Genomik DNA 5-hydroxymethylcytosine seçici Yakalama

Published 10/05/2012
0 Comments
  CITE THIS  SHARE 
Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

Açıklanan kolay ve yoğunluk bağımsız zenginleştirme için bir biyotin bağlayıcının aktarmak tıkırtı kimya ve ardından, 5-HMC için bir azit-glikoz aktarmak için β-glukoziltransferaz (β-GT) ile iki aşamalı bir etiketleme bir işlemdir. Bu etkili ve spesifik bir etiketleme yöntemi nesil dizileme ile son derece düşük arka plan ve yüksek verimlilik epigenomic haritalama ile 5-HMC zenginleşmesine olanak sağlar.

Cite this Article

Copy Citation

Li, Y., Song, C. X., He, C., Jin, P. Selective Capture of 5-hydroxymethylcytosine from Genomic DNA. J. Vis. Exp. (68), e4441, doi:10.3791/4441 (2012).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

5-metilsitozin (5-mC) insan genomik DNA'daki toplam sitozinler arasında ~% 2-8 oluşturan ve gen ekspresyonu, genom bütünlüğünün korunması, ebeveyn baskılama, X kromozomu inaktivasyonu, düzenlenmesi de dahil olmak üzere biyolojik fonksiyonları, geniş bir yelpazede etkiler gelişme, yaşlanma ve kanser 1. Son zamanlarda, bir okside 5-mC, 5-hydroxymethylcytosine (5-HMC), varlığında embriyonik sap (ES) hücreleri ve nöronal hücreler 2-4, özellikle de memeli hücrelerinde tespit edilmiştir. 5-HMC TET aile demir (II) / α-ketoglutarat-bağımlı dioxygenases 2, 3 ile 5-mC katalizli oksitlenmesi ile elde edilir. 5-HMC embriyonik kök (MES) hücre normal hemopoeziste ve maligniteler ve zigot gelişimi 2, 5-10 bakımı dahil olmak üzere önerilmiştir. Iyi 5-HMC fonksiyonunu anlamak için, güvenilir ve kolay sıralama sistemi esastır. Geleneksel bisülfit dizileme 5-mC 11 5-HMC ayırt edemez 12 glikoz parçası ekler bir bakteriyofaj enzim yararlanarak, etiketlemek ve 5-HMC yakalamak için oldukça etkili ve seçici kimyasal bir yaklaşım geliştirdik.

Burada 5-HMC seçici kimyasal etiketleme için basit bir iki aşamalı bir prosedür açıklanmaktadır. Birinci adımda etiketleme, genomik DNA 5-HMC 5-HMC için 6-azit-glikoz aktaran bir şekilde, β-GT, T4 bakteriyofaj bir glukoziltransferaz ile bir 6-azit-glikoz katalize ile etiketlenir Modifiye kofaktör, UDP-6-N3-GLC (6-N3UDPG). İkinci adımda, biyotinilasyon, bir disülfid biyotin linker klik kimyası ile azid grubu eklenir. Iki adım genomik bölgelerde 5-HMC bolluğu bakılmaksızın etiketlenmesi ve son derece düşük arka plan vererek tamamlamak için lider, son derece spesifik ve etkili. 5-HMC takibi biyotinilasyon, 5-HMC içeren DNA parçaları daha sonra seçici yakalanırbir yoğunluk-bağımsız bir şekilde streptavidin boncuklar kullanarak. Sonuçta ortaya çıkan 5-HMC-zenginleştirilmiş DNA fragmanları, yeni nesil dizi analizi de dahil olmak üzere aşağı akım analizleri için kullanılabilir.

Bizim seçici etiketleme ve yakalama protokol çeşitli / değişken 5-HMC bolluğu ile genomik DNA herhangi bir kaynak için geçerli yüksek hassasiyet, bahşeder. Bu protokolün amacı ve mansabındaki uygulaması (yani., Yeni nesil dizileme genomunda 5-HMC dağıtım haritaya) olsa da, tek-molekül, bir gerçek zamanlı SMRT (DNA) dizi ile uyumlu 5-HMC tek-baz çözünürlük sıralama sunma yeteneğine.

Protocol

1. Genomik DNA Parçalanma

İstediğiniz bir boyut aralığına sonication kullanarak Fragment genomik DNA genom dizileme platformu için uygundur. (Genellikle ~ 300 bp ile sonikasyon.)% 1 agaroz jel (Şekil 1) üzerinde dağınık genomik DNA'nın boyutu dağılımı kontrol edin.

2. DNA Preparation

Genomik DNA 5-HMC bolluğu dayalı başlayarak DNA miktarları belirleyin. 5-HMC düzeyleri farklı doku tiplerinin anlamlı farklılık olduğu, başlangıç ​​DNA miktarları numunelerin 5-HMC seviyeleri bağlıdır. Örnekler için Tablo 1'e bakınız.

3. β-GT katalizörlü reaksiyonu (Glikoz Transferi Reaksiyon)

  1. 1 saat için bir 37 ° C su banyosu içinde Tablo 2 ve inkübe de gösterildiği gibi, karışım pipetleme ile karıştırın.
  2. Inkübasyondan sonra, DNA 10 mg başına kullanarak, QIAquick Nükleotid Kaldırma Kiti ile reaksiyonu temizlemeksütun. Kolon başına 30 ul su Zehir ve birleştirir.

4. Biyotinilasyon Reaksiyon (Tıklayınız Kimya)

  1. 150 uM'lik bir son konsantrasyon (yani, 30 ul DNA solüsyonu başına çözelti çalışma 5 ul) ile yıkandı, DNA çözeltisi (adım 3) içinde DBCO-SS-PEG3-Biotin konjugat çalışma çözeltisi (1 mM) ilave edilir.
  2. 2 saat boyunca 37 ° C su banyosunda pipetleme ve inkübe Mix by.
  3. QIAquick Nükleotid Kaldırma Kiti ile reaksiyonu temizleyin. İdeal toplam elüsyon hacmi 100 ul olduğunu.
  4. Mikrolitre ölçekli spektrofotometre (örn., Nanodrop) kullanılarak kurtarıldı DNA miktarını ölçmek.

5. 5-HMC-içeren DNA Yakalama

  1. Üreticinin talimatlarına göre 1X B & W tampon 1 ml Dynabeads MyOne Streptavidin C1 50 ul 3 kere yıkayın. Manyetik bir stand ile boncuk ayırın.
  2. Kurtarılan biotinlenmiş D 2X & B tamponu eşit hacimde ekleYıkanmış boncuklar NA (100 ul).
  3. Bir rotator üzerine nazik rotasyonu ile oda sıcaklığında 15 dakika inkübe edin.
  4. Manyetik bir stand ile boncuk ayırın ve 1X B & W tampon 1 ml boncuk 3 kere yıkayın.
  5. Bir döndürücü üzerine nazik dönme ile, oda sıcaklığında 2 saat süreyle taze hazırlanmış, 50 mM DTT 100 ul olarak boncuklar ile inkübe ederek DNA Zehir.
  6. Manyetik bir stand ile boncuk ayırın. DTT kaldırmak için üretim talimat doğrultusunda bir Mikro Bio-Spin 6 Sütun üzerine solvent ve yük aspire. Hedef DNA artık çözelti içindedir.
  7. EB tamponu 10 ul Qiagen MinElute PCR Arıtma Kit ve elute DNA tarafından önceki adımdaki Elüsyonlanan DNA arındırın. Konsantrasyonunun 20 ng / ul daha yüksek ise Qubit, florimetre veya Nanodrop kullanılarak DNA ölçülmesine imkan verirler. DNA aşağı genom sekanslama kütüphane hazırlanması için hazır hale gelir.

6. Temsilcisi Sonuçlar

Kalite o takdirdef genomik DNA yüksek, β-GT ve biyotinilasyon tepkilerden sonra tipik kurtarma verimleri ~% 60-70 vardır. Ancak, yakalama verim numunelerin 5-HMC seviyelerine bağlı olarak farklı doku tipleri ile önemli ölçüde değişmektedir. Tipik olarak, beyin genomik DNA için yakalama verimliliği ~ 4-9% ve bazı aşırı durumlarda, verimliliği% 12'ye kadar çıkabilir. ES hücreleri için, ortalama yakalama verim sinir hücreleri için ~% 0.5 'e aksine, ~% 2-4 olup. Görülen düşük verim şimdiye kadar kanser hücrelerinden genomik DNA için idi. Tüm zenginleştirilmiş DNA standardının yeni nesil kütüphane hazırlık protokolleri için hazırdır. Buna ek olarak, yakalanan DNA ayrıca, ilgili primerlerin mevcut olduğunda giriş DNA ile karşılaştırıldığında bazı parçalar zenginleştirme tespit etmek için gerçek-zamanlı PCR için şablon olarak kullanılır.

Şekil 1
Şekil 1. Içinde sonike insan genomik DNA için BamHI% 1 agaroz jel. 1X TE tamponu, 120 ul, insan iPS hücreleri, izole edilen genomik DNA için 10 ug bir sonikasyon cihazı (Covaris) kullanılarak sonike edildi. Sonikasyon sonrasında sonicated DNA'nın 2 ul sonicated DNA parçalarının boyutları karşılaştırmak için DNA işaretleyici 100 bp ile% 1 agaroz jel üzerine yüklendi.

Bileşen Hacim Nihai Konsantrasyon
Su _ Ul
10 X β-GT Reaksiyon Tamponu 2 ul 1 X
Dakikada 10 mikrogram genomik DNA _ Ul Up 500 ul ng /
UDP-6-N GLC 3-(3 mM) 0.67 ul 100 uM
β-GT (40 uM) 1 ul 2 mcM
Toplam hacmi 20 ul

doku genomik DNA (yüksek 5-HMC içeriği>% 0,1) için: i)

Bileşen Hacim Nihai Konsantrasyon
Su _ Ul
10 X β-GT Reaksiyon Tamponu 10 ul 1 X
En fazla 20 mikrogram genomik DNA _ Ul Up 500 ul ng /
UDP-6-N3-GLC (3 mM) 1.33 ul 100 uM
β-GT (40 uM) 2 ul 2 mcM
Toplam hacmi 40 ul

ii) kök hücre genomik DNA (ortanca 5-HMC içeriği ~% 0.05) için

Bileşen Hacim Nihai Konsantrasyon
Su _ Ul
10 X β-GT Reaksiyon Tamponu 10 ul 1 X
Up 50 mikrogram genomik DNA _ Ul Up 500 ul ng /
UDP-6-N3-GLC (3 mM) 3.33 ul 100 uM
β-GT (40 uM) 5 ul 2 mcM
Toplam hacmi 100 ul

iii) kanser hücresinin genomik DNA (düşük 5-HMC içeriği ~ 0.01% için)

Tablo 1. Giriş DNA ve seçici kimyasal etiketleme yöntemi ile çeşitli 5-HMC seviyeleri ile numuneleri kullanılarak etiketleme reaksiyon miktarı örnekleri.

Örnek 5-HMC düzeyi Başlangıç ​​DNA (mikrogram) Işaretlendikten sonra Kurtarma (boncuk giriş) (mikrogram) Kurtarma verim Pull-down DNA (ng) Pull-down verim
Yetişkin fare beyincik 0.4% 10 7.5 % 75 236 3.1%
Postnatal gün 7 fare beyincik % 0.1 ' 11 9 % 82 140 1.6%
Fare ES hücre E14 0.05% 60 42 70% 350 0.8%

Tablo 2. Fare beyin dokuları ve ES hücreleri Temsilcisi sonuçları.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Hydroxymethylcytosine 5-(5-HMC) belirli memeli hücre türleri içinde önemli miktarda yeni tanımlanmış bir epigenetik modifikasyon mevcuttur. Burada sunulan yöntem, 5-HMC arasında genom dağılımı belirlemek içindir. Biz 5-HMC bir hidroksil grubu üzerine bir azid grubu ihtiva eden bir mühendislik glikoz yarımı aktarmak için β-glukoziltransferaz T4 bakteriyofaj kullanır. Azid grubu kimyasal memeli genomları 5-HMC içeren DNA parçalarının tespiti, afinite zenginleştirme ve sıralama için biotin ile değiştirilebilir. Bu protokol hMeDIP basit olmasına rağmen, bu yüksek yoğunluklu 5-HMC bölgelerine doğru güçlü bir eğilim vardır ve genellikle bağımsız çekişinden tutarsız sonuçlar verir, 5-HMC antikor tabanlı hydroxymethylated DNA immünopresipitasyon (hMeDIP-Seq) 13-15 üzerinde avantajları vardır -çıkışlar. Bizim yöntem, önyargı olmaz.

Orada bizim etiketleme açısından iki olası endişeler, ancak, ve beni yakalamakThOD. Ilk endişe etiketleme ve yakalama özgüllüğü olabilir. Yakın tarihli bir rapora 5-hydroxymethyluracil (5-HMU) de β-GT bir substrat olarak hizmet edeceğini belirtmiştir beri, yanlış pozitif sinyaller 5-HMC-akrabalığı 16 nonspesifik zenginleştirilmiş parçaları yol tanıttı olabilir. Son derece aktif 5-hydroxymethyluracil-DNA glycosylases sürekli memeli genomunda 17,18 aslında saptanamayan 5-HMU sonuçlanan bu DNA hasarı, kaldırma çünkü bu endişe olsa da, asılsız olabilir. İkinci endişe etiketleme verimliliği ve yakalama. 5-HMC düzeyleri beyin dokularında% 0.5 MES hücrelerde% 0.05 ve kanser hücrelerinin% 0.01 arasında değişen, farklı doku ve hücrelerde önemli ölçüde değişebilir bu yana, bizim yöntemleri mansap açısından tüm bu dokuların uygulanabilir olması esastır etiketli ve yakalanan genomik DNA uygulamaları. Bizim deneyim burada anlatılan yöntemler gerçekten duyarlı ve spesifik olduğunu göstermektedirYeterli dokular arasında ya da bu gibi derin genom 19-21 5-HMC dağılımı eşlemek için sekans olarak aşağı uygulamalar için 5-HMC düzeylerinin ölçülmesi ya da bazlı karşılaştırma amacıyla tüm dokular analiz etmek.

Bizim yöntem ile genomik DNA anahtar başlangıç ​​uygun bir miktarda kullanılmasıdır. Genomik DNA konsantrasyonu çok düşükse, etiketleme verim ve seçicilik göre azalır. Konsantrasyon 25 20 ul reaksiyon, etiketleme ve yakalama etkinlik, aynı zamanda özgüllük ul / ng, daha düşük ise 5-HMC bolluk, beyin dokusundan DNA içinde yeterince yüksek olmasına rağmen, bizim deneyime dayalı önemli ölçüde azalacaktır. Düşük bolluk DNA örnekleri için, konsantrasyon ihtiyaca ilave olarak, DNA'nın toplam miktarı yüksek ve belirli bir yakalama verim elde etmek için gereklidir. Böylece, her ne kadar bir akış st için 5-HMC-zenginleştirilmiş DNA fragmanları arasında sadece 25 ng ihtiyacıGelecek nesil dizileme platformlar tarafından istihdam andard kütüphanesi nesil protokoller, beyin dokuları genomik DNA başlangıç ​​miktarı 2 mikrogram (ve ideal bir başlangıç ​​miktarı 5-10 mikrogram olduğu) az olmamalıdır. Deneme yanılma yoluyla, Tablo 2'de ayrıntılı olarak, yüksek etiketleme verimliliği ve özgüllük almak için değişken 5-HMC bollukları ile farklı dokulardan genomik DNA'nın başlangıç ​​miktarı optimize ettik.

Özetle, bizim yöntem hassas genomik 5-HMC etiketlemek için nitelikli ve özellikle onu aşağı nesil dizileme deneyleri için duyarlılık ve özgüllük açısından başarılı bir protokol yaparak, 5-HMC içeren parçaları yakalamak.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Çıkar çatışması ilan etti.

Acknowledgements

Bu çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüleri (CH ve NS051630/MH076090/MH078972 için PJ için GM071440) tarafından kısmen desteklenmiştir.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Reagents
5M Sodium chloride (NaCl) Promega V4221
0.5M pH8.0 Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Promega V4231
1M Trizma base (Tris) pH7.5 Invitrogen 15567-027)
HEPES 1M, pH7.4 Invitrogen 15630
Magnesium chloride (MgCl2) 1M Ambion AM9530G
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma D8418
Tween 20 Fisher BioReagents BP337-100
DBCO-S-S-PEG3-Biotin conjugate Click Chemistry Tools A112P3
1,4-Dithiothreitol, ultrapure (DTT) Superpure Invitrogen 15508-013
QIAquick Nucleotide Removal Kit Qiagen 28304
Micro Bio-Spin 6 Column Bio-Rad 732-6222
Dynabeads MyOne Invitrogen 650-01
Streptavidin C1
Qiagen MinElute PCR Purification Kit Qiagen 28004
UltraPure Agarose Invitrogen 16500500
UDP-6-N3-glucose Active Motif 55013
Enzyme
β-glucosyltransferase (β-GT) New England Biolab M0357
Equipment
Sonication device Covaris
Desktop centrifuge
Water bath Fisher Scientific
Gel running apparatus Bio-Rad
NanoDrop1000 Thermo Scientific
Labquake Tube Shaker Barnstead
Labquake Tube Shaker Thermolyne
Magnetic Separation Stand Promega Z5342
Qubit 2.0 Fluorometer Invitrogen
Reagent setup 10 X β-GT Reaction Buffer (500 mM HEPES pH 7.9, 250 mM MgCl2) 2 X Binding and washing (B&W) buffer (10 mM Tris pH 7.5, 1 mM EDTA, 2 M NaCl, 0.02% Tween 20).

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Jaenisch, R., Bird, A. Epigenetic regulation of gene expression: how the genome integrates intrinsic and environmental signals. Nat. Genet. Suppl 33. 245-254 (2003).
  2. Ito, S. Role of Tet proteins in 5mC to 5hmC conversion, ES-cell self-renewal and inner cell mass specification. Nature. 466, 1129-1133 (2010).
  3. Tahiliani, M. Conversion of 5-methylcytosine to 5-hydroxymethylcytosine in mammalian DNA by MLL partner TET1. Science. 324, 930-935 (2009).
  4. Kriaucionis, S., Heintz, N. The nuclear DNA base 5-hydroxymethylcytosine is present in Purkinje neurons and the brain. Science. 324, 929-930 (2009).
  5. Ko, M. Impaired hydroxylation of 5-methylcytosine in myeloid cancers with mutant TET2. Nature. 468, 839-843 (2010).
  6. Koh, K. P. Tet1 and tet2 regulate 5-hydroxymethylcytosine production and cell lineage specification in mouse embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 8, 200-213 (2011).
  7. Iqbal, K., Jin, S. G., Pfeifer, G. P., Szabo, P. E. Reprogramming of the paternal genome upon fertilization involves genome-wide oxidation of 5-methylcytosine. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108, 3642-3647 (2011).
  8. Wossidlo, M. 5-Hydroxymethylcytosine in the mammalian zygote is linked with epigenetic reprogramming. Nat. Commun. 2, 241 (2011).
  9. Gu, T. P. The role of Tet3 DNA dioxygenase in epigenetic reprogramming by oocytes. Nature. 477, 606-610 (2011).
  10. Dawlaty, M. M. Tet1 is dispensable for maintaining pluripotency and its loss is compatible with embryonic and postnatal development. Cell Stem Cell. 9, 166-175 (2011).
  11. Huang, Y. The behaviour of 5-hydroxymethylcytosine in bisulfite sequencing. PLoS One. 5, e8888 (2010).
  12. Song, C. X. Selective chemical labeling reveals the genome-wide distribution of 5-hydroxymethylcytosine. Nat. Biotechnol. 29, 68-72 (2011).
  13. Pastor, W. A. Genome-wide mapping of 5-hydroxymethylcytosine in embryonic stem cells. Nature. 473, 394-397 (2011).
  14. Matarese, F., Pau, C. arrillo-deS. anta, E,, Stunnenberg, H. G. 5-Hydroxymethylcytosine: a new kid on the epigenetic block. Mol. Syst. Biol. 7, 562 (2011).
  15. Szwagierczak, A., Bultmann, S., Schmidt, C. S., Spada, F., Leonhardt, H. Sensitive enzymatic quantification of 5-hydroxymethylcytosine in genomic DNA. Nucleic Acids Res. 38, 181 (2010).
  16. Terragni, J., Bitinaite, J., Zheng, Y., Pradhan, S. Biochemical characterization of recombinant β-glucosyltransferase and analysis of global 5-hydroxymethylcytosine in unique genomes. Biochemistry. (2012).
  17. Rusmintratip, V., Sowers, L. C. An unexpectedly high excision capacity for mispaired 5-hydroxymethyluracil in human cell extracts. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 97, 14183-14187 (2000).
  18. Globisch, D. Tissue distribution of 5-hydroxymethylcytosine and search for active demethylation intermediates. PLoS One. 5, e15367 (2010).
  19. Yildirim, O. Mbd3/NURD Complex Regulates Expression of 5-Hydroxymethylcytosine Marked Genes in Embryonic Stem Cells. Cell. 147, 1498-1510 (2011).
  20. Szulwach, K. E. Integrating 5-hydroxymethylcytosine into the epigenomic landscape of human embryonic stem cells. PLoS Genet. 7, e1002154 (2011).
  21. Szulwach, K. E. 5-hmC-mediated epigenetic dynamics during postnatal neurodevelopment and aging. Nat. Neurosci. 14, 1607-1616 (2011).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Video Stats