Name: Pasif kullanımı Netlik Fare Merkezi Sinir Sistemi Optik Takas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 28 s
Description: Öğrenin, fare merkezi sinir sisteminde pasif CLARITY optik temizleme protokolünü kullanarak 3D morfoloji ve bağlantı analizi yapmayı. Bu yöntem tutarlı ve maliyet etkin sonuçlar sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma cömertçe Nörolojik Bozukluklar ve İnme (NIH / NINDS) hibe 1R01NS086981 ve Conrad N. Hilton Vakfı Sağlık / Ulusal Enstitüsü Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından desteklenmiştir. Biz konfokal mikroskobu ile onların çok değerli yardım için Dr Laurent Bentolila ve Dr Matthew Schibler teşekkür ederim. Biz AÇIKLIK forumu (http://forum.claritytechniques.org) katkıda bulunmuş olanlar teşekkür ederim. Biz özellikle bu büyüleyici tekniğini öğretmek onun laboratuvarını açılması için Dr. Karl Deisseroth teşekkür ederim. Yazarlar Beyin Haritalama Tıbbi Araştırma Örgütü, Beyin Haritalama Destekleme Vakfı, Pierson-Lovelace Vakfı, Ahmanson Vakfı, Capital Group Şirketleri Hayırsever Vakfı, William M. ve Linda R. Dietel Hayırsever Fonu ve Northstar Fonundan cömert destek için minnettarız . Bu yayında bildirilen araştırma da kısmen Ulusal Araştırma Kaynakları Merkezi tarafından ve Ulusun Başkanlığınca desteklenenÖdül numaraları C06RR012169, C06RR015431 ve S10OD011939 altında Sağlık al Enstitüleri. Içeriği sadece yazarların sorumluluğundadır ve mutlaka Ulusal Sağlık Enstitüleri resmi görüşlerini temsil etmemektedir.

Tüm deneyler Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) kurallarına uygun olarak yapıldı. Thy1 YFP, PLP-EGFP PV-tdTomato farenin Bu deneyler için kullanılmıştır, ama floresan proteinleri eksprese bir farenin başarılı bir şekilde temizlenir ve görüntülenebilir. 1. Doku Hazırlanması Dikkat: Paraformaldehyde (PFA) ve akrilamid toksik ve tahriş edicidir. Davlumbaz ve uygun kişisel koruyucu ekipman (laboratuvar önlüğü, eldiven ve göz koruması) bu reaktifleri kullanılarak deneyler. <ol><li> (- 3 dakika ~ 2) solunum sona erene kadar izofluran ~ 1 ml ötenazi odasında hayvan kurban. </li><li> (- 10 dakika 5), kan dokulardan temizlenir kadar ~ 5 ml ayarlanmış bir peristaltik pompa kullanımı / dak intrakardiyak, 4 ° C de perfüzyon çözeltisi (Tablo 1) ile fare perfüze edilmesi için. </li><li> Fiksatif çözüm için perfüzat değiştirin (Tablo 1)(- 10 dakika 5), ​​4 ° C&#39;de, boyun ve kuyruk anlamlı katılaşana dek. </li><li> perfüzyon End ve hayvan başını kesmek. Dikkatle ilk kafatası çevreleyen bağ dokusu çıkarılması ve sonra da kafatasının ventral yüzeyinden kemik kaldırılması ve 20 de açıklandığı gibi, (Şekil 1a) beynini kaldırarak kafatası beyin teşrih. Not: beyincik flocculonodular lobları ve koku ampuller çevreleyen kemiğin çıkarılması için özel bakım verir. <ol><li> Nazikçe omurilik ve vertebral kolon arasında ince bir keskin makas ucu sokarak ve 21 de açıklandığı gibi, uzak bireysel omurga segmentleri keserek vertebra sütundan omurilik parçalara ayır. </li></ol></li><li> plastik bir fare beyin matrisi içine yerleştirerek ve bir matris bıçak ile orta hat boyunca keserek beyin Hemisect. </li><li> santrifüj küvet 50 ml ayırmak için her yarımkürede ve omurilik ekleES ~ hidrojel çözeltisi (Tablo 1) 40 ml. Bu noktada ileri kapaktan alüminyum folyo ile tüpler sonraki tüm adımları sırasında fluorophores korumak için. </li><li> yumuşak 7 gün boyunca (~ 30 rpm) çalkalayarak 4 ° C&#39;de hidrojel örneğini içeren tüp inkübe edin. </li></ol> 2. Polimerizasyon <ol><li> Santrifüj tüpü içinde ~ hidrojelin 25 ml numune ve koruyucu, ~ hidrojelin 25 mi atın. </li><li> kapağı çıkarmadan ve kurutucu kavanoza santrifüj tüpü yerleştirilmesi ve bir vakum kavanozu bağlayarak örnek oksilenlendirilmesi. çözüm ve form kabarcıklar çıkmaya çözünmüş gazlar izin için en az 10 dakika süreyle vakum uygulamak. Yavaşça kabarcıklarını çıkarmak için sallayın. </li><li> 3 dakika - 2 üzerinde% 100 azot gazı ile desiccator kavanoza vakum değiştirin. basıncı (kurutucu kavanozun üst açılabilir kez) eşitleyen sonra, hızlı bir şekilde oksijen reintroduction önlemek için tüp kap. </li><li> PolimerPolimerizasyon işlemi tamamlanana kadar, 3 saat için 37 ° C su banyosu içinde örnek tüpü yerleştirerek hidrojel ize. Polimerize hidrojel jel benzeri bir kıvam (Şekil 1b) alacak. Not: üst polimerleşmemiş hidrojel az miktarda kabul edilebilir. </li><li> Daha sonra, santrifüj tüpüne gelen polimerize örneği kaldırmak örnekten fazla hidrojel kesip bir spatula kullanın. </li><li> silip bir tüy bırakmayan üzerinde örnek yerleştirerek ve yavaşça örnek üzerinde polimerize hidrojel, sadece ince bir tabaka geride bırakarak, sürtünme ve üzerinde doku yuvarlayarak kalan hidrojel çıkarın. </li></ol> 3. Lipit Kaldırma Not: Lipid temizlenir doku kırılgan, dikkatli olun. tüp boşaltırken örnek kaybetmemek için bir hücre süzgeç kullanın. Ayrıca, örnek kırılma indisini uyumlu hale işlemi sırasında ters olabilir şişen, ancak, temizleme işlemi boyunca şişer. Dikkat: Sodium dodesil sülfat (SDS) ve borik asit tahriş edicidir. Davlumbaz ve uygun kişisel koruyucu ekipman (laboratuvar önlüğü, eldiven ve göz koruması) ile onları kullanan deneyler. <ol><li> Temiz bir 50 ml santrifüj tüpüne polimerize örnek aktarın ve tampon (Tablo 1) temizleme 45 ilave edin. hafifçe çalkalanarak 45 ° C (~ 30 rpm) inkübe edilir. kimyasal atık içine kullanılan takas tampon dökülen ve taze takas tampon ~ 45 ml ekleyerek ilk 7 gün boyunca günde tampon değiştirin. florofor korumak için alüminyum folyo ile kaplanmış numunelerin içeren santrifüj tüplerini muhafaza edin. </li><li> 3 gün - ilk 7 gün sonra, her 2 40 ° C ve döviz takas tamponu de örnek kuluçkaya yatmaktadır. Tüm lipidler çözünmüş ve doku şeffaflık (Şekil 1c) ulaşıncaya kadar takas devam edin. Bir fare beyin yarımkürede 6 hafta ve 2 - - Bir omurilik için 4 hafta Bu 4 olacak. </li><li> Doku temizlendikten sonra, aktarmakYeni bir 50 ml santrifüj tüpüne numune ve kalıntı SDS kaldırmak için 24 saat boyunca hafif bir çalkalama (~ 30 rpm) 40 ° C&#39;de PBST (Tablo 1) 4 kez yıkayın. </li></ol> 4. Moleküler Boyama Dikkat: 4 &#39;, 6-Diamidino-2-phenylindole dihidroklorür (DAPI) tahriş edici ve davlumbaz ve uygun kişisel koruyucu ekipman (laboratuvar önlüğü, eldiven ve göz koruması) ile yapılmalıdır kullanan herhangi deneyler olduğunu. <ol><li> Temiz bir 15 ml santrifüj tüpüne örnek transferi ve 1 x PBST içinde 1 ug / ml DAPI, pH 7.5 ile doldurun. 24 saat oda sıcaklığında (RT) enkübe edilir. florofor korumak için alüminyum folyo ile kaplanmış numunelerin içeren santrifüj tüplerini muhafaza edin. </li><li> en az 6 saat / yıkama için oda sıcaklığında PBST içinde 3 kez yıkanır. </li></ol> 5. Refraktif İndeks Eşleştirme Dikkat: sh 2,2&#39;-Thiodiethanol (TDE) tahriş edicidir ve herhangi deneyler onu kullananDavlumbaz ve uygun kişisel koruyucu ekipman (laboratuvar önlüğü, eldiven ve göz koruması) ile yapılabilir ould. <ol><li> Temiz bir 15 ml santrifüj tüpüne örnek aktarın ve% 30 1 x PBS içinde (hac / hac) TDE, pH 7.5 ile doldurun. 24 saat boyunca hafifçe çalkalanarak 40 ° C (~ 30 rpm) inkübe edilir. </li><li> 1 x PBS, pH 7.5 içinde% 63 (h / h) TDE Exchange% 30 TDE. yumuşak, 24 saat boyunca çalkalanarak 40 ° C&#39;de inkübe edin. Not: Örnek, yaklaşık orijinal boyutuna geri çekilmek olacaktır. </li><li> düz ve temiz bir yüzey üzerine numunenin kalınlığından sadece biraz daha düzgün bir çapa sahip bir silindirin içine yeniden bir yapışkan parça döndürün. </li><li> açık uçlu daire yeniden kullanılabilir yapışkan silindiri Lay (~ üst kısmında küçük bir açıklığı olan 25 mm iç çap) 40 mm cam alt çanak. düzeltmeler yapılması gerekiyorsa, cam silindir kaldırmak ve bir jilet ile kesti. </li><li> ile yeniden yapıştırıcı ile cam arasında bir sızdırmazlık oluşturmak için bir P1000 pipet kullanınsilindirin dış kenarı etrafında yuvarlayarak. </li><li> Yeri ~ 100 ul% 63 cam tabak üzerine TDE ve yeniden yapıştırıcı daire içinde cam yüzeyini kapsayacak şekilde yayıldı. </li><li> Bir spatula ile dikkatlice kabarcıkları oluşturmak için özen çemberin ortasında numuneyi. </li><li> hemen ardından tekrar kullanılabilir yapıştırıcı üzerinde 40 mm yuvarlak cam kapak yerleştirin, doğrudan numune üzerine% 63 TDE başka 100 ul pipetle. </li><li> cam kapak örneği ile temas yapmış kadar indeksi, orta ve iki elin yüzük parmağı kullanarak, dikkatli dairenin çevresinde basın. </li><li> Yavaş yavaş bir yüzeye karşı duran dik konuma cam alt yemek getirmek Çözelti en küçük açıklığı ulaşana kadar daha sonra bir pipet yardımıyla% 63 TDE ekleyin. ücretsiz bir çözüm camına damla kalmaması pipet kapalı kuru silin bir tüy bırakmayan kullanın. odasında kabarcıkları önlemek için, pipet tüm yol boş asla. </li><li> içinküçük açma, daire içine ve kapalı bir odasını oluşturmak için silikon elastomer ekleyin. o görüntüleme önce kurumaları için 5 dakika bekleyin. </li></ol> 6. Mikroskopi Dikkat: konfokal, tek düzlem aydınlatma ve ışık levha mikroskopi kullanılan lazerler çok güçlü ve körlüğe neden olabilir. lazerler kullanan herhangi deneyler geniş eğitimden sonra ve büyük bir dikkatle ve uygun göz koruması ile yapılmalıdır. <ol><li> Bir lazer tarama konfokal mikroskop sahnede iç numune ile görüntüleme odasına yerleştirin. </li><li> görüntüleme yazılımı açın (Malzeme Tablo). Argon uyarma lazer açmak için, daha sonra programın lazer simgesinin üstündeki yapılandırma sekmesini tıklatın. lazer güç ve% 30 slayt ölçekli taşımak için argon yanındaki kutuyu işaretleyin. işaretçi yavaşça seçilen pozisyona ısınmak gözlemleyin. <ol><li> üstündeki acquire sekmesine dönün. Büyük kutusuna &quot;Işın Yolu Ayarları &amp;# 34; / Yük gitmek kutusu ayarı kaydetmek ve görüntü YFP (527 nm) için uygun bir dalga boyu kanalı seçmek için açılır menüyü seçin. </li></ol></li><li> kanal ayarları kutusunun altında: &quot;Mevcut nesne objektif&quot; etiketli kırmızı köprü bularak görüntüleme için uygun hedefleri seçin. sekmesini tıklayarak mevcut tüm hedefleri açılır ve bir seçim taret otomatik olarak dönecektir. <ol><li> Kullanım amaçları (örn., 10X), büyük bir çalışma mesafesi ile (doku kalınlığından daha büyük, yansıması için, örneğin 11 mm) ve geniş bir sayısal açıklık (örn., 0.3) düzlem resim çözünürlüğü en üst düzeye çıkarmak ve en aza indirmek için optik kesit kalınlığı. </li></ol></li><li> 1024 x 1,024 &quot;biçim&quot; denilen toplama matriks ayarlamak için pencereyi, ya da objektif lateral çözünürlük sınırı için uygun bir değer: &quot;çözünürlük XY&quot; açık, açılır menüler sol sütun üzerinde. (Mümkün olduğunca düşük yakınlaştırma faktörünü ayarlamak gibi., 10,7). </li><li> Aynı pencerede, buna göre bireysel olarak etiketli menüleri aşağı bırakarak 8 hat ortalama ve 1 çerçeve ortalama parametreleri ayarlayın. hızlı elde edilmesi için yüksek bir sinyal-gürültü oranı ve küçük değerler için büyük değerler kullanın. Not: 8 hat ortalamaları ve 1 kare ortalama yaklaşık 4 saat içinde bir fare beyin yarımkürede yüksek kaliteli görüntüler elde edecektir. </li><li> sahne kontrollerini kullanarak örnek bulun. temsili bir alan görünür sonra, kazanç ve ofset ayarlayın. kazanç ve doku tipi, fluorophores dayalı ölçüde değişecektir ofset ve / veya anatomik özellik görüntülü Not:. YFP için kazanç için 780 760 den ve -1.0 ofset için -1.5 değerleri ayarlayın. </li><li> &quot;Karo tarama&quot; seçin ve ilgi bölgenin sınırlarını belirleyin. z-yığının Set alt ve üst sınırları elde edilecek. Amaç optik bölüm çözünürlük sınırına dayalı optik bölümün kalınlığı ayarlayın. Not: Bir amaç enoptik bölüm çözünürlük sınırı öncelikle sayısal açıklık ile tanımlanır. otomatik olarak objektif bir değer uygun olan hesaplar en mikroskop kontrol yazılımı kullanılmaktadır. 0.3 sayısal diyafram ile 10X objektif için bu yaklaşık 11 mikron olacaktır. </li><li> edinimi başlatın. Not: Bu, birden çok saat sürebilir. </li><li> özel ilgi bölgelerinden daha yüksek büyütme hedefleri kullanarak yüksek çözünürlüklü görüntüler toplayın. </li></ol>

<ol><li>Micheva, K. D., Smith, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Array+tomography%3A+a+new+tool+for+imaging+the+molecular+architecture+and+ultrastructure+of+neural+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Array tomography: a new tool for imaging the molecular architecture and ultrastructure of neural circuits.</a> Neuron. 55, 25-36 (2007).</li>
<li>Kleinfeld, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+automated+histology+in+the+pursuit+of+connectomes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Large-scale automated histology in the pursuit of connectomes.</a> J Neurosci. 31, 16125-16138 (2011).</li>
<li>MacKenzie-Graham, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+multimodal%2C+multidimensional+atlas+of+the+C57BL%2F6J+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Anat%22%5BJournal%5D)">A multimodal, multidimensional atlas of the C57BL/6J mouse brain.</a> J Anat. 204, 93-102 (2004).</li>
<li>Denk, W., Svoboda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photon+upmanship%3A+why+multiphoton+imaging+is+more+than+a+gimmick%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Photon upmanship: why multiphoton imaging is more than a gimmick.</a> Neuron. 18, 351-357 (1997).</li>
<li>Denk, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomical+and+functional+imaging+of+neurons+using+2-photon+laser+scanning+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Anatomical and functional imaging of neurons using 2-photon laser scanning microscopy.</a> J Neurosci Methods. 54, 151-162 (1994).</li>
<li>Zipfel, W. R., Williams, R. M., Webb, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonlinear+magic%3A+multiphoton+microscopy+in+the+biosciences%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Nonlinear magic: multiphoton microscopy in the biosciences.</a> Nat Biotechnol. 21, 1369-1377 (2003).</li>
<li>Helmchen, F., Denk, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deep+tissue+two-photon+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Deep tissue two-photon microscopy.</a> Nat Methods. 2, 932-940 (2005).</li>
<li>Theer, P., Denk, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+fundamental+imaging-depth+limit+in+two-photon+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Opt+Soc+Am+A+Opt+Image+Sci.+Vis%22%5BJournal%5D)">On the fundamental imaging-depth limit in two-photon microscopy.</a> J Opt Soc Am A Opt Image Sci. Vis. 23, 3139-3149 (2006).</li>
<li>Dodt, H. U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultramicroscopy%3A+three-dimensional+visualization+of+neuronal+networks+in+the+whole+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Ultramicroscopy: three-dimensional visualization of neuronal networks in the whole mouse brain.</a> Nat Methods. 4, 331-336 (2007).</li>
<li>Erturk, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+imaging+of+solvent-cleared+organs+using+3DISCO%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional imaging of solvent-cleared organs using 3DISCO.</a> Nat Protoc. 7, 1983-1995 (2012).</li>
<li>Hama, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scale%3A+a+chemical+approach+for+fluorescence+imaging+and+reconstruction+of+transparent+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Scale: a chemical approach for fluorescence imaging and reconstruction of transparent mouse brain.</a> Nat Neurosci. 14, 1481-1488 (2011).</li>
<li>Ke, M. T., Fujimoto, S., Imai, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SeeDB%3A+a+simple+and+morphology-preserving+optical+clearing+agent+for+neuronal+circuit+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">SeeDB: a simple and morphology-preserving optical clearing agent for neuronal circuit reconstruction.</a> Nat Neurosci. 16, 1154-1161 (2013).</li>
<li>Susaki, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-brain+imaging+with+single-cell+resolution+using+chemical+cocktails+and+computational+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Whole-brain imaging with single-cell resolution using chemical cocktails and computational analysis.</a> Cell. 157, 726-739 (2014).</li>
<li>Chung, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+and+molecular+interrogation+of+intact+biological+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Structural and molecular interrogation of intact biological systems.</a> Nature. 497, 332-337 (2013).</li>
<li>Spence, R. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bringing+CLARITY+to+gray+matter+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroimage%22%5BJournal%5D)">Bringing CLARITY to gray matter atrophy.</a> Neuroimage. 101, 625-632 (2014).</li>
<li>Tomer, R., Ye, L., Hsueh, B., Deisseroth, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advanced+CLARITY+for+rapid+and+high-resolution+imaging+of+intact+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Advanced CLARITY for rapid and high-resolution imaging of intact tissues.</a> Nat Protoc. 9, 1682-1697 (2014).</li>
<li>Yang, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-cell+phenotyping+within+transparent+intact+tissue+through+whole-body+clearing%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Single-cell phenotyping within transparent intact tissue through whole-body clearing.</a> Cell. 158, 945-958 (2014).</li>
<li>Costantini, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+versatile+clearing+agent+for+multi-modal+brain+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">A versatile clearing agent for multi-modal brain imaging.</a> Sci Rep. 5, 9808(2015).</li>
<li>Zheng, H., Rinaman, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simplified+CLARITY+for+visualizing+immunofluorescence+labeling+in+the+developing+rat+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Struct+Funct%22%5BJournal%5D)">Simplified CLARITY for visualizing immunofluorescence labeling in the developing rat brain.</a> Brain Struct Funct. , (2015).</li>
<li>Parra, S. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiphoton+microscopy+of+cleared+mouse+brain+expressing+YFP%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Multiphoton microscopy of cleared mouse brain expressing YFP.</a> J Vis Exp. (67), e3848(2012).</li>
<li>Weinger, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-photon+imaging+of+cellular+dynamics+in+the+mouse+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Viz+Exp%22%5BJournal%5D)">Two-photon imaging of cellular dynamics in the mouse spinal cord.</a> J Viz Exp. (96), e52580(2015).</li>
<li>Hama, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ScaleS%3A+an+optical+clearing+palette+for+biological+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">ScaleS: an optical clearing palette for biological imaging.</a> Nat Neurosci. 18, 1518-1529 (2015).</li>
<li>Treweek, J. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-body+tissue+stabilization+and+selective+extractions+via+tissue-hydrogel+hybrids+for+high-resolution+intact+circuit+mapping+and+phenotyping%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Whole-body tissue stabilization and selective extractions via tissue-hydrogel hybrids for high-resolution intact circuit mapping and phenotyping.</a> Nat Protoc. 10, 1860-1896 (2015).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

hidrojel gömülü dokularda (pasif CLARITY) pasif takas dokusunun büyük parçalar temizlenmesi için basit ve ucuz bir yöntemdir. Bu yaklaşım, özel ekipman gerektirmez ve kolay bir şekilde, sıcaklık kontrollü sallayıcı içinde gerçekleştirilebilir. Birkaç haftalık bir sürede içinde, örneğin bütün bir beyin ya da spinal kord bile büyük, çok miyelinli dokular, şeffaf ve mikroskopi için uygun olacaktır. Bu rapor, merkezi sinir sistemi doku temizleme odaklanmış olmasına rağmen, pasif AÇIKLIK herhangi bir dokuya uygulanabilir. </...

Tam nöroanatomik yapıları görüntüleme yeteneği, sağlık ve hastalıkta beyni anlamak için son derece değerlidir. Geleneksel olarak, 3D görüntüleme, eksenel çözünürlüğü sağlamak ve derin anatomik yapıları görselleştirmek için doku kesiti gerektirir. Bu yaklaşım, yüksek çözünürlüklü veri kümeleri üretebilir, ancak karmaşık görüntü yeniden yapılandırma teknikleri gerektirir ve çok emek yoğundur. Sonuç olarak, küçük hacimli dokuların görüntülenmesi ile sınırlı kalmıştır1-3. Öte yandan optik kesit alma, floresan etiketli dokuların yüksek çözünürlüklü 3D görüntülerinin oluşturulması için çok uygundur. Optik kesitleme doğası gereği üç boyutlu olduğundan, bir 3D görüntü hacmi üretmek için kapsamlı bir hesaplama gerektirmez. Bununla birlikte, ışık saçılımı ve doku opaklığı, dokuların optik olarak kesilebileceği derinliği sınırlar. Görüntüleme derinliği, lazer taramalı konfokal mikroskopide yaklaşık 150 μm ve iki foton uyarma mikroskobu4-8 kullanılarak 800 μm'den az ile sınırlıdır.
Bu sınırlamaların üstesinden gelmek için, yakın zamanda çeşitli optik temizleme teknikleri geliştirilmiş ve daha sonra sağlam dokuların derin mikroskobik görüntülenmesine izin vermek için daha da rafine edilmiştir. Sabit dokuları saydam hale getirmek için benzil alkol ve benzil benzoat (BABB) kullanımı en eski yaklaşımlardan biriydi9. Bununla birlikte, bu yaklaşım, numunelerdeki floresansın söndürülmesi ve yüksek derecede miyelinli yapıların eksik temizlenmesi ile sınırlıydı10. Solventle Temizlenmiş Organların 3D Görüntülenmesi (3DISCO) gibi bu tekniğin iyileştirmeleri, çok hızlı ve eksiksiz doku temizliğine yol açmıştır, ancak yine de floresan sinyallerinde, özellikle sarı floresan proteininde (YFP) hızlı bir kayıptan muzdariptir10. Sca/e11 ve SeeDB12 gibi su bazlı temizleme solüsyonları, floresan sinyalleri korur, ancak yüksek derecede miyelinli dokuları tamamen temizlemez. Şeffaf, Engelsiz Beyin Görüntüleme Kokteylleri ve Hesaplamalı analiz (CUBIC), daha önce geliştirilmiş su bazlı temizleme çözümlerinin sınırlamalarının üstesinden geliyor gibi görünen umut verici yeni bir optik temizleme teknolojisidir13. Diğer optik temizleme tekniklerinin aksine, Clear Lipid Değişimli Akrilamid Hibritleştirilmiş Sert Görüntüleme uyumlu Doku-hYdrogel (CLARITY)14 beyni, lipitleri bağlanmadan bırakırken proteinlere, nükleik asitlere ve küçük moleküllere yapısal bütünlük sağlayan gözenekli bir matris içine yerleştirir. Lipitler daha sonra elektroforetik olarak çıkarılır ve yaygın olarak bulunan teknikler kullanılarak kolayca görselleştirilebilen ve eşit derecede kolay bir şekilde incelenebilen optik olarak temizlenmiş bir beyinde doruğa ulaşır.
Elektroforetik doku temizleme (ETC), CLARITY'de hidrojel gömülü dokulardan lipitleri çıkarmak için kullanılır, ancak ETC'nin tutarlı bir şekilde uygulanması zor olabilir ve elektroforeze tabi dokular doku distorsiyonu, esmerleşme, floresan kaybı ve antikor reaktivitesi gösterebilir. Pasif lipid temizleme bu sınırlamaları önler, ancak temizleme sürelerinin15-17 artırılmasını gerektirir. Pasif temizleme, mevcut ETC aparatlarının sayısı ile sınırlı olmadığı için çok sayıda numunenin paralel olarak temizlenmesine de izin verir. Paraformaldehit konsantrasyonunun azaltılması ve hidrojelden bis-akrilamidin çıkarılması, daha fazla doku genişlemesi pahasına temizleme hızında büyük artışlara yol açmıştır16. Orijinal CLARITY tekniğinde kullanılan kırılma indisi eşleştirme çözümüne daha ucuz alternatifler geliştirilmiştir17-19. 2,2'-tiyodietanol (TDE), lipid giderimi sırasında meydana gelen doku genişlemesinin bir kısmını tersine çeviren ucuz ve hızlı bir beyin temizleme maddesidir18. Bu rapor, hidrojel gömülü dokunun pasif olarak temizlenmesini ve fare merkezi sinir sisteminin optik olarak temizlenmesi için oldukça tekrarlanabilir ve ucuz bir protokol üretmek için orijinal CLARITY tekniğine kırılma indisi eşleştirme çözümü olarak TDE'nin kullanımını içerir.

<table><tbody><tr><td>10x fosfat tamponlu salin (PBS)</td> <td>Fisher</td><td>BP399-1</td><td>tamponları</td></tr><tr><td>%32 paraformaldehit (PFA)</td> <td>Elektron Mikroskobu Bilimleri</td><td>15714-5</td><td>perfüzyon ve hidrojel</td></tr><tr><td>2,2'-tiyodietanol (TDE)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>166782-500G</td><td>kırılma indisi eşleştirme çözeltisi</td></tr><tr><td>%40 akrilamid</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0140</td><td>hidrojel</td></tr><tr><td>%2 bis-akrilamid</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0142</td><td>hidrojel</td></tr><tr><td>VA-044 başlatıcı</td><td>Wako Saf Kimya Endüstrileri, Ltd.</td><td>VA044</td><td>hidrojel</td></tr><tr><td>Borik asit</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B7901</td><td>temizleme tamponu</td></tr><tr><td>Sodyum dodesil sülfat (SDS)</td> <td>Fisher</td><td>BP166-5</td><td>temizleme tamponu</td></tr><tr><td>Sodyum hidroksit</td><td>Fisher</td><td>55255-1</td><td>tamponları</td></tr><tr><td>Sodyum azid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>52002-100G</td><td>koruyucu</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>X100-500G</td><td>tamponlar</td></tr><tr><td>Heparin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3393-50KU</td><td>perfüzyon</td></tr><tr><td>Sodyum nitrat</td><td>Fisher</td><td>BP360-500</td><td>perfüzyon</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Moleküler Problar</td><td>D1306</td><td>nükleer leke</td></tr>% <tr><td>99.9 izofluran</td><td>Phoenix</td><td>57319-559-06</td><td>anestezik</td></tr><tr><td>Hidrokolorik asit</td><td>Fisher</td><td>A1445-500</td><td>tamponları</td></tr><tr><td>Cam alt tabak</td><td>Willco</td><td>HBSB-5040</td><td>Willco yemekleri</td></tr><tr><td>Yeniden kullanılabilir yapıştırıcı</td><td>Bostick</td><td>371351</td><td>Blu-Tack</td></tr><tr><td>Silikon elastomer</td><td>World Precision Instruments</td><td>KWIK-CAST</td><td>Kwik-Cast</td></tr><tr><td>Tüy bırakmayan mendil</td><td>Kimberly-Clark</td><td>34120</td><td>KimWipe</td></tr><tr><td>Fare beyin matrisi</td><td>Roboz</td><td>SA-2175</td><td>kesit dokusu</td></tr><tr><td>Matris bıçakları</td><td>Roboz</td><td>RS-9887</td><td>kesit dokusu</td></tr><tr><td>Peristaltik pompa</td><td>Cole-Parmer</td><td>77122-24</td><td>pefüzyon</td></tr><tr><td>Lazer taramalı konfokal mikroskop</td><td>Leica</td><td>SP5</td><td>mikroskobu</td></tr><tr><td>Görüntüleme yazılımı</td><td>Leica</td><td>LAS AF</td><td>mikroskobu</td></tr></tbody></table>

pasif kullanımı netlik fare merkezi sinir sistemi optik takas

Optical Clearing of the Mouse Central Nervous System Using Passive CLARITY

Geleneksel olarak, doku görselleştirme, ilgilenilen dokunun seri olarak kesitlenmesini ve görüntülenmesini gerektirmiş, her doku kesitini benzersiz doğrusal olmayan deformasyonlara maruz bırakmış, kişinin merkezi sinir sistemindeki (CNS) hücresel morfolojiyi, dağılımı ve bağlantıyı değerlendirme yeteneğini önemli ölçüde engellemiştir. Bununla birlikte, optik temizleme teknikleri, dokuların görüntülenme şeklini değiştirmektedir. Bu yaklaşımlar, sağlam organ preparatlarının derinlemesine araştırılmasına izin vererek, sağlık ve hastalıktaki dokuların yapısal organizasyonu hakkında muazzam bir içgörü sağlar. Berrak Lipid Değişimli Akrilamid Hibritleştirilmiş Sert Görüntüleme uyumlu Doku-hYdrogel (CLARITY) gibi teknikler, ışık saçan lipitlerin serbestçe yayılmasına izin verirken önemli biyomolekülleri bağlayan bir matris sağlayarak bu amaca ulaşır. Lipid çıkarılması ve ardından kırılma indisi eşleştirmesi, dokuyu şeffaf hale getirir ve 3 boyutlu (3D) olarak kolayca görüntülenir. Bununla birlikte, orijinal CLARITY protokolünde kullanılan elektroforetik doku temizlemenin (ETC) başarılı bir şekilde uygulanması zor olabilir ve tescilli bir kırılma indeksi eşleştirme çözümünün kullanılması, tekniğin rutin olarak kullanılmasını pahalı hale getirir. Bu rapor, gelişmiş doku bütünlüğü için pasif CLARITY ile daha önce tanımlanmış bir kırılma indisi eşleştirme çözümü olan 2,2'-tiyodietanolü (TDE) birleştiren basit ve ucuz bir optik temizleme protokolünün uygulanmasını göstermektedir.

Beynin yapısal organizasyonu görselleştirme morfolojisi ve bağlantı sağlık ve hastalık beyin fonksiyonlarını nasıl etkilediğini anlamak için kritik öneme sahiptir. Optik takas teknikleri bize cohesively morfolojisi ve bağlantı incelemek için izin sağlam dokularda 3D görüntü hücre popülasyonu için mümkün kılar. Hücreler beyindeki sinir bağlantı karmaşık bir desen ayrı kızdırmak için bir izin alt popülasyonlar için özel rehberle...

Optik temizleme teknikleri, dokuların görselleştirilme biçiminde devrim yaratıyor. Bu raporda, daha tutarlı ve daha ucuz sonuçlar veren orijinal Clear Lipid değişimli Akrilamid hibritleştirilmiş Rijit Görüntüleme uyumlu Doku-hYdrogel (CLARITY) protokolünün modifikasyonlarını açıklıyoruz.

Pasif kullanımı Netlik Fare Merkezi Sinir Sistemi Optik Takas

Traditionally, tissue visualization has required that the tissue of interest be serially sectioned and imaged, subjecting each tissue section to unique ...

Bu protokolün genel amacı, orijinal CLARITY protokolünde daha tutarlı ve maliyet etkin sonuçlar veren modifikasyonları göstermektir. Bu yöntem; merkezi sinir sistemindeki 3B morfoloji ve bağlantısallık gibi nörobilimdeki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, fare merkezi sinir sistemindeki optik şeffaflaştırma ve mikroskobinin tutarlılığını artırmasıdır.Maliyet etkin ve tekrarlanabilir bir şekilde. Görüntüleme odasının kurulumu karmaşık olduğundan ve yazılı açıklamadan kolayca anlaşılamadığından, bu yöntemin görsel gösterimi kritik önem taşımaktadır.Floresan proteinler eksprese eden farelerden paraformaldehit ile fikse edilmiş beyin ve omurilik dokusu temin edin. Beyni plastik bir fare beyni matrisine yerleştirerek ve orta hat boyunca bir matris bıçağıyla keserek hemisekte edin. Her bir hemisferi ve omuriliği ayrı 50 mililitrelik santrifüj tüplerine ekleyin.Her biri 40 mililitre hidrojel çözeltisi içeren tüpler. Floroforları korumak için tüpleri alüminyum folyo ile kapatın. Örnekleri ve hidrojeli içeren tüpleri, hafifçe çalkalayarak yedi gün boyunca dört derece santigrat sıcaklıkta inkübe edin.İnkübasyon süresinin ardından, santrifüj tüpünde numune ve yaklaşık 25 mililitre hidrojel kalacak şekilde 25 mililitre hidrojeli atın. Ardından, kapağı çıkarıp santrifüj tüpünü bir desikatör kavanozuna yerleştirerek ve kavanozu vakuma bağlayarak numuneden oksijeni uzaklaştırın. Vakumu en az 10 dakika boyunca uygulayın.Yayılan oksijen kabarcıklarını uzaklaştırmak için nazikçe çalkalayın. 10 dakika sonra, desikatör kavanozundaki vakumu iki ila üç dakika içinde %100 azot gazı ile değiştirin. Basınç dengelendiğinde ve desikatör kavanozunun üst kısmı açılabildiğinde, oksijenin yeniden girmesini önlemek için tüpü hızla kapatın.Ardından, polimerizasyon tamamlanana kadar, numunenin bulunduğu tüpü üç saat boyunca 37 °C'lik bir su banyosuna yerleştirerek hidrojeli polimerize edin. Üç saat sonra polimerize olan hidrojel, jel benzeri bir kıvam alacaktır. Polimerize numuneyi santrifüj tüpünden çıkarmak için bir spatula kullanın ve ardından numunedeki fazla hidrojeli kesin.Son olarak, örneği tüy bırakmayan bir mendilin üzerine yerleştirip dokuyu üzerinde nazikçe ovalayıp yuvarlayarak kalan hidrojeli temizleyin; böylece örnek üzerinde yalnızca ince bir polimerize hidrojel tabakası kalsın. Lipid uzaklaştırma işlemine başlamak için, polimerize örneği 45 mL şeffaflaştırma tamponu içeren temiz bir 50 mL santrifüj tüpüne aktarın ve hafif çalkalama ile 45 °C'de yedi gün boyunca inkübe edin. Bu ilk yedi günlük süre boyunca, kullanılan şeffaflaştırma tamponunu bir kimyasal atık konteynerine dökerek tamponu her gün değiştirin.Ardından 45 mililitre taze berraklaştırma tamponu ekleyin. Tüm lipidler çözüldüğünde ve doku şeffaflığa ulaştığında, örneği 45 mililitre PBST ile doldurulmuş yeni bir 50 mililitre santrifüj tüpüne aktarın ve kalıntı SDS'yi uzaklaştırmak için sonraki 24 saat boyunca 40 °C'de hafifçe çalkalayarak dört kez yıkayın. Son PBST yıkamasından sonra, örneği 1 µg/mL DAPI ve 1xPBST ile doldurulmuş temiz bir 15 mililitre santrifüj tüpüne aktarın.Folyo ile sarın ve oda sıcaklığında 24 saat inkübe edin. Ertesi gün, oda sıcaklığında, yıkama başına en az altı saat olacak şekilde PBST ile üç kez yıkayın. Ardından kırma indisi eşleme işlemine geçin.Prosedürün bu bölümüne başlamak için, örneği 2-2 thiodiethanol ve pH 7,5'te 1xPBS ile doldurulmuş temiz bir 15 mililitrelik santrifüj tüpüne aktarın ve ekranda gösterildiği şekilde inkübe edin. İkinci inkübasyonun sonuna doğru, yeniden kullanılabilir bir yapışkan parçasını örneğin kalınlığından sadece biraz daha geniş, tek tip bir çapta silindir haline getirerek bir görüntüleme odası oluşturun. Silindiri, 40 milimetrelik cam tabanlı bir kabın içinde uçları açık bir daire şeklinde yerleştirin.Ardından, P1000 pipet ucunu silindirin dış kenarı boyunca döndürerek yeniden kullanılabilir yapışkan ile cam arasında bir sızdırmazlık oluşturun. Cam petri kabının üzerine yaklaşık 100 µL %63 TDE pipetleyin ve yeniden kullanılabilir yapışkanın oluşturduğu daire içindeki cam yüzeyi kaplayacak şekilde yayın. Daha sonra, hava kabarcığı oluşmamasına dikkat ederek örneği bir spatula yardımıyla dikkatlice dairenin ortasına yerleştirin.Ardından, örneğin üzerine doğrudan 100 µL %63 TDE pipetleyin ve hemen yeniden kullanılabilir yapışkanın üzerine 40 mm çapında dairesel bir lam kapatın. Lam örnekle temas edene kadar, her iki elinizin işaret, orta ve yüzük parmaklarını kullanarak dairenin çevresine dikkatlice bastırın. Şimdi, cam tabanlı kabı yavaşça bir yüzeye yaslayarak dik konuma getirin ve ardından çözelti üstteki küçük açıklığa ulaşana kadar bir pipetle %63 TDE ekleyin.Çözeltinin cama damlamasını önlemek için pipet ucunu tüy bırakmayan bir bezle kurulayın. Son olarak, daireyi kapatmak ve kapalı bir bölme oluşturmak için küçük açıklığa silikon elastomer ekleyin. Kuruması için beş dakika bekleyin ve ardından görüntülemeye geçin.İçinde örneğin bulunduğu görüntüleme haznesini bir lazer taramalı konfokal mikroskobun tablasına yerleştirin. Görüntüleme yazılımını açın; argon eksitasyon lazerini çalıştırmak için programın üst kısmındaki konfigürasyon sekmesine, ardından lazer simgesine tıklayın. Lazeri açmak için argon seçeneğinin yanındaki kutucuğu işaretleyin ve sürgü ölçeğini %30'a getirin. Üst kısımdaki görüntüleme sekmesine geri dönün.Işın yolu ayarları kutusunda, yükle-kaydet ayarları kutusuna gidin ve YFP yaymak için uygun dalga boyu kanalını seçmek üzere açılır menüyü kullanın. Kanal ayarları kutusunda, "objective current object" etiketli kırmızı hiperliğe tıklayarak görüntüleme için uygun objektifleri seçin. Çalışma mesafesi doku kalınlığından daha büyük olan objektifleri kullanın.Düzlem içi görüntü çözünürlüğünü maksimize etmek ve optik kesit kalınlığını minimize etmek için geniş bir sayısal açıklık kullanılır. Sol sütundaki açılır menülerden, format olarak adlandırılan görüntüleme matrisini 1024x1024'e veya objektifin lateral çözünürlük sınırına uygun bir değere ayarlamak için XY çözünürlük penceresini açın. Zoom faktörünü mümkün olduğunca düşük ayarlayın.Burada 1.7 kullanılmıştır. Aynı pencerede, ilgili etiketli menüleri açarak sekizinci satır ortalaması ve tek kare ortalaması parametrelerini ayarlayın. Sahne kontrollerini kullanarak örneği bulun.Temsili bir alan görünür olduğunda, YFP için kazancı (gain) 760 ile 780 arasına, kaydırmayı (offset) ise 1.0 ile 1.5 arasına ayarlayın. Karo tarama (tile scan) seçeneğini seçin. Ardından, elde edilecek Z-yığını (Z stack) için üst ve alt sınırları belirleyin.Optik kesit kalınlığını, objektifin optik kesit çözünürlük sınırına göre ayarlayın ve ardından veri toplama işlemini başlatın. Bu görüntü, serebral korteks ve hipokampustaki YFP pozitif nöronların 5x büyütme ile görüntülenmiş ve 3D olarak yeniden yapılandırılmış halini göstermektedir. Ölçek çubuğu bir milimetreyi temsil etmektedir.Serebral korteksin 10x görüntü yığınından elde edilen bu maksimum yoğunluk projeksiyonu, kortikal beşinci tabaka piramidal nöronlarının dendritik dallanmasını göstermektedir. Buradaki ölçek çubuğu 100 mikronu temsil eder. Burada, 5x büyütme ile görüntülenen ve 3D olarak yeniden yapılandırılan, sağlam bir servikal ve torasik omurilikte THY-1YFP ekspresyonu gösterilmektedir.Ölçek çubuğu iki milimetreyi temsil etmektedir. Son olarak, omuriliğin 10x görüntüleme yığınına ait bu maksimum yoğunluk projeksiyonu, tekil aksonları göstermektedir; ölçek çubukları 100 mikronu temsil etmektedir. Doğru şekilde gerçekleştirildiğinde, bu teknik tüm omurilikler için iki ila dört hafta, hemisekt edilmiş beyinler için ise dört ila altı hafta içinde tamamlanabilir.Bu prosedürün ardından, daha karmaşık biyokimyasal fenotipleme gerektiren soruları yanıtlamak için immünohistokimya gibi diğer yöntemler uygulanabilir. Bu videoyu izledikten sonra, pasif berraklaştırma ve lazer konfokal mikroskopi kullanarak, bir fare merkezi sinir sisteminin optik olarak nasıl berraklaştırılacağı ve görüntüleneceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

optical-clearing-mouse-central-nervous-system-using-passive

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Tüm fare organların Multiphoton mikroskobu optik görüntüleme öncesi organı temizleyerek mümkün değil, tüm protokolleri floresan proteinlerin floresan sinyal korumak. Etanol bazlı dehidratasyon ve benzil alkol ile optik temizleme yöntemi: benzil benzoat takas, biz bütün fare beyin YFP ifade yüksek çözünürlüklü multiphoton görüntüleri göstermek.

YFP ifade Temizlendi Fare Beyin Multiphoton Mikroskopi

Kronik oküler hipertansiyon fare gözünde Trabeküler ağın laser kullanılarak meydana gelir. Göz içi basıncı (GİB) lazer tedavi sonrası birkaç ay boyunca yükselir. Görme keskinliği ve Deney hayvanlarının kontrast duyarlılık azalması optomotor testi kullanılarak izlenir.

Görme Kusurları karakterize Kronik Oküler Hipertansiyon bir Lazer-kaynaklı Fare Modeli

Bu yazıda yüksek çözünürlüklü, floresan etiketli fare beyinleri ince beyin anatomisi ile, yeniden tam deneysel prosedürü açıklar. Açıklanan protokol numune hazırlama ve temizleme, görüntüleme, veri post-processing ve çok ölçekli görselleştirme için montaj örneği içerir.

Eşodaklı Işık Sac Mikroskobu ile Tüm Fare Brain mikron çaplı Çözünürlük Optik Tomografi

Supraspinal projeksiyonlar ağrı algısı ve diğer davranışlar için önemlidir ve serotonerjik lifler bu lif sistemlerinden biridir. Bu çalışma, bu serotonerjik liflerin sonlandırılmasını araştırmak için kombine CLARITY/CUBIC protokolünün fare omuriliğine uygulanmasına odaklanmıştır.

Kullanımı Netlik Fare Omurilik içinde Serotonerjik Elyaf Görüntüleme / KÜBİK Tekniği

Bu el yazması ile yüksek çözünürlüklü spektral etki alanı optik Koherens tomografi (SD-Ekim) fare retinanın vivo içinde görüntüleme için bir protokol açıklar. Retina ganglion hücrelerinin (RGC) peripapillary bölgede çeşitli tarama ve açıklanan yaklaşımlar miktarının üzerinde duruluyor.

Optik Koherens tomografi: Fare retina Ganglion hücreleri Vivo içinde görüntüleme

Burada, felç ve opticospinal iltihap transfer aquaporin-4 (AQP4) tarafından ikna etmek için bir iletişim kuralı mevcut-WT fareler içine AQP4- / - fareler belirli T hücrelerden. Buna ek olarak, seri optik Koherens tomografi görsel sistem disfonksiyon izlemek için nasıl kullanılacağını göstermektedir.

Felç ve görsel sistem yaralanma tarafından Nöromyelitis Optica Autoantigen Aquaporin-4 T hücreleri belirli farelerde indüksiyon

Burada, iki roman metodolojisi, psPACT ve mPACT maksimal optik şeffaflık ve doku damarlara sağlam kemirgen sonraki mikroskobik analizi elde etmek için mevcut tüm CNS.

Roman pasif optik şeffaflık bütün sinir dokusunda hızlı üretim için yöntemleri Temizleme

Burada, standart immünohistokimyasal lekelenme ve retina nöronlarının ve bunların hücre altı yapılarının yüksek çözünürlüklü görüntüleme kalitesini artırmak için beyin dokularının CLARITY yöntemini tam montajlı retinalara uyarlamak için bir protokol sunuyoruz.

CLARITY Doku Temizleme Yöntemi ile Tüm Mount Retinaların İmmünasyonunun İmmünasyon

Protokol, bir doku temizleme yöntemi olan ScaleSF kullanılarak beyin diliminde ayrıntılı bir nöronal görüntüleme yöntemi sağlar. Protokol, beyin dokusu hazırlama, doku berraklaştırma, temizlenmiş dilimlerin işlenmesi ve nöronal yapıların mezoskopikten mikroskobik seviyelere kadar konfokal lazer taramalı mikroskopi görüntülemesini içerir.

Mezoskopikten Mikroskobik Ölçeklere Nöronal Görüntüleme için Bir Doku Temizleme Yöntemi

Emici molekül çözeltileri gibi optik temizleme teknikleri, biyolojik görüntülemeyi geliştirmek için ışık saçılımını geçici olarak azaltır ve derine gömülü organlar için biyouyumlu, geri dönüşümlü in vivo görüntüleme stratejileri sunar. Bu protokol, canlı hayvanlarda gerçek zamanlı dinamikler için yüksek kaliteli, dinamik görüntüleme elde etmek için ayrıntılı deneysel prosedürlerin yanı sıra gelişmiş görüntü işleme sunar.

Ex Vivo ve In Vivo Görüntüleme için Emici Moleküller Kullanarak Geçici Optik Temizleme

Öğrenin, fare merkezi sinir sisteminde pasif CLARITY optik temizleme protokolünü kullanarak 3D morfoloji ve bağlantı analizi yapmayı. Bu yöntem tutarlı ve maliyet etkin sonuçlar sağlar.

Pasif kullanımı Netlik Fare Merkezi Sinir Sistemi Optik Takas

Daha fazla video keşfet