Pour commencer, à l’aide d’un microtome, découpez les tissus de fibrose sous-muqueuse orale enrobés de paraffine fixe au formol en sections continues de trois à 10 micromètres d’épaisseur, puis dépliez les sections dans l’eau. Placez trois sections de microns sur la lame de microscope d’adhérence ou la lame A, et 10 microns sur la lame ou la lame B de la membrane du stylo.Placez les deux lames sur une plaque chauffante à 60 degrés Celsius. Après deux heures, placez les lames A et B dans du xylène pendant 10 minutes, puis hydratez les lames à des concentrations d’éthanol graduées pendant une minute à chaque concentration.
Ensuite, placez les lames dans de l’eau distillée ultra-pure pendant 30 secondes. Faire tremper les lames dans la solution de colorant à base d’hématoxyline Harris pendant 90 secondes. Lavez à nouveau les lames trois fois dans de l’eau distillée ultra-pure pendant 30 secondes chacune.
Après cela, plongez les lames dans une solution de div-hématoxyline pendant deux secondes. Remettez les lames dans de l’eau distillée ultra-pure pendant 30 secondes, en répétant trois fois. Ensuite, plongez les lames A et B dans une solution à 1 % de rebleu pendant deux secondes.
Après avoir lavé les lames avec de l’eau distillée, placez-les dans une solution d’éosine pendant deux secondes. Plongez à nouveau les lames dans de l’eau distillée ultra-pure pendant 30 secondes avant de les déshydrater et d’augmenter les concentrations d’éthanol, puis plongez la lame A dans du xylène pendant trois minutes. Enfin, appliquez une goutte de médium de montage sur la lame A et couvrez-la d’un couvercle en verre.