Name: En fenotip Karakterizasyonu: Niceleme Matters Neden Drosophila Larva Nöromüsküler Junction (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-05-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 41 s
Description: Öğrenin Drosophila larva nöromüsküler bağlantılarında çekirdek morfolojisinin kantitatif analizi için morfometrik yöntemleri. Bu protokol genetik etkileri belirlemeye ve hücre içi organellerin dağılımını incelemeye yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

El yazması hakkındaki anlayışlı yorumları için Dr. Andrea Chai'ye minnettarız. Bu çalışma Wellcome Trust (hibe numarası: Pennetta8920) ve Motor Nöron Hastalığı Derneği (hibe numarası: Pennetta6231) tarafından desteklenmiştir.

1. Deneysel hazırlanması Not: inceleme ve bölümler 2 imüno-histokimya prosedürleri ve 3, ancak modifikasyonlar ile, referanslar 3-6 göre gerçekleştirilir. <ol><li> 1x Fosfat tamponlu tuz (PBS) ve% 0.1 Triton-X-100 ihtiva eden PBS (PBT) hazırlayın. buz üzerinde saklayın. </li><li> Bouin fiksatif hazırlayın (15 Pikrik Asit: 10 Formaldehit: 1 Asetik Asit). Bu reaktif taze olun. </li><li> temiz paslanmaz çelik minutien işaretçilerine ve ince forseps seçin. </li><li> 5 cm Petri kabındaki bir Sylgard diski içeren diseksiyon tabak hazırlayın. </li></ol> Üçüncü evre Larva NMJs 2. Diseksiyon <ol><li> Bir şişe veya ince bir fırça ile bir şişe üçüncü evre larvaları dolaşıp almak ve uzak kalan yiyecek yıkamak için 4 ° C PBS içeren 2 cm Petri kabı içine yerleştirin. </li><li> diseksiyon plaka Sylgard yüzeyinin üstünde bir larva yerleştirin ve positi olduğundan emin oluniki uzunlamasına trakea tüpleri üstünde görünecek şekilde dorsal yüzü oned. </li><li> forseps kullanarak, pimi tutun sağ ağız kanca altında, onun ön sonunda larva pin. mümkün olduğunca larva germek ve arka aşağı son pin. </li><li> plaka duvarları ulaşmak için yeterli PBS tuzlu ekleyin ve tamamen larva batırmayın. </li><li> Aynı genotip diğer larvalar için 2.3 adımları 2.1 prosedürü tekrarlayın. Tek bir 5 cm Petri kabı diseksiyon plaka kolayca 8 larva konaklayabilir. </li><li> Mikro-diseksiyon makas kullanarak, hafifçe dorsal manikür kaldırın ve pin yakın arka ucundaki küçük bir yatay bir kesi yapmak. </li><li> trakea iki boyuna yolları arasındaki orta hat boyunca ön sonuna kadar larvanın tüm yol kesip, kesi içine makas yerleştirin. orta hat kesintileri sadece manikür geçmesine ve kasların ile kesme önlemek için yeterince yüzeysel olduğundan emin olunventral yüzü. </li><li> her bir ucunda, sol ve sağ taraflarında iki çentik kesti. </li><li> ön kesi her iki tarafında iki işaretçilerine koyarak fileto açın. arka ucu ile aynı tekrarlayın. işaretçilerine yerleştirirken, ayrı beden duvarı yaymak için emin olun. </li><li> forseps ve PBS tuz kullanarak iç organları dışarı temizleyin. bozulmamış merkezi sinir sistemini bırakın. Yavaşça tamamen gerilir kadar köşe pimleri ile larva germek ama kaslar bu süreçte yırtık olmadığından emin olun. </li><li> Aynı diseksiyon plaka üzerinde diğer larvalar için aynı diseksiyon işlemi tekrarlayın. </li><li> tüm iç organları kaldırmak için PBS tuzlu su ile üç kez yıkayın. </li><li> Bouin fiksatifi PBS ile değiştirin ve 10 dakika için oda sıcaklığında bırakın. </li><li> PBT ile birkaç kez yıkayın. </li><li> dikkatlice işaretçilerine çıkarın ve immün boyanması için 1.5 ml mikro santrifüj tüpüne şimdi oldukça sert olan tüm hazırlıklarını, aktarın.</li></ol> Kas ve Myonuclei için spesifik antikorlar ile Drosophila NMJs 3. immünohistolojik boyama <ol><li> Hızla PBT larva filetosu durulayın. </li><li> sabit bir ajitasyon altında 2 saat PBT içinde% 10 normal keçi serumu (NGS) ile inkübe edilerek preparatlar bloke eder. </li><li> PBT 5 NGS ve% (1 konsantrasyonda: 500) bir tavşan anti-lamin antikoru ihtiva eden parçalara NMJs bir dizi inkübe: 2 saat ve (1: 500 arasında bir konsantrasyonda) kobay anti-DVAP antikoruyla Oda sıcaklığında ya da gece boyunca 4 ° C&#39;de. Anti-lamin boyama myonuclei konturunu algılayan ise anti-DVAP antikoru çizgili kasları boyar. </li><li> aşan antikorlar kaldırmak için PBT kez hızlı bir şekilde yıkayın. PBT her 15 dakikada bir tampon değiştirerek 2 saat PBT yıkayın. </li><li> PBT 1 ile% 5 NGS ve fluoresan etiketli sekonder antikorları içeren örnekleri inkübe: Oda sıcaklığında 500 seyreltme 2 saat süredir. Aynı örnekler cBir başka kromofor ile konjuge sekonder antikor kullanıldığında, aynı anda birden fazla antikor ile boyanarak tabi. </li><li> ikincil antikorlar çıkarın ve PBT her 15 dakikada tampon değiştirerek 2 saat boyunca PBT yıkayın. </li><li> myonuclei PBS ile numuneleri üç defa yıkamak ve aşağıdaki işlemleri iç leke: <ol><li> PBS içinde 1000 ve sürekli ajitasyon altında 20 dakika boyunca inkübe edilir: 1 bir seyreltme TO-PRO-3 nükleer işaretleyici ekleyin. Bu işaretleyici, bu çalışmada kullanılan, ancak herhangi bir başka ticari olarak temin edilebilir, nükleer bir belirteç olarak da kullanılabilir. </li><li> takmadan önce PBS içinde hızla üç kez yıkayın. </li></ol></li></ol> Slaytlar 4. Montaj Örnekleri <ol><li> 1.5 ml mikro santrifüj tüpüne gelen forseps ile örnekleri Pick up ve bir işlem slayt onları uzandı. </li><li> Mikro-diseksiyon makas kullanarak, baş ve filetolar kuyruk kesilmiş ve iç yüzey yukarı tutmak. </li><li> th hazırlayıne birbirinden yaklaşık 1 cm mesafede temiz bir sürgünün her iki tarafında, selüloz bant üç şerit etrafına sarılarak slayt monte edilebilir. Lamel iki şeridin üzerine yerleştirildikten sonra, bir boşluk örnekleri düzleştirme önlemek olacaktır oluşturulur. yapıların üç boyutlu hacimli kaplamalar yapılacak ise, bu çok önemlidir. </li><li> Üç selüloz bandı şeritler arasındaki bağlantı sürgünün ortasında montaj orta, yaklaşık 20 ul arasında küçük bir damla koyun. </li><li> temiz forseps ile montaj orta yayıldıktan sonra, iç yüzey uydurarak, montaj ortama montaj slayt disseke larva sürükleyin. Dört ya da beş satır onları bağlamaya çalışın. </li><li> Yavaşça montaj slayt üstüne bir kapak kayma bırakın ve herhangi bir hava kabarcığı oluşturulan emin olun. şeffaf tırnak cilası ile slayt mühür. Numuneler görüntüleme önce en az 10 dakika süreyle kurumasını bekleyin. </li></ol> Görüntüleme için 5. Konfokal Ayarları Not: E inverted mikroskop: Bu çalışmada sunulan Görüntüler Ti üzerine entegre edilmiş bir Nikon A1R konfokal ünitesi kullanılarak alınır. Bununla birlikte, 488 nm, 561 nm ve 642 nm ve 3 kanal tespit sisteminin dalga boyu bölgeleri mevcuttur 3 lazer birimlerinin en az bir konfokal mikroskop bu amaç için uygundur. <ol><li> lazerler, dedektör ünitesi, cıva ampul, sahne denetleyici, mikroskop ve PC AÇIN. kontrol yazılımı başlatın ve sahne tutucu slayt sabitleyin. </li><li> görüntüleme hızlı seçin yapmak ve 20X objektif kullanarak örnek üzerinde ilgi alanları (ROI) tüm bölgelerinde işaretlemek için. </li><li> Dikkatle 60X yüksek büyütme objektif lens (60X Planı Apo VC / NA 1.4 YAĞ) için burun salıncak. </li><li> objektif lens üzerine daldırma petrol bir damla koyun ve bilgisayarda XYZ genel bakış penceresinden işaretli ROI birini seçin. </li><li> Aşağıdaki optik ayarlarını kullanarak görüntüleme başlayın: İlk Dikroyik Ayna seçin: 405/488/561/640. Emisyon filtresi kanal 1, kanal 3 uzun geçiş filtresi 650 nm ile kanal 2 ve 642 nm lazer 595/50 emisyon filtresi ile 561 nm lazer nm 525/50 ile 488 nm lazer seçin. </li><li> görüntü toplama başlamadan önce aşağıdaki tarama ayarlarını kullanın: Galvano tarayıcıyı seçin; Tarama yönü: tek yön; Tarama hızı: saniyede 0.5 kare. </li><li> Kanal boşaltma-through önlemek için Kanal seriyi seçin. </li><li> 1 havadar ünitesine pin-hole boyutunu ayarlayın. Tarama ve lazer gücü, algılama kazancını ayarlamak ve piksel doygunluk ve arka plan düzeyi önlemek için her kanal için uygun ofset. </li><li> ROI ve slayt hazırlıkları için tüm voksel boyutu 0.2 x 0.2 x 0.5 mikron 3 kullanılarak z-yığınları elde edin. Görüntüler Dekonvolüsyonun tabi tutulacaktır sonra 0.06 x 0.06 x 0.15 mikron ila 3 voksel boyutunu ayarlayın. </li><li> .nd2 dosya biçimi veya .ics formatında görüntü kaydetmek. </li></ol> Çizgili içinde Çekirdeklerin Arasındaki Mesafe 6. HESAPLAMA60; En Yakın Komşu Analiz Yöntemi ile Kaslar <ol><li> Bu analiz için, kasları görselleştirmek için DVAP antikorlar ile ve lamin antikorlar ve çekirdekleri vurgulamak için bir nükleer işaretleyici ile boyandı larva vücut duvarı kasları görüntüleyen konfokal görüntüleri kullanın. </li><li> Çekirdekleri arasındaki yakın mesafeyi tahmin etmek için, görüntü analiz yazılımı (örneğin, Imaris) ve MeasurementPro modülü içinde Ölçüm Noktaları kullanın. Görüntü analizi için diğer benzer yazılım uygulamaları aynı amaçlar için kullanılabilir. </li><li> konfokal görüntüleri açın. Yazılım simgesine çift tıklayın başlatmak için. Sürükle ve Arenaya konfokal z yığın görüntüleri bırakın. </li><li> Görüntülerde çift tıklayın otomatik olarak menü araç çubuğu simgesinin altında, Aşmak View bunları açmak için <img alt="görüntü 1" src="/files/ftp_upload/53821/53821img1.jpg" /> . Görünüm Alanı, Özellikler Alanı Listesi Nesne ve Nesne: Aşan Görünüm üç ana çalışma alanı panelleri vardır. </li><li> Bir ses görüntü render t oluşturmenü simgesini 3B Görünüm tıklayarak hree kanal görüntü <img alt="görüntü 2" src="/files/ftp_upload/53821/53821img2.jpg" /> . </li><li> Ekle Yeni Ölçüm Noktaları simgesini tıklayın <img alt="görüntü 3" src="/files/ftp_upload/53821/53821img3.jpg" /> itibaren Nesneler araç çubuğu ve Nesne Özellikleri Alanında görünen yaratma sihirbazı izleyin. </li><li> oluşturma sihirbazı ilk Düzen sekmesini seçin ve ardından Özgü Kanal. Nükleer işaretleyici veya çekirdekleri vurgulamak için lamin kanalı birini seçin. </li><li> klavyenizdeki Esc sekmesine basarak seçin moduna işaretçi olarak ayarlayın. </li><li> Görüntünün belirli bir çekirdeği içeren fare tekerleği ile 3D imleç kutusunun boyutunu ayarlayın. Aynı çekirdeği üzerinde Shift tuşunu ve sol fare tıklaması tutarak ölçüm noktası eklemek. </li><li> Önceki adımları yineleyerek aynı kası üzerindeki yakındaki bir çekirdeği üzerinde ikinci noktası ekleyin. Bir çizgi otomatik olarak iki nokta ile ölçülen mesafeye arasındaki çizilir<html> iki çekirdek gösterilir. İki çekirdekleri arasındaki mesafe şimdi sekmesi İstatistik&gt; Ayrıntılı&gt; Uzaktan veri altında Nesne Özellikleri Area istatistiksel değişken olarak kaydedilir. </li><li> Belirli bir çekirdeğini çevreleyen tüm çekirdeklerin için 6.10 adımları 6.6 prosedürü tekrarlayın. </li><li> İstatistikler&gt; tüm toplanan ölçüm noktaları görüntüleme Ayrıntılı&gt; Mesafe verileri, en kısa mesafe belirleyebilirsiniz itibaren. </li><li> Dosya Sekme Ekranında İhracat İstatistikleri tıklayarak <img alt="image 4" src="/files/ftp_upload/53821/53821img4.jpg" /> Nesne Özellikleri Alanı altında bulunan veriler bir tablo üzerinde kaydedilir. </li><li> çevredeki diğer çekirdeklerin ve genotip başına kas liflerinin seçilen bir dizi için aynı işlemi tekrarlayın. </li><li> Bir tablo dosyasına ihraç verileri kullanarak, aşağıdaki denklem kullanılarak kasların tüm M numarası için ortalama en kısa mesafeyi (D ave) hesaplamak: OAD / 53821 / 53821eq1.jpg &quot;/&gt; Di i 0 ila N değişir ve N kas başına analiz çekirdeklerin sayısı, belirli bir çekirdeği i komşu çekirdeğe en kısa mesafedir. j değerlerin toplamıdır = 0 j = m analiz kasların M sayısını gösterir. </li><li> Alternatif olarak, kullanımı Noktalar Oluşturma sihirbazı ve Spotlar Spotlar yakın mesafe yakın komşu çekirdeğine ortalama mesafeyi tahmin etmek. Bu, bir Matlab uzatma modülü gereklidir. <ol><li> Arena ve 3D hacimli görüntü üzerinde belirli bir resme çift tıklayınız gör Alanında görüntülenir. Nesne Oluşturma simgesine tıklayın ve Yeni Noktalar ekleyin <img alt="Resim 5" src="/files/ftp_upload/53821/53821img5.jpg" /> Nesneler araç çubuğundan. </li><li> Nesne Özellikleri Bölgesindeki oluşturma sihirbazı itibaren seçeneği Atla Otomatik Oluşturma, Düzenleme Manuel tıklayın. </li><li> Lamin veya çekirdekleri görüntülemek için nükleer işaretleyici kanal birini seçin. </li><li> lef Shift ve tıklayınGörüntüdeki belirli bir kas bütün çekirdekler t fare düğmesi. Her çekirdeğin üzerine bir nokta belirir. </li><li> Spotlar Spotlar Nesne Özellikleri Alan Araçlar sekmesinin altında listelenen en yakın mesafe seçin. Sonuç modu ve Matlab penceresinin altında seçin Noktalar İstatistik görünür. </li><li> İstatistikler sekmesi altında, detaylı ve daha sonra özel Değerler seçin. Distmin tıklayın ve her çekirdeğin asgari mesafeler değerleri görünür. </li><li> Bir tablo dosyasına veri ihracat ve kas başına bu mesafelerin ortalamasını hesaplar. Belirli bir genotip tüm kaslar için prosedürü tekrarlayın. </li></ol></li></ol> 7. Drosophila Larva Vücut duvarı kasları içinde Çekirdeklerin Şekli belirlenmesi <ol><li> Bu analiz için, lamin ve çekirdekleri görselleştirmek için bir nükleer işaretleyici ile boyandı vücut duvarı kasları konfokal görüntüleri kullanmak. </li><li> myonuclei, ölçü küresellik şeklini değerlendirmek (sur oranı olarak tanımlanmaktadırYüzey çekirdeğinin alan) ya da ellipticity (verilen çekirdekten aynı hacme sahip bir küre, yüzü alanı / basık uzun elipsoitlere ve parçacıklarının) arasında ayrım yapmaktadır. </li><li> daha önce açıklandığı gibi görüntüyü açın. Yeni Yüzeyler ekle Nesneler araç çubuğu simgesini tıklayın <img alt="görüntü 6" src="/files/ftp_upload/53821/53821img6.jpg" /> . </li><li> Nesne Özellikleri Alanı görünen oluşturma sihirbazı olarak, çekirdekleri görüntülemek için Kaynak Channel gibi nükleer işaretleyici boyama seçin. </li><li> eşik olarak seçenek Mutlak Yoğunluk ayarlayın. çekirdeklerin çoğu eşik eğrisinde değerini değiştirerek sorunsuz ve aşırı render gösterdiğinden emin olun. Aynı zamanda, aynı eğrisi kullanılarak bir çekirdeğe delik veya eksik maskenin varlığı önlemek. </li><li> Kullan Filtre aracı yüzey işleme herhangi bir gürültü dışlamak için. Yeni oluşturulan yüzey tabakasının, Split Düzen sekmesinde veya yanlış olduğunu yeniden çekirdekler yüzeyleri Birleştirmendered. </li><li> Bir e-tabloya İhracat İstatistikleri sekmesinin altında mevcut yüzey render çekirdeklerin elipsliği ve küresellik değerleri dosya. </li><li> Circularity (C) C tanımlandığı gibidir Alternatif olarak, çekirdek daireselliğe ölçmek için ImageJ ya da Fiji yazılımı kullanmak <img alt="denklem 2" src="/files/ftp_upload/53821/53821eq2.jpg" /> . sıfıra yaklaşan bir değer giderek uzatılmış şekli gösterir iken birinin değeri mükemmel bir daire temsil eder. </li><li> Menü Görüntüleri&gt; Stacks&gt; Z Projesi z yığınlarının maksimum yoğunluğu projeksiyonları oluşturun. Maksimum Şiddeti olarak ayarlayın projeksiyon tipi. </li><li> kanal bölünmüş ve nükleer işaretleyici kanalını seçin. </li><li> Ana menüde, Görüntü&gt;&gt; Eşik ayarlayın. </li><li> Segment yoğunluğu eşiği ayarlayarak çekirdekleri. Yakın çekirdekler tek bir birim olarak segmente ise,&gt; Süreci Hakkında çekirdekleri kesmek İkili&gt; Havza aracı tıklatın. </li><li> Ana menüden Düzenle&gt; seçin SSeçim&gt; seçim oluşturun. </li><li> &gt; Araçlar&gt; ROI Yöneticisi Analiz menüsünde tıklayarak ROI Yöneticisi seçilen tüm ROI ekleyin. ROI Manager penceresinde Ekle üzerine tıklayın. aynı pencere içinde fazla&gt; bölme seçin. </li><li> Analiz&gt; Set Ölçümler Shape Tanıtıcılar seçin. ROI Manager penceresinde sekmesini tıklayın Ölçün. Bu seçilen tüm çekirdeklerin dairesellik değerlerinin bir listesini görüntüler. </li><li> Buna ek olarak, nükleer hacmini ölçmek alt 7,3-7,7 açıklandığı gibi nükleer işaretleyici boyama kanalını kullanarak yüzey oluşturma sihirbazı takip etmek. </li></ol> Belirli Protein intranüklear Yerelleştirme değerlendirin Drosophila Larvaların vücut duvarı kasları içinde Seçilmiş Çekirdeklerin 8. 3D ses Çizimler <ol><li> Nükleer işaretleyici ile ve lamin ve DVAP için spesifik antikorlar ile boyandı vücut duvarı kasları raporlama konfokal görüntüleri kullanın. </li><li> yazılım ve sel başlatarak görüntüleri açınvb özel çekirdek analiz edilecek. Bu ana menü öğesi Düzen&gt; Kırpma 3D seçerek yapılabilir. </li><li> fıkrasında 7,3-7,7 açıklandığı gibi lamin kanalını kullanarak yüzey oluşturma sihirbazını izleyin. </li><li> Yüzey oluşturulduktan sonra, Nesneler Özellikleri Bölgesindeki Düzenle üzerine tıklayın ve ardından çekirdeğinde sinyali izole etmek için tüm Maske seçin. Bu yeni bir pencere oluşturur. </li><li> Kanal Seç açılır menüden seçin DVAP sinyali. sıfıra Yüzey dışında seçenek Seti Voksellerden tıklayarak çekirdeğin içinde DVAP immün reaktivite sinyalini seçin. Yeni bir maskeli bir kanal oluşturulur ve seçimi için gösterge ayar penceresinde temin edilebilir. </li><li> çekirdeğin içinde sinyalin varlığını görselleştirmek ekle ikonuna Yeni Kırpma Plane tıklayarak bir kontur düzlemi oluşturmak <img alt="görüntü 7" src="/files/ftp_upload/53821/53821img7.jpg" /> Nesneler araç çubuğundan. </li><li> Etkileşimli kırpma açısını ayarlamakdüzlem ve çekirdeğin içinde sinyal dağılımını görselleştirmek için konumu. </li></ol>

<ol><li>Collins, C. A., DiAntonio, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptic+development%3A+insights+from+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Synaptic development: insights from Drosophila.</a> Curr. Opin. Neurobiol. 17 (1), 35-42 (2007).</li>
<li>Fortini, M. E., Skupski, M. P., Boguski, M. S., Hariharan, I. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+survey+of+human+disease+gene+counterparts+in+the+Drosophila+genome%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">A survey of human disease gene counterparts in the Drosophila genome.</a> J. Cell Biol. 150 (2), 23-30 (2000).</li>
<li>Ramachandran, P., Budnik, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+of+Drosophila+larval+body-wall+muscles%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Protoc%22%5BJournal%5D)">Dissection of Drosophila larval body-wall muscles.</a> Cold Spring Harb Protoc. (8), (2010).</li>
<li>Brent, J. R., Werner, K. M., McCabe, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+larval+NMJ+dissection%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Drosophila larval NMJ dissection.</a> JoVE. (24), (2009).</li>
<li>Brent, J., Werner, K., McCabe, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+larval+NMJ+immunohistochemistry%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Drosophila larval NMJ immunohistochemistry.</a> JoVE. (25), (2009).</li>
<li>Ramachandran, P., Budnik, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunocytochemical+staining+of+Drosophila+larval+body-wall+muscles%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Protoc%22%5BJournal%5D)">Immunocytochemical staining of Drosophila larval body-wall muscles.</a> Cold Spring Harb Protoc. (8), (2010).</li>
<li>Ling, S. C., Polymenidou, M., Cleveland, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Converging+mechanisms+in+ALS+and+FTD%3A+disrupted+RNA+and+protein+homeostasis%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Converging mechanisms in ALS and FTD: disrupted RNA and protein homeostasis.</a> Neuron. 79 (3), 416-438 (2013).</li>
<li>Nishimura, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mutation+in+the+vesicle-trafficking+protein+VAPB+causes+late-onset+spinal+muscular+atrophy+and+amyotrophic+lateral+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Hum+Genet%22%5BJournal%5D)">A mutation in the vesicle-trafficking protein VAPB causes late-onset spinal muscular atrophy and amyotrophic lateral sclerosis.</a> Am J Hum Genet. 75 (5), 822-831 (2004).</li>
<li>Chen, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+the+properties+of+a+novel+mutation+in+VAPB+in+familial+amyotrophic+lateral+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Characterization of the properties of a novel mutation in VAPB in familial amyotrophic lateral sclerosis.</a> J Biol Chem. 285 (51), 40266-40281 (2010).</li>
<li>Funke, A. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+P56S+mutation+in+the+VAPB+gene+is+not+due+to+a+single+founder%3A+the+first+European+case%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Genet%22%5BJournal%5D)">The P56S mutation in the VAPB gene is not due to a single founder: the first European case.</a> Clin Genet. 77 (3), 302-303 (2010).</li>
<li>SOD1,ANG,VAPB,TARDBP, and FUS mutations in familial amyotrophic lateral sclerosis: genotype-phenotype correlations. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22J+Med.+Genet%22">J Med. Genet</a>. Millecamps, S., et al. 47 (8), 554-560 (2010).</li>
<li>Landers, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+VAPB+deletion+variant+and+exclusion+of+VAPB+mutations+in+familial+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">New VAPB deletion variant and exclusion of VAPB mutations in familial ALS.</a> Neurology. 70 (14), 1179-1185 (2008).</li>
<li>Van Blitterswijk, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VAPB+and+C9orf72+mutations+in+1+familial+amyotrophic+lateral+sclerosis+patient%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Aging%22%5BJournal%5D)">VAPB and C9orf72 mutations in 1 familial amyotrophic lateral sclerosis patient.</a> Neurobiol Aging. 33 (12), 2951-2954 (2012).</li>
<li>Brand, A. H., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+gene+expression+as+a+means+of+altering+cell+fates+and+generating+dominant+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes.</a> Development. 118 (2), 401-415 (1993).</li>
<li>Budnik, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+synapse+structure+and+function+by+the+Drosophila+tumor+suppressor+gene+dlg%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Regulation of synapse structure and function by the Drosophila tumor suppressor gene dlg.</a> Neuron. 17 (4), 627-640 (1996).</li>
<li>Sanhueza, M., Zechini, L., Gillespie, T., Pennetta, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gain-of-function+mutations+in+the+ALS8+causative+gene+VAPB+have+detrimental+effects+on+neurons+and+muscles%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Open%22%5BJournal%5D)">Gain-of-function mutations in the ALS8 causative gene VAPB have detrimental effects on neurons and muscles.</a> Biol Open. 3 (1), 59-71 (2014).</li>
<li>Worman, H. J., Ostlund, C., Wang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diseases+of+the+nuclear+envelope%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Perspect+Biol%22%5BJournal%5D)">Diseases of the nuclear envelope.</a> Cold Spring Harb Perspect Biol. 2 (2), a000760(2010).</li>
<li>Liu, G. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progressive+degeneration+of+human+neural+stem+cells+caused+by+pathogenic+LRRK2%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Progressive degeneration of human neural stem cells caused by pathogenic LRRK2.</a> Nature. 491 (7425), 603-607 (2012).</li>
<li>Pennetta, G., Hiesinger, P. R., Fabian-Fine, R., Meinertzhagen, I. A., Bellen, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+VAP-33A+directs+bouton+formation+at+neuromuscular+junctions+in+a+dosage-dependent+manner%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Drosophila VAP-33A directs bouton formation at neuromuscular junctions in a dosage-dependent manner.</a> Neuron. 35 (2), 291-306 (2002).</li>
<li>Fisher, P. A., Berrios, M., Blobel, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+a+proteinaceous+subnuclear+fraction+composed+of+nuclear+matrix%2C+peripheral+lamina%2C+and+nuclear+pore+complexes+from+embryos+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of a proteinaceous subnuclear fraction composed of nuclear matrix, peripheral lamina, and nuclear pore complexes from embryos of Drosophila melanogaster.</a> J Cell Biol. 92 (3), 674-686 (1982).</li>
<li>Smith, D. E., Fisher, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification%2C+developmental+regulation%2C+and+response+to+heat+shock+of+two+antigenically+related+forms+of+a+major+nuclear+envelope+protein+in+Drosophila+embryos%3A+application+of+an+improved+method+for+affinity+purification+of+antibodies+using+polypeptides+immobilized+on+nitrocellulose+blots%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Identification, developmental regulation, and response to heat shock of two antigenically related forms of a major nuclear envelope protein in Drosophila embryos: application of an improved method for affinity purification of antibodies using polypeptides immobilized on nitrocellulose blots.</a> J Cell Biol. 99 (1), 20-28 (1984).</li>
<li>Smith, D. E., Gruenbaum, Y., Berrios, M., Fisher, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biosynthesis+and+interconversion+of+Drosophila+nuclear+lamin+isoforms+during+normal+growth+and+in+response+to+heat+shock%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Biosynthesis and interconversion of Drosophila nuclear lamin isoforms during normal growth and in response to heat shock.</a> J Cell Biol. 105 (2), 771-790 (1987).</li>
<li>Puckelwartz, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruption+of+nesprin-1+produces+an+Emery+Dreifuss+muscular+dystrophy-like+phenotype+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Mol+Genet%22%5BJournal%5D)">Disruption of nesprin-1 produces an Emery Dreifuss muscular dystrophy-like phenotype in mice.</a> Hum Mol Genet. 18 (4), 607-620 (2009).</li>
<li>Tsujikawa, M., Omori, Y., Biyanwila, J., Malicki, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanism+of+positioning+the+cell+nucleus+in+vertebrate+photoreceptors%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Mechanism of positioning the cell nucleus in vertebrate photoreceptors.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 104 (37), 14819-14824 (2007).</li>
<li>Westermann, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+fusion+and+fission+in+cell+life+and+death%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial fusion and fission in cell life and death.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 11 (12), 872-884 (2010).</li>
<li>Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIH+Image+to+ImageJ%3A+25+years+of+image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis.</a> Nat Methods. 9 (7), 671-675 (2012).</li>
<li>Schindelin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fiji%3A+an+open-source+platform+for+biological-image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Fiji: an open-source platform for biological-image analysis.</a> Nat Methods. 9 (7), 676-682 (2012).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Geçmişte, içinde ve deney grupları arasında morfolojik farklılıklar nadiren dikkate alınmıştır. Ancak, nicel yöntemlerin uygulanması artık morfolojisi ve anatomik formları matematiksel tanımı karşılaştırmalı çalışmalar norm hesaplanır haline gelmektedir. kantitatif kullanımı belirli hücresel süreçleri üzerinde genetik manipülasyon etkilerini değerlendirirken analizleri, morfolojik değişiklikleri saptamak için kabiliyetinin artırılması ve bu değişiklikler açıklanan hangi ile doğruluğunu artıran umut tutun. Ayrıca, nicel verilerin istatistiksel analizi bize fenotipleri arasında gözlenen farklılıkların anlamlı olup olmadığını değerlendirmek için izin verir. çizgili kaslarda, çekirdeklerin ayrı bir yuvarlak yapı sergiler ve eşit kas lifi boyunca dağıtılır. kurulması ve boyut, şekil ve çekirdeklerin mimarisini koruyarak moleküler mekanizmalar bilinmemekle birlikte, bu nükleer özellikler muhtemel t vardıro kas fonksiyonunu kontrol edilmesinde temel bir rol oynar. Nitekim, birkaç Miyopatiler kasların içinde çekirdeklerin morfoloji ve konumunu düzenleyen genlerdeki mutasyonların neden olur. şekil ve bir hücre içinde çekirdeklerin dağılım fonksiyonel önemi kas ile sınırlı değildir. Giderek artan kanıtlar, nükleer kusurlar da Parkinson hastalığı gibi nörodejeneratif hastalıkların 18,24 ile ilişkili olduğunu göstermektedir. Ayrıca, bu morfoloji, boyut ve endoplazmik retikulum ve fonksiyonel sonuçlar doğurabilir mitokondri dahil olmak üzere diğer organellerin hücre içi dağıtımını takdir başlıyor. Örneğin, mitokondriyal morfolojisi değişiklikler gibi optik atrofi tip-1 (OPA1) ve Charcot-Marie-Tooth tip 2A nöropati 25 gibi nörolojik bozukluklar ile ilişkili. Bu önemli süreçleri altında yatan moleküler mekanizmaların sürecinde yardımcı olmak için, biz yüksek çözünürlüklü konfokal birleştirmek için teklifgörüntüleme yazılımı ve morfometrik veri nicel genetik manipülasyonlar kas liflerinin içinde çekirdeklerin şekil, boyut ve konumunu nasıl etkileyebileceğini değerlendirmek için analiz eder. Drosophila larvaları nöromüsküler sistemin son derece basmakalıp doğa ile güç ve birlikte Drosophila genetiği çok yönlülüğü Larvaların NMJ analizler bu tür için özellikle uygun bir deneysel model olun. Larva NMJs, fenotipik analizi NMJs bir sayıda aynı sinek içinde incelenebilir ve hatta aynı tanımlanabilir NMJ farklı genotipler 3,4 sinekler arasında karşılaştırılabilir doğru bir morfometrik sağlayan tek bir sinaps çözünürlükte gerçekleştirilebilir. Drosophila larva NMJ nükleer pozisyon, şekil ve boyut Fenotipik karakterizasyon kaslarının içinde kasları ve çekirdekler vurgulamak antikorlar ile disseke NMJs immün gerçekleştirerek başlar. Protokolde Thi özetlenenödevi, myonuclei bütün kas leke DVAP özel çekirdek iç ve sahip antikorlar vurgulama nükleer işaretleyici ile, lamin, çekirdek zarfına bir göstergesi karşı poliklonal antikorlar ile lekelendi. Bu deneylerde kullanılan lamin antikorlar nazik Paul Fisher 19-22 temin edilmiştir, ancak anti-lamin antikorların alternatif kaynaklar kullanılabilir. Buna ek olarak, çekirdek zarfı için özel diğer antikorlar bir takım ticari olarak temin edilebilir. kasları, anti-aktin ya da anti-tubulin antikor ile boyanarak görünür olabilir süre Son olarak, DAPI ve propidyum iyodür nükleer belirteçler de mevcuttur. Bu deneysel prosedürde kullanılan dışındaki antikorlar kullanılırsa, immün protokol sabitleme koşulları ve yeni antikorlar için çalışan konsantrasyonları optimize edilmesi gerekecektir ekstra-adımlar gerektirir. hacim render analiz edilmesi gerekir, özellikle bu protokol, bir kritik adım, the slaytta numunelerin montajı. Bu durumda, slayt ve örnekler ezilmiş değildir, böylece lamel arasında aralayıcılar dahil etmek çok önemlidir. lamel her iki sürgünün sarılı selüloz bandı üç bant ara parçalar yapmak için kolay bir yol göstermektedir. ImageJ 2D görüntüleri için kullanılan iken, 3D çok kanallı görüntü çoğu bu makalede sunulan analizleri, çünkü onun içi durumu Imaris kullanılarak yapılmıştır. Bununla birlikte, herhangi bir diğer benzer ticari yazılım paketi bu uygulamalar için de kullanılabilir. Konfokal görüntüleri analiz için kullanılabilir (örneğin, ImageJ, CellProfiler, Vaa3D, Icy, KNIME ve diğerleri için) birçok açık kaynak ve ticari yazılım platformları bulunmaktadır. ImageJ 26, Fiji 27 olarak bilinen NIH ya da daha gelişmiş versiyonu ücretsiz yazılım, dünya çapında görüntüleme haberleşme için kullanılabilir ithalat filtreleri, makro ve eklentileri çok sayıda varty. Bu eklentileri çoğu bir dilim-dilim yan şekilde bilgi işlem odaklandık. Çok kanallı 3D görüntülerin görüntülenmesi ve analiz için uygun eklentiler vardır. Ancak, genellikle belirli bir görev için tasarlanmış ve kullanıcıların kendi ihtiyaçlarına bu eklentileri uzatmak veya uyarlamak gerekebilir. Öte yandan, ticari platformlar nispeten deneyimsiz kullanıcıları hedef ve genellikle inanılmaz bir hızla görüntü işleme görevleri kolaylığı kullanımı, geniş kapsama odaklandık. Bu protokolde belirtilen nicel fenotipik analizi ile birlikte deneysel prosedür, organel morfolojisi ve hücre içindeki dağılımını kontrol moleküler mekanizmaların yardımcı olabilir. Ancak, bu yaklaşım, belirli bir uç noktada bu süreçleri analiz bariz bir sınırlama vardır. morfoloji ve organellerin dağılımı kontrol süreci çok dinamik olması ve sadece farklı hücre ty arasında değişmektedir muhtemelengelişimsel ya da fizyolojik durumuna bağlı olarak aynı hücre içinde pes değil, aynı zamanda. Bu analizin bir başka uygulama organel morfolojisi ve pozisyon değişiklikleri zamanla izlenecek izin zaman atlamalı görüntüleme ile temsil edilecektir.

Kalitatif analiz, çoğu deneysel çalışmanın odağını, büyük fenotipik etkilere yol açan genetik manipülasyonların incelenmesine veya nicelemeye uygun olmayan fenotiplere, örneğin yokluk/mevcudiyete sınırlar. Fenotiplerin nicelleştirilmesi genellikle yapılmaz ve bir fenotipik grubun üyeleri içinde bulunan varyasyonlar dikkate alınmaz. Ek olarak, morfolojilerin matematiksel tanımları olmadan, ince ölçekli fenotipik değişikliklerin genetik olarak indüklenen değişikliklerin sonucu olup olmadığını veya gözlemlenen değişikliklerin sadece rastgele dalgalanmalardan kaynaklanıp kaynaklanmadığını belirlemek zor olabilir. 
Gen bozulmasından kaynaklanan fenotipik kusurların doğru ve tarafsız bir analizi için, nicel metodolojilerin daha geleneksel nitel yaklaşımlara eşlik etmesi gerektiğini öneriyoruz. Fenotiplerin kantitatif değerlendirmesi, içsel morfolojik ve fonksiyonel plastisiteleri nedeniyle yüksek derecede değişkenlik gösteren sinapslar gibi yapılar için özellikle faydalıdır. En aşina olduğumuz araştırma alanlarına, yani Drosophila larva nöromüsküler kavşaklarına (NMJ'ler) uygulanan kantitatif analiz örneklerini seçtik. Bununla birlikte, kavramlar ve ilkeler diğer deneysel sistemler için de eşit derecede geçerlidir. 
Larva NMJ, yapısının oldukça kalıplaşmış doğası nedeniyle sinaptik gelişimi ve işlevi incelemek için mükemmel bir model sistemdir. Larva nöromüsküler sisteminin her bir hemi segmenti, postsinaptik hedef kasları ile sinaptik temaslar oluşturan 32 tanımlanabilir motor nöron içerir. Her yarım segment ayrıca, kütikülün1 iç yüzeyine bağlı çok çekirdekli lifler olarak görülebilen sabit sayıda kas içerir. Larva nöromüsküler sistemini kullanmanın bir başka avantajı, Drosophila genetiğinin gücü ve çok yönlülüğüdür, bu da bir dizi mutant alelin üretilmesine ve gen ekspresyonunu zaman ve doku kısıtlı bir şekilde değiştirme olasılığına kolayca izin verir. Son olarak, bir hastalığa neden olan insan genlerinin %75'i Drosophila2'de evrimsel olarak korunmuş bir ortologa sahiptir. Gerçekten de, sinekler ve insanlar arasındaki tüm genetik yollar korunur. Bu nedenle, Drosophila larva nöromüsküler sistemi, amyotrofik lateral skleroz (ALS) dahil olmak üzere bir dizi insan hastalığının altında yatan moleküler mekanizmaları aydınlatmak için çok popüler bir deneysel modeldir1. 
Burada, biyo-görüntüleme teknikleri ve doğru morfometrik analizlerle birlikte birkaç güvenilir immüno-histokimyasal belirteçin mevcudiyetinin, önemli bir fonksiyonel rol oynaması muhtemel anatomik özellikleri tanımlayabileceğini gösteriyoruz3,4,5. Kantitatif analizlere uygun hücresel süreçler arasında, çekirdekler gibi hücre içi yapıların şekil, boyut ve pozisyonundaki değişikliklere odaklanıyoruz. Bütün bunlar hakkında çok az şey bildiğimiz süreçlerdir.
Önümüzdeki on yıllarda moleküler genetikçiler için zorluk, çok ince fenotipik kusurlar üreten genetik mutasyonların etkisini analiz ederek mevcut bilgimizi genişletmek olacaktır. Araştırmacıların genetik mutasyonların etkilerini titizlikle keşfetmelerine izin veren nicel metodolojiler, özellikle az anlaşılmış hücresel süreçler için, genotiplerin fenotiplerle nasıl ilişkili olduğuna dair daha kapsamlı bir anlayış sağlayabilir.

<table><tbody><tr><td>Mikro Forseps 0,3 mm x 0,25 mm</td><td>İnce Bilim Aletleri&nbsp;</td><td>11030-12</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard diseksiyon plakları&nbsp;</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>76103</td><td>Önceden tartılmış elastomer tabanı kürleme maddesi ile karıştırın. Karışımı 5 cm'lik bir Petri kabına koyun. 60 ° C'de kürleyelim; En az 24 saat için C</td></tr><tr><td>Paslanmaz / Çelik Minutien Pimleri 0.1 mm çapında</td><td>Güzel Bilim Aletleri&nbsp;</td><td>26002-10</td><td></td></tr><tr><td>Mikrodiseksiyon makası (ultra ince)&nbsp;</td><td>Güzel Bilim Araçları&nbsp;</td><td>15200-00</td><td></td></tr><tr><td>1x PBS (Fosfat Tamponlu Salin). Bileşim: 3 mM NaH2PO4, 7 mM Na2HPO4, 130 mM NaCl, pH 7</td><td></td><td></td><td>NaH2PO4 (SIGMA-S8282), Na2HPO4 (SIGMA-S7907), NaCl (SIGMA-S7653)</td></tr><tr><td>Bouin'in Çözümü. Bileşim: Pikrik Asit, Formaldehit, Asetik Asit (15:10:1)</td><td></td><td></td><td>Pikrik Asit (SIGMA 197378), Formaldehit (F8775), Asetik Asit (SIGMA-1005706)</td></tr><tr><td>1x PBT (Tritonlu Fosfat Tamponlu Salin). 1x PBS +% 0.1 Triton&nbsp;</td><td></td><td></td><td>Triton-X100. SIGMA-T8787</td></tr><tr><td>Normal Keçi Serumu&nbsp;</td><td>SIGMA</td><td>G9023</td><td></td></tr><tr><td>Kobay anti-DVAP antikoru</td><td></td><td></td><td>Dr. Giuseppa Pennetta (Edinburgh Üniversitesi, İngiltere) tarafından sağlanmıştır. % 5 NGS</td></tr><tr><td>Tavşan anti-HRP (Yaban turpu peroksidaz)</td> içinde 1:200 seyreltmede <td>kullanınJackson ImmunoResearch</td><td>123-065-021</td> Dr. Paul Fisher (Stony Brook'taki New York Eyalet Üniversitesi) tarafından sağlanan% 5 NGS Tavşan anti-Lamin antikoru <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td> içeren PBT'de 1:500 seyreltmede kullanın<td>. % 5 NGS içeren PBT'de 1:500 seyreltmede kullanın;</td></tr><tr><td>TO-PRO-3</td><td>Moleküler Problar</td><td>T3605</td><td></td></tr><tr><td>Keçi anti-tavşan antikoru, Alexa Fluor488, konjuge</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>bs-295G-A555-BSS</td><td>%5 NGS içeren PBT'de 1:500 seyreltmede kullanın</td></tr><tr><td>Keçi anti-kobay IgG antikoru, Cy3, konjuge</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>bs-0358G-Cy3-BSS</td> %5 NGS Vectashield montaj ortamı <td>içeren PBT'de 1:500 seyreltmede kullanın</td></tr><tr><td> floresan</td><td>vektör laboratuvarları</td><td>H-1000</td><td></td></tr></tbody></table>

en fenotip karakterizasyonu: niceleme matters neden<em&gt; drosophila</em&gt; larva nöromüsküler junction

Why Quantification Matters: Characterization of Phenotypes at the Drosophila Larval Neuromuscular Junction

morfolojilerinden üzerinde çalışmaların çoğu belirli genler ve genetik yolların bozulması nasıl etkilendiğini anatomik özelliklerin niteliksel açıklamaları güveniyor. Genetik manipülasyon fenotipik etkilerin bir dizi üretmek ve varyasyonların da kontrol grubu içindeki bireyler arasında görülen, ancak nicel Tanımlar nadiren yapılır. delil Yükselen morfolojisi, boyut ve organellerin konumu hücre fonksiyonu ve sağkalım daha önce underappreciated, henüz temel bir rol oynadığını göstermektedir. Burada Drosophila larva nöromüsküler bileşke (NMJ) de fenotipleri kantitatif analizleri gerçekleştirmek için adım adım yönergeler sağlar. Biz biyo-görüntüleme teknikleri ve morfometrik spesifik hücresel süreçlere genetik mutasyonların etkilerini incelemek için analizler ile birlikte birçok güvenilir immunohistokimyasal işaretleri kullanmak. Özellikle, morfoloji, boyut ve n durumunu etkileyen fenotipleri nitel analiz odakuclei Drosophila larvaların çizgili kasların içinde. Drosophila larva NMJ sağlık ve hastalık hem yapısını ve kas sinir sistemi işlevini, altında yatan moleküler mekanizmaları araştırmak için değerli bir deneysel model. Bununla birlikte, burada tarif yöntemleri gibi diğer sistemlere uzatılabilir.

ALS özellikle çizgili kaslar 7 ilerleyici ve ölümcül bir felç yol açan motor nöronların etkileyen dejeneratif bir hastalıktır. İnsan VAMP-ilişkili protein B (hVAPB) missense mutasyonlar ALS tip 08-12 Ağustos olmak üzere motor nöron hastalıklarının bir dizi neden olur. HVAPB genindeki bir yanlış anlamlı bir mutasyon (V234I) en son insanlarda 13 tipik ALS bir olguda saptanmıştır. Patojenik potansiyeli değerlendirmek için, hastalığa neden olan bir mutasyon (DVAP-V260I) taşıyan hVAPB Drosophila ortolog DVAP ifade eden transgenik sinekler oluşturulur. Bu transgen ifadesi UAS / GAL4 sistemi ve kas-özel bir sürücü BG57-Gal4 14,15 kullanarak kas hedeflenmiştir. DVAP-V260I transgenik ekspresyonu etkisi karşılaştırılmıştır ve vahşi tip DVAP proteininin 16 farklı düzeylerde eksprese iki transgenlerin (DVAP-WT1 ve DVAP-WT2), bu tezat edilmiştir. More özellikle DVAP immünoreaktivitesinde artış DVAP-WT2 hattı için kontrollere göre daha yüksek 2,2 kat iken, aynı sinyalin 16 DVAP-V260I ve DVAP-WT1 sergi karşılaştırılabilir ve daha düşük seviyeleri. Nükleer değişiklikler yaşlanma ve Parkinson hastalığı dahil olmak üzere çeşitli 17,18 nörodejeneratif hastalıklarla ilişkilendirilmiştir. ALS8 için sinek modeli nükleer mimarisi, konumu ve büyüklüğü değişiklikleri sergiler olmadığını değerlendirmek için, bir nükleer işareti ve nükleer zarf görselleştiren bir anti-lamin antikoru 19-22, uygun genotiplerin çizgili kaslar içinde çekirdekleri boyandı. Kasları vurgulamak için bir DVAP özgü antikor aynı numune (Şekil 1) ilave edildi. Konfokal görüntüler toplandı ve ayrıntılı morfometrik analizleri bir görüntü analiz yazılımı kullanılarak yapıldı. Kontrol kaslarda, çekirdekler eşit kas boyunca dağıtılmış bulunmuşturkas ifade DVAP-V260I ve DVAP-WT ise elyaf çekirdekler yakın ilişkili kümeleri (Şekil 1) dağıtmak için bir eğilim gösterirler. Her genotip kas lifleri boyunca çekirdeklerin dağılımının kantitatif değerlendirmesini gerçekleştirmek için en yakın komşu analizi yapılmıştır. Bir yakın komşu analizi ilk verilen bir çekirdeğin merkezi ve diğer her çevreleyen çekirdeğin merkezi arasındaki mesafeyi ölçerek her çekirdeğe en yakın komşu tanımlar. Bu prosedür daha sonra kas lifi boyunca her çekirdekleri için tekrarlanır. Son olarak, belirli bir kas içinde çekirdekleri arasındaki en kısa mesafe, her çekirdek ve onun en yakın komşularının kısa mesafelerde ortalaması alınarak hesaplanır. (Şekil 2A - C). kontrol ile karşılaştırıldığında, DVAP-V260I transgeni ya da vahşi-tip protein aşırı ifade transgenlerin herhangi birini ifade eden kaslarıBunun sonucu olarak, çekirdekler yakın kümeler halinde ilişkili gibi görünmektedir, çekirdek arasındaki ortalama en kısa mesafe belirgin bir azalma bu vb. Alel DVAP-V260I neden ALS etkisi güçlü DVAP-WT2 transgen (Şekil 1 ve Şekil 2D) kullanılmış olsa bile, doğal tipte proteinin aşırı ekspresyonu ile ilişkili daha fazla şiddetlidir. DVAP-V260I ya DVAP-WT, ya transgenlerin aşırı ifadesi aynı zamanda, uzatılmış bir yapı (Şekil 1) deforme çekirdeklerde elde nükleer mimari ciddi bir bozulma gösterir. Bu yapısal sapmaları dairesellik formül Cı tarafından tanımlandığı ImageJ yazılımı kullanılarak nicelleştirilmiştir <img alt="denklem 3" src="/files/ftp_upload/53821/53821eq3.jpg" /> C = 1 mükemmel bir daire temsil ve C = 0 sonsuz uzun çokgen her çekirdeğin uzunluğu oranı genişliğini ölçmek hangi. Contr içindeTransgenik mutantlar döngüsellik kaybı ile sonuçlanan şeklinde bir değişiklik, bu değere (Şekil 1 ve Şekil 3) önemli bir sapma neden olurken farklı bir yuvarlak sergileyen ol çekirdekleri, C 1&#39;e eşittir. Ayrıca ALS neden alel DVAP-WT transgenlerin (Şekil 4) ile karşılaştırıldığında, bu bir fenotipi uyarmak için daha etkili olduğu görülmektedir, ancak, aynı transgenlerin sentezlenmesi kaslarda, çekirdekler, kontroller ile karşılaştırıldığında belirgin bir büyütülmüş çekirdek hacmi gösterdikleri bulundu. Hemen hemen tüm nörodejeneratif hastalıklar, patojenik proteini içeren agregaların hücre birikimi ile karakterize edilir. Bu 3 boyutlu rekonstrüksiyon ve çekirdek hacmi kaplamalar yapılmış ve kas mutan transgen eksprese eden ya da vahşi-tip protein aşırı ifade olarak DVAP immüno-reaktivite kümeleri meydana getirdiği görülmüştürnd bazıları da çekirdeklerinde (Şekil 5) içine lokalize olduğunu. Bunun aksine, kontrol NMJs olarak DVAP immüno-reaktivite zayıf kas lifi boyunca dağıtılır ve nükleus 16 hariç tutulmuştur. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/53821/53821fig1.jpg" /> . Şekil 1: DVAP-wt ya da DVAP-260I transgenlerin eksprese çizgili kaslar olan myonuclei Konfokal görüntüler (A) BG57-Gal4 / + kontrol, (B) BG57; DVAP-V260I, (C) BG57; DVAP-WT1 ve (D) BG57; belirtilen transgenlerin ifade DVAP-WT2 kasları DVAP (kırmızı sinyal), lamin (yeşil sinyal) için spesifik ve çekirdekleri (mavi sinyali) görselleştirmek için bir nükleer özel işaretleyici ile antikorlar ile boyandı. Ölçek çubuğu = 30 mikron <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53821/53821fig1large.jpg" target="_blank">bir görüntülemek için tıklayınız</a>Bu rakamın daha büyük bir versiyonu. <img alt="şekil 2" src="/files/ftp_upload/53821/53821fig2.jpg" /> Şekil 2: En yakın komşu analizi çekirdeği ve tek en yakın komşusu arasındaki ortalama mesafeyi belirlemek için (B) DVAP-WT2 transgeni aşın ifade eden kaslarda değişmiş nükleer konumlandırma gösteren Temsilcisi sonuçları (A) kontrol grubu ile karşılaştırıldığında.. Belirtilen genotiplerinin kaslarda ortalama çekirdek mesafe (C) &#39;de formül kullanılarak tahmin edilmiştir ve veri (D)&#39; de rapor edilmiştir. Larvaların NMJs DVAP (kırmızı sinyal) lamin (yeşil) için özel antikorlar ile nükleer işaretleyici (mavi sinyali) ile boyanır. Yıldız istatistiksel olarak anlamlı belirtir. *** P &lt;0.001, ** p &lt;0.01. İstatistiksel Bu deney analizi ve tek yönlü ANOVA testi aşağıda bildirilen tüm deneyler kullanıldı ve bir Tukey MULTIP içingenotipler arasındaki farklar ANOVA testi ile anlamlı bulunmuştur zaman le karşılaştırma testi post-hoc test olarak uygulanmıştır. Hata çubukları SEM&#39;i temsil etmektedir. Ölçek çubuğu = 30 mikron <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53821/53821fig2large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/53821/53821fig3.jpg" /> Şekil 3:. Nükleer hacminin hesaplanmasında temsilcisi adımları gösteren Görüntüler (A) yüzey oluşturma sihirbazı kullanılarak segmente çekirdekleri gösteren bir temsili resim. Görüntülerin sınırında Çekirdekleri göz ardı edildi. Çevredeki DVAP boyama sonrası nükleer DVAP sinyali gösteren (B) Görüntü nükleer işaretleyici kanalda oluşturulan yüzey kullanarak maskelenmiş edilmiştir. (C) yüzey tabakası ilave parametrelerin bilgi sağlarNükleer hacim ve küresellik dahil. Çeşitli genotiplerin nükleer birimde (D) Veri. Yıldız istatistiksel olarak anlamlı belirtir. Dissected NMJs önleyici DVAP antikorları (kırmızı sinyal), anti-lamin antikorlar (yeşil sinyali) ve nükleer işaretleyici (mavi sinyali) ile boyanmıştır. *** P &lt;0.001, ** p &lt;0.01. Hata çubukları SEM&#39;i temsil etmektedir. Ölçek çubuğu = 30 mikron <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53821/53821fig3large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <img alt="Şekil 4," src="/files/ftp_upload/53821/53821fig4.jpg" /> Şekil 4: Görüntüler ImageJ nükleer şekil tahmininde temsilcisi adımları gösteren. &#160;&#160; görüntülerin maksimum yoğunluk projeksiyon kaslar içinde çekirdeklerin daireselliğe tahmin etmek ImageJ kullanılarak analiz edildi. (A) yoğunluk projeksiyonu temsili bir örneği,protokolün adım 7.9 olarak üç kanal resmin. Kanallar bölünmüş olduğu protokol ve nükleer işaretleyici kanalının adım 7.10 gösteren (B) Görüntü seçilir. ImageJ segmente çekirdekler ve ROI yöneticisi eklentisi yoğunluğu eşik uyguladıktan sonra, tüm ilgi çekici çekirdekleri seçilebilir ve şekil Şekil tanımlayıcıları ile ölçülen gösteren (C) bir temsilci görüntü (7.117.15 adımlar). Çeşitli genotiplerinin döngüsellik (D) miktarının belirlenmesi. Yeşil çekirdekleri özetliyor ve lamin boyanma tekabül ederken larva NMJs üzerinde, kırmızı sinyal DVAP boyama gösterir. Her çekirdeğin iç yüzünden nükleer işaretleyici ile lekelenmeye karşı mavi etiketli. Yıldız istatistiksel olarak anlamlı belirtir. *** P &lt;0.001, ** p &lt;0.01. Hata çubukları SEM&#39;i temsil etmektedir. Ölçek çubuğu = 30 mikron <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53821/53821fig4large.jpg" target="_blank">onu tıklayınız</a>E bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için. <img alt="Şekil 5," src="/files/ftp_upload/53821/53821fig5.jpg" /> Şekil 5: myonuclei hacmi kaplamalar oluşturulmasında belirli adımları gösteren görüntüler. 3D yoğunluğunu gösteren (A) Görüntü DVAP protein (kırmızı), lamin (yeşil) ve DNA markeri (mavi) ile boyandı kasların görünümü harmanlanmış. (B) segmentine çekirdekleri lamin kanalı kullanılarak oluşturulan bir yüzey tabakası temsil Görüntü. (C) yüzey tabakası seçilen çekirdeğin dışında DVAP sinyalini maskelemek için kullanılan edildiği bir çekirdek temsil Görüntü. sarı renkle vurgulanmış görüntüye eklenmiş bir kırpma uçağı. görünüm ve pozisyon açısını etkileşimli çekirdeğinde sinyallerin dağılımını görselleştirmek için ayarlanabilir. (D), nükleer yüzey tabakası oluşturulur USI enine kesit bir görünümü rapor bir resimng lamin kanalı maskesiz DVAP ve nükleer işaretleyici sinyalleri ile birleşti. (E ve F) aynı çekirdeğin ek kesitli hacmi render. Ölçek çubuğu = 10 mikron <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53821/53821fig5large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Hücre içi organellerin morfolojisi, büyüklüğü ve konumu evrimsel olarak korunur ve işlevlerini doğrudan etkiliyor gibi görünmektedir. Bu süreçlerin altında yatan moleküler mekanizmaları anlamak, modern biyolojinin önemli bir hedefi haline gelmiştir. Burada, bu çalışmaların nicel tekniklerin uygulanmasıyla nasıl kolaylaştırılabileceğini gösteriyoruz.

En fenotip Karakterizasyonu: Niceleme Matters Neden<em&gt; Drosophila</em&gt; Larva Nöromüsküler Junction

Most studies on morphogenesis rely on qualitative descriptions of how anatomical traits are affected by the disruption of specific genes and genetic ...

Bu metodolojinin genel amacı, anatomik özelliklerin kantitatif analizlerinin nasıl yapılacağını göstermektir. Drosophila larvalarının çizgili kasları ile çekirdeklerin morfolojisini, boyutunu ve konumunu etkileyen fenotiplerin nicelleştirilmesi gösterilmiştir. Hücre içi organellerin morfolojisini, büyüklüğünü ve dağılımını kontrol eden moleküler mekanizmayı anlamak, modern biyolojinin en önemli sorularından biridir.Geçmişte, deney grupları arasındaki ve içindeki morfolojik farklılıklar sadece nitel analize tabi tutulurdu. Burada, kaslar içindeki çekirdeklerin boyutunu, şeklini ve dağılımını kontrol eden genleri tanımlamak için drosophila genetiğini morfometrik kantitatif analizle birleştiren kantitatif analizde öneriyoruz. Prosedürün gösterilmesine yardımcı olmak, laboratuvarımdan bir yüksek lisans öğrencisi olan Leire Ledahawski olacak.Larva nöromüsküler kavşaklarını metin protokolüne göre diseksiyon ve boyama işleminden sonra, numuneleri 1.5 mililitrelik mikrosantrifüj tüpünden çıkarmak için forseps kullanın ve bunları bir işleme slaytına koyun. Mikro diseksiyon makası kullanarak filetoların başını ve kuyruğunu kesin ve iç yüzeylerini yukarıda tutun. Şimdi, bir santimetre aralıklarla temiz bir sürgünün etrafına üç şerit selüloz bant sararak bir montaj sürgüsü hazırlayın.Kapak kızağını, numuneleri düzleştirmemesi için sağlanan bu boşluğun üzerine koyun. Ardından, selüloz bant şeritleri arasına yaklaşık 20 mikrolitre montaj ortamı bırakın ve ortamı temiz forseps ile etrafına yayın. Şimdi fazla dokuyu hazırlıklardan çıkarın.Parçalanmış larvaları işleme slaytından montaj slaytına ve iç yüzeyi yukarıda tutarak montaj ortamına sürükleyin. Ardından, havanın sıkışmasını önlemek için dikkatli olarak nazikçe bir kapak fişi uygulayın. Daha sonra slaytı şeffaf oje ile kapatın ve görüntülemeden önce slaytın en az 10 dakika kurumasını bekleyin.Bu analiz için, DeVAP antikorları, lamin antikorları ve bir nükleer belirteç ile boyanmış larva vücut duvarı kaslarını gösteren konfokal görüntüler kullanın. Ardından konfokal Z yığını görüntülerini arenaya sürükleyip bırakın. Bir araç çubuğu simgesiyle erişilen Surpass görünümünde otomatik olarak açmak için resimlere çift tıklayın.Surpass görünümünün üç ana çalışma alanı paneli vardır. Görünüm alanı, Nesne Listesi ve Nesne Özellikleri alanı. Ardından, hacim olarak oluşturulmuş üç kanallı bir görüntü oluşturmak için 3D Görünüm simgesine tıklayın.Ardından Nesneler araç çubuğundan Yeni Ölçü Noktaları Ekle'yi seçin ve Nesne Özellikleri alanındaki Oluşturma Sihirbazı'nı izleyin. Önce Düzenle sekmesini seçin ve ardından Belirli Kanal'dan çekirdekleri vurgulamak için nükleer işaretleyiciyi veya lamin kanalını seçin. Ardından, Escape sekmesine basarak işaretçiyi Seçim moduna ayarlayın ve ardından görüntüde belirli bir çekirdeği içerecek şekilde fare tekerleğiyle 3B imleç kutusunun boyutunu ayarlayın.Shift tuşunu basılı tutarak ve aynı çekirdeğe sol tıklayarak bir ölçüm noktası ekleyin. Ardından, aynı tekniği kullanarak aynı kasın yakındaki bir çekirdeğine ikinci noktayı ekleyin. İki nokta arasına otomatik olarak bir çizgi çizilecek ve iki çekirdek arasındaki mesafe istatistiksel bir değişken olarak görüntülenecek ve kaydedilecektir.Belirli bir çekirdeği çevreleyen tüm çekirdekler için prosedürü tekrarlayın. Ardından, İstatistik Ayrıntılı Mesafe Verileri altında bulunan toplanan tüm ölçüm noktalarından en kısa mesafeyi seçin. Nesne Özellikleri alanı altında, Sekme Görüntüsüyle İstatistikleri Dosyaya Aktar seçeneğini belirleyin.Bu, verileri bir elektronik tabloya kaydeder. Bu analiz için, çekirdeği görselleştirmek için lamin ve bir nükleer işaretleyici ile boyanmış vücut duvarı kaslarının konfokal görüntülerini kullanın. Myonuclei'nin şeklini değerlendirmek için, nükleer yüzey alanını aynı hacme sahip bir küreninkiyle karşılaştıran küreselliklerini ölçün.Alternatif olarak, prolate, oblate veya elipsoidleri ve sferoidleri ayırt eden eliptikliği ölçün. Görüntüyü daha önce açıklandığı gibi açın. Ardından, Nesneler araç çubuğu simgesine tıklayın Yeni Yüzeyler Ekle.Nesne Özellikleri alanında görünen Oluşturma Sihirbazı'nda, çekirdekleri görüntülemek için kaynak kanal olarak nükleer işaretleyici boyamayı seçin. Mutlak Yoğunluk seçeneğini eşik olarak ayarlayın. Eşik eğrisindeki değeri değiştirerek çekirdeklerin çoğunun düzgün, aşırı yüklenmemiş bir işleme gösterdiğinden emin olun.Aynı zamanda, herhangi bir çekirdeğin deliklerinin veya eksik maskelerinin varlığından kaçının. Ardından, yüzey oluşturmadaki paraziti gidermek için Filtre aracını kullanın. Yeni oluşturulan yüzey katmanının Düzenle sekmesi altında, yanlış görüntülenen çekirdek yüzeylerini bölün.Başka bir seçenek, yanlış işlenmiş çekirdek yüzeylerini birleştirmektir. Yüzey oluşturulan çekirdeklerin eliptiklik ve küresellik değerleri İstatistikler sekmesi altında mevcuttur. Bu verileri analiz için dışa aktarın.Bu protokol için, nükleer bir belirteç ve lamin ve DeVAP'a özgü antikorlarla boyanmış vücut duvarı kaslarını bildiren konfokal görüntüler kullanın. Ana Menü öğesinden ilgilendiğiniz görüntüyü açın Düzenle ve ardından 3D'yi Kırp. Önceki bölümde anlatıldığı gibi lamin kanalını kullanarak Yüzey Oluşturma Sihirbazı'nı izleyin.Yüzey oluşturulduktan sonra, Nesne Özellikleri alanında Düzenle'ye tıklayın ve çekirdeğin içindeki bir sinyali izole etmek için Tümünü Maskele'yi seçin. Ardından, DeVAP sinyalini seçin. Kanal Seç açılır menüsünden, Set Voxels Ouside the Surface seçeneğine tıklayın ve bu değeri sıfır yapın.Bu, Görüntü Ayarlaması penceresinde kullanılabilen yeni bir maskelenmiş kanal oluşturur. Çekirdeğin içindeki sinyalin varlığını görselleştirmek için, Nesneler araç çubuğundan Yeni Kırpma Düzlemi Ekle simgesine tıklayarak bir kontur düzlemi oluşturun. Ardından, sinyalin çekirdek içindeki dağılımını görselleştirmek için kırpma düzleminin açısını ve konumunu etkileşimli olarak ayarlayın.İnsan ile ilişkili protein B'deki yanlış anlamlı mutasyonlar ALS patogenezinde rol oynar. Açıklanan yöntem kullanılarak, mutasyon V2601'e neden olan ALS'yi barındıran sinek ortolog geni DeVAP'ı eksprese eden çizgili kaslar, karşılaştırılabilir vahşi tip DeVAP seviyelerini veya daha yüksek vahşi tip DeVAP seviyelerini ifade eden kontrollerle karşılaştırıldı. Kas lifleri boyunca çekirdeklerin dağılımını değerlendirmek için en yakın komşu analizi kullanıldı.Mutasyona uğramış DeVAP transgenini eksprese eden kontrol kasları veya vahşi tip proteini aşırı eksprese eden kaslarla karşılaştırıldığında, ilgilenilen mutasyon, çekirdekler arasındaki ortalama en kısa mesafede dramatik bir azalmaya neden oldu. Daha sonra, çekirdeğin küreselliği incelendi. Çekirdek aralığını azaltan transgenlerin aynı zamanda çekirdek hacmini de büyüttüğü bulundu.Çekirdeklerin 3D rekonstrüksiyonları ve hacim görüntüleri, ilgilenilen mutasyonu ifade eden kasların çekirdeklerde lokalize kümeler oluşturduğunu ortaya çıkardı. Bu yöntem aynı zamanda mitokondri gibi diğer organellerle ilişkili morfolojik özelliklerin kantitatif analizine de genişletilebilir. Nükleer mimari, konum ve boyuttaki değişiklikler yaşlanma ve Parkinson hastalığı ve ALS gibi bir dizi nörodejeneratif bozuklukla ilişkilendirilmiştir.Dispraksisin altında yatan moleküler mekanizmaların anlaşılması, etkili terapötik müdahaleler için yeni farmakolojik hedeflerin tanımlanmasına yol açabilir.

why-quantification-matters-characterization-phenotypes-at-drosophila

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Drosophila Larvaların NMJ Diseksiyon

Bu protokol disseke Drosophila larva immünohistokimya nasıl gerçekleştirileceği göstermektedir.

Drosophila Larvaların NMJ İmmünohistokimya

Burada Drosophila larva nöromüsküler kavşakta sinaptik iletim ölçmek için elektrofizyolojik yöntemler açıklanmaktadır. Uyarılmış serbest motor nöron aksonları uyararak yapay olarak başlatılan ve iletim yoluyla NMJ kas uyarılmış postsinaptik tepki ölçülebilir.

Drosophila Larva NMJ Synaptic Potansiyeller kayıt için Elektrofizyolojik Yöntemler

Aktif Bölgeleri Diseksiyon ve Görüntüleme Drosophila Nöromüsküler Junction

Drosophila nöromüsküler kavşağı (NMJ), sinapsların morfolojisini ve işlevini incelemek için bir model olarak kullanılır. Bu video, araştırmacıların NMJ'yi karakterize etmek için ölçtüğü önemli özellikleri açıklamaktadır. Örnek protokol, nicelemeyi otomatik olarak gerçekleştirebilen bir yazılımı gösterir.

Drosophila Nöromüsküler Kavşak (NMJ) Miktar Tayini: Sinaptik Morfoloji ve Fonksiyonu Değerlendirmek İçin Bir Yöntem

Bu video, Drosophila'nın dorsal longitudinal kaslarındaki nöromüsküler kavşakların yapısal bütünlüğünü değerlendirmek için bir protokolü göstermektedir. Prosedür, nöronların ve kasların iki farklı antikorla boyanmasını ve mutant ve vahşi tip sinekler arasındaki floresan modellerinin karşılaştırılmasını içerir. Mutant sineklerde nöronal lekelenmede bir azalma, kas yapısı bozulmadan kalırken nörodejenerasyonu gösterir.

Drosophila'da Dorsal Longitudinal Kas Nöromüsküler Kavşaklarının Yapısal Bütünlüğünün Değerlendirilmesi

Kaynak: Marinello, M., et al. Kombine konfokal ve süper çözünürlüklü mikroskopi ile farelerde nöromüsküler kavşakların karakterizasyonu. J. Vis. Uzm. (2021)Bu video, presinaptik ve postsinaptik yapıları görselleştirmek ve analiz etmek için konfokal ve süper çözünürlüklü mikroskopi kullanılarak sıçan kas dokusundaki nöromüsküler kavşakların hazırlanmasını, immüno-boyanmasını ve görüntülenmesini göstermektedir.

Kombine Konfokal ve Süper Çözünürlüklü Mikroskopi ile Farelerde Nöromüsküler Kavşakların Karakterizasyonu

İki görüntü analiz algoritmaları, "Drosophila NMJ Morfometri" ve "Drosophila NMJ Bouton Morfometri" otomatik Drosophila nöromüsküler kavşakta (NMJ) dokuz morfolojik özelliklerini ölçmek için, yaratıldı.

Yüksek throughput ve Çok parametrik Nicelik için iki Algoritmalar<em&gt; Drosophila</em&gt; Nöromusküler Junction Morfoloji

Bu çalışmada, sinaptik boyut ve lokalizasyon, kas Morfoloji ve marochondrial şekil nicel ölçümler serbestçe kullanılabilir görüntü işleme araçları kullanarak C. elegans özetliyor. Bu yaklaşım, C. elegans 'da gelecekteki çalışmaların, genetik mutasyonların bir sonucu olarak doku ve organel yapısal değişikliklerin kapsamını nicel olarak karşılaştırmasına olanak sağlar.

Caenorhabditis elegans hücresel yapıları ve organelle morfoloji eğitim için nicel yaklaşımlar

Bu protokol, SMA ve ColQ ile ilişkili CMS'nin fare modellerindeki patolojik değişiklikleri ölçmek için kullanılan kombine konfokal ve STED mikroskopisi ile nöromüsküler kavşakların morfometrik analizi için bir yöntemi açıklamaktadır.

Farelerde Nöromüsküler Kavşakların Kombine Konfokal ve Süper Redüksiyonlu Mikroskopi ile Karakterizasyonu

Burada, nöromüsküler kavşaklar ve kas hücrelerindeki mikrotübül ağlarını görselleştirmek için ayrıntılı bir protokol sunuyoruz. Drosophila melanogaster'in güçlü genetik araçlarıyla birleştiğinde, bu protokol, sinir sistemindeki mikrotübül ağı düzenleyici proteinlerin rolü için genetik taramayı ve mikrotübül dinamiği analizini büyük ölçüde kolaylaştırır.

Mikrotübül Ağını Görselleştirmek için Drosophila Larva Nöromüsküler Kavşak ve Kas Hücrelerini Kullanma

Öğrenin Drosophila larva nöromüsküler bağlantılarında çekirdek morfolojisinin kantitatif analizi için morfometrik yöntemleri. Bu protokol genetik etkileri belirlemeye ve hücre içi organellerin dağılımını incelemeye yardımcı olur.

En fenotip Karakterizasyonu: Niceleme Matters Neden

Daha fazla video keşfet