Name: Odaklanmış Taramalı Ultrason Kullanarak Antikorların Beyne Verilmesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-07-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 34 s
Description: Öğrenin, odaklanmış ultrason ve mikrobaloncuk enjeksiyonu ile fare beyninde kan-beyin bariyerini geçici olarak açarak antikor teslimatı yapmayı. Bu yöntem, mikroglia aktivasyonunu incelemek için invaziv olmayan bir yaklaşım sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dr. Clem Jones AO'nun Mülkünün, Avustralya Ulusal Sağlık ve Tıbbi Araştırma Konseyi'nin [GNT1145580, GNT1176326], Metal Vakfı'nın ve Queensland Eyalet Hükümeti'nin (DSITI, Bilim, Bilgi Teknolojisi ve İnovasyon Bakanlığı) desteğini kabul ediyoruz.

Tüm hayvan deneyleri, Queensland Üniversitesi hayvan etik komitesi tarafından onaylanmıştır.
1. Şirket içi mikrokabarcık hazırlama
<ol><li>1,2-distearoil-sn-glycero-3-fosfokolin ve 1,2-distearoil-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[amino(polietilenglikol)-2000] (amonyum tuzu) 9: 1 molar oranını tartın. 1 mL mikrokabarcık çözeltisi başına 0.5 mg lipit karışımı gereklidir. Alternatif olarak, önceden çözünmüş lipitler kullanılarak adım 1.3'e devam edilirse, lipitler zaten kloroformda satın alınabilir.</li>
	<li>Lipiti bir cam beherde küçük bir kloroform hacminde çözün.</li>
	<li>Kloroformu bir evaporatör veya azot akışı ile buharlaştırın.</li>
	<li>Kurutulmuş lipit filmini, 0.22 μm filtreden süzülmüş 10 mL PBS +% 10 gliserol +% 10 propilen glikol çözeltisi ile rehidre edin.</li>
	<li>Rehidrate lipit çözeltisini 55 ° C'ye (lipitlerin erime sıcaklığının üstünde) ayarlanmış bir su banyosu sonikatörüne yerleştirin ve tamamen çözünene kadar sonikat yapın.</li>
	<li>Otoklavlanmış 1.5 mL HPLC şişelerine Aliquot lipit çözeltisi ve septa kapaklarına vida.</li>
	<li>Şişedeki tüm havayı 27 G'lik bir iğne ile donatılmış 5 mL'lik bir şırınga ile aspire edin ve şişede bir vakum oluşturun.</li>
	<li>Birlikte verilen şırınga ile şişeye oktofloropropan ekleyin ve gazı teneke kutudan çekin. Şırıngadaki hacmi okuyarak şişeyi 1-2 mL oktafloropropan ile doldurun.</li>
	<li>Her şişeyi parafin film ile kapatın ve soğutun.</li>
	<li>Deney gününde, şişeyi oda sıcaklığına getirin, şişeye 0,5 mL% 0,9 NaCl çözeltisi ekleyin, ardından şişeyi bir birleştiriciye yerleştirin ve mikrokabarcıkları üretmek için 45 s (önceden ayarlanmış süre) çalkalayın.</li>
</ol>2. Bir coulter sayacı kullanarak mikrokabarcık kalite kontrolü
<ol><li>Mikrokabarcık çözeltisini birleştiriciden çıkarın ve septayı 19 G'lik bir iğneyle delerek gazı şişeden boşaltın.</li>
	<li>19 G iğneli 1 ml'lik bir şırınga kullanarak 5 mL filtrelenmiş akış çözeltisine 100 μL mikrokabarcık çözeltisi ekleyerek iki adımlı 1:5.000 seri seyreltme gerçekleştirerek mikrokabarcık çözeltisini seyreltin ve ardından 100 μL seyreltilmiş mikrokabarcık çözeltisini alarak ve pipet kullanarak bir küvette 10 mL filtrelenmiş akış çözeltisine pipetleyin.</li>
	<li>Elektrolit tankının yeterli akış çözeltisine sahip olduğunu ve atık tankının boş olduğunu kontrol edin.</li>
	<li>Küvet tezgah platformuna yerleştirin ve yerine kilitleyin. Örnek almak için 30 μm'lik bir açıklık kullanın.</li>
	<li>Yazılımda, standart çalışma yöntemini (SOM) yükleyin ve ardından konsantrasyon | SOM Düzenle'yi seçin. 5000x seyreltme girin.</li>
	<li>Yazılımda, uygun bir dosya adı seçin. Örneğin, microbubble_1_date.</li>
	<li>Küvetleri platforma yükleyin ve sabitleyin.</li>
	<li>Yazılımda Çalıştır'ı seçin| Numune konsantrasyonunun% 10'dan az olduğunu önizleyin ve doğrulayın. Bu sayı% 10'dan yüksekse, mikro kabarcıkların daha yüksek bir seyreltme faktörü ile yeni bir seyreltme işlemini gerçekleştirin.</li>
	<li>İlk okumayı elde etmek üzere numuneyi almaya başlamak için 'Başlat'ı seçin.</li>
	<li>Her ölçümden sonra Coulter sayacının açıklığını filtrelenmiş akış çözeltisi ile durulayın. 3 çoğaltma elde etmek için 2.2-2.9 arasındaki adımları yineleyin.</li>
	<li>Seyreltilmiş mikrokabarcık çözeltisi içeren bir küveti bir sonicator su banyosuna yerleştirin ve 30 s boyunca sonikat yapın.</li>
	<li>Çözümü sonikleştirilmiş mikro kabarcıklarla ölçün ve boş olarak etiketleyin.</li>
	<li>Yazılımda, son okumayı ilk okumadan çıkarın. Bu, mikro kabarcık olmayan ve gaz içermeyen parçacıkları çıkarır.</li>
	<li>Mikro kabarcık konsantrasyonunu, boyut dağılımını, ortalama boyutu ve hacim konsantrasyonunu görüntülemek için yazılımda Sonuçları Görüntüle'yi seçin.</li>
</ol>3. Floresan antikor etiketleme
<ol><li>Herhangi bir katkı maddesi olmadan PBS'de 1 mg/mL'lik bir fare IgG çözeltisi elde edin.</li>
	<li>Kitte bulunan üreticilerin talimatlarını izleyerek AlexaFluor 647 ile 0,1 M sodyum bikarbonat tamponunda 1 mg fare IgG etiketleyin. Bu floresan olarak etiketlenmiş IgG miktarı, 5 mg / kg antikor dozunun uygulandığı 5-7 yetişkin farede bu prosedürü gerçekleştirmek için yeterlidir.</li>
	<li>Boyayı 0,1 M sodyum bikarbonat tamponunda IgG çözeltisine ekleyin ve oda sıcaklığında 15 dakika inkübe edin.</li>
	<li>Antikor çözeltisini bir spin kolonuna pipetleyerek ve 5 dakika boyunca 1.000 x g'de santrifüj yaparak floresan etiketli antikoru saflaştırın. Serbest boya sütun yatağında kalacaktır.</li>
	<li>Protein konsantrasyonunu ölçmek için bir spektrofotometre kullanın. Konjugat çözeltinin emiciliğini 280 nm ve 650 nm'de (A280 ve A650) ölçün. Denklemi kullanarak numunedeki protein konsantrasyonunu hesaplayın: Protein konsantrasyonu (M) = [A280 - (A650 x 0.03)] x seyreltme faktörü / 203.000.</li>
	<li>Denklemi kullanarak etiketleme derecesini hesaplamak için bir spektrofotometre kullanın: mol proteini başına mol boyası = A650 x seyreltme faktörü / 239 000 x protein konsantrasyonu (M). NOT: Kabul edilebilir bir etiketleme derecesi, mol proteini başına 3-7 mol boyadır ve tipik olarak elde edilen etiketleme derecesi yaklaşık 6'dır.</li>
</ol>4. Ultrason kurulumu
<ol><li>Fokuslu ultrason sistemini kullanarak, ultrason odağını su bolusunun tabanının 9 mm altına konumlandırmak için 5 mm'lik ara parçayı su bolusuna ekleyin.</li>
	<li>Su bolusunu, 20 dakika boyunca bir inline degazör ile gazdan arındırılmış yaklaşık 300 mL deiyonize su ile doldurun (oksijen içeriği 3 ppm'nin altında olmalıdır). Dairesel diziyi doldurulmuş su bolusuna yerleştirin ve yüzeyde hava kabarcığı olup olmadığını kontrol etmek için bir diş aynası kullanın. Yüzeyde varsa, dairesel diziyi çıkarın ve su bolusunda değiştirin.</li>
	<li>Uygulama yazılımını başlatın. Dalga formu menüsünde, Dalga formu görev döngüsünü ayarla'yı seçin. Ayarlar PRF (Hz) 10, görev döngüsü% 10, odak 80 mm, merkez frekansı 1 MHz, genlik (MPa tepe negatif basıncı) 0.65 MPa, mekanik indeks = 0.65'tir. Dalga formunu tanımlamak ve bellekte saklamak için Set tuşuna basın. NOT: Fokuslu ultrason sistemi, kalibre edilmiş bir hidrofon tarafından alınan ölçümlerden üretici tarafından önceden kalibre edilir.</li>
	<li>Fokuslu ultrason sistemi yazılımında, bir tedavi planı tanımlayın. Bu, birden fazla bireysel tedavi bölgesinden oluşan bir tedavi bölgesi tanımlamayı ve bu tedavi bölgelerinin her birinde alınacak eylemleri tanımlamayı gerektirir. Bu durumda, tedavi bölgesi fare beyninin bir yarımküresidir.</li>
	<li>Hareket denetleyicisi penceresinde, Tara sekmesine gidin ve x boyutunda hareket için başlat, durdur ve artır değerini girin ve y yönünde hareket için değeri başlatın, durdurun ve artırın. X: start -4, stop 3.50 ve Y: -3.00, stop 3, Increment 1.5, # loops: 1 değerlerini girin.</li>
	<li>Tedavi bölgeleri için eylemleri tanımlayın. Hareket denetleyicisi penceresinde, Olay düğmesini seçin. Komut Dosyası Düzenleme Penceresinde, her tedavi yerinde seçilen sırada yürütülecek eylemlerin bir listesini seçin. Hareket Türü'nü komut dosyası penceresinin üst kısmındaki raster ızgarası olarak ayarlayın. Olaylar sekmesinde, bunları komut dosyası paneline taşımak için Eylemler Ekle'yi seçin ve Senkron Olarak Taşı, Tetikleyici arb'yi başlat , bekle, Tetikleyici arb'yi durdur'u ekleyin. Bekle eylemine tıklayın ve 6.000 ms'lik bir bekleme süresi seçin. NOT: Bu ayarlar, tedaviyi 1,5 mm aralıklı 6 x 5 ızgaralı bir tedavi noktası ızgarası haline getirecek ve her bir noktanın tedavi süresi 6 sn'dir. Bir fare beynini sonikleştirmek için toplam süre yaklaşık 3 dakikadır. Bu boyuttaki arıtma ızgarası, yaklaşık 30 g ağırlığındaki yetişkin C57/Bl6 fareler için uygundur. Tedavi noktaları ızgarasının boyutu, farenin boyutuna bağlı olarak yukarı veya aşağı ayarlanabilir.</li>
</ol>5. Hayvan hazırlığı
<ol><li>Fareyi 0,1 g'a kadar hassas bir teraziyle tartın.</li>
	<li>Fareyi intraperitoneal olarak 90 mg/kg ketamin ve 6 mg/kg ksilazin ile anestezi altına alın. Bir ayak parmağı sıkışması ile reflekslerin yokluğunu test edin. Alternatif olarak, fareler uygun bir yüz maskesi ile uygun bir inhalasyonel anestezik aparat kullanılarak izofluran ile uyuşturulabilir. İzofluran kullanılıyorsa, hipotermiyi önlemek için ultrason sırasında fare bir ısı yastığına yerleştirilmelidir.</li>
	<li>Saçları hayvanın kafasından tıraş etmek için elektrikli bir tıraş bıçağı kullanın, ardından pamuklu bir tomurcukla epilasyon kremi uygulayın, 2-3 dakika veya saçlar nemli bir gazlı bezle temizlenene kadar bırakın. Epilasyon kreminin farenin gözüne girmemesine dikkat edin.</li>
	<li>Farenin kafasının merkezini kalıcı bir işaretleyici ile işaretleyin. Dönüştürücünün merkezinde bir delik vardır ve dönüştürücü odağı ve odak noktası görsel olarak hizalanabilir.</li>
	<li>Daha önce tabanı kesilmiş ve yerine tartım teknesinin tabanına yapıştırılmış plastik bir ambalajla ultrason jeli ile değiştirilmiş küçük bir tartım teknesini doldurun. Bu, 8 mm'lik bir ara parça görevi görür ve farenin kafasına iyi bir bağlantı sağlar ve farenin kafasıyla hizalanmış dönüştürücünün odağının görsel olarak incelenmesini sağlar.</li>
</ol>6. Mikrokabarcık hazırlama
<ol><li>Bir mikrokabarcık şişesini oda sıcaklığına ısıtın. Etkinleştirmek için, şişeye 0,5 mL% 0,9 NaCl çözeltisi ekleyin ve mikro kabarcıkları üretmek için 45 s çalkalamak için bir birleştiriciye yerleştirin.</li>
	<li>Septayı 27 G'lik bir iğneyle delerek şişeyi havalandırın.</li>
</ol>7. Ultrason tedavisi
<ol><li>Mikrokabarcıkların şişesini ters çevirin ve çözeltinin 1 μL / g vücut ağırlığını yavaşça çekin. Buna floresan olarak etiketlenmiş antikor çözeltisi ekleyin ve şırıngada hafifçe karıştırın. Enjekte edilen maksimum hacim 150 μL'dir. NOT: Şirket içinde hazırlanan mikro kabarcıklar, klinik olarak kullanılandan yaklaşık 60 kat daha az konsantredir (örneğin, Definity mikrokabarcıkları). Ses seviyesini veya konsantrasyonu, enjekte edilen mikrokabarcıkların sayısı klinik olarak kullanılanlara benzer olacak şekilde ayarlayın (örn. Belirlilik 1.2 x 108 mikrokabarcıklar / kg vücut ağırlığı).</li>
	<li>Mikrokabarcık ve antikor çözeltisini retroorbital olarak enjekte edin, nazikçe ve yavaşça enjekte etmeye özen gösterin. Ardından, farenin gözlerine oftalmik merhem uygulayın.</li>
	<li>Fareyi baş tutucuya yerleştirin (bkz. Malzeme Tablosu) ve farenin burnunu sabitleyin. Ardından ultrason jeli dolu küçük tartım teknesini başın üstüne yerleştirin.</li>
	<li>Su bolusunu, tartım teknesindeki ultrason jelinin üzerine oturana kadar indirin.</li>
	<li>Dönüştürücü odağını başın merkezine taşımak için joystick'i kullanın. Hareket sekmesinde Kaynağı Sıfırla'yı seçin.</li>
	<li>7.3-7.6 arası adımlar 2 dakika sürecektir.</li>
	<li>Tutarlılık için, mikro kabarcıkların enjekte edilmesi ile tam taramanın seçilmesi arasında 2 dakikalık bir gecikme olmasını sağlamak için bir zamanlayıcı ayarlayın.</li>
	<li>Tedavi tamamlandıktan sonra, gözlere oftalmik merhem uygulayın ve fareyi ısıtılmış bir iyileşme odasına yerleştirin. İşlem sırasında hipotermi gözlenirse, işlem sırasında ek ısı sağlamak için farenin altına bir ısıtma yastığı yerleştirilebilir.</li>
</ol>8. Doku toplama ve işleme
<ol><li>Ultrason uygulamasından sonra ilgilenilen zaman noktasında (beyindeki yüksek antikor seviyelerini tespit etmek için en az 1 saat), fareyi aşırı dozda Pentobarbiton çözeltisi (100 mg / kg) ile derinlemesine anestezi altına alın ve fareyi 30 mL PBS ile transkardiyal olarak perfüze edin. Beyne verilen floresan etiketli antikorları spesifik olarak tespit etmek için iyi bir perfüzyon gereklidir.</li>
	<li>Beyni toplayın ve 4 ° C'de 24 saat boyunca% 4 PFA'ya daldırarak sabitleyin, ardından PBS ile yıkayın.</li>
	<li>Beyni tepsiye yerleştirerek ve 700 nm kanalda bir görüntü elde ederek beyni kızılötesi bir tarayıcıda görüntüleyin. NOT: Fiksasyondan sonra, beyin PFA'dan çıkarılır, PBS'de yıkanır ve bölümlere ayrılır. Alternatif olarak, 4 ° C'de veya suya batırılana kadar 24 saat boyunca etilen glikol kriyoprotektan çözeltisine yerleştirilebilir ve daha sonra şişe içeren yeni bir kriyoprotektana taşınabilir ve uzun süreli depolama için -20 ° C'ye yerleştirilebilir.</li>
	<li>PBS'de beyin soğuğunu bir vibratom kullanarak kesitleyin. Beyni platforma yapıştırın ve 30-40 μm kesitleri kesin ve PBS'ye toplayın. NOT: Lizozomal otofloresan (yaklaşık 12 aydan daha eski hayvanlardan alınan bölümlerde yaygındır), bakteri üremesini engellemek için bölümlerin bir ışık odası kutusunda, oda sıcaklığında ve azid içeren PBS'de (% 0.02) gece boyunca aydınlatılmasıyla ağartılmalıdır.</li>
</ol>9. Doku boyama ve görüntü alma
<ol><li>Kesitleri oda sıcaklığında 2 saat boyunca bloke çözeltisine (%0,2 Triton/PBS'de %5 BSA) aktarın, ardından çözeltiyi %0,2 Triton/PBS ile değiştirerek bölümleri 3x yıkayın.</li>
	<li>Iba1 (seyreltme 1:1,000) ve CD68'e (seyreltme 1:500) karşı birincil antikorlarla gece boyunca 4 °C'de kesitleri inkübe edin,% 0.2 Triton / PBS'de, ardından% 0.2 Triton / PBS ile 3x yıkama.</li>
	<li>Floresan sekonder antikorlarla oda sıcaklığında 2 saat boyunca bölümleri inkübe edin (seyreltme 1:500), ardından sadece% 0.2 Triton / PBS ile 3x yıkama yapın. NOT: Çekirdekler DAPI çözeltisi (0,5 μg/mL) kullanılarak da boyanabilir.</li>
	<li>Bölümleri, sert ayarlı montaj ortamına sahip bir kızağa ve kapak kaymasına aktarın. Görselleştirme ve görüntü alımından önce (gece boyunca) montaj ortamının katılaşması için yeterli zaman tanıyın.</li>
	<li>Konfokal mikroskop ile ultrason hedefli beyin bölgesinin z-yığın görüntülerini (en az 10 μm derinlik ve 0.3 μm adım boyutu, hayvan başına 10 görüntü) konfokal mikroskop ve en az 40x büyütme hedefi kullanarak elde edin. NOT: Sinyal dinamik aralığında görüntü elde etmeye dikkat edin, alt/aşırı pozlamayı önleyin. Görüntü dosyalarını mikroskop tarafından kullanılan ilgili yazılım biçiminde kaydedin.</li>
</ol>10. Görüntü analizi
<ol><li>Görüntü analiz yazılımı dosya içe aktarıcısını kullanarak z-stack mikroskopi dosyalarını dönüştürün.</li>
	<li>Dönüştürülen dosyaları yazılıma açın ve mikroglial hücreleri gözlemlemek için Iba1 kanalının yoğunluğunu ayarlayın.</li>
	<li>Etrafına bir kutu çizerek tek bir mikroglial hücreyi kırpın, 'kırp'ı seçin ve yeni dosyayı kaydedin.</li>
	<li>IBA1 sinyalinin 3B yüzey işlemesini şu şekilde oluşturun:<ol>
<li>Önceki adımda oluşturulan tek hücreli Imaris dosyasını açın.</li>
		<li>Dosyaya bir yüzey ekleyin.</li>
		<li>Iba1 boyamasına karşılık gelen kanalı seçin.</li>
		<li>Iba1 boyamasıyla örtüşmesi gereken bir eşik uygulayın</li>
		<li>Yalnızca ilgilenilen mikroglial hücreyi oluşturan ilgi yapısını seçin</li>
	</ol>
</li>
	<li>İşlemi sonlandırma<ol>
<li>Iba1 boyama hacmini elde edin ve kaydedin</li>
		<li>CD68 boyamasının 3B yüzey işlemesini oluşturun</li>
		<li>IBA1 yüzey alt dosyasının içinde, CD68 kanalını maskeleyin ve IBA1 lekelemesinin dışındaki vokselleri çıkarın</li>
		<li>Dosyaya yeni bir yüzey ekleme</li>
		<li>CD68 boyamasına karşılık gelen kanalı seçin</li>
		<li>CD68 boyama ile örtüşmesi gereken ve boyama hacimleriyle mümkün olduğunca yakından eşleşen bir eşik uygulayın</li>
		<li>Bu dosyada yalnızca intra-mikroglial CD68 yapıları bulunacağından ve bu nedenle başka bir eşik filtreleme adımı gerektirmediğinden işlemi sonlandırın.</li>
		<li>CD68 pozitif yapılarının sayısını ve ortalama hacmini elde edin ve kaydedin</li>
		<li>CD68 yapılarının karşılık gelen IBA1 yapılarına göre göreceli hacmini, fagositik bir durumda mikroglial aktivasyonun bir ölçüsü olarak hesaplayın.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Choi, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+and+transient+blood-brain+barrier+opening+in+the+hippocampus+of+Alzheimer%27s+double+transgenic+mice+using+focused+ultrasound%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasonic+Imaging%22%5BJournal%5D)">Noninvasive and transient blood-brain barrier opening in the hippocampus of Alzheimer's double transgenic mice using focused ultrasound.</a> Ultrasonic Imaging. 30 (3), 189-200 (2008).</li>
<li>Lipsman, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood-brain+barrier+opening+in+Alzheimer%27s+disease+using+MR-guided+focused+ultrasound%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Blood-brain barrier opening in Alzheimer's disease using MR-guided focused ultrasound.</a> Nature Communications. 9 (1), 2336(2018).</li>
<li>Pandit, R., Chen, L., Götz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+blood-brain+barrier%3A+physiology+and+strategies+for+drug+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Drug+Delivery+Reviews%22%5BJournal%5D)">The blood-brain barrier: physiology and strategies for drug delivery.</a> Advanced Drug Delivery Reviews. (19), 30238(2019).</li>
<li>Golde, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open+questions+for+Alzheimer%27s+disease+immunotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22Alzheimers+Research+%26+Therapy%22%5BJournal%5D)">Open questions for Alzheimer's disease immunotherapy.</a> Alzheimers Research & Therapy. 6 (1), 3(2014).</li>
<li>Nisbet, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+effects+of+scanning+ultrasound+and+a+tau-specific+single+chain+antibody+in+a+tau+transgenic+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%22%5BJournal%5D)">Combined effects of scanning ultrasound and a tau-specific single chain antibody in a tau transgenic mouse model.</a> Brain. 140 (5), 1220-1230 (2017).</li>
<li>Janowicz, P. W., Leinenga, G., Götz, J., Nisbet, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrasound-mediated+blood-brain+barrier+opening+enhances+delivery+of+therapeutically+relevant+formats+of+a+tau-specific+antibody%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Ultrasound-mediated blood-brain barrier opening enhances delivery of therapeutically relevant formats of a tau-specific antibody.</a> Scientific Reports. 9 (1), 9255(2019).</li>
<li>Leinenga, G., Götz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scanning+ultrasound+removes+amyloid-beta+and+restores+memory+in+an+Alzheimer%27s+disease+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Translational+Medicine%22%5BJournal%5D)">Scanning ultrasound removes amyloid-beta and restores memory in an Alzheimer's disease mouse model.</a> Science Translational Medicine. 7 (278), 233(2015).</li>
<li>Burgess, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+delivery+of+neural+stem+cells+to+the+brain+using+MRI-guided+focused+ultrasound+to+disrupt+the+blood-brain+barrier%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Targeted delivery of neural stem cells to the brain using MRI-guided focused ultrasound to disrupt the blood-brain barrier.</a> PLoS One. 6 (11), 27877(2011).</li>
<li>Chen, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Focused+ultrasound-enhanced+intranasal+brain+delivery+of+brain-derived+neurotrophic+factor%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Focused ultrasound-enhanced intranasal brain delivery of brain-derived neurotrophic factor.</a> Scientific Reports. 6, 28599(2016).</li>
<li>Leinenga, G., Langton, C., Nisbet, R., Götz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrasound+treatment+of+neurological+diseases+-+current+and+emerging+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Neurology%22%5BJournal%5D)">Ultrasound treatment of neurological diseases - current and emerging applications.</a> Nature Reviews Neurology. 12 (3), 161-174 (2016).</li>
<li>Götz, J., Halliday, G., Nisbet, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+Pathogenesis+of+the+Tauopathies%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Reviews+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Molecular Pathogenesis of the Tauopathies.</a> Annual Reviews of Pathology. 14, 239-261 (2019).</li>
<li>Pandit, R., Leinenga, G., Götz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeated+ultrasound+treatment+of+tau+transgenic+mice+clears+neuronal+tau+by+autophagy+and+improves+behavioral+functions%5BTitle%5D)+AND+%22Theranostics%22%5BJournal%5D)">Repeated ultrasound treatment of tau transgenic mice clears neuronal tau by autophagy and improves behavioral functions.</a> Theranostics. 9 (13), 3754-3767 (2019).</li>
<li>Karakatsani, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unilateral+Focused+Ultrasound-Induced+Blood-Brain+Barrier+Opening+Reduces+Phosphorylated+Tau+from+The+rTg4510+Mouse+Model%5BTitle%5D)+AND+%22Theranostics%22%5BJournal%5D)">Unilateral Focused Ultrasound-Induced Blood-Brain Barrier Opening Reduces Phosphorylated Tau from The rTg4510 Mouse Model.</a> Theranostics. 9 (18), 5396-5411 (2019).</li>
<li>Valdez, M. A., Fernandez, E., Matsunaga, T., Erickson, R. P., Trouard, T. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distribution+and+Diffusion+of+Macromolecule+Delivery+to+the+Brain+via+Focused+Ultrasound+using+Magnetic+Resonance+and+Multispectral+Fluorescence+Imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+in+Medicine+and+Biology%22%5BJournal%5D)">Distribution and Diffusion of Macromolecule Delivery to the Brain via Focused Ultrasound using Magnetic Resonance and Multispectral Fluorescence Imaging.</a> Ultrasound in Medicine and Biology. 46 (1), 122-136 (2020).</li>
</ol>

Açıklayacak hiçbir şeyimiz yok.

Floresan etiketli antikorlar, tarama modunda uygulanan mikrokabarcıklarla birlikte odaklanmış ultrason kullanılarak beyne iletilebilir. Antikor iletimi, mikroglial morfoloji ve lizozomal genişleme, taramalı ultrason sonrası floresan mikroskobu ile saptanabilir. Mikroglia, Fc-reseptör aracılı bir süreçte antikorların bağlandığı lizozom antikorlarını ve antijenlerini alabilir4.
Bu yöntemi kullanarak tekrarlanabilir BBB açıklığı ve antikor iletimi elde etmek için bir dizi ...

Terapötik ultrason, kısmen terapötik ajanların beyne erişimini kolaylaştırarak, beyin hastalıklarını invaziv olmayan bir şekilde tedavi etmeyi amaçlayan yeni bir teknolojidir1,2,3. Beyin hastalıklarını hedef alan terapötik antikorların sadece küçük bir kısmı beyin4 tarafından alınıp beyinde tutulduğundan, terapötik ultrason bunların alımını ve hedef katılımını artırma imkanı sunar5,6.
Laboratuvarımızda nörodejeneratif hastalıklar için mikrokabarcıklar kullanılarak kan-beyin bariyeri (BBB) boyunca çeşitli formatlarda bir antikorun verildiği terapötik yaklaşımlar geliştiriyoruz. Bunu başarmak için ultrason, tarama ultrasonu (SUS)7 olarak adlandırdığımız bir tarama modu kullanılarak kafatası yoluyla beyne birden fazla noktada uygulanır. Ultrason enerjisi, intravenöz olarak enjekte edilen mikro kabarcıklar ve beyin vaskülatürü arasındaki mekanik etkileşim, BBB'nin sıkı kavşaklarını belirli bir sonikasyon hacminde geçici olarak ayırır ve antikorların ve terapötik ajanlar da dahil olmak üzere diğer yüklerin bu bariyeri etkili bir şekilde geçmesine izin verir7,8,9 . Dahası, ultrasonun interstisyel beyinden antikorların nöronlar gibi beyin hücrelerine alımını kolaylaştırdığı gösterilmiştir, burada antikor hücre gövdesi boyunca ve hatta nöritik süreçlere dağılır5,10.
Alzheimer hastalığı, amiloid β ve tau patolojisi11 ile karakterizedir ve patojenik mekanizmaları incelemek ve terapötik stratejileri doğrulamak için bir dizi hayvan modeli mevcuttur. Ultrasonun tüm beyinde sıralı bir şekilde uygulandığı bir SUS yaklaşımı, birkaç tedavi seansı boyunca tekrarlandığında, amiloid β biriktiren amiloid öncü protein (APP) mutant farelerin beyinlerindeki amiloid plak patolojisini azaltabilir ve amiloidi alan mikrogliayı aktive ederek bilişsel işlevlerde iyileşmeye yol açabilir7. Ultrason ve mikrokabarcıklarla BBB açıklığı da pR5, K3 ve rTg4510 tau transgenik farelerde tau patolojisini azaltır5,12,13. Önemli olarak, mikroglia hücre dışı protein birikintilerini giderirken, SUS tarafından indüklenen intranöronal patolojiler için altta yatan klirens mekanizmalarından biri nöronal otofajinin aktivasyonudur12.
Burada, floresan olarak etiketlenmiş antikorların hazırlandığı ve daha sonra kurum içi lipit bazlı mikrokabarcıklarla karıştırıldığı, ardından anestezi uygulanan farelere retroorbital enjeksiyonun yapıldığı deneysel bir süreci özetliyoruz. Retroorbital enjeksiyon, aynı derecede etkili ve tekrar tekrar gerçekleştirilmesi daha kolay olduğunu bulduğumuz kuyruk damarı enjeksiyonuna bir alternatiftir. Bunu hemen beyne SUS uygulayarak takip eder. Terapötik antikor alımını belirlemek için, fareler kurban edilir ve beyindeki artan antikor konsantrasyonu daha sonra ölçülür. Beyin homeostazındaki değişimin bir vekili olarak, mikroglial fagositik aktivite histoloji ve hacimsel 3D rekonstrüksiyon ile belirlenir.
Üretilen veriler, antikorların ultrasonla verilmesinin nörodejeneratif hastalıkların tedavisinde potansiyel olarak çekici bir yaklaşım olduğunu göstermektedir. Protokol benzer şekilde diğer ilaç adaylarına ve tanımlanmış boyutlarda floresan etiketli dextrans gibi model kargolara da uygulanabilir14.

<table><tbody><tr><td>1,2-distearoil-sn-glisero-3-fosfokolin</td><td>Avanti</td><td>850365C</td><td></td></tr><tr><td>1,2-distearoil-sn-glisero-3-fosfoetanolamin-N-[amino(polietilenglikol)-2000]</td><td>Avanti</td><td>880128C</td><td></td></tr><tr><td>AlexaFluor 647 antikor etiketleme kiti</td><td>Thermo Fisher</td><td>A20186</td><td></td></tr><tr><td>CD68 antikoru</td><td>AbD Serotec</td><td>MCA1957GA</td><td>1:1000 seyreltme kullanın</td></tr><tr><td>Kloroform</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>372978</td><td></td></tr><tr><td>Coulter Sayacı (Multisizer 4e)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gliserol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G5516</td><td></td></tr><tr><td>Keçi tavşan önleyici IgG, Alexa Fluor 488</td><td>Thermo FIsher</td><td>A-11008</td><td>1:500 seyreltme kullanın</td></tr><tr><td>Keçi tavşan önleyici IgG, Alexa Fluor 488</td><td>Thermo Fisher</td><td>A-11077</td><td>1:500 seyreltme kullanın</td></tr><tr><td>kafa tutucu (model SG-4N, Narishige Japonya)</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Iba1 antikoru</td><td>Wako</td><td>019-19741</td><td>1:1000 seyreltme kullanın</td></tr><tr><td>Görüntü analiz yazılımı</td><td>Beckman Coulter</td><td>#8547008</td><td></td></tr><tr><td>Isoflow akış çözümü</td><td>Beckman Coulter</td><td>B43905</td><td></td></tr><tr><td>Yakın kızılötesi görüntüleme sistemi Odyssey Fc</td><td>Licor</td><td>2800-03</td><td></td></tr><tr><td>Oktafloropropan</td><td>Arcadophta</td><td>0229NC</td><td></td></tr><tr><td>Propilen Glikol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4347</td><td></td></tr><tr><td>TIPS (Tedavi Görüntüleme Probu Sistemi)</td><td>Philips Research</td><td>TIPS_007</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Bitplane</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

odaklanmış taramalı ultrason kullanarak antikorların beyne verilmesi

Delivery of Antibodies into the Brain Using Focused Scanning Ultrasound

Beyin hastalıklarını hedef alan terapötik antikorların sadece küçük bir kısmı beyin tarafından alınır. Fokuslu ultrason, kan-beyin bariyerinin (BBB) geçici olarak açılması yoluyla antikorların alımını ve katılımını arttırma imkanı sunar. Laboratuvarımızda nörodejeneratif hastalıklar için mikrokabarcıklar kullanılarak BBB boyunca çeşitli formatlarda bir antikorun verildiği, kafatası üzerinden birden fazla noktayı hedef alan odaklanmış ultrason uygulamasıyla eş zamanlı olarak terapötik yaklaşımlar geliştiriyoruz, bu yaklaşıma tarama ultrasonu (SUS) diyoruz. Mikrokabarcıkların ve ultrasonun kan damarları üzerindeki mekanik etkileri, sıkı kavşakları geçici olarak ayırarak BBB boyunca parasellüler transportu arttırır ve vezikül aracılı transsitozu arttırır, antikorların ve terapötik ajanların etkili bir şekilde geçmesine izin verir. Dahası, ultrason ayrıca antikorların interstisyel beyinden, antikorun hücre gövdesi boyunca ve hatta nöritik süreçlere dağıldığı nöronlar gibi beyin hücrelerine alımını kolaylaştırır. Çalışmalarımızda floresan etiketli antikorlar hazırlanır, kurum içinde hazırlanan lipit bazlı mikrokabarcıklarla karıştırılır ve beyne SUS uygulanmadan hemen önce farelere enjekte edilir. Beyindeki artan antikor konsantrasyonu daha sonra ölçülür. Normal beyin homeostazındaki değişiklikleri açıklamak için, mikroglial fagositoz hücresel bir belirteç olarak kullanılabilir. Üretilen veriler, antikorların ultrasonla verilmesinin nörodejeneratif hastalıkların tedavisinde çekici bir yaklaşım olduğunu göstermektedir.

Bu protokolü kullanarak floresan olarak etiketlenmiş antikorlar beyne verilir ve mikroglia aktivasyonu ile birlikte tespit edilebilir. Çıkarılabilecek sonuç, odaklanmış ultrason ve mikrokabarcıkların kullanılması, antikorların beyin alımını belirgin şekilde arttırır ve tarama modunda kullanıldığında bir farenin tüm beynine veya yarımküresine antikorlar verebilir. Şekil 1 , BBB'yi açmak için kullanılan TIPS ultrason uygulama cihazını (etiketli farklı bileşenler) göstermektedir. <strong class=...

Burada sunulan, floresan etiketli antikorları iletmek ve mikroglia'yı aktive etmek için kan-beyin bariyerini (BBB) fokal olarak veya bir fare beyni boyunca geçici olarak açmak için bir protokoldür. Ayrıca histoloji ile antikorların ve mikroglia aktivasyonunun verilmesini tespit etmek için bir yöntem sunulmaktadır.

Odaklanmış Taramalı Ultrason Kullanarak Antikorların Beyne Verilmesi

Only a small fraction of therapeutic antibodies targeting brain diseases are taken up by the brain. Focused ultrasound offers a possibility to increase ...

Terapötik antikorların sadece küçük bir kısmı beyin tarafından alınır. Yöntemimizi kullanarak, antikorlar kan-beyin bariyerini geçici olarak açarak beyne iletilir. Bu teknik, antikorları fare beynine noninvaziv bir şekilde iletmemizi sağlar.Bir hücre sayacı kullanarak mikro kabarcıkların kalite kontrolünü gerçekleştirmek için, mikro kabarcık çözeltisini amalgatörden çıkarın ve mikro kabarcık çözeltisi şişesinin septumunu delmek için 19 gauge bir iğne kullanın. 100 mikrolitre mikro kabarcıkları beş mililitre filtrelenmiş akış çözeltisinde seyreltmek için 19 gauge iğne ile donatılmış bir mililitrelik bir şırınga kullanın ve 100 mikrolitre seyreltilmiş mikro kabarcık çözeltisini bir küvette 10 mililitre filtrelenmiş akış çözeltisinde pipetleyin. Küveti hücre sayacı platformunda yerine kilitleyin ve numune alımı için 30 mikronluk bir açıklığın kullanılacağından emin olun.Yazılımda, standart çalışma yöntemini yükleyin ve standart çalışma yöntemini ve konsantrasyonu düzenle'yi seçin. Seyreltme için 5.000 kez girin ve uygula'yı ve Tamam'ı tıklayın. Uygun bir dosya adı seçmek için bilgileri düzenle'yi tıklayın. Önizleme'yi seçin ve mikro kabarcık numune konsantrasyonunun %10'dan az olduğunu doğrulayın Numune alımına başlamak için başlat ve Tamam'ı seçin.Ölçümden sonra, hücre sayacının açıklığını filtrelenmiş akış solüsyonu ile durulayın. Seyreltilmiş mikro kabarcık çözeltisinin küvetini bir su banyosunda 30 saniye boyunca sonikleştirin. Sonicated mikro kabarcık çözeltisini gösterildiği gibi ölçün ve verileri boş olarak etiketlemek için bilgileri düzenle'yi tıklayın.Boşluğu ölçtükten sonra, mikro kabarcık olmayan parçacıkları dışlamak için son okumayı ilk okumadan çıkarın. Bölümleri floresan anti-fare IgG antikoru ile etiketlemek için, üreticinin talimatlarına göre oda sıcaklığında 647 dakika boyunca 0.1 molar sodyum bikarbonat tamponunda Alexa Flour 15 ile bir miligram fare IgG antikorunu etiketleyin. İnkübasyonun sonunda, floresan etiketli antikor çözeltisini bir spin kolonuna yükleyin ve antikoru santrifüjleme ile saflaştırın.Daha sonra protein konsantrasyonunu ölçmek için bir spektrofotometre kullanın. Odaklanmış taramalı ultrason sistemini kurmak için, ultrason odağını su bolusunun tabanının dokuz milimetre altına yerleştirmek için su bolusuna beş milimetrelik bir boşluk ekleyin. Su bolusunu yaklaşık 300 mililitre gazı alınmış deiyonize su ile doldurun ve halka şeklindeki diziyi doldurulmuş su bolusuna yerleştirin.Yüzeyde hava kabarcığı olmadığını kontrol etmek için bir diş aynası kullanın ve uygulama yazılımını başlatın. Dalga biçimi menüsünde, dalga biçimi görev döngüsünü ayarla'yı seçin ve darbe tekrarlama frekansını 10 Hertz'e, görev döngüsünü %10'a, odağı 80 milimetreye, merkez frekansını bir megahertz'e, genliği 0,65 megapaskal'a ve mekanik indeksi 0,65'e ayarlayın. Dalga biçimini tanımlamak ve dalga biçimini hafızada saklamak için set'e basın.Tedavi planını seçtikten sonra, hareket denetleyicisi penceresindeki tarama sekmesini açın ve X boyutunda hareket için başlatma, durdurma ve artırma değerlerini ve Y yönündeki hareket için başlatma, durdurma ve artırma değerlerini girin. Tedavi bölgelerinin eylemlerini tanımlamak için olaya tıklayın ve komut dosyası düzenleme penceresini açın. Her tedavi bölgesinde seçilen sırayla yürütülecek eylemlerin bir listesini seçin ve hareket türünü raster ızgara olarak ayarlayın.Olaylar sekmesinde eylem ekle'yi seçin ve taşımayı eşzamanlı olarak başlat tetikleyici ARB bekle ve durdur tetikleyici ARB eylemlerini komut dosyası paneline taşıyın. Ardından bekle eylemine tıklayın ve 6.000 milisaniyelik bir bekleme süresi seçin. Bir hayvanı analize hazırlamak için, anestezi uygulanmış bir farede ayak parmağı sıkışmasına yanıt verilmediğini doğruladıktan sonra, başın merkezini etiketlemek için kalıcı bir işaretleyici kullanın, ardından küçük bir kantarın dibine alt kesik olacak şekilde plastik sargı yapıştırın ve tartı teknesini ultrason jeli ile doldurun.Odaklanmış ultrason tedavisi için, mikro kabarcıkların şişesini ters çevirin ve farenin vücut ağırlığının gramı başına bir mikrolitre çözeltiyi 29 gauge insülin şırıngasına yavaşça yükleyin. Şırıngaya 100 mikrolitre floresan etiketli antikor ekleyin ve antikoru ve şırınga içindeki mikro kabarcıkları karıştırmak için şırıngayı başparmak ve işaret parmağı arasında nazikçe ters çevirin ve yuvarlayın. Fareye dikkatlice ve yavaşça retro-orbital olarak 150 mikrolitre mikro kabarcık ve antikor çözeltisi enjekte edin ve iki dakika boyunca bir zamanlayıcı ayarlayın.Oftalmik merhem sürün, ardından fareyi baş tutucuya yerleştirin ve burnunu tutucuya sabitleyin. Küçük ultrason jeli dolgulu tartı teknesini başınızın üzerine yerleştirin ve su bolusunu, tartı teknesi içindeki ultrason jelinin üzerine oturana kadar indirin. Ardından, dönüştürücü odağını kafanın merkezinde görsel olarak hizalamak için joystick'i kullanın.Zamanlayıcı kapandığında, yazılımın hareket sekmesinde kaynağı sıfırla'yı seçin ve tam bir tarama seçin. Tedavi tamamlandığında, hayvanın gözlerine oftalmik merhem sürün ve fareyi ısıtılmış bir kurtarma odasına yerleştirin. Burada, mikro kabarcıklar doğru şekilde üretildiğinde elde edilebilecek boyut ve konsantrasyonun kültür sayacı ölçümlerinden elde edilen temsili sonuçlar gösterilmektedir.Beyin tarafından antikor alımı, bir kızılötesi tarayıcı veya bölümlerin floresan mikroskobu kullanılarak tüm beyin veya doku bölümlerinde kolayca görüntülenebilir. Bu görüntülerde gösterildiği gibi, antikorun verilmesinden sonra mikroglianın daha fagositik hale gelip gelmediğini belirlemek için mikroglia belirteçleri için temsili boyama kullanılabilir. Özellikle retro-orbital enjeksiyonları gerçekleştirirken ve dönüştürücüyü farelerin başlarının üzerine uygularken hayvanların refahını ve güvenliğini sağlamak önemlidir.Bu yöntem, hipokampus, korteks veya bireysel beyin yarım küreleri gibi beynin farklı bölgelerini hedeflemek için çeşitli tarama modellerinin uygulanmasına izin verir. Bu teknik, kan-beyin bariyerine nüfuz eden yeni tedaviler ve ilaçlar geliştirmek ve kan-beyin bariyeri oluşumu ve açılma mekanizmasını incelemek için kullanılabilir.

delivery-antibodies-into-brain-using-focused-scanning

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Kan-beyin bariyeri (KBB) ve Mikro-aracılı odaklanmış ultrason bozulması beyinde non-invaziv hedeflenen ilaç dağıtımı için umut verici bir...

Sıçan Modelinde Transkraniyal Odaklanmış Ultrason kullanarak Kan-beyin bariyeri MRG eşliğinde bozulması

Anestezi uygulanmış tümör taşıyan bir fare ile başlayın ve kafasını tıraş edin.Odaklanmış ultrason sistemi ile entegre bir MRI tarayıcısına yerleştirin.İlk MRI taraması beyin tümörünü ve yakındaki kan damarlarını bulur.İntravenöz olarak bir kontrast madde enjekte edin, ardından gazla doldurulmuş mikro kabarcıklar üzerine kaplanmış floresan etiketli nanopartikülleri uygulayın.Kontrast madde ve mikro kabarcıklar dolaşır ve beyne ulaşır.Tümör bölgesine odaklanmış ultrason dalgaları...

Tümör Tedavisi için Bir Fare Modelinde Odaklanmış Ultrasonla Geliştirilmiş Nanopartikül Dağıtımı

Bu videoda, mikro kabarcık aracılı odaklanmış ultrason (FUS) kullanarak geçici açıklıklar oluşturarak kan-beyin bariyerini (BBB) geçici olarak bozma yöntemi açıklanmaktadır. Bu geçici lokal BBB açıklıkları sonunda daha büyük boyutlu ilaç moleküllerini doğrudan beyin parankimine iletmek için kullanılabilir.

Fokus Ultrason Tabanlı Mikrokabarcık Aracılı Kan-Beyin Bariyeri Açma: Sonoporasyon Yoluyla Farenin Kan-Beyin Bariyerinde Lokalize Geçici Açıklıklar Oluşturma Tekniği

Bu video, fare beynine antikor iletimi için konveksiyonla geliştirilmiş bir dağıtım (CED) tekniğini göstermektedir. Anestezi uygulanmış bir farenin kafatası açığa çıkarılır ve antikor iletimi için hedef bölgede bir çapak deliği oluşturulur. Hedef bölgeye antikor içeren bir basamak kateteri yerleştirilir ve bir infüzyon pompası aracılığıyla, antikorları kontrollü bir oranda iletmek için bir basınç gradyanı oluşturulur.

Konveksiyonla Geliştirilmiş Antikorların Fare Beynine İletilmesi

Bu video, bir fare modelinde ultrason destekli antikor verme prosedürünü göstermektedir. Retro-orbital olarak enjekte edilen mikro kabarcıklar ultrason altında salınır ve kan-beyin bariyerinde geçici bir bozulma yaratarak etiketli antikorların beyne girmesine izin verir.

Bir fare modelinde ultrason destekli antikor verilmesi

Konveksiyon-geliştirilmiş teslimat (CED) büyük doku hacimleri doğrudan perfüzyon ile beyin içine terapötik etkili teslim sağlayan bir yöntemdir. Prosedür kateterler ve optimize enjeksiyon prosedürü kullanımı gerektirir. Bu protokol, bir antikor, bir fare beyninde CED için bir metodoloji açıklanmaktadır.

Konveksiyon ile Murine beyin içine antikorların teslimi-gelişmiş teslimat

Mikrobubble ajanları ile odaklanmış ultrason odaklama odak ve geçici kan beyin bariyeri açabilirsiniz. Bu teknik, kan beyin bariyeri boyunca çok çeşitli ajanlar sunmak için kullanılmıştır. Bu makale, MRI kılavuzu olsun veya olmadan kemirgen beynine lokalize teslimat için ayrıntılı bir protokol sağlar.

Bir Sıçan Modelinde Odaklanmış Ultrason Kullanarak Konuma Özgü Kan Beyin Bariyeri Açılışına Tezgah Üstü Yaklaşım

Kan-beyin bariyeri (BBB) mikrobubble aracılı odaklanmış ultrason (FUS) ile geçici olarak bozulabilir. Burada, ultrason olmayan uzmanlar için erişilebilen modüler bir FUS sistemi kullanarak yüksek verimli BBB açma in vivo için adım adım bir protokol açıklıyoruz.

Kemirgenlerde Kan-Beyin Bariyeri Açıklığı için Yüksek Verimli Görüntü Destekli Stereotaktik Nöronavigasyon ve Odaklanmış Ultrason Sistemi

Bu protokol, odaklanmış ultrason kan beyin bariyeri (BBB) açılması, ortaya çıkan gen ekspresyonunun değerlendirilmesi ve histolojik testlerle kemogenetik reseptörlerin nöromodülasyon aktivitesinin ölçülmesi yoluyla gen iletimi için gerekli adımları tanımlar.

Beyin Yapılarını Hedeflemek ve Kemogenetik Nöromodülasyonu Değerlendirmek için Odaklanmış Ultrason Kaynaklı Kan-Beyin Bariyeri Açılması

Bu protokol, kan-beyin bariyer geçirgenliğini artırmak için odaklanmış ultrason ve mikrobubble tedavileri sırasında kemirgen beyninin gerçek zamanlı in vivo multifoton floresan görüntülemesini sağlayan cerrahi ve teknik prosedürleri açıklar.

Kan-Beyin Bariyer Geçirgenliğini Artırmak için Odaklanmış Ultrason ve Mikrobubble Tedavilerini Görselleştirmek için Gerçek Zamanlı Intravital Multifotoğraf Mikroskopisi

Bu çalışma, kan-beyin bariyeri (BBB) açıklığını izlemek için juguler ven kateterizasyonu ile canlı sıçanları kullanan kombine manyetik rezonans görüntüleme (MRI) ve düşük yoğunluklu darbeli odaklanmış ultrason (FUS) protokolünü açıklamaktadır.

Klinik Öncesi Odaklanmış Ultrason Sistemi ile Sıçanlarda Kan-Beyin Bariyeri Açıklığının İzlenmesi

Öğrenin, odaklanmış ultrason ve mikrobaloncuk enjeksiyonu ile fare beyninde kan-beyin bariyerini geçici olarak açarak antikor teslimatı yapmayı. Bu yöntem, mikroglia aktivasyonunu incelemek için invaziv olmayan bir yaklaşım sunar.

Odaklanmış Taramalı Ultrason Kullanarak Antikorların Beyne Verilmesi

Daha fazla video keşfet