suyu silerek tüm giriş ve çıkış portlarında hava temizleme işlemini tekrarlayın. Hücre konsantrasyonunun kontrol edilmesi, uygun sayıda damlaya uygun sayıda hücre ulaşılabilmesi için gereklidir. Bu süreç, zorlayıcı iki bileşen içermektedir.Birincisi, uygun konsantrasyonun önceden tahmin edilmesi, ikincisi ise deney boyunca bu konsantrasyonun korunmasıdır. Bu çalışmada kullanılan özel cihaz için, kontrollü enkapsülasyon amacıyla 8 ila 15 mikron boyutundaki hücreler veya partiküller yeterli olacaktır. Bu gösterimde, hücre surrogatları olarak 9,9 mikronluk polistiren diari mikrosferler kullanılacaktır; ideal enkapsülasyonu sağlamak için sulu partikül süspansiyon konsantrasyonunu hazırlamak adına, tam sıralama için önceki verileri kullanarak ağırlıkça %1 katı mikrosfer stok konsantrasyonu ile başlayın. Rehber olarak, bir mililitre stok örneği nazikçe santrifüj ederek, 250 mikrolitre süpernatan sıvıyı uzaklaştırıp partikülleri vorteks karıştırma veya daha nazik bir karıştırma ile yeniden süspanse ederek konsantrasyonu %1,5 katıya çıkarın.Bu videoda gösterilmemiş olsa da, hücreler kullanıldığında hem hücrelerin hem de polistiren partiküllerin özgül ağırlığı birden büyüktür. Birkaç dakikadan saatlere kadar süren uzun vadeli deneyler için, partiküller için kalsiyum klorür veya hücreler için opti prep gibi bir çözünen ekleyerek çözeltinin kaldırma kuvveti dengelenebilir. Hücre veya partikül süspansiyonu hazırlandıktan sonra, 15 mililitrelik bir santrifüj tüpünde 10 mililitrelik sürekli florokarbon yağ fazı örneği hazırlayıp vorteksleyin.Sürfaktan ve florkarbon yağı yaklaşık olarak ağırlıkça %2,5 oranında karıştırın. Burada, mikro enkapsülasyon deneyini kurmak için kabul edilebilir olan ağırlıkça %2,4'lük bir karışım elde ediyoruz. İlk olarak, evirtilmiş optik mikroskobun ve yüksek hızlı kameranın gücünü açın.Mikrokanal katmanına odaklanın ve kanalları tıkanıklıklar ile yerinden çıkabilecek her türlü kalıntı açısından inceleyin. Büyük kalıntılar veya belirgin tıkanıklıklar bulunmayan bir kanal seçin. Ölü hacmi minimize etmek için sulu faz girişi, yağ girişi ve emülsiyon çıkışı için üç parça yarı saydam tigon PVC boru kesin.Şırınga pompalarından mikroskoba ulaşacak kadar boru kesin. Akış portlarına yerleştirmeyi kolaylaştırmak için boru uçlarını 45 derecelik açıyla kesin ve cımbız kullanarak boru uçlarını akış portlarına bastırarak oturtun. Ardından, sulu giriş borusunun boş ucuna 30 gauge küt uçlu paslanmaz çelik şırınga iğnesini bastırarak oturtun.Aynı işlemi yağ giriş tüpü için tekrarlayın. Cihazı taşıyın ve tüpleri mikroskop tablasına sabitleyin; 20x objektif kullanarak cihaz nozulunu hizalayın ve odaklayın. Odak düzleminde optimal aydınlatma sağlamak için mikroskobu manuel olarak Kohler aydınlatmasına göre ayarlayın.Yüksek hızlı kamera yazılımını kullanarak, daha yüksek kare hızlarına izin vermek için nozul çevresindeki görüş alanını kırpın ve ardından optimal kayıt için gerekli kare hızını, pozlama süresini ve diğer kamera ayarlarını belirleyin. Ardından, bir mililitrelik bir şırıngayı daha önceden hazırlanmış ve iyi karıştırılmış sulu faz çözeltisiyle doldurun. Üç mililitrelik bir şırıngayı yağ fazı çözeltisiyle doldurun.Dolu şırıngalardan birini dikey konuma getirin ve hava kabarcıklarını şırınga çıkışına taşımak için hafifçe vurun. Şırıngayı dikey tutarak, havayı şırınga ucuna itecek kadar pistonu yavaşça bastırın. Şırıngayı, cihaza zaten takılı olan ilgili şırınga iğnesine bağlayın.Sıvı, boru boyunca cihazın hemen yanına kadar itilene kadar havayı şırınga iğnesinin ölü hacminden geçirmek için pistonu bastırın; ardından şırıngayı bir şırınga pompasına güvenli bir şekilde monte edin ve piston bloğunu yerleştirin. Aynı bağlantı işlemlerini ikinci şırınga için tekrarlayın ve bunu ikinci bir şırınga pompasına monte edin; her bir şırınga pompasını açın ve her pompayı programlayın. Üretici protokollerini kullanarak başlangıç akış hızlarını yağ fazı için 50 µL/dakika ve su fazı için 5 µL/dakika olarak ayarlayın.Sulu faz başlangıcı için pompalar, her bir sıvının cihaza girmesini ve kanalları doldurarak kalan ölü havayı dışarı itmesini bekler. Başlangıç akış hızları kullanıldığında bu işlem birkaç dakika sürebilir. Nozulda damlaların oluşumunu gözlemleyin.Uzun sulu çözelti kanalındaki partiküllerin düzenlenmesini gözlemlemek için sulu akış hızını yavaşça artırın. Akış hızı artarken, farklı bir damla oluşturma nozülü kullanılan bu örnekte gösterildiği gibi, nozül başında sulu akışkan akımının jetlenmesine neden olacak noktaya kadar akış hızını artırmayın; buradaki kararsız akışa ve tutarsız damlaya dikkat edin. Eğer partikül konsantrasyonu, nispeten az sayıda eksik partikül içeren ardışık diziler sağlamak için çok düşükse ve örnek kaldırma kuvvetiyle dengelenmemişse, partiküllerin şırınga çıkışlarına doğru kademeli olarak çökelmesini sağlamak için şırınga pompasını fiziksel olarak şırınga çıkışına doğru eğin.Yeterli düzenlenme gerçekleştiğinde, damla oluşum frekansını ve boyutunu ayarlamak için yağ akış hızını düzenleyin. İstenen enkapsülasyon oranlarına ve damla hacimlerine ulaşmak için her iki akış hızını da iteratif olarak ayarlayın. Kararlı ve düzenli enkapsülasyon onaylandığında, çıkış tüpünü atık rezervuarından çıkararak gelecekteki kullanım için bir toplama rezervuarına aktarın.Tekli ve çoklu partikül veya hücre enkapsülasyonu yüksek verimlilikle gerçekleştirilebilir. Burada gösterilen bu protokolün kullanımı, dakikada 60 mikrolitre yağ akış hızı ve dakikada dokuz mikrolitre sulu akış hızı ile tekli partikül enkapsülasyonunun temsili bir sonucudur. Damla başına ortalama partikül sayısı olan Lambda, 0,95'tir.Tam olarak sıralanmış ardışık partiküller için akış yönündeki partikül aralığı yaklaşık 17 ila 18 mikrondur. Bu örnekteki damla oluşturma hızı, 24,4 pikolitre ortalama damla boyutu ile 6,1 kilohertz'dir. Histogram, tek partikül enkapsülasyonu ile artı durumunun damla enkapsülasyon partikül verimliliğini karşılaştırmaktadır.İstatistiklere gelince, 517 damlacık örneği için rastgele enkapsülasyon oranında, tek parçacık içeren damlacıkların ortalama oranı, öngörülen %36,7'lik rastgele enkapsülasyon oranının aksine %79,5'tir. 491 parçacıktan oluşan bir örneklemde, doğru şekilde enkapsüle edilen damlacıklarda yer alan parçacıkların oranının %83,7 olduğu gözlemlenirken, rastgele enkapsülasyon oranı %37,3'tür. Çift parçacık enkapsülasyonu, sulu faz akış hızı dokuz microliter per minute düzeyinde tutulurken, yağ akış hızının 30 microliters per minute değerine düşürülmesiyle kolayca gerçekleştirilir. Burada lambda, yani damla başına ortalama parçacık sayısı 1,8'dir. Bu süreç, tek parçacık enkapsülasyonuna benzer şekilde gerçekleşir.Tam sıralı alternatif parçacıklar için akış yönündeki parçacık aralığı yaklaşık 17 ila 18 mikrondur. Daha büyük damlalar, rastgele enkapsülasyona kıyasla 39,8 picoliters ortalama damla boyutuna sahiptir ve 3.8 kilohertz hızında oluşmuşlardır. 383 damlalık bir örneklem boyutu için, iki parçacık içeren sıralı enkapsülasyon damlalarının ortalama fraksiyonu, %26,8 olarak öngörülen rastgele enkapsülasyon fraksiyonuna karşılık %71,5'tir. 689 parçacıklık bir örneklem boyutu için, doğru şekilde enkapsüle edilen damlalarda yer alan parçacıkların fraksiyonunun %79,5 olduğu gözlemlenirken, rastgele enkapsülasyon fraksiyonu %33,4 olarak kaydedilmiştir.Birlikte değerlendirildiğinde bu sonuçlar, hem tekli hem de çiftli partikül enkapsülasyon verimliliklerinin, rastgele enkapsülasyon verimliliklerini iki kattan fazla geride bıraktığını ve istenen sayıda hücre veya partikül içermeyen damlacık sayısını büyük ölçüde azalttığını göstermektedir. Yüksek enkapsülasyon verimliliği için uygun partikül veya hücre konsantrasyonlarının önemi, bu deneysel çalışmada örneklendirilmiştir. Yağ ve sulu faz akış hızları, daha önce gösterilen çiftli partikül enkapsülasyon çalışmasıyla aynı olsa da, damla başına düşen ortalama hücre sayısı lambda 1,57'ye düşürülmüştür.Sonuç olarak, tam sıralama gerçekleşmez ve böylece dizilerde boşluklar oluşarak beklenenle karşılaştırıldığında daha az parçacık içeren güneş damlacıkları meydana gelir. Bu histogram, Lambda'nın daha düşük değeri nedeniyle iki parçacıklı enkapsülasyon verimindeki azalmayı göstermektedir. 324 damlacıklı bir örneklem boyutu için, iki parçacık içeren damlacıkların ortalama oranı %55.9 olmuş ve tek parçacıklı damlacık sayısı, çift parçacıklı damlacık sayısına yakın çıkmıştır.Bu durum, seçilen lambda değerinin, damla başına düşen hücrelerin daha az veya daha fazla olmasının tolere edilip edilmediğine bağlı olarak, doğru şekilde kapsüllenmiş partikül veya hücre sayısını maksimize etmek için istenen hücre sayısı ile eşit veya buna yakın olması gerektiğini göstermektedir. Bu demonstrasyonda, deney sırasında konsantrasyonun gerçek zamanlı kontrolünü sağlamak için kaldırma kuvveti uyumsuzluklarından yararlanıyoruz. Ancak, daha uzun süreli deneylerde, hücrelerin sulu damlacıklar içine kapsüllenmesinin ardından daha tutarlı sonuçlar elde etmek için kaldırma kuvvetini eşitlemek tavsiye edilebilir.Zamana bağlı deneyler, damlaların mikroakışkan dizilere yeniden enjekte edilmesi yoluyla bir santrifüj tüpünde veya bir mikroskop altında gerçekleştirilebilir.

high-throughput-single-cell-and-multiple-cell-micro-encapsulation

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Biz mikro ölçekli hücre stimülasyonu deneyler için otomatik bir hücre kültürü ve sorgulama platformu geliştirdik. Platform yetiştirilmesi ve hücrelerin küçük nüfus uyarıcı ve moleküler analizler için lizatları kurtarma, basit, çok yönlü ve hassas kontrol sağlar. Platform de değerli hücreleri ve / veya reaktif kullanmak çalışmalar için uygundur.

Mikro ölçekli Hücre Stimülasyon deneyler için Çok Yönlü Otomatik Platformu

Burada, yüksek verimli tek hücre izolasyonu ve uzun süreli klonal kültüre izin vermek için yeni bir mikro kuyu tasarım konseptini kullanan mikroakışkan bir platformla tek hücreleri izole etmek ve kültürlemek için bir protokol sunuyoruz.

Yüksek verim Tek hücreli İzolasyonu ve Kültür mikroakışkan Platformu

Tek hücreli sıralama genotypic heterojenlik biyolojik sistemlerde ortaya çıkarır, ama daha fazla işlem hacmi derin topluluk kompozisyon ve işlev profil oluşturma için gerekli güncel teknolojileri eksikliği. Burada, biz bir mikrosıvısal iş akışı sıralama için tarif &gt; 50.000 tek hücreli genleri farklı popülasyonlar hücre.

Tek hücreli genom sıralama için bir üretilen iş Ultrahigh mikrosıvısal Platform

Bu makale damlacıkları hücrelerinde yüksek kapsülleme verimliliğini sağlamak için pipet-ipuçları için damlacık mikrosıvısal aygıtları kullanarak hücre kıt nüfus tohum için bir protokol sunar.

Pipet Ucu yöntemine damlacık mikrosıvısal platformlar tohum hücrenin temel

Burada sunulan kemirgen gözlere biyolojik uzun süreli teslimat için ölümsüzleştirilmiş hücrelerin mikrokapsülasyonu bir polimer olarak aljinat kullanımı için bir protokoldür.

Fare Gözüne Biyolojik Teslim için Kapsüllü Hücre Teknolojisi

Bu rapor, birden fazla hücrenin yüksek verimli eşleştirme ve mikroskobik analizinin sağlanabileceği tek bir hücre kültürü deneyi kurmak için mikroakışkan çip tabanlı bir yöntem tanımlanmaktadır.

Mikroakışkan Çiple Deterministik Bir Şekilde Tek Hücreli Ortak Kültürlerin Oluşturulması

Bu makalede, insan pluripotent kök hücrelerinin (hPSC'ler) koaksiyel akış odaklama cihazı kullanılarak kapsüllenmesi açıklanmaktadır. Bu mikroakışkan kapsülleme teknolojisinin hPSC sferoidlerinin verimli bir şekilde oluşturulmasını sağladığını gösteriyoruz.

İnsan Pluripotent Kök Hücre Sferoidlerini Taşıyan Core-Shell Mikrokapsüllerinin Mikroakışkan İmalatı

Tek hücreli omik deneyler yapmak için stabil veya rahatsız edici akış koşullarına maruz kalan fare karotis arterlerinin lümeninden endotel hücrelerini ve çekirdeklerini izole etmek için bir yöntem sunuyoruz.

Tek Hücreli Multi-Omik Deneyler için Fare Karotis Arterlerinin Lümeninden Endotel Hücrelerinin İzolasyonu

Protokol, bireysel insan periferik kan mononükleer hücrelerinin sitokin sekresyon dinamiklerini kantitatif olarak ölçmek için gelişmiş bir mikroakışkan platformu tanımlar. Platform, örnek olarak lipopolisakkarit ile uyarılan her bir hücre için paralel olarak üç adede kadar sitokini (IL-6, TNFa ve IL-1β) ölçer.

Bireysel Çok Fonksiyonlu Hücrelerin Eşzamanlı ve Ardışık Sitokin Sekresyonunu Çözmek için Mikroakışkan Yaklaşım 

Dolaşımdaki tümör hücreleri (CTC'ler), kanserin ilerlemesi ve metastazının incelenmesi için kritik öneme sahiptir. Bu makale, CTC zenginleştirme ve tek CTC dizilimi için yüksek verimli, entegre bir protokol sunmakta, kontaminasyon ve dizileme maliyetlerini azaltırken yakalama verimliliğini ve CTC saflığını artırmakta, böylece hassas onkoloji araştırmalarını ve klinik uygulamaları ilerletmektedir.

Mikroakışkan Tabanlı Yüksek Verimli Dolaşımdaki Tümör Hücresi Sıralama ve Tek Hücre Dizileme Teknolojisi

Öğrenin mikroakışkanlarla tek ve çok hücreli yüksek verimli mikroenkapsülasyon yöntemini. Akış odaklı nozul kullanarak kilohertz frekanslarında damlacık oluşturma ve hücre sıralama tekniklerini keşfedin.

Yüksek Verim Micro-encapsulation Tek hücreli ve Çoklu-hücre

Daha fazla video keşfet