Multiplex PCR הפוך כתם וקו הכלאה Assay (mPCR / RLB)

Biology
JoVE Journal
Biology
AccessviaTrial
 

Summary

שיטה זולה, תפוקה גבוהה לגילוי סימולטני של עד 43 מטרות מולקולריות מתואר. יישומים של mPCR / RLB כוללים הקלדה וזיהוי של חיידקים פתוגנים רבים של דוגמאות קליניות.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

O'Sullivan, M. V. N., Zhou, F., Sintchenko, V., Kong, F., Gilbert, G. L. Multiplex PCR and Reverse Line Blot Hybridization Assay (mPCR/RLB). J. Vis. Exp. (54), e2781, doi:10.3791/2781 (2011).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Multiplex PCR / קו הפוך כתם assay הכלאה מאפשרת זיהוי של עד 43 מטרות מולקולריות ב 43 דגימות באמצעות אחד ה-PCR זמנית תגובה ואחריו הכלאה בדיקה על קרום ניילון, אשר מחדש שמיש. בדיקות הן אמין "5 שונה על מנת לאפשר קיבוע על הממברנה. Primers הם ביוטין 5 "שונה המאפשר זיהוי של הכלאה מוצרים באמצעות PCR streptavidin-peroxidase ואת המצע chemiluminescent באמצעות סרט רגיש. עם ההתקנה עלויות נמוכות מתכלים, טכניקה זו היא זולה (כ 2 $ ארה"ב לפי המדגם), קצב העברת נתונים גבוה (ממברנות מרובים יכול להיות מעובד בו זמנית) ויש לו זמן תגובה קצר (כ 10 שעות).

הטכניקה ניתן להשתמש במספר דרכים. בדיקות מרובות ניתן נועד לזהות וריאציה רצף בתוך מוצר מוגבר אחד, או מספר רב של מוצרים יכול להיות מוגבר בעת ובעונה אחת, עם אחד (או יותר) בדיקות לגילוי שימוש לאחר מכן. השילוב של שתי הגישות יכול לשמש גם בתוך assay אחד. היכולת לכלול בדיקות מרובות רצף מטרה אחת עושה assay מאוד ספציפיות.

פורסם יישומים של mPCR / RLB כוללים זיהוי של גנים 1,2 התנגדות לאנטיביוטיקה, הקלדה של סטפילוקוקוס עמידים-methicillin 3-5 ו סלמונלה sp 6, serotyping המולקולרי של Streptococcus pneumoniae 7,8, סטרפטוקוקוס agalactiae 9 ו enteroviruses 10,11, זיהוי של Mycobacterium sp 12, זיהוי של המין 13-15 ו - 16 בדרכי הנשימה ועוד 17 פתוגנים איתור וזיהוי של mollicutes 18. עם זאת, את צדדיות של הטכניקה אמצעי יישומים בלתי מוגבלות כמעט ולא מוגבלת ניתוח מולקולרית של מיקרואורגניזמים.

חמשת השלבים mPCR / RLB הם פריימר) ועיצוב החללית, ב) מיצוי דנ"א הגברה PCR ג) הכנת הממברנה, ד) הכלאת זיהוי, ו-e) התחדשות של הממברנה.

Protocol

בחינה קפדנית חייב להינתן פריימר ועיצוב החללית. רצפים זמין כל היעדים של עניין ממסדי נתונים כגון GenBank צריך להיות מנוצל כדי לזהות אזורים שמורים אשר הם מטרות מתאימות. איפה מספר רב של מטרות נמצאים מוגבר ב assay mPCR יחיד, כל רצף מוגבר צריכה להיות באורך דומה, לא יעלה על 300 זוגות בסיסים, כדי למנוע תחרות. יישום החלופה של השיטה היא כדי להגביר עוד יעד אחד באמצעות primers נגד אזורים שימור להשתמש בדיקות מרובות כדי לזהות וריאציה רצף בתוך amplicon. במקרה זה, המוצר מוגבר PCR עשוי להיות ארוך יותר. הטמפרטורות פריימר חישול צריכים להיות דומים, עם תנאים PCR בהתאם. Primers המהווים מבנה משני חזקה או דימר פריימר יש להימנע. סיגמא אולדריץ DNA מחשבון ( http://www.sigma-genosys.com/calc/DNACalc.asp ) ניתן להשתמש כדי לנבא תכונות אלה.

בדיקות ה-DNA צריך להיות מתוכנן להיות חישול בטמפרטורה קרובה ל -60 ° C. כדי למקסם את סגוליות, שתי חלליות עבור מטרה כל העניין ניתן לכלול assay, אחד והכלאה על גדיל ה-DNA קדימה סמוך לאתר פריימר הפוך מחייב, והשני גדיל הפוכה סמוך לאתר פריימר קדימה מחייב. במקרה זה, הן primers קדימה חייבת להיות הפוכה ביוטין, שונה. אם רק אחד בדיקה לכל מטרה מוגבר נמצא בשימוש, אז רק אחד פריימר צריך להיות ביוטין שונה.

בעת תכנון primers ו בדיקות עבור assay mPCR / RLB מומלץ בחום להשתמש בשיטות סיליקו לחזות מוצרי ה-PCR ו הכלאה בדיקה כדי לתאם עם בתוצאות חוץ גופית. באופן אידיאלי זה נעשה באמצעות מבודד עבורו את רצף הגנום כולו זמין. תוכנות כגון FastPCR (זמין ב http://primerdigital.com/fastpcr.html) יכול לשמש למטרה זו. אות בדיקה חלש או נעדר ניתן לחזות היכן בניתוח סיליקו מציין זוג בסיס חוסר התאמה וכתוצאה מכך הטמפרטורות בדיקה נמוך חישול.

טכניקות DNA מיצוי ישתנו בהתאם דגימות נבדקות, ותנאי PCR יהיה תלוי בעיצוב פריימר. הקוראים מתייחסים לפרסומים על מבחני הפרט לקבל מידע נוסף לגבי מיצוי דנ"א ריאגנטים PCR ותנאי 1-19.

Assay כל לרוץ עם בקרה נאותים כדי לספק לפחות אחת חיובית ואחת שלילית אות בדיקה עבור כל בדיקה על הממברנה, וכן דנ"א ללא שליטה. כמו כן הוא מועיל לכלול בדיקה בחלק העליון של קרום זה צפוי להיות חיובי עבור כל דגימות (למשל: מין או בדיקה ספציפית הסוג במקרה של מיקרו אורגניזם). בדיקה זו משמשת שליטה חיובית, אלא גם מאפשר התמצאות קלה של התוצאות.

1. הכנת ממברנה

  1. הכן את הפתרונות הבאים:
    • 100 מ"ל NaHCO3 0.5m (pH 8.4)
    • 100 מ"ל NaHCO 3 0.5m
    • 20 מ"ל 16% EDAC
    • 250 מ"ל 0.1 M NaOH
    • 250 מ"ל 2xSSPE
    • 250 מ"ל SDS 2xSSPE/0.1% - מקום waterbath ב 60 ° C
    • 250 מ"ל 20 mM EDTA.
  2. מחממים תנור ל 60 ° C.
  3. נקו את Miniblotter Immunetics עם אתנול 70%.
  4. לדלל את בדיקות oligonucleotide ב 0.5 M NaHCO 3 עד ריכוז סופי של pmol 2 / μl ואת נפח של μl 200.
  5. גזור קרום ניילון BiodyneC עד 15x15 ס"מ. בעזרת עיפרון שליט, כלל את חלל 0.5 ס"מ לרוחב החלק העליון של קרום ולכתוב פרטים כאן.
  6. קרום חותם בתוך שקית ניילון עם 20 מ"ל טרי עשה פתרון EDAC 16% ו רוק בטמפרטורת החדר למשך 10 דקות.
  7. לשטוף במים deionised קרום למשך 30 שניות.
  8. המקום קרום ב miniblotter עם ערוצי פועל על פני קרום (במקביל לקו עיפרון). שימי כרית תמיכה במקומו הסופג קרוב. לשאוב נוזל מתוך ערוצים.
  9. מילוי נתיבים 1 ו 45 עם 150 μl 0.5 M NaHCO 3. השתמש 150 μl של כל פתרון בדיקה למלא נתיבי 2-44 ברצף, להיות זהיר, כדי למנוע בועות אוויר. אם בועת אוויר מופיע בערוץ, שמירה על פיפטה במקום, במהירות לשאוב את הפתרון כדי לאפשר את בועת אוויר לצוף לראש פיפטה, ולאחר מכן נסה שוב. דגירה בטמפרטורת החדר במשך 5 דקות.
  10. לשאוב פתרונות בדיקה, להסיר ולשטוף בתוך קרום 250 מ"ל 0.1 M NaOH בטמפרטורת החדר למשך 9 דקות.
  11. לשטוף קרום ב 250 מ"ל 2xSSPE למשך 30 שניות.
  12. לשטוף קרום ב 250 מ"ל מראש חימם SDS 2xSSPE/0.1% בתנור ב 60 ° C במשך 5 דקות.
  13. אם לא בשימוש הכלאה מיד, לשטוף את הממברנה של 240 מ"ל 20 mM EDTA בטמפרטורת החדר למשך 20 דקות (שומר 10 מ"ל הנותרים), ואז לאטום קרום בתוך שקית פלסטיק עם שאר 10 מ"ל 20 mM EDTA ו storדואר במקרר ב 4 ° C.
  14. לשטוף עם miniblotter Pyroneg חומר ניקוי במברשת. לשטוף ולאפשר לו להתייבש.

2. הכלאת איתור

  1. הכן את הפתרונות הבאים:
    • 250 מ"ל SDS 2xSSPE/0.1% - חנות באמבט מים ב 60 ° C.
    • 500 מ"ל SDS 2xSSPE/0.5% - חנות באמבט מים ב 60 ° C
    • 500 מ"ל SDS 2xSSPE/0.5% - חנות בתנור ב 42 ° C
    • 500 מ"ל 2xSSPE - לשמור בטמפרטורת החדר
    • 500 מ"ל 1% SDS - חנות באמבט מים ב 60 ° C בתחילה (עבור שלב 3)
    • 250 מ"ל 20 mM EDTA - לאחסן בטמפרטורת החדר (עבור שלב 3).
  2. הפעל את תנור אחד בכל 60 ° C ואחד תנור ל 42 ° C. מרתיחים את המים בכוס גדולה על פלטה חמה.
  3. נקה Immunetics Miniblotter עם אתנול 70%.
  4. Aliquot 10 מ"ל של SDS 2xSSPE/0.1% לתוך מיכל קטן. הוסף 20 μl של כל מוצר ה-PCR ל 150% SDS 2xSSPE/0.1 μl צינורות ספורים.
  5. מרתיחים מוצרים PCR עבור 10 דקות ב 100 מעלות צלזיוס באמצעות בעלי קלקר. מניחים על קרח מיד לפחות 5 דקות.
  6. לשטוף קרום הנותרים ב 240 מ"ל SDS 2xSSPE/0.1% ב 60 ° C בתנור במשך 5 דקות.
  7. המקום קרום ב miniblotter עם כרית גיבוי. כדי להתמצא ערוצי לרוץ במאונך (בניצב קו עיפרון).
  8. עודף יניקה נוזל ערוצי miniblotter.
  9. הוסף הנותרים 150 SDS 2xSSPE/0.1% μl לערוצים הראשונה והאחרונה. הוסף מבושל מוצרים PCR לערוצים הנותרים (2-44) ברצף, להיות זהיר, כדי למנוע בועות אוויר.
  10. המקום miniblotter שטוח 60 ° C בתנור במשך שעה 1 כדי לאפשר הכלאה להתקיים.
  11. נוזל לשאוב מערוץ אחד ולאחר מכן להסיר קרום מן miniblotter.
  12. לשטוף פעמיים prewarmed 250 מ"ל SDS 2xSSPE/0.5% בתנור 60 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות.
  13. לחלח רשת ניילון עם הפרדה SDS 2xSSPE/0.5% ב 42 ° C ולהשתמש בו כדי להפשיל הממברנה.
  14. המקום מגולגל הממברנה לתוך צינור גלגלת, ואת לפרוש כדי להבטיח קרום abuts את פני השטח הפנימי. הוסף 3 μl המצומד streptavidin-peroxidase (Roche Applied Science) על 15 מ"ל SDS 2xSSPE/0.5% ב 42 ° C ולהוסיף צינור הרים. בורג מכסה על בחוזקה דגירה בתנור רולר על 42 מעלות צלזיוס למשך 60 דקות. ודא כיוון רול הוא כזה קרום לא להדק. בדוק מעת לעת דליפות.
  15. לשטוף miniblotter ב Pyroneg דטרגנט ומים, לשטוף ולאפשר לו להתייבש.
  16. הסרת קרום מהצינור הרים. לשטוף פעמיים הנותרים 2xSSPE/0.5% SDS על 42 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות.
  17. לשטוף פעמיים 2xSSPE בטמפרטורת החדר למשך 5 דקות.
  18. הפעל את התנור עד 80 מעלות צלזיוס, במקום 1% SDS 500ml בתנור חם מראש.
  19. מאפרים 15 מ"ל Amersham פתרון ECL זיהוי (7.5 מ"ל של תמיסת A ו 7.5 מ"ל של תמיסת B). בטל 2xSSPE ולהוסיף פתרון זיהוי. רוק בעדינות ביד במשך 2 דקות להבטיח כיסוי מלא של הממברנה עם פתרון. בטל פתרון chemiluminescent.
  20. חותכים שתי יריעות של ניילון שקיפות כדי להתאים מחסנית חשיפה. המקום קרום בין שני סדינים במקום לתוך מחסנית חשיפה.
  21. המשך אל החושך. תחת אור אדום, להוסיף סרט זיהוי ECL למחסנית ולחשוף במשך 5 דקות. כלב באוזן ימין בפינה התחתונה של הסרט עם הסרת לאפשר בכיוון הנכון בעת ​​הצפייה.
  22. הסרט פתח עם מפתח אוטומטיות או אמבטיות כימיים כמו יצרן לכל הכיוונים.
  23. חזור על החשיפה פעמים עם חשיפה ארוך או קצר אם נדרש.

3. התחדשות של ממברנה

  1. לשטוף קרום 250 מ"ל ב SDS 1% ב 80 מעלות צלזיוס במשך 30 דקות פעמיים.
  2. לשטוף קרום 240 מ"ל ב 20 מ"מ EDTA בטמפרטורת החדר למשך 15 דקות.
  3. חותם קרום בשקית פלסטיק עם 10 מ"ל 20 mM EDTA ושומרים במקרר ב 4 מעלות צלזיוס לשימוש מחדש בעתיד.

4. נציג תוצאות:

התוצאות הן הנצפים ביותר על ידי הצבת את הסרט על הרשת מודפס, או אחר סריקת תמונה וייבוא ​​לתוך התוכנה כגון BioNumerics (יישומי מתמטיקה, Sint-מרטנס-Latem, בלגיה). התוצאה בכל בדיקה יש לפרש תוך התייחסות בדיקות בקרה חיוביים ושליליים. התוצאות מדורגות כמיטב שלילי או חיובי חלש. תוצאות חיוביות שבו האות חזק כמו או יותר חזק לחקור את השליטה חיובית. תוצאות שליליות הן שם האות נעדר או שווה לשלוט השלילי (במקרה של אות הרקע). תוצאות חלשות הם שבו האות חלש יותר מאשר לחקור את השליטה חיובי, אבל חזק יותר שליטה שלילית. תוצאות חלש עשוי להיות תוצאה של מוטציות נקודה המוביל מחייב בדיקה חלש, או בשל אי - ספציפי אותות היווצרות dimer פריימר. באמצעות שתי בדיקות לכל יעד הריבית יכולה לשפר את הספציפיות, שם תוצאה חלשה יחיד יכול בבטחה להתפרש האות הלא ספציפית. אם נותר ספק כלשהו, ​​תגובה אחת Plex PCR ניתן לבצע עם זיהוי הג'ל מבוסס רצף של המגבר כלlified מוצר כדי לקבוע אם התוצאה היא חיובית באמת. התוצאה נציג מוצג באיור 2.

איור 1
1. איור mPCR / RLB עקרונות (P1) שלב 1.9. אמין בדיקות שונה קשורים קוולנטית אל קרום ניילון. (P2) שלב 2.10. ביוטין שונה מוצרים PCR הם הכלאה של בדיקות. (P3) שלב 2.14. Streptavidin, שכותרתו עם peroxidase, הוא מודגרות עם הקרום ונקשר ביוטין. (P4) שלבים 2.19-2.21. Peroxidase catalyses תגובה של ריאגנטים זיהוי ECL, ייצור אור שבה הסרט רגיש לאור חשוף. הממברנה נשטף אז לשימוש חוזר.

איור 2
איור 2. MPCR נציג / RLB התוצאה. דוגמאות 1 עד 6 לייצג שולטת חיובית - ביניהם יש אחד לפחות אות בדיקה חיובית עבור כל אחד 43 בדיקות. כל רצף היעד (באמצעות U) מזוהה עם שתי בדיקות שונות על מנת למקסם את סגוליות. בדיקות A1 ו-A2 לייצג מינים ספציפיים בדיקות אשר צפויים להיות חיוביים עבור כל דגימה ולסייע עם המכוונת את הסרט. בדיקה A1 חוזר בחלק התחתון של הממברנה. דוגמאות 7 ו -8 הם שולטת שלילית. שים לב, בדיקות Q1, Q2, T1 ו-T2 יש אות שולטת שלילי, המעיד על הכריכה ספציפי סביר של primers או דימר המוצר פריימר. עיצוב מחדש של אלו בדיקות או primers יהיה צורך. בדיקות C1, D1 ולהראות F1 נמרח על פני קרום הנראה בשל ספיגת הלא ספציפית כמה המצומד streptavidin-peroxidase או המצע chemiluminescent, אולם זה נכון להבחין בקלות בין אותות בדיקה חיובית. בדיקות D1 ו-D2 יש אות חלש יחסית לעומת בדיקות אחרות, זה יכול להיות בגלל amplicons גדול המוביל הגברה פחות יעיל. בדיקה J2 הוא שלילי הוא מספר דוגמאות (1, 3, 4, 6, 39) שבו חללית J1 היא חיובית. זה ככל הנראה מייצג מוטציה מחייב האתר J2 עבור דגימות אלה.

Discussion

השיטה mPCR / RLB היתרי זיהוי סימולטני של מספר רב של amplicons PCR. בשל הרגישות הגבוהה של בדיקה לגילוי מבוססי chemiluminescent, זמנית יחיד PCR תגובה עם מספר גדול של זוגות פריימר יכול לשמש כדי להגביר את תבנית ה-DNA.

אם לא מתקבלים אותות בדיקה עם אחד או יותר דגימות, ביצוע אלקטרופורזה בג'ל עם מוצר ה-PCR הנותרים יכולה לסייע להבחין אם הבעיה היא עם הגברה PCR או הכלאה בדיקה. איפה כל אותות בדיקה על הממברנה חלשים או נעדרים, אבל ג'ל אלקטרופורזה מציין מוצלח הגברה PCR, האפשרויות כוללות בעיות עם תיוג של הממברנה, התחדשות שגוי של קרום לאחר השימוש הקודם, טמפרטורות נכונות במהלך הדגירה הכלאה או streptavidin, או פגום streptavidin- peroxidase המצומד או מגיב לגילוי.

אם דגימות בקרת עולה כי בדיקות בודדים ניתן לייצר אותות שלילי כוזב, PCR יחיד עם זיהוי הג'ל מבוסס רצף הבאות ניתן לבצע כדי לוודא הגברה של מוצר ה-PCR ולחפש וריאציה רצף באתר מחייב בדיקה. אות בדיקה חלש או נעדר יכול להיות בגלל גודל amplicon גדול: אם אפשר amplicons כל צריך להיות באורך דומה פחות מ -300 נ"ב. מבנה ה-DNA משני של amplicons יכול גם לייצר מחייב בדיקה עני, ועלול להצריך עיצוב מחדש של ספרי לימוד. פריימר בודדת או ריכוזי בדיקה עשוי גם להיות מגוונות כדי לייעל את עוצמת האות.

אותות חיוביים False בשל מחייב בדיקה של primers nonamplified או פריימר-dimer המוצר יכול להיחקר על ידי ביצוע PCR יחיד עם זיהוי הג'ל מבוסס רצף הבאים. במקרה זה, עיצוב מחדש של בדיקות ניתן חייבה. מוטציות נקודתיות באתרים מחייב בדיקה עלולה להוביל אותות חלשים או נעדרים. מתן שתי בדיקות עבור כל מוצר מוגבר עושה את זה קל לזהות. מאפיין זה עשוי להיות מנוצל עם פריימר זהיר ועיצוב בדיקה כדי לזהות שינויים קטנים ב-DNA רצף היעד.

לסיכום, בעוד ישנן שיטות רבות של זיהוי המוצר הבא תגובה זמנית PCR זמין, mPCR / RLB יש את היתרון של להיות תפוקה גבוהה וזול, עם עלויות התקנה נמוכות. הגמישות של השיטה היתרי השימוש בו למגוון רחב של יישומים.

Disclosures

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

Acknowledgments

מתיו או 'סאליבן ואת פיי ג'ואו הם מקבלי האוסטרלית הלאומית לבריאות המועצה למחקר רפואי לתארים מתקדמים מלגות למחקר רפואי.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
5’ amine C6 modified oligonucleotide probes Sigma-Aldrich
NaHCO3 Sigma-Aldrich S-8875 0.5 M solution made up to pH 8.4
NaOH Sigma-Aldrich S5881 0.1M solution
20xSSPE buffer Amresco 0810-4L
Sodium dodecyl sulfate (SDS) Sigma-Aldrich L-4390 Make up 10% stock solution, do not autoclave, should be kept for 1 week maximum before use
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich E9884 Make up 0.5 M solution adjusted to pH 8.0 and autoclave
N-(3-Dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimide hydrochloride (EDAC) Sigma-Aldrich E7750 Make up a 20 ml 16% solution just prior to use using 3.2 g EDAC and 18 ml Millipore water
BiodyneC 0.45 μm nylon Membrane 20x20 cm Pall Corporation 74480C
Deionised, purified water
Liquid Pyroneg detergent Johnson Diversey HH12291
Streptavidin-peroxidase conjugate Roche Group 11 089 153 001
Amersham ECL detection reagents GE Healthcare RPN2105
Amersham ECL detection reagents GE Healthcare RPN2105
OHP Transparency film Corporate Express EXP 504 OHP
Amersham hyperfilm ECL high performance chemiluminescent film 18x24 cm GE Healthcare 28906837
Ice
Table 1. Consumables used in the mPCR/RLB assay.
Hybaid Shake’n’Stack Ovens (2) rolling bottle and nylon separating mesh Thermo Fisher Scientific, Inc. HBSNSRS220 Method can be performed with a single oven as long as there is facility for maintaining solutions at 42°C and 60°C prior to use
The Belly Dancer rocking platform Stovall Life Sciences, IBI Sciences Euro BDbo
Miniblotter Immunetics MN100-45
Water bath
Suction
Hot plate
Exposure cartridge Sigma-Aldrich Z36,009-0
X-ray film developer Can also use developer, fixer and water in trays in dark room instead of automated developer. Lumino-imager may also be used instead of Xray film
Table 2. Equipment required for the mPCR/RLB assay.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. O'Sullivan, M. V., Cai, Y., Kong, F., Zeng, X., Gilbert, G. L. Influence of disk separation distance on accuracy of the disk approximation test for detection of inducible clindamycin resistance in Staphylococcus spp. J Clin Microbiol. 44, 4072-4076 (2006).
  2. Zeng, X., Kong, F., Wang, H., Darbar, A., Gilbert, G. L. Simultaneous detection of nine antibiotic resistance-related genes in Streptococcus agalactiae using multiplex PCR and reverse line blot hybridization assay. Antimicrob Agents Chemother. 50, 204-209 (2006).
  3. Cai, Y. Comparison of single- and multilocus sequence typing and toxin gene profiling for characterization of methicillin-resistant Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol. 45, 3302-3308 (2007).
  4. Cai, L. A new multiplex PCR-based reverse line-blot hybridization (mPCR/RLB) assay for rapid staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec) typing. J Med Microbiol. 58, 1045-1057 (2009).
  5. O'Sullivan, M. V., Kong, F., Sintchenko, V., Gilbert, G. L. Rapid identification of methicillin-resistant Staphylococcus aureus transmission in hospitals by use of phage-derived open reading frame typing enhanced by multiplex PCR and reverse line blot assay. J Clin Microbiol. 48, 2741-2748 (2010).
  6. Wang, Q., Kong, F., Jelfs, P., Gilbert, G. L. Extended phage locus typing of Salmonella enterica serovar Typhimurium, using multiplex PCR-based reverse line blot hybridization. J Med Microbiol. 57, 827-838 (2008).
  7. Zhou, F., Kong, F., Tong, Z., Gilbert, G. L. Identification of less-common Streptococcus pneumoniae serotypes by a multiplex PCR-based reverse line blot hybridization assay. J Clin Microbiol. 45, 3411-3415 (2007).
  8. Kong, F., Brown, M., Sabananthan, A., Zeng, X., Gilbert, G. L. Multiplex PCR-based reverse line blot hybridization assay to identify 23 Streptococcus pneumoniae polysaccharide vaccine serotypes. J Clin Microbiol. 44, 1887-1891 (2006).
  9. Kong, F., Ma, L., Gilbert, G. L. Simultaneous detection and serotype identification of Streptococcus agalactiae using multiplex PCR and reverse line blot hybridization. J Med Microbiol. 54, 1133-1138 (2005).
  10. Zhou, F. Identification of 20 common human enterovirus serotypes by use of a reverse transcription-PCR-based reverse line blot hybridization assay. J Clin Microbiol. 47, 2737-2743 (2009).
  11. Zhou, F. Molecular identification and analysis of nonserotypeable human enteroviruses. J Clin Microbiol. 48, 1276-1282 (2010).
  12. Xiong, L., Kong, F., Yang, Y., Cheng, J., Gilbert, G. L. Use of PCR and reverse line blot hybridization macroarray based on 16S-23S rRNA gene internal transcribed spacer sequences for rapid identification of 34 mycobacterium species. J Clin Microbiol. 44, 3544-3550 (2006).
  13. Wang, H., Kong, F., Wang, B., McKechnie, M. L., Gilbert, G. L. Multiplex polymerase chain reaction-based reverse line blot hybridization assay to detect common genital pathogens. Int J STD AIDS. 21, 320-325 (2010).
  14. McKechnie, M. L. Simultaneous identification of 14 genital microorganisms in urine by use of a multiplex PCR-based reverse line blot assay. J Clin Microbiol. 47, 1871-1877 (2009).
  15. Xiong, L., Kong, F., Zhou, H., Gilbert, G. L. Use of PCR and reverse line blot hybridization assay for rapid simultaneous detection and serovar identification of Chlamydia trachomatis. J Clin Microbiol. 44, 1413-1418 (2006).
  16. Wang, Y., Kong, F., Yang, Y., Gilbert, G. L. A multiplex PCR-based reverse line blot hybridization (mPCR/RLB) assay for detection of bacterial respiratory pathogens in children with pneumonia. Pediatr Pulmonol. 43, 150-159 (2008).
  17. Wang, Y. Use of a multiplex PCR-based reverse line blot (mPCR/RLB) hybridisation assay for the rapid identification of bacterial pathogens. Clin Microbiol Infect. 14, 155-160 (2008).
  18. Wang, H., Kong, F., Jelfs, P., James, G., Gilbert, G. L. Simultaneous detection and identification of common cell culture contaminant and pathogenic mollicutes strains by reverse line blot hybridization. Appl Environ Microbiol. 70, 1483-1486 (2004).
  19. Kong, F., Gilbert, G. L. Multiplex PCR-based reverse line blot hybridization assay (mPCR/RLB) - a practical epidemiological and diagnostic tool. Nat Protoc. 1, 2668-2680 (2006).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.

    Usage Statistics