Name: Çok derinlemesine Dairesel kesit Endothelialized mikro kanallar-on-a-chip Geliştirme Prosedürü (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-21T19:45:00.000+00:00
Duration: 10 min 55 s
Description: Öğrenin, mikrokanal-on-a-chip platformunda endotelyal hücre kültürü ve sürekli perfüzyon akışı ile mikrovasküler araştırma için 3D geometriyi taklit etme yöntemini. Bu teknik, damarsal biyoloji çalışmalarında yüksek kaliteli gerçek zamanlı görüntüleme sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Bu araştırma kısmen Ulusal Bilim Vakfı (NSF 1.227.359), sırasıyla Ulusal Bilim Vakfı (EPS-1.003.907), Ulusal Bilim Vakfı (1.007.978) tarafından desteklenen WVU ADVANCE ofis ve WVU PSCoR tarafından finanse WVU EPSCoR programı, tarafından desteklenmiştir. Mikroimalat iş WVU Ortak Araştırma Olanakları (Temiz oda tesisleri) ve Batı Virginia Üniversitesi Chip Laboratuvarı (mikroçip Lab) üzerinde mikroakışkan Bütünleştirici Hücresel Araştırma yapıldı. Konfokal görüntüleme WVU Mikroskop Görüntüleme Tesisleri&#39;nde yapıldı.

1. Fotorezist Usta Kalıp Fotolitografi Fabrikasyon Aşağıdaki protokol, 30-60 mikron arasında çaplara sahip mikro imal etmek için işlemleri gösterir. Daha küçük bir çapı (en az 30 mikron), çeliğin tek bir spin kaplama olan bir mikrokanal elde etmek için gereklidir. <ol><li> Kullanmadan önce temiz oda, 24 saat için 4 ° C sıcaklıkta buzdolabında gelen yeniden akış fotorezist aktarın ve bu sırada oda sıcaklığına ısınmasına izin verir. </li><li> Bir silikon yonga temiz ve kurutmak için izin vermek için 150 ° C de bir saat boyunca pişirin. Dehidrasyon silikon substrat için ışığa yapışma yardımcı olacaktır. </li><li> Spin-kat fotorezist ilk katman aşağıdaki tarifi kullanarak: </li></ol><table border="1"><tbody><tr><td> Adım </td><td> Zaman (Saniye) </td><td> Hız (rpm) </td><td> Hızlanma </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 2 &lt;/ Td&gt; <td> 300 </td><td> en yüksek </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 10 </td><td> 0 </td><td></td></tr><tr><td> 3 </td><td> 3 </td><td> 300 </td><td> en yüksek </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 60 </td><td> 600 </td><td> en yüksek </td></tr><tr><td> 5 </td><td> 10 </td><td> 500 </td><td> en yüksek </td></tr><tr><td> 6 </td><td> 10 </td><td> 600 </td><td> en yüksek </td></tr></tbody></table><ol start="4"><li> Daha sonra, 90 saniye boyunca 110 ° C arasında bir sıcaklığa sahip bir ocak gofret fırında. Yumuşak fırında sonra ışığa kalınlığı 20-30 mikron olacaktır. </li><li> Kat ilk kat için kullanılan aynı tarifi takip ışığa bir ikinci kat Spin. </li><li> Yumuşak fırında 90 saniye 110 ° C lik bir sıcaklık ile bir ocak üzerine yerleştirerek tekrar gofret. Bu yumuşak fırında sonra ışığa kalınlığı 40-60 mikron olacaktır. </li><li> PhotoR açarak olumlu ana desenleri oluşturmakbir film maske ile 14.500 mJ / cm 2 bir maruz kalma doz UV ışığına esist. </li><li> Deiyonize (Dİ) su (01:02 (v / v)) ile geliştirici seyreltin. Desen tam gelişmiş kadar çözümünde tekrar tekrar gofret durulayın. Daha sonra DI su ile gofret yıkayın ve azot gazı kullanarak kurulayın. </li><li> Reflow: 4 dakika ve solvent buharlaşmasını önlemek için bir cam Petri kabı ile kapak için 120 ° C lik bir sıcaklık ile bir ocak yeri gofret. Ocak gelen gofret çıkarın ve oda sıcaklığına kadar soğumasını bekleyin. Reflow sonra ışığa kalınlığı 50-60 mikron olacaktır. </li></ol> 2. PDMS Mikrokanal Ağ Yumuşak Litografi Fabrikasyon <ol><li> 10:1 ağırlık oranı (baz: sertleştirici) de polidimetilsiloksan (PDMS) çözeltisi hazırlayın ve bir gezegen santrifüj mikser kullanarak iyice karıştırın. </li><li> Yeniden akıtılan çeliğin ana kalıp üzerine PDMS çözüm Cast. Gazdan arındırmak için 15 dakika boyunca bir desikatör içinde döküm PDMS yerleştirin. Gerekirse kalan kabarcıklarını çıkarmak için azot gazı kullanın. </li><li> Bunun tedavisi için izin vermek için, 3 saat boyunca 60 ° C arasında bir sıcaklıkta bir fırında PDMS pişirilir. Daha sonra ana kalıp tedavi PDMS katmanı kaldırmak. </li><li> Kanal ağı delik delme tarafından giriş / çıkış delikleri oluşturmak için bilenmiş zımba kullanın. Azot gazı kullanarak PDMS yüzeyini temizlemek. </li><li> 4,5 x 10 -2 Torr ve 3,5 m 3 / dk oksijen akış hızı bir çalışma basıncında bir plazma temizleyici içinde 30 saniye oksijen plazma ile iki PDMS katmanları davranın. Daha sonra, bir optik mikroskop altında elle PDMS yüzeyleri hizalayın. Bir damla su hizalama daha iyi bir kontrolü için gerekli kullanın. </li><li> 60 ° C de sürekli yapışma elde etmek için 30 dakika boyunca bir fırında pişirmeye cihaz. </li></ol> 3. Chip içinde HUVEC Kültür ve Yayımlama <ol><li> Kültür L-glutamin ile kültür ortamı ile HUVEC&#39;ler,% 10 fetal sığır serumu (FBS) ile desteklenmiş. Th2 ile 5 arasında e deney pasajlar kullanılmıştır. </li><li> HUVEC&#39;lere birleşik bir kez, 37 ° C de 2-6 dakika hücreleri saymak ve ilk HEPES (HEPES-BSS) serum fizyolojik tamponlu ile hücreleri durulama bunları hasat ve sonra tripsin / EDTA ve inkübe ile hücrelerin tedavi Tripsinizasyon tamamlandıktan sonra, Tripsin çözeltisi ile nötralize tripsin / EDTA ile etkisiz hale getirir. Santrifüj ve toplamak için 8% dekstran ile kültür ortamı içinde hücre askıya. Dekstran iyi hücre tohumlama ve ek yardımcı olması için orta viskositesini artırmak için kullanılmıştır. </li><li> 5 4,5 x 10 -2 Torr bir çalışma basıncı ile dakika ve 3.5 bir oksijen akış hızı ft 3 / dk oksijen plazma cihazı tedavi. Daha sonra DI su ile cihaz yük ve sterilizasyon için bir laminer biyogüvenlik kaput 8 saat UV ışığı ile tedavi. </li><li> Hücrelerin hazır bir gün önce, 1x fosfat ile cihaz yıkayın fibronektin (100 mg / ml, dil ile kat sonra (1x PBS) tamponlu salin1X PBS ile uted) ve 4 ° C&#39;de bir gece boyunca buzdolabında inkübe edin. </li><li> Fibronektin kaplama sonra, 1x PBS sonra kültür ortamı ile yük cihazı yıkayın. 15 dakika boyunca 37 ° C arasında bir sıcaklıkta, cihaz inkübe edin. </li><li> 3-4 x 10 6 hücre / ml &#39;lik bir hücre konsantrasyonu ile% 8 dekstran kültür ortamı içinde HUVEC hücreleri yerleştirin. Cihazın bir girişine bir hücre 20 ul damlacık yerleştirin ve mikroakışkan kanal içine hücreleri tanıtmak için eğilme. 15-20 dakika sonra, hücreler kanallarının yan duvarlara bağlamak için başlayacaktır. Cihaz hücreleri daha homojen bir dağılım oluşturmak için her 15 dakika döndürün. Gerekirse ek yükleme yapılabilir. </li></ol> 4. Uzun vadeli Perfüzyon Kurulum Statik kültür 5-6 saat sonra, ekli HUVEC&#39;lere tam yaymak başlar. 10 ul / saat sürekli bir akış ile bir uzaktan kumandalı şırınga pompası sistemini kullanarak perfüzyon kurun. Perfüzyon F ayarlanabilirya da daha yüksek bir akış hızı, ve 2 hafta ile 4 gün arasında bir süre sürebilir. 5. Hücre Boyama ve Mikroskop Karakterizasyonu <ol><li> Hücre, cihazın içindeki birleştiği ulaştığında, ilk olarak, iyice ortam maddesinin ayrılması için 1X PBS ile yıkayın cihaz. Daha sonra bir seyreltici (4-ul, 1 ml) ile seyreltildi, kırmızı bir boya ile, cihazın yük. Hücre yükleme prosedürüne benzer boya yükleyin. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca karanlıkta inkübe cihazı ve daha sonra boyama durdurmak için kültür ortamı ile yıkayın cihaz. Boya uzun bir kuluçka hücresel toksisite ve disadhesion neden olabilir. </li><li> 1x PBS (ml başına 2 damlacıkları) ile seyreltilmiş mavi boya ile aracı yükleyin. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca karanlıkta inkübe sonra iyice 1X PBS ile yıkayın cihaz. </li><li> Ters bir optik mikroskop altında hücre boyama inceleyin. Boyama iyi ise, (1x PBS ile sulandırılmış% 3.5 paraformaldehid) sabitleme orta mikro yük, daha sonra batığınorta ve tamamen alüminyum folyo ile örtün sabitleme cihazı. 4 arasındaki bir sıcaklıkta buzdolabında cihazını ° C&#39;de kurutarak Photobleaching cihazın önlemek için. Sabit cihaz şimdi konfokal mikroskop bir lazer tarama yapılabilir konfokal görüntüleme, hazır. </li></ol>

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarının olmadığını beyan ederim.

<html> 1. Ana kalıp imalat Vasküler morfometri için tasarımı ve yol gösterici ilkelerinden biri ağ boyunca damar çapları dağılımının minimum enerji dikkate tarafından yönetilir belirten Murray yasası 16, olarak bilinir. Ayrıca bir çatallanma bir ana geminin çaplarının küp kızı gemilerin çapları küp toplamına eşittir belirtiyor ( <img alt="Denklem 1" fo:content-width="0.9in" fo:src="/files/ftp_upload/50771/50771eq1.jpg" src="/files/ftp_upload/50771/50771eq1.jpg" width="100px" /> Buna e...

Mikrodamarlar, dolaşım sisteminin bir parçası olarak, kan ve dokular arasındaki etkileşimi aracılık metabolik faaliyetlerini desteklemek, doku mikro tanımlamak, ve birçok sağlık ve patolojik durumlarda önemli bir rol oynamaktadır. In vitro fonksiyonel mikrodamarlar tekrarlama kompleks vasküler olayların çalışma için bir platform sağlayabilir. Ancak, bu tür endotelyal hücre göçü deneyleri, endotel tüp oluşumu deneyleri, sıçan ve fare aort halkası tahlilleri gibi in vitro mikro-damar deneyleri, geleneksel üç boyutlu (3D) geometrisi ve sürekli bir akış kontrolü ile ilgili olarak, in vivo olarak yeniden kılcal mümkün değildir 1-8. Hayvan modelleri ve bu kornea anjiojen deneyleri, civciv chorioallantoic membran anjiyogenez tahlil ve Matrigel fiş test olarak in vivo deneyleri,, kullanarak mikrodamarlar çalışmaları daha, zaman alıcı maliyeti yüksek, gözlem ve sayımsal ile ilgili zorlu ve olanetik konular 1, 9-13 yükseltmek. Olmazdı böyle kolay ve sıkı kontrol biyolojik koşulları ve dinamik akışkan ortamlar olarak çalışmaları 14, hayvanlarla ve in vivo ilgili yüksek deneysel maliyetleri ve karmaşıklığı yavaşlatmada ise micromanufacturing ve mikroakışkan çip teknolojileri gelişmeler biyomedikal bilimler bakış açıları çeşitli etkin geleneksel makro tekniklerle mümkün. Burada, bir endothelialized oluşturmak için bir yaklaşım mevcut mikro--a-chip in vivo mikrodamarlar içinde 3 boyutlu geometri taklit ve fotolitografik reflowable ışığa tekniği, yumuşak litografi ve Mikroakiskan kombinasyonu kullanarak kontrollü sürekli perfüzyon akış altında çalışır.

<table><tbody><tr><td><güçlü > Reaktif / Malzeme< / güçlü ></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Yeniden akış Fotorezist</td><td>AZ Elektronik Malzemeler</td><td>AZP4620</td><td></td></tr><tr><td>Geliştirici</td><td>AZ Elektronik Malzemeler</td><td>AZ 400K</td><td></td></tr><tr><td>PDMS</td><td>Dow Corning Corporation</td><td>Sylgard 184</td><td></td></tr><tr><td>MCDB 131 Kültür Ortamı</td><td>Invitrogen</td><td>10372-019</td><td></td></tr><tr><td>NacBlue Çekirdek Boyama</td><td>Invitrogen</td><td>H1399</td><td></td></tr><tr><td>PKH Kırmızı Leke</td><td>Sigma</td><td>MINI26 ve PKH26GL</td><td></td></tr><tr><td>Fibronektin</td><td>Gibco</td><td>PHE0023</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamin</td><td>Sigma</td><td>G7513</td><td></td></tr><tr><td>Fosfat Tamponlu Salin</td><td>Invitrogen</td><td>14040-133</td><td></td></tr><tr><td>HEPES Tamponlu Salin Çözeltisi</td><td>Lonza</td><td>CC-5024</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin / EDTA</td><td>Invitrogen</td><td>25300-062</td><td></td></tr><tr><td>Tripsin Nötralize Edici Çözelti</td><td>Lonza</td><td>CC-5002</td><td></td></tr><tr><td>PDMS Kürleme Maddesi</td><td>Dow Corning Corporation</td><td>Sylgard 184</td><td></td></tr><tr><td>Primer İnsan Göbek Veni Endotel Hücreleri</td><td>Lonza</td><td>CC-2517</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu</td><td>Lonza</td><td>14-501F</td><td></td></tr><tr><td>Seyreltici C</td><td>Sigma</td><td>CGLDIL</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst33342</td><td>Canlandırıcı, Moleküler Problar</td><td>R37605</td><td></td></tr><tr><td>Dekstran</td><td>Sigma</td><td>95771</td><td></td></tr><tr><td>%3.5 Paraformaldehit</td><td>Elektron Mikroskobu Bilimi</td><td>15710-S</td><td></td></tr><tr><td><güçlü>Ekipman</güçlü></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spinner</td><td>Laurell Teknolojileri Şirketi</td><td>WS-400BZ-6NPP/ LITE</td><td></td></tr><tr><td>Kurutucu</td><td>BelArt Ürünleri</td><td>999320237</td><td></td></tr><tr><td>Ters Mikroskop</td><td>Nikon</td><td>Eclipse Ti</td><td></td></tr><tr><td>Şırınga Pompa Sistemi</td><td>Harvard Aparatı</td><td>PHD Ultra</td><td></td></tr><tr><td>Laminer Biyogüvenlik Başlığı</td><td>Thermo Scientific</td><td>1300 Serisi A2</td><td></td></tr><tr><td>Planet Santrifüj Mikser</td><td>Thinky</td><td>ARE-310</td><td></td></tr><tr><td>Isotemp Fırın</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-246-516GAQ</td><td></td></tr><tr><td>Optik Mikroskop</td><td>Zeiss</td><td>Invertoskop 40C</td><td></td></tr><tr><td>Plazma Temizleyici</td><td>Harrick Plazma</td><td>PDC-32G</td><td></td></tr><tr><td>Ocak Gözü</td><td>Barnstead/Thermolyne Cimarec</td><td>SP131635</td><td></td></tr><tr><td>Lazer Taramalı Konfokal Mikroskop</td><td>Zeiss</td><td>LSM 510</td><td></td></tr></tbody></table>

Çok derinlemesine dairesel kesit endothelialized mikro kanallar-on-a-chip geliştirme prosedürü

Procedure for the Development of Multi-depth Circular Cross-sectional Endothelialized Microchannels-on-a-chip

In vivo hayvan çalışmaları daha zaman alıcı, pahalı ve gözlem ve miktar çok zor olduğu, çünkü çabaları mikrodamarlar çalışma için in vitro tayinlerde geliştirmeye odaklanmıştır. Üç boyutlu (3D) geometrisi ile ilgili in vivo kılcal temsil eden ve sürekli sıvı akışı sağlayan Ancak, in vitro mikro-damar tahlillerde geleneksel sınırlamaları vardır. Fotolitografik reflowable fotorezist tekniği, yumuşak litografi ve Mikroakiskan bir arada kullanarak, bir çok derinlemesine dairesel kesit endothelialized geliştirdik kontrollü sürekli perfüzyon altında in vivo mikrodamarlar içinde 3 boyutlu geometri taklit ve çalışan, mikro--a-chip akış. Pozitif reflowable ışığa yarım daire kesit Mikrokanallı ağı ile bir ana kalıp imal etmek kullanıldı. Repl iki polidimetilsiloksan (PDMS) mikro uyum ve yapıştırma tarafındanana kalıp gili, silindirik bir Mikrokanallı ağ oluşturuldu. Mikrokanalların çapları iyi kontrol edilebilir. Buna ek olarak, bir çip içerisinde tohumlanmıştır Primer insan göbek bağı damarı endotel hücrelerinin (HUVEC&#39;ler) sonra hücreler, 4 gün ile 2 hafta arasında bir süre boyunca sürekli olarak kontrol edilen perfüzyon altında mikro iç yüzeyi kaplı olduğunu gösterdi.

Çok derinlemesine Mikrokanallı ağ imal yaklaşımımız mikro kesitler 15 yuvarlak var olduğu, in vivo mikrodamarlar içinde karmaşık 3D geometrileri taklit eder. Ayrıca, ana dallanma kanallarının çapları ve kızı kanalları yaklaşık genel kanal direnci düşüktür ve akım hızları ağ 16-18 boyunca daha düzgün böylece gerekli düzeyde sıvı akışı korumak için Murray yasası uyun. Yarım daire şeklinde bir fotorezist ana kalıp, imalat ve dairesel bir yarı kesit PDMS mikrokanal ağı için süreçler v...

Bir mikro-on-a-chip platformu fotolitografik reflowable ışığa tekniği, yumuşak litografi ve Mikroakiskan kombinasyonu tarafından geliştirilmiştir. Endothelialized mikro platformu, in vivo mikrodamar içinde üç boyutlu (3D) geometrisi ile taklit eden sürekli perfüzyon kontrollü akış altında çalışan, yüksek kaliteli ve gerçek zamanlı görüntü sağlar ve mikrovasküler araştırma için uygulanabilir.

Çok derinlemesine Dairesel kesit Endothelialized mikro kanallar-on-a-chip Geliştirme Prosedürü

Efforts have been focused on developing in vitro assays for the study of microvessels because in vivo animal studies are more time-consuming, expensive, ...

Bu prosedürün genel amacı, in vivo mikrodamarların 3D geometrisini taklit eden ve kontrollü sürekli perfüzyon akışı altında çalışan, çok derinlikli dairesel kesitli endotel canlı mikro kanallardan oluşan bir çip geliştirmektir. Bu işlem, öncelikle pozitif yeniden akışkan fotoresist kullanılarak yarı dairesel kesitli bir mikro kanal ağına sahip bir ana kalıbın fotolitografik olarak üretilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım, ana kalıbı kullanarak iki poli dimetil siloksan mikro kanal kopyalamak, bunları hizalamak ve silindirik bir mikro kanal ağı oluşturmak için birbirine bağlamaktır.Ardından, hücreler dört gün ile iki hafta arasındaki bir süre boyunca kontrollü sürekli ortam perfüzyon koşulları altında kültüre edilmeden önce, primer insan göbek kordonu ven endotelyal hücreleri mikrokanal ağına yerleştirilir. Nihayetinde, mikroskoplarda membran ve çekirdeklerin görünür olduğu konfluens bir hücre monotabakası, karmaşık vasküler fenomenlerin incelenmesi için bir platform sağlayabilecek fonksiyonel mikro damarların hesaplanmasına olanak tanıyarak mikrokanal ağının iç yüzeyi boyunca gelişir. Ancak, hücre göçü deneyleri, tüp oluşum deneyleri ve ring deneyleri gibi geleneksel bireysel mi

procedure-for-development-multi-depth-circular-cross-sectional

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Biz, mikro-biyoreaktörler hücrelerin üç boyutlu ekimi için çip tabanlı platform açıklar. Bir çip 10 milyon kadar ev. steril, kapalı bir dolaşım döngü içinde sıvı akışı, oksijen basıncı vb ilişkin kesin olarak tanımlanmış koşullar altında yetiştirilen hücreler.

Perfüze Mikro-biyoreaktörler Chip tabanlı üç boyutlu Hücre Kültürü

Biz, üç-boyutlu hücre kültürü için gözenekli polimer cips mikroimalat için iki süreç sunuyoruz. Bunlardan birincisi, solvent buhar kaynak işlemi ile birlikte sıcak kabartma. Ikincisi ise, kısa bir süre önce geliştirilen iyon izleme teknolojisi ile üretim önemli bir basitleştirme giden kombine microthermoforming süreci kullanır.

Üç boyutlu Hücre ekimi için Chip-ölçekli Yapı iskeleleri mikroimalat

Mikrovasküler ölçekli kanallar (&lt;30 um) ile bir mikroakışkan cihazın bütün iç yüzeyi boyunca kültürün 3B, endotel hücre mono tabakasında için bir yöntem tarif edilmiştir.

Hematolojik Hastalıklarında Mikrovasküler Etkileşimleri Öğrenmenin Endothelialized Mikroakiskan

Fotolitografi tarafından kazınmış ve PDMS imal Mikroakışkan akışı odaları EC disfonksiyonu ve inflamasyon ile ilişkili fonksiyonel sonuçlarını araştırmak için uygulanır. Temsili bir deneyde, diferansiyel kayma gerilmesi yeteneği sitokin aktive AK monolayers için monositik hücre adezyon modüle gösterilmiştir.

On-Chip Endotel İnflamatuar fenotipleme

Tek boyutlu bir kapalı mikro hücrelerin spontan göç incelemek için nicel bir yöntem tarif edilmektedir. Bu yöntem, mikrofabrike kanalları yararlanır ve tek bir deneyde, farklı koşullar altında hücrelerin büyük sayıda göçünü incelemek için kullanılabilir.

Microfabricated Kanallar Hücre Göç Çalışması

Bu yayın entegre elektrotlar transendothelial elektrik direniş (AYLARININ) doğrudan miktar için bir organ-on-chip cihazı imalatı açıklar. Doğrulama, kan - beyin bariyerini bu mikrosıvısal cihazın içinde taklit ve bariyer fonksiyonu izlenir. Elektrot entegrasyon ve doğrudan AYLARININ miktar için sunulan yöntemleri genel olarak geçerlidir.

İmalat ve Organ-on-chip sistemin doğrudan Transendothelial elektrik direncini ölçmek için entegre elektrotlar ile doğrulama

Kanalları polydimethylsiloxane mikrosıvısal aygıt içinde gömülü dikdörtgen olmayan bölümlerin imalatı için çeşitli yöntemler kullanılabilir. Bunların çoğu multistep üretim ve geniş hizalama içerir. Bu yazıda, bir tek adımlı yaklaşım farklı geometrik kesitleri mikrosıvısal kanal imalatı için polydimethylsiloxane sıralı ıslak gravür tarafından bildirilmektedir.

Polydimethylsiloxane mikrosıvısal kanalları sıralı ıslak gravür işlemler tarafından farklı geometrik bölümlerin imalatı tek adımlı yaklaşım

Burada, açıklar gerilebilir, Çift Kanal imalatı, organ çip mikrosıvısal hücre kültür cihazlar organ düzeyi işlevlerine içinde in vitrorecapitulating için bir iletişim kuralı mevcut.

Ölçeklenebilir gerilebilir, Çift kanal, mikrosıvısal Organ cips imalatı

Burada, mikromakine mikroakışkan bir platform kullanarak üç boyutlu basitleştirilmiş ve farklılaşmamış bir cilt modeli oluşturmak için bir protokol sunuyoruz. Paralel akış yaklaşımı, hepsi şırınna pompaları tarafından kontrol edilen, üstteki epitel hücrelerinin tohumlaması için bir dermal bölmenin yerinde birikmesini sağlar.

Mikromakine Mikroakışkan Platformda Basitleştirilmiş Üç Boyutlu Çip Üzerinde Cilt Modeli Üretimi

Bu protokolde, fizyolojik olarak ilgili bir mikrovasküler ortamı yeniden üretebilen ve tüm lökosit adezyon / migrasyon kaskadını yeniden üretebilen bir biyomimetik mikroakışkan testi, inflamatuar hastalıkta lökosit-endotel hücre etkileşimlerini incelemek için kullanılmaktadır.

Enflamasyon Sırasında Lökosit-Endotelyal Hücre Etkileşimini İnceleyen Mikrofizyolojik Bir Sistem

Öğrenin, mikrokanal-on-a-chip platformunda endotelyal hücre kültürü ve sürekli perfüzyon akışı ile mikrovasküler araştırma için 3D geometriyi taklit etme yöntemini. Bu teknik, damarsal biyoloji çalışmalarında yüksek kaliteli gerçek zamanlı görüntüleme sağlar.

Çok derinlemesine Dairesel kesit Endothelialized mikro kanallar-on-a-chip Geliştirme Prosedürü

Daha fazla video keşfet