-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Sağlam Fare ve Zebra Balığı Beyinde Derin Doku Üç Fotonlu Floresan Mikroskopisi
Sağlam Fare ve Zebra Balığı Beyinde Derin Doku Üç Fotonlu Floresan Mikroskopisi
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Deep-Tissue Three-Photon Fluorescence Microscopy in Intact Mouse and Zebrafish Brain

Sağlam Fare ve Zebra Balığı Beyinde Derin Doku Üç Fotonlu Floresan Mikroskopisi

Full Text
5,276 Views
08:26 min
January 13, 2022

DOI: 10.3791/63213-v

Yusaku Hontani*1, Najva Akbari*1, Kristine E. Kolkman2, Chunyan Wu1,3, Fei Xia1,4, Kibaek Choe1, Grace Zhang Wang1, Mariya Sokolova1, Joseph R. Fetcho2, Chris Xu1

1School of Applied and Engineering Physics,Cornell University, 2Department of Neurobiology and Behavior,Cornell University, 3College of Veterinary Medicine,Cornell University, 4Meinig School of Biomedical Engineering,Cornell University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study demonstrates the protocol for in vivo deep-tissue three-photon microscopy, focusing on mouse and zebrafish brains. The technique offers high-spatial resolution imaging at depths previously inaccessible, improving our understanding of neurological diseases such as Alzheimer's and autism.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Imaging Techniques
  • Neurological Disease Research

Background

  • Three-photon microscopy allows imaging at depths that are challenging for traditional two-photon microscopy.
  • The technique contributes to studying mechanisms underlying neurological disorders.
  • Mouse and zebrafish serve as key models in life sciences for brain studies.

Purpose of Study

  • To illustrate in vivo imaging procedures for the mouse and adult zebrafish brain using three-photon microscopy.
  • To advance understanding of neurological diseases through deep-tissue imaging.
  • To provide a detailed methodology for implementing this imaging technique.

Methods Used

  • Utilized three-photon microscopy for in vivo imaging.
  • Experimental models included the mouse brain and adult zebrafish.
  • The protocol included specific laser settings and detailed positioning of imaging components for optimal results.
  • Procedures provided step-by-step guidance on animal preparation and imaging setup.

Main Results

  • High-resolution, non-invasive imaging of genetically-labeled neurons was achieved.
  • Imaging revealed distinct cellular architectures, with notable features observed in the optic tectum and cerebellum.
  • Neurons exhibited high signal-to-background ratios, facilitating deeper imaging.

Conclusions

  • The study demonstrates the capability of three-photon microscopy in imaging living brain tissues, enhancing our understanding of brain functions and disorders.
  • This method provides insights into neuronal mechanisms and plasticity associated with neurodegenerative diseases.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of three-photon microscopy?
Three-photon microscopy offers high-resolution imaging at greater depths within biological tissues compared to traditional methods, enabling detailed study of brain structures and functions.
How is the zebrafish brain prepared for imaging?
The zebrafish is anesthetized and positioned in a specially prepared Petri dish to allow for imaging, incorporating tubing for respiratory support during the procedure.
What type of data is obtained from this imaging technique?
The method provides detailed images of genetically-labeled neurons, allowing researchers to study neuronal morphology and dynamics within live tissues.
Can this imaging technique be adapted for other models?
Yes, while this study focuses on mouse and zebrafish, the protocol can be adapted to other model organisms, depending on specific research needs.
What are some key limitations of three-photon microscopy?
Limitations include the complexity of setup, potential photodamage to tissues, and the need for specific training to handle the imaging equipment.
How does this study contribute to understanding neurological diseases?
By facilitating detailed observation of brain structures and neuronal interactions, the technique aids in elucidating the pathophysiology of diseases like Alzheimer's and autism.

Üç foton mikroskopisi, fare ve zebra balığı beyinleri gibi canlı biyolojik dokuların derinliklerinde, yüksek uzaysal zamansal çözünürlükte yüksek kontrastlı floresan görüntüleme sağlar.

Protokol, fare beyninde ve yetişkin zebra balıklarında in vivo derin doku üç foton mikroskobunun nasıl gerçekleştirileceğini göstermektedir. Yaşam bilimlerinde iki önemli model sistem. Uzun dalga boylu üç foton mikroskopisi, iki foton mikroskobu ile erişilemeyen derinliklerde bozulmamış dokuların veya organların in vivo yüksek uzamsal çözünürlüklü görüntülenmesini sağlar.

Bu teknik, hastalığın beyni nasıl etkilediğine dair tam bir anlayışın eksik olduğu Alzheimer ve otizm gibi nörolojik hastalıkların altında yatan mekanizmaları anlamamıza yardımcı olabilir. Fare beyin görüntüleme prosedürünü gösteren, laboratuvarımızdan doktora sonrası araştırmacı Kibaek Choe ve zebra balığı beyin görüntüleme prosedürünü gösteren, Fetcho Araştırma Laboratuvarı'ndan bir araştırma görevlisi olan Kristine Kolkman olacaktır. Başlamak için, lazeri açın ve kollineer olmayan optik parametrik amplifikatörün avara çıkışının merkez dalga boyunu 1, 300 veya 1.700 nanometreye ayarlayın, ardından femtosaniye lazeri önceden cıvıldamak ve üç fotonlu görüntüleme için darbe süresini optimize etmek için darbe kompresörlerini ışık yoluna yerleştirin.

Lazer geçirgenliğini en üst düzeye çıkarmak için silikon plaka ve lazer yolu arasındaki açıyı Brewster'ın açısında ayarlayın, ardından yansımayı en aza indirerek Brewster'ın açısını elde etmek için silikon plakayı döndürün. Ardından, 1.300 ve 1.700 nanometre ışın hatları arasında rahatça geçiş yapmak için paletli aynalar yerleştirin. Lazerin yoğunluğunu kontrol etmek için bir dönme aşamasına monte edilmiş yarım dalga plakası ve polarize edici bir ışın ayırıcı yerleştirin, ardından ışın ayırıcının yansıma yoluna bir ışın engelleyici yerleştirin.

0,5 santimetre% 2 yüksek erime noktası agar ile bir Petri kabı hazırlayın. Agar soğuduktan ve katılaştıktan sonra, agarda balıktan daha uzun ve biraz daha geniş dikdörtgen bir delik açın. Balmumu kullanarak, Petri kabına ince bir boruyu, dikdörtgende bir ucu ve Petri kabının kenarına daha büyük çaplı bir boru ile takın.

Daha sonra, balığı mililitre trikain çözeltisi başına 0.2 miligramlık bir çözeltiye yerleştirerek anestezi yapın, daha sonra anestezi altındaki balığı ıslak bir sünger üzerine yan tarafına yerleştirin, daha sonra bir mikroşırınga kullanarak, balığı felç etmek için retro-orbital olarak 3 mikrolitre pankuronyum bromür enjekte edin ve tamamen felç olmasını sağlamak için kısaca Hank'in çözeltisine yerleştirin. Daha sonra, balığın sırt tarafını Petri kabına yukarı doğru yerleştirin, ardından forseps kullanarak, balığın ağzını yavaşça açın ve tüpü ağzına kaydırın. Balıkları yavaşça boruya doğru kaydırın, böylece boru balığın ağzının arkasında olacaktır.

Hızlıca, ama nazikçe, agar'ı balığın etrafında kurutun ve balığın üstündeki suyu çıkarın. Küçük bir laboratuvar dokusu parçasını laboratuvar yapıştırıcısına batırın ve dokuyu balığın her iki tarafındaki agarın üzerine ve balığın sırt kaudalinin üzerinden solungaçlara koyun. Daha sonra, doğrudan başın yüzeyine küçük bir damla bupivakain yerleştirerek balığın derisini uyuşturun, ardından Petri kabını balıkla birlikte mikroskopa getirin.

Kabı balık tesisi suyuyla doldurun ve sistem suyunu balığın ağzına pompalamak için boruya bir su pompasına bağlayın. Suyun bir kabarcıkla oksijenlendiğinden ve bir akvaryum ısıtıcısıyla 30 santigrat dereceye kadar ısıtıldığından emin olun. Görüntüleme için, üç fotonlu mikroskopa düşük büyütmeli bir hedef yerleştirin, ardından balıkları ve tüpleri içeren Petri kabını mikroskop altına yerleştirin ve Petri kabını aydınlatmak için bir LED ışık kaynağı kullanın.

Görüntü alma yazılımından Kamera modunu açın, Canlı'yı tıklayın, ekranın sağ tarafındaki A kanalını seçin ve görüntüyü net bir şekilde görmek için histogram ayarlarını yapın. Motor kontrolöründeki motor ayarını tabana ayarladıktan sonra, balık görünene kadar hedefi düşürün. Balık kafasının merkezini görüş alanının merkezine yerleştirin, ardından hedefi balığın kafasından yukarı ve uzağa hareket ettirin.

Düşük büyütmeli objektif lensi, üç fotonlu görüntüleme için yüksek sayısal diyaframlı objektif lensle değiştirin, ardından balığın kafasına doğru yaklaştırın. Tüm motorların eksen değerlerini sıfıra ayarlayın. Objektif lensi yavaşça alçaltın, objektifin kafaya fiziksel olarak temas etmemesini sağlayın.

CCD kamera yazılımında, başın üst kısmı göründüğünde hedefi hareket ettirmeyi bırakın ve X, Y ve Z konumlarını sıfıra ayarlayın. LED ışık kaynağını kapatın ve sistemin etrafındaki karanlık perdeyi kapatın, ardından görüntüleme alma yazılımını üç fotonlu görüntüleme için çoklu foton GG moduna ayarlayın ve objektif lensin altındaki gücü bir miliwatt'tan daha az bir değere ayarlayın. Görüntü alma yazılımındaki Canlı düğmesine tıklayın.

PMT kanallarını açın ve PMT kazancını ve arka plan seviyesini gerektiği gibi ayarlayın. THG kanalını büyük kan damarlarından ve pencere camı yüzeyinden izleyerek başın yüzeyini bulmak için objektif lensi yavaşça yukarı doğru hareket ettirin. Hedef lensi pencereye yaklaştırdıktan sonra, objektif ile kafatası penceresi arasına su uygulayın, ardından tüm motorların eksen değerlerini sıfıra ayarlayın.

Görüntü alma yazılımındaki Canlı düğmesine tıklayın. PMT kanallarını açın ve PMT kazancını ve arka plan seviyesini gerektiği gibi ayarlayın, ardından THG kanalını büyük kan damarlarından ve pencere camı yüzeyinden izleyerek kapak kaymasının yüzeyini bulmak için objektif lensi yavaşça yukarı doğru hareket ettirin. Gerekirse pencere yönünü ayarlayın, ardından beynin yüzeyini tanımlamak için motorları sıfırlayın.

Görüntüleme gerçekleştirin ve güç seviyesini görüntüleme derinliğine göre ayarlayın. Yetişkin zebra balığı beynindeki genetik olarak etiketlenmiş nöronların yüksek çözünürlüklü, invaziv olmayan ve derin görüntülemesi, üç foton mikroskobu kullanılarak elde edilir. Optik tektum ve beyincikteki hücre katmanlarının dağılımı da gözlemlenebilir.

Mikroskobun kamera özelliği balığın yerini belirlemek için kullanıldı. Kafatası, beyinde gezinmeye ve üst yüzeyi bulmaya yardımcı olan THG kanalında görülür. Nöronlar, yetişkin beyninin derinliklerinde yüksek sinyal-arka plan oranı ile ayırt edilebilir.

GCaMP6s etiketli nöronların ve Teksas Kırmızı etiketli kan damarlarının çok renkli üç foton görüntüleri, yetişkin fare beynindeki THG sinyalleri ile birlikte burada gösterilmektedir. Kurulum optimizasyonu ile, CA1 hipokampus bölgesindeki beyin yüzeyinden 1,2 milimetreye kadar yüksek kontrastlı görüntüler başarıyla elde edildi. GCaMP6s etiketli nöronların kalsiyum aktivitesi izleri, 10 dakikalık bir kayıt oturumu için 750 mikrometre derinlikte yüksek kayıt doğruluğu gösterdi.

Bu kurulum, beyin fonksiyonunu anlamak için nöronal aktiviteyi görselleştirmeye yardımcı olabilir. Çeşitli biyolojik sistemleri anlamak için biyolojik doku içindeki hücre hareketini izlemek için de kullanılabilir. Ek olarak, hayvanın sağlığını izlemek için kan akış hızı da ölçülebilir.

Explore More Videos

Nörobilim Sayı 179 Üç fotonlu floresan görüntüleme intravital görüntüleme derin doku gözlemi nörogörüntüleme fare beyni zebra balığı beyni

Related Videos

İki foton axotomy ve zaman atlamalı konfokal görüntüleme canlı zebrafish embriyolar

12:21

İki foton axotomy ve zaman atlamalı konfokal görüntüleme canlı zebrafish embriyolar

Related Videos

14.6K Views

Yarı Kalın Beyin Slices Yüksek Çözünürlük Floresans Görüntüleme Hızlı Bir Yaklaşım

04:35

Yarı Kalın Beyin Slices Yüksek Çözünürlük Floresans Görüntüleme Hızlı Bir Yaklaşım

Related Videos

16.9K Views

YFP ifade Temizlendi Fare Beyin Multiphoton Mikroskopi

10:03

YFP ifade Temizlendi Fare Beyin Multiphoton Mikroskopi

Related Videos

14.4K Views

Üç Fotonlu Floresan Mikroskobu Kullanılarak Bir Zebra Balığı Beyninin Derin Doku Görüntülemesi

03:22

Üç Fotonlu Floresan Mikroskobu Kullanılarak Bir Zebra Balığı Beyninin Derin Doku Görüntülemesi

Related Videos

397 Views

Görüntüleme ve Embriyonik Zebra balığı Serebrovasküler Yapıların 3D İmar

08:00

Görüntüleme ve Embriyonik Zebra balığı Serebrovasküler Yapıların 3D İmar

Related Videos

15.4K Views

Eşodaklı Işık Sac Mikroskobu ile Tüm Fare Brain mikron çaplı Çözünürlük Optik Tomografi

09:49

Eşodaklı Işık Sac Mikroskobu ile Tüm Fare Brain mikron çaplı Çözünürlük Optik Tomografi

Related Videos

17.2K Views

Kafatası ve Deri Temizleme ile Uyanık Zebra Balığı Larvaları ve Yavrularında Tam Aktif Beyin Dokusunun In vivo Görüntülemesi

05:25

Kafatası ve Deri Temizleme ile Uyanık Zebra Balığı Larvaları ve Yavrularında Tam Aktif Beyin Dokusunun In vivo Görüntülemesi

Related Videos

5.7K Views

Kapalı Kafatası Travmatik Beyin Hasarı ve Kraniyal Penceresi Olan Farelerde Floresan Protein Ekspresyonunun İki Foton Mikroskobu Kullanılarak İntravital Görüntülenmesi

08:25

Kapalı Kafatası Travmatik Beyin Hasarı ve Kraniyal Penceresi Olan Farelerde Floresan Protein Ekspresyonunun İki Foton Mikroskobu Kullanılarak İntravital Görüntülenmesi

Related Videos

1.8K Views

İn Vivo Üç Boyutlu Floresan Mikroskobu Kullanılarak Zebra Balığı Larvalarının Tüm Beyin Görüntülemesi

06:27

İn Vivo Üç Boyutlu Floresan Mikroskobu Kullanılarak Zebra Balığı Larvalarının Tüm Beyin Görüntülemesi

Related Videos

5.8K Views

Davranan Yetişkin Zebra Balıklarında Ön Beyin Aktivitesinin İki Fotonlu Kalsiyum Görüntülemesi

07:21

Davranan Yetişkin Zebra Balıklarında Ön Beyin Aktivitesinin İki Fotonlu Kalsiyum Görüntülemesi

Related Videos

3.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code