Lokalisatie, identificatie, en Excisie van Muriene Adipose Depots

Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Als gevolg van de drastische en negatieve verband tussen obesitas en andere comorbiditeiten, onderzoek naar de rol vetweefsel speelt bij de ziekte en de algehele gezondheid gerechtvaardigd is. We presenteren een protocol voor isolatie en excisie van vet depots waardoor de studie van adipose gebruik in situ en in vitro methoden.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Mann, A., Thompson, A., Robbins, N., Blomkalns, A. L. Localization, Identification, and Excision of Murine Adipose Depots. J. Vis. Exp. (94), e52174, doi:10.3791/52174 (2014).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Introduction

Vet maakte een opvallende verschijning in de media-aandacht, als gevolg van obesitas dramatische stijging in de laatste decennia van de 20e eeuw. Obesitas treft momenteel meer dan een derde van de volwassenen en 17% van de kinderen en adolescenten in de Verenigde Staten (VS) 1. Verspreid over alle etnische groepen, heeft statistisch onderzoek rond de obesitas-epidemie aangetoond dat niet-Spaanse zwarten hebben de hoogste leeftijd gecorrigeerde snelheid van obesitas (49,5%) in vergelijking met de Mexicaanse Amerikanen (40,4%), alle Iberiërs (39,1%), en niet- Spaanse blanken (34,3%) 2. Het economische effect van obesitas is ook een groeiende zorg voor de gezondheidszorg. In 2012 werd geschat dat de jaarlijkse medische kosten van de zorg voor obesitas in de VS in 2005 was $ 190.200.000.000, bijna 21% van de totale medische uitgaven begroting. Helaas, werd obesitas bij kinderen naar schatting verantwoordelijk voor $ 14000000000 in directe medische kosten om alleen te zijn. Statistisch werd vastgesteld dat de gemiddelde medische kostenpersonen met obesitas was $ 2741 hoger per jaar dan die zonder deze morbiditeit 3-5.

Obesitas is een belangrijke risicofactor voor een verscheidenheid van aandoeningen zoals: type 2 diabetes, dyslipidemie, hart- en vaatziekten, kanker, spier- skelet aandoeningen en chronische ontsteking. Obesitas is sterk verbonden met de pathogenese van metabool syndroom en andere chronische ziekten 6-8. Met zulke drastische en negatieve verbindingen tussen obesitas en andere comorbiditeiten, heeft wetenschappelijk onderzoek aandacht aan beter inzicht in de huidige epidemie en de diverse en cruciale rol gespeeld door vetweefsel.

Historisch, werd vetweefsel onbelangrijk beschouwd en werd alleen gezien als een eenvoudige vulling weefsel. Momenteel is vet is aangetoond dat vele essentiële rol spelen in de functie van het lichaam in: stofwisseling, hormoonhuishouding, ontstekingen, bescherming en isolatie 9. Vetweefsel is voornamelijk samengesteld uitadipocyten maar bevat ook pericyten, endotheelcellen, monocyten, macrofagen en pluripotente stamcellen 8. Vetweefsel wordt verspreid door het hele lichaam in verschillende depots. De belangrijkste depots kan subdermaal worden gevonden, subcutaan, intramusculair, en viscerally 10. Adipose depots is aangetoond depot specifieke metabolische profielen daarvan, die een depot specifiek gevoeligheid voor obesitas en verwante aandoeningen 8 hebben.

Traditioneel is het vetweefsel is ingedeeld in twee hoofdtypen: wit vetweefsel (WAT) en bruin vetweefsel (BBT); hoewel de recente literatuur geeft aan dat de aanwezigheid van een derde groep gedoopt Brite of beige vet 11. Vetweefsel is aangetoond dat verschillende kleuren, morfologieën, metabolische functies, biochemische eigenschappen en genetische expressiepatronen 10 hebben. Adipocyten in Wat hebben een enkele, grote lipide druppel en variabele hoeveelheden mitochondria. WATis dominant in subcutane en viscerale plaatsen van het lichaam. WAT functioneert voornamelijk als gebied van energie-opslag en bescherming orgel. Adipocyten in BAT hebben een multiloculaire morfologie en overvloedige mitochondriën. BAT ligt voornamelijk in de nek en grote bloedvaten van de thorax, en de scapulae 12. BAT voornamelijk functies in-energie besteden gedrag dat thermogenese 7 reguleren. Brite of beige vet is aangetoond dat een analoge morfologie en expressie BAT delen maar bleek te zijn ontstaan ​​uit witte adipocyten 11.

De beschreven chirurgische methode in dit manuscript geeft onderzoekers het vermogen om verschillende effecten die factoren als analyse: milieu, farmaceutica en genetica hebben op vet; alsmede de positieve of negatieve rol speelt adipose ziekte en de algehele gezondheid. Ook biedt een manier te identificeren en te isoleren verschillende vetweefsel tebeter zorgen voor begrip van de biochemische relaties en verschillen tussen de depots. Dit kan helpen bij het bepalen van de relatie tussen locatie, functie en soorten vet in het lichaam. Deze methode doet dit door het verschaffen van middelen voor het grove visualisatie, analyse van genexpressie, eiwitexpressie analyse, histologisch onderzoek, en isolatie van primaire cellijnen in vitro studies. Momenteel zijn er vele artikelen die inzicht in de metabolische gedrag van verschillende vet depots, evenals hun anatomische locaties verschaffen; maar voorzien niet in een diepgaande methode over hoe om specifiek te lokaliseren, te identificeren en isoleren van deze depots. Deze chirurgische methode een nauwkeurige techniek maakt isolatie van meerdere depots met een minimale hoeveelheid dissectie en verontreiniging in vergelijking met andere werkwijzen ontwikkeld voor het isoleren van één of twee depots 13-14.

Het doel van dit protocol is te voorzieneen nauwkeurige werkwijze voor de identificatie en isolatie van verschillende vetdepots van verschillende anatomische locaties.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

OPMERKING: Alle dierlijke procedures werden uitgevoerd met de goedkeuring van de Institutional Animal Care en gebruik Comite (IACUC) van de Universiteit van Cincinnati en in overeenstemming met de Gids voor de zorg en het gebruik van proefdieren van de National Institutes of Health (NIH-publicatie nr . 85-23, herzien in 1996).

1. Euthanaseren en steriliseer de muis

  1. Plaats de muis in een dropbox met een supratheraputic dosis isofluraan en laten inhaleren van kracht. Zodra de muis wordt gedood, te verwijderen uit de doos.
  2. Cervicaal ontwrichten als een tweede middel van euthanasie.
  3. Steriliseer het buitenoppervlak van de muis door het reinigen van het dier met 70% ethanol.

2. Identificatie en isolatie van Drie Verschillende Adipose Depots

  1. Bruin vetweefsel (BAT) Isolatie:
    1. Zorg ervoor dat de vacht is nat van de alcohol reiniging om te helpen bij het doorsnijden van de epidermale en dermale Layers.
    2. Plaats de muis in een liggende positie met de rug tegen de tafel.
    3. Pak de huid net onder het middenrif met een pincet, een lift en incisie met een schaar.
    4. Snijd dwars over de omtrek van de muis om het buikvlies bloot.
    5. Onthullen de vlindervormige BAT depot door degloving de bovenste helft van de muis. Houd de onderste aanhangsels en buik in de ene hand en tot het trekken van de huid in de richting van het hoofd.
    6. Richt de muis, zodat deze gevoelig op de tafel is geplaatst. Wees voorzichtig niet om de blootgestelde depot besmetten met haar.
    7. Schoon chirurgische instrumenten en verandering naar een vers paar handschoenen.
    8. Zoek de schouderbladen en de bijbehorende depot. Verwijder zorgvuldig de oppervlakkige wit vetweefsel boven op de vlinder en vervolgens ontleden de vlinder van interscapular bruin vet. Wees voorzichtig om de spier nauw verbonden met het bruine vet te vermijden.
      Opmerking: Het gebruik van een dissectie microscoop wordt aanbevolen voor het verwijderen van het white vet, alsmede de scheiding van het bruine vetweefsel van het schouderblad.
    9. Verwijder vet depot en naar een 2 ml microcentrifugebuis.
    10. Indien RNA of eiwit te extraheren invriezen weefsel door onderdompeling in vloeibare stikstof en bewaar bij -80 ° C. Bevriezen van het monster in een keer om degradatie te voorkomen. Als kweken, bedek het weefsel in DMEF-12 en ingesteld op ijs totdat alle monsters worden verzameld voor cultuur (aanvullende informatie).
  2. Isolatie van subcutane VetWeefsel (SQ), een wit vetweefsel Depot (WAT):
    1. Zet op een vers paar handschoenen om niet cross-besmetten tussen vet depots.
    2. Onthullen de lies, driehoekige SQ depots door De handschoenen in de onderste helft van de muis. Houd de bovenste aanhangsels en thorax in de ene hand en het trekken van de huid naar beneden in de richting van de voeten met de andere hand.
    3. Richt de muis in een rugligging terwijl ze voorzichtig niet om de blootgestelde depot met haar besmetten.
    4. Schoon surgical instrumenten en verandering naar een vers paar handschoenen.
    5. Ontleden zorgvuldig de driehoeken van SQ vet. Pas op dat u het monster besmetten met spier, naburig vet, melkklieren of op welke schepen snijden en vervuilen het monster met bloed.
      LET OP: Het gebruik van een dissectie microscoop wordt aanbevolen als de grenzen niet duidelijk zijn omschreven.
    6. Verwijder vet depots en transfer naar 2 ml microcentrifugebuizen.
    7. Indien RNA of eiwit te extraheren invriezen weefsel door onderdompeling in vloeibare stikstof en bewaar bij -80 ° C. Bevriezen van het monster in een keer om degradatie te voorkomen.
    8. Voor het kleuren, herstellen of te verankeren in oktober Als kweken, bedek het weefsel in DMEF-12 en ingesteld op ijs totdat alle monsters worden verzameld voor cultuur (aanvullende informatie).
  3. Isolatie van Gonadale Vet een Visceral VetWeefsel (BTW) en wit vetweefsel (WAT) Depot:
    1. Zet op een vers paar handschoenen om niet cross-besmetten tussen vet depots.
    2. Met scissors, snijd het buikvlies dwars, direct onder het middenrif. Snijd het buikvlies van het middenrif tot het rectum midden coronaalwaarts aan buikorganen bloot.
    3. Zoek de testes of ovaria en identificeren van de bijgevoegde wit vetweefsel, bekend als de epididymis vet bij mannen of gonadale adipose bij vrouwen.
    4. Schoon chirurgische instrumenten en verandering naar een vers paar handschoenen
    5. Ontleden zorgvuldig zowel epididymaal vet depots van de testes, epididymis, en zaadleiders. Of als vrouwelijke, zorgvuldig ontleden zowel gonadale vetkussentjes van de eierstokken.
    6. Verwijder vet depots en overbrengen naar 2 ml microcentrifugebuisjes.
    7. Indien RNA of eiwit te extraheren invriezen weefsel door onderdompeling in vloeibare stikstof en bewaar bij -80 ° C. Bevriezen van het monster in een keer om degradatie te voorkomen.
    8. Voor het kleuren, herstellen of te verankeren in oktober Als kweken, bedek het weefsel in DMEF-12 en ingesteld op ijs totdat alle monsters worden verzameld voor cultuur (aanvullende informatie).

    3. Isolatie van Perivasculaire VetWeefsel (PVAT)

    1. Isolatie van het Hart:
      1. Leg de muis in een liggende positie met de bovenste en onderste aanhangsels naar buiten verlengd.
      2. Beveiligde appendages met behulp van chirurgische tape.
      3. Na het plaatsen van de muis, zoals hierboven vermeld, maakt de spanning door het op te tillen de zwaardvormig proces met een pincet. Snijd horizontaal door het membraan, waardoor de onderste gedeelte van de borstholte.
      4. Met behoud spanning, verheffende de processus xiphoideus, dwars door de ribbenkast craniaal naar de kop, om de zijde van het borstbeen.
      5. Pak de ribbenkast gewoon inferieur aan het sleutelbeen en snijd langs de onderste lengte van het sleutelbeen uit naar de oksel in beide richtingen. De borstholte en de inhoud (hart, longen, etc.) moet nu duidelijk zichtbaar.
      6. Reinig de borstholte van vreemde bloed en vocht door steriele gaUze om de vloeistof te absorberen. Als het verzamelen van organen of schepen er zeker van te overvloedig (aanvullende informatie).
      7. Zodra het gebied is vrijgemaakt van vloeistof, snijd de bronchiën en bevestigen van schepen naar de longen te verwijderen, waardoor een betere belichting van het hart.
    2. Lokalisatie en Excisie van Aorta Perivasculaire VetWeefsel (PVAT):
      1. Verwijder de volgende organen aan de inferieure gedeelten van de aorta beter identificeren: lever, maag, milt, pancreas, darmen en colon.
      2. Begin eerst met identificatie van de maag en de slokdarm. Snij de slokdarm in de maag-slokdarm overgang naar de maag uit het lichaam bevrijden.
      3. Vervolgens bepalen de darmen en de omringende mesenterium. Snijd oppervlakkig door mesenterium, want het ligt zeer dicht tegen de renale deel van de aorta, dan "lopen de darm."
      4. Snijd de colon vrij zo dicht bij het rectum mogelijk. Aldus vrijmaken van de maag, darm en colon van de muis.
      5. Reverplaats de maag, darm, dikke darm, alvleesklier en milt door snijden door het bevestigen mesenterium en vaten. De pancreas en milt moet vrij komen met de maag, darm en colon.
      6. Verwijder de lever door snijden door de levervenen en bevestigen mesenterium, verwijder alle lobben.
      7. Knip de viscerale laag en vet rondom de nieren. Laat de nieren aan de aorta in vivo te dienen als geografische merkers voor verschillende segmenten van de aorta.
      8. Spoel het gebied met steriele 1x PBS en verwijder alle vloeistof door absorptie met een steriel gaasje.
      9. Met behulp van micro-schaar en micro-tang, scheid de aorta van de dorsale gehechtheid aan de wervelkolom en de ventrale gehechtheid aan de slokdarm.
      10. Isoleer de aorta door het volgen en losmaken van de aorta de lengte van de aorta descendens uit de oorsprong in het hart naar de vertakking van de iliacale regio.
      11. Identificeren en de subclavia schepen te isoleren. Deze schepen te isolerenvan de nek naar de aorta wortel naar de aorta knooppunt en wortel in het hart beter bloot.
      12. Verwijder de thymus knip de brachycefale slagader, de linker gemeenschappelijke halsslagader en de linker subclavia, waardoor beweging van het hart.
      13. Met de hulp van een dissectie microscoop, bekijk de perivasculair vetweefsel (PVAT) laag rond de aorta.
      14. Het nemen van grote zorg om niet knijpen of knijp de PVAT, trek de PVAT weg van de aorta met micro-tang. Voorzichtig snijden de bevestiging van de PVAT de aorta met micro-schaar vanaf de thorax alleen superieur aan waar het diafragma bevindt.
        OPMERKING: Een dissectie microscoop wordt aanbevolen.
      15. Herhaal dit proces de gehele lengte van de aorta, eindigend bij de infrarenale aorta gebied, dat zich net boven de iliacale bifurcatie van de aorta vat.
      16. Als aortaboog PVAT gewenst is, gebruikt dezelfde methode om de PVAT uit de mindere c verwijderenurvature van de boog.
      17. Plaats PVAT monsters in 2 ml microcentrifugebuis (s).
      18. Indien RNA of eiwit te extraheren invriezen weefsel door onderdompeling in vloeibare stikstof en bewaar bij -80 ° C. Bevriezen van het monster in een keer om degradatie te voorkomen. Als kweken, bedek het weefsel in DMEF-12 en ingesteld op ijs totdat alle monsters worden verzameld voor cultuur (aanvullende informatie).
        LET OP: Extra vet depots te overwegen of geïnteresseerd zijn in een uitgebreide vet depot analyse zijn: retroperitoneale, mesenteriale, omental, pericardiale en knieholte.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Identificatie en lokalisatie van lies subcutaan vetweefsel, interscapular bruin vetweefsel, viscerale epididymale adipose (figuur 1), alsook de aortaboog perivasculaire vet, thoracale aorta vetweefsel, bijnieren aorta vet en de infrarenale aorta adipose (figuur 2) werd met succes gebruikt beschreven chirurgische methode. Histologisch onderzoek en differentiatie tussen BAT en WAT monsters werden positief beoordeeld met hematoxyline en eosine (H & E) kleuring (figuur 3). Analyse van RNA niveaus van adiponectine (AdipoQ), Peroxisoomproliferatorgeactiveerde receptor gamma (PPAR-γ), celdood-inducerende DFFA-achtige effector een (CIDEA), en andere vette specifieke markers werden gemeten voor alle bovenstaande geïsoleerde en weggesneden depots (gegevens niet getoond).

Primaire cellijnen van onderhuidse vetcellen en perivasculaire adipocyten werden gekweekt en gedifferentieerd uit preadipocyt s tot adipocyten met succes microarray analyse. De gekweekte preadipocyten omgezet adipocyten werden bevestigd met Oil Red O kleuring (figuur 4). Succesvolle isolatie, cultuur en differentiatie van adipocyten werd bereikt voor gebruik in in vitro studies, en eiwitactiviteit is succesvol gemeten. Enzymatische activiteit van matrix metaloprotease-2 (MMP2) werd gemeten in een behandelingsgroep vergeleken met de controlegroep. De activiteit van MMP2 werd gemeten in situ in een primaire perivasculaire adipocyten lijn via zymografie (figuur 5).

Figuur 1
Figuur 1. Anatomische locaties van C57BL / 6 mannelijke muizen vet depots. (A) interscapular bruin vet vet depot. (B) Inguinale onderhuidse vetophopingen depot. (C) Viscerale epididymaal vetophopingen depot.w.jove.com/files/ftp_upload/52174/52174fig1highres.jpg "target =" _ blank "> Klik hier om een ​​grotere versie van deze afbeelding te bekijken.

Figuur 2
Figuur 2. Anatomische locaties van PVAT depots in een C57BL / 6 mannelijke muizen. (A) aortaboog perivasculaire vetweefsel depot. (B) thoracale aorta perivasculaire vetweefsel depot. (C) suprarenal aorta perivasculaire vetweefsel depot. (D) infrarenale aorta perivasculaire vet depot. Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.

Figuur 3
Figuur 3. H & E kleuring van BAT en WAT vet. (A) H 8; E kleuring van paraformaldehyde gefixeerd, paraffine ingebedde C57BL / 6 mannelijke muizen steekproef van WAT vet bij een vergroting van 40x (B) H & E kleuring van paraformaldehyde gefixeerd, paraffine ingebedde C57BL / 6 mannelijke muizen steekproef van BBT bij een vergroting van 40x.. Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.

Figuur 4
Figuur 4. Oil Red O kleuring van gekweekte PVAT preadipocyten en adipocyten. (A) Oil Red O kleuring van gekweekte aortische perivasculaire preadipocyten bij aanvang van differentiatie bij 20x vergroting met fasecontrast. (B) Oil Red O kleuring van gekweekte aortische perivasculaire adipocyten na 5 dagen van differentiatie bij 20x vergroting met fasecontrast.es / ftp_upload / 52174 / 52174fig3highres.jpg "target =" _ blank "> Klik hier om een ​​grotere versie van deze afbeelding te bekijken.

Figuur 5
Figuur 5. zymografie van gedifferentieerde adipocyten, geïsoleerd van perivasculaire vetweefsel, toonden een verminderde activiteit van MMP2 vrijgegeven na behandeling in vergelijking met onbehandelde (controle) cellen, * P <0,01 vergeleken met controle.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Obesitas kan leiden tot een groot scala aan morbiditeit en het volledige begrip van de rol die vet speelt is niet helemaal duidelijk; daarom voortgezet onderzoek op het gebied van vet is noodzakelijk. Diermodellen, in het bijzonder murine modellen ideaal voor eerste onderzoek in de progressie van de ziekte en het testen van potentiële farmaceutische behandelingen. Bij gebruik van deze modellen nauwkeurige isolatie en excisie van vet depots is een uiterst belangrijk en noodzakelijk hulpmiddel in de studie van de pathologie van vet betrokken ziekten.

In de huidige literatuur over vet depots, er een aanzienlijke hoeveelheid literatuur over metabole gedrag en variatie tussen vet depots, evenals hun anatomische locaties. Echter, er zijn maar weinig die een diepgaande methode over hoe om specifiek te lokaliseren, te identificeren en isoleren van deze depots bieden. Op basis van de herziening van de huidige isolatie methoden van vet, is er een kleine subset van protocollen thoed bieden methodologie over hoe je een of twee depots te isoleren op een moment. Echter, een nauwkeurige techniek maakt isolatie van meerdere depots met een minimale hoeveelheid dissectie en verontreiniging, alsook deze verschillende methoden bestuderen van de verzamelde monsters kenmerkend is voor dit protocol 13-14.

Binnen deze methode, zijn er verschillende stappen van cruciaal belang zijn voor de isolatie en zuiverheid van het monster. Reinigen van gereedschap, handschoenen en oppervlakken vaak tot haar en verontreinigingen te verwijderen is een dwingende stap te vermijden depot besmetting. Bij het snijden van de huid dwars over de omtrek van de muis om het buikvlies voor degloving bloot te leggen, is het van belang om te voorkomen dat het snijden te diep. Het snijden van het buikvlies zal maken degloving zeer moeilijk en zal de mogelijke verontreiniging van het monster te verhogen. Wanneer het uitsnijden van de SQ vet depots is het essentieel om de driehoekige grenzen van het depot te identificeren voordat het uitknippen van een van de advertentieipose. Ook moet voorzichtig bezuinigingen worden gedaan om de spieren te voorkomen, en de aangrenzende schepen, klieren en vet. Hierdoor wordt verontreiniging van het monster uit afwisselende vetweefsel, klierweefsel, spier of bloed voorkomen.

De belangrijkste beperking voor isolatie en excisie van vet depots, in deze methode en andere vergelijkbare werkwijzen kunnen worden gevonden in het definiëren van de grenzen van bepaalde depots. Door de slecht gedefinieerde grenzen depots, zoals de subcutane depots kan isolatie ontbreekt een kleine hoeveelheid contaminatie van naburige vet- uitdagend. Een andere beperking is te vinden in het waarborgen van voldoende weefsel wordt verzameld voor aanvullende experimenten in vasculaire bijbehorende depots. Deze beperking vereist soms pooling monsters, hoewel dit afhankelijk van de plaats van isolatie en de voeding verbonden met het dier.

Nadat het vet depots geïsoleerd, kunnen zij worden gebruikt voor uiteenlopende assays. Het vet kan gebruik wordend voor moleculaire studies zoals eiwitexpressie enzymactiviteit en genexpressie analyse. Daarnaast kan men adipocyten voor primaire cellijn in vitro studies isoleren. Onsterfelijk gemaakte cellijnen kunnen ook worden gebruikt voor in vitro onderzoeken, maar onsterfelijke cellen niet geloofwaardig als primaire geïsoleerde cellijnen. Tenslotte kan het vet vast of oktober bevroren histologisch onderzoek om infiltratie van leukocyten, eiwit lokalisatie, en karakterisering van adipocyten morfologie identificeren.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Isoflurane Med-Vet International #RXISO-250
70% Ethanol Fisher 07-678-001
DMEF-12 Sigma Aldrich D-6421 Warm in waterbath before putting on tissue.
2 ml Microcentrifuge tubes Midsci MCT-200-C-S
Phosphate buffered saline Sigma Aldrich P5368-10PAK

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Ogden, C. L., Carroll, M. D., Kit, B. K., Flegal, K. M. Prevalence of obesity in the United States, 2009-2010. NCHS Data Brief. 82, 1-8 (2012).
  2. Flegal, K. M., Carroll, M. D., Kit, B. K., Ogden, C. L. Prevalence of obesity and trends in the distribution of body mass index among US adults, 1999-2010. 307, (5), 491-497 (2012).
  3. Cawley, J., Meyerhoefer, C. The medical care costs of obesity: an instrumental variables approach. Journal of Health Economics. 31, (1), 219-230 (2012).
  4. Obesity accounts for 21 percent of U.S. health care costs, study finds. Cornell University. Available from: http://www.sciencedaily.com/releases/2012/04/120409103247.htm (2012).
  5. Marder, W., Chang, S. Childhood Obesity: Costs, Treatment Patterns, Disparities in Care, and Prevalent Medical Conditions. Thomson Medstat Research Brief. (2006).
  6. Cortez, M., Carmo, L. S., Rogero, M. M., Borelli, P., Fock, R. A. A high-fat diet increases IL-1, IL-6, and TNF-α production by increasing NF-κB and attenuating PPAR-γ expression in bone marrow mesenchymal stem cells. Inflammation. 36, (2), 379-386 (2013).
  7. Sanchez-Gurmaches, J., Hung, C. M., Sparks, C. A., Tang, Y., Li, H., Guertin, D. A. PTEN loss in the Myf5 lineage redistributes body fat and reveals subsets of white adipocytes that arise from Myf5 precursors. Cell Metab. 16, (3), 348-362 (2012).
  8. Sethi, J. K., Vidal-Puig, A. J. Thematic review series: adipocyte biology. Adipose tissue function and plasticity orchestrate nutritional adaptation. J Lipid Res. 48, (6), 1253-1262 (2007).
  9. Aarsland, A., Chinkes, D., Wolfe, R. R. Hepatic and whole-body fat synthesis in humans during carbohydrate overfeeding. Am J Clin Nutr. 65, (6), 1774-1782 (1997).
  10. Park, A., Kim, W. K., Bae, K. H. Distinction of white, beige and brown adipocytes derived from mesenchymal stem cells. World J. Stem Cells. 6, (1), 33-42 (2014).
  11. Wu, J., et al. Beige adipocytes are a distinct type of thermogenic fat cell in mouse and. 150, (2), 366-376 (2012).
  12. Giralt, M., Villarroya, F. White, brown, beige/brite: different adipose cells for different functions. Endocrinology. 154, (9), 2992-3000 (2013).
  13. Casteilla, L., Pénicaud, L., Cousin, B., Calise, D. Choosing an adipose tissue depot for sampling: factors in selection and depot specificity. Methods Mol. Biol. 456, 23-38 (2008).
  14. Grant, R., Youm, Y. H., Ravussin, A., Dixit, V. D. Quantification of adipose tissue leukocytosis in obesity. Methods Mol. Biol. 1040, 195-209 (2013).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics